DISCUSSIONEach laboratory’s evaluat

DISCUSSION
Each laboratory’s evaluation of the GENE-TRAK
Salmonella assay was independently conceived and completed
without collaboration. Consequently, some variations in
the approach to comparing the DNA hybridization technique
to a culture-based technique are to be expected.
The approach used by MMSDML was to follow the
enrichment procedure as specified in the technical reference
guide, substituting a pre-enrichment step using BPW
(24 h), followed by enrichments in RV (48 h) and GN
broths (15–18 h). This series of enrichment steps yields a
total time of up to 90 h. The DNA hybridization assay can
be completed in approx. 4 h by experienced lab personnel.
This results in a total time of approx. 94 h or 4 days to
complete the analysis. To complete the culture-based assay
procedure following pre-enrichment and enrichment
requires 24 h for colony formation on selective media
followed by 24 h of growth on differential agar slants, for a
total time of approx. 138 h, or realistically, 6 days. Therefore,
use of the DNA hybridization technique, as used by
MMSDML, resulted in reducing the time required to
complete Salmonellae assays by 48 h. The GN broth
enrichment is recommended by GENE-TRAK Systems
as a postenrichment step to increase the density of cells prior to lysis, and is not typically included in cultural methods.
Consequently, if this step is excluded, the time needed to
complete a cultural analysis would be approx. 120 h, not
138 h. Hence, the actual time saved by using the DNA
hybridization assay was 26 h, or realistically, 1 day.
The approach used by NRMRL was to follow the
enrichment procedure as specified in the technical reference
guide, substituting a pre-enrichment step using BPW
(24 h), followed by a single enrichment in RV (24 h). This
series of enrichment steps yields a total time of up to 48 h.
When added to the time required to complete the DNA
hybridization assay, results may be obtained in 52 h or
within 3 days.
In addition to reducing the time for determining the
presence of Salmonellae within a sample, the DNA hybridization
technique does not require time-consuming media
preparation and evaluation steps typical of the culture-based
techniques commonly used. Furthermore, the GENETRAK
Salmonella assay system is sold as a kit which we
found to be relatively simple to use. A starter kit is available
from the supplier which includes culture tube racks, wash
basins, dip stick holders, and a photometer. Assay kits
include all the necessary reagents and supplies for completing
a designated number of assays. We found that the only
additional pieces of equipment needed to complete the DNA
hybridization assay were a water bath, pipettes, and
12 · 75 mm disposable culture tubes.
Results from Table 1 demonstrate that the DNA hybridization
assay can be used to detect and enumerate Salmonellae
in treated biosolids. Spiking samples with viable
Salmonellae demonstrated that such organisms could be
recovered from this matrix if they were present. However, as
only RV cultures exhibiting DNA hybridization were
biochemically confirmed, we are unable to determine if
there were false negative responses for this data set.
Results from Table 2 indeed show that a false negative
could be detected as a result of using a reduced time (24 h)
for the RV enrichment. It may be argued that by eliminating
the GN broth postenrichment step, an additional false
negative was also observed. However, the fact that no false
negatives were observed for the raw sludge and lime-treated
biosolid samples (Table 3), implies that the frequency of
false negatives (2 of 160 ¼ 1Æ25%) may be quite low even
when enrichment times are reduced. This frequency of false
negatives compares quite favorably to published values
observed (1Æ5%) when the DNA hybridization technique
was compared with cultural techniques on food samples
(Durban and Mozola, 1999).
The use of DNA hybridization techniques for analysis of
biosolid samples appears to be equivalent to the RV
enrichment culture-based assay. However, recent work
conducted by Yanko et al. (2001) indicates that the RV
enrichment method may not be the best available technique
for recovering Salmonellae from biosolids. These researchers
found that use of a tryptic soy broth (TSB) preenrichment
followed by a modified semisolid RV (MSRV)
enrichment medium (DeSmedt et al. 1986) was better able
to recover Salmonellae from spiked compost samples than
the RV technique used in this study. This suggests that
further work be completed using TSB pre-enrichment and
MSRV enrichment prior to confirming for Salmonellae by
DNA hybridization and selective plating and biochemical
and serologic confirmation.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

สนทนาการประเมินห้องปฏิบัติการแต่ละยีน-TRAKวิเคราะห์ระดับอิสระรู้สึก และเสร็จสมบูรณ์โดยไม่ต้องทำงานร่วมกัน ดังนั้น บางรูปในวิธีการเปรียบเทียบ DNA hybridization เทคนิคเทคนิคที่ใช้วัฒนธรรมคาดหวังวิธีการใช้ MMSDML เป็นไป ตามกระบวนการเติมเต็มตามที่ระบุในการอ้างอิงทางเทคนิคแนะนำ แทนขั้นตอนบ่อก่อนใช้สมาคมฯ(24 ชม), ตาม enrichments ใน RV (48 h) และ GNbroths (h 15-18) ชุดนี้ขอขั้นตอนผลผลิตเวลาทั้งหมดถึง 90 h DNA hybridization สามารถวิเคราะห์เสร็จสมบูรณ์ในประมาณ 4 h โดยบุคลากรห้องปฏิบัติการมีประสบการณ์ซึ่งผลรวมเวลา 4 วันหรือประมาณ 94 hทำการวิเคราะห์ การวิเคราะห์ตามวัฒนธรรมขั้นตอนต่อเติมเต็มก่อนและเติมเต็มต้องการ 24 ชมสำหรับอาณานิคมก่อตัวบนสื่อที่เลือกตาม ด้วย 24 ชมของการเติบโตในส่วน agar slants สำหรับการเวลาทั้งหมดประมาณ 138 h หรือ จริง 6 วัน ดังนั้นใช้ DNA hybridization เทคนิค ใช้MMSDML ผลในการลดเวลาที่ใช้ในการทำ Salmonellae assays โดย 48 h ซุป GNขอแนะนำ โดยระบบยีน TRAKเป็นขั้นตอนเพื่อเพิ่มความหนาแน่นของเซลล์ก่อน lysis, postenrichment มักจะไม่รวมอยู่ในวิธีการทางวัฒนธรรมดังนั้น ถ้าไม่รวมขั้นตอนนี้ เวลาที่ต้องทำการวิเคราะห์วัฒนธรรมจะไม่ประมาณ 120 hh. 138 ดังนั้น บันทึกเวลาจริง โดยใช้ดีเอ็นเอวิเคราะห์ hybridization เป็น 26 h หรือวันที่ 1 จริงวิธีการใช้ NRMRL เป็นไป ตามกระบวนการเติมเต็มตามที่ระบุในการอ้างอิงทางเทคนิคแนะนำ แทนขั้นตอนบ่อก่อนใช้สมาคมฯ(24 ชม), ตาม ด้วยบ่อเดียวใน RV (24 ชม) นี้ตอนโดดเด่นทำให้เวลารวมของเกิน 48 hเมื่อบวกเวลาที่ใช้ในดีเอ็นเอhybridization วิเคราะห์ ผลได้ใน 52 h หรือภายใน 3 วันนอกจากลดเวลาสำหรับการกำหนดสถานะของ Salmonellae ภายในตัวอย่าง hybridization ดีเอ็นเอเทคนิคไม่จำเป็นต้องใช้สื่อเตรียมการและการประเมินผลขั้นตอนของการวัฒนธรรมตามเทคนิคที่ใช้กันทั่วไป นอกจากนี้ GENETRAKระบบวิเคราะห์สายขายเป็นชุดซึ่งเราพบได้ค่อนข้างง่ายต่อการใช้ ชุด starter จะพร้อมใช้งานจากผู้จำหน่ายซึ่งรวมถึงวัฒนธรรมชั้นท่อ ล้างอ่างล่างหน้า ผู้ถือไม้จุ่ม และเป็นเครื่องวัดความสว่าง ชุดทดสอบreagents จำเป็นและอุปกรณ์ที่สอดหมายเลขที่กำหนดของ assays เราพบว่าเฉพาะชิ้นส่วนเพิ่มเติมของอุปกรณ์ที่จำเป็นสำหรับการดีเอ็นเอวิเคราะห์ hybridization ถูกน้ำน้ำ pipettes และ12 · 75 มม.ทิ้งวัฒนธรรมหลอดผลจากตารางที่ 1 แสดงที่ hybridization ดีเอ็นเอสามารถใช้ทดสอบเพื่อตรวจสอบ และระบุ Salmonellaeใน biosolids บำบัด Spiking ตัวอย่างที่ มีทำงานได้Salmonellae demonstrated that such organisms could berecovered from this matrix if they were present. However, asonly RV cultures exhibiting DNA hybridization werebiochemically confirmed, we are unable to determine ifthere were false negative responses for this data set.Results from Table 2 indeed show that a false negativecould be detected as a result of using a reduced time (24 h)for the RV enrichment. It may be argued that by eliminatingthe GN broth postenrichment step, an additional falsenegative was also observed. However, the fact that no falsenegatives were observed for the raw sludge and lime-treatedbiosolid samples (Table 3), implies that the frequency offalse negatives (2 of 160 ¼ 1Æ25%) may be quite low evenwhen enrichment times are reduced. This frequency of falsenegatives compares quite favorably to published valuesobserved (1Æ5%) when the DNA hybridization techniquewas compared with cultural techniques on food samples(Durban and Mozola, 1999).The use of DNA hybridization techniques for analysis ofbiosolid samples appears to be equivalent to the RVenrichment culture-based assay. However, recent workconducted by Yanko et al. (2001) indicates that the RVenrichment method may not be the best available techniquefor recovering Salmonellae from biosolids. These researchersfound that use of a tryptic soy broth (TSB) preenrichmentfollowed by a modified semisolid RV (MSRV)enrichment medium (DeSmedt et al. 1986) was better able
to recover Salmonellae from spiked compost samples than
the RV technique used in this study. This suggests that
further work be completed using TSB pre-enrichment and
MSRV enrichment prior to confirming for Salmonellae by
DNA hybridization and selective plating and biochemical
and serologic confirmation.

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

อภิปรายการประเมินผลการตรวจทางห้องปฏิบัติการของแต่ละ GENE-TRAK ทดสอบเชื้อ Salmonella ได้รู้สึกเป็นอิสระและเสร็จสมบูรณ์โดยไม่ต้องทำงานร่วมกัน ดังนั้นการเปลี่ยนแปลงบางอย่างในวิธีการที่จะเปรียบเทียบเทคนิคการผสมข้ามพันธุ์ดีเอ็นเอเพื่อเทคนิคการเพาะเลี้ยงที่ใช้จะเป็นที่คาดหวัง. วิธีการที่ใช้โดย MMSDML เป็นไปตามขั้นตอนการตกแต่งตามที่ระบุไว้ในการอ้างอิงทางเทคนิคคู่มือแทนขั้นตอนการเพิ่มปริมาณการใช้BPW (24 ชั่วโมง) ตามด้วย enrichments ใน RV (48 ชั่วโมง) และ GN ซุปมิโสะ (15-18 ชั่วโมง) ชุดของขั้นตอนการตกแต่งนี้มีผลเป็นเวลารวมถึง 90 ชั่วโมง การทดสอบพันธุ์ดีเอ็นเอสามารถจะแล้วเสร็จในประมาณ 4 ชั่วโมงโดยบุคลากรที่มีประสบการณ์ในห้องปฏิบัติการ. นี้ส่งผลในเวลารวมประมาณ 94 ชั่วโมงหรือ 4 วันที่จะเสร็จสิ้นการวิเคราะห์ เพื่อให้การทดสอบวัฒนธรรมตามขั้นตอนต่อไปก่อนการตกแต่งและการตกแต่งต้อง24 ชั่วโมงสำหรับการสร้างอาณานิคมในสื่อเลือกตามด้วย24 ชั่วโมงของการเจริญเติบโตที่แตกต่างกันในอาหารเลี้ยงเชื้อ slants สำหรับเวลารวมประมาณ 138 ชั่วโมงหรือแนบเนียน, 6 วันที่ ดังนั้นการใช้เทคนิคการผสมข้ามพันธุ์ดีเอ็นเอที่ใช้โดยMMSDML ส่งผลในการลดเวลาที่จำเป็นในการดำเนินการตรวจเชื้อแบคทีเรียชนิดโดย48 ชั่วโมง น้ำซุป GN เพิ่มคุณค่าแนะนำโดย GENE-TRAK ระบบเป็นขั้นตอนpostenrichment เพื่อเพิ่มความหนาแน่นของเซลล์ก่อนที่จะสลายและไม่ได้รวมโดยทั่วไปในวิธีการทางวัฒนธรรม. ดังนั้นหากขั้นตอนนี้ได้รับการยกเว้นเวลาที่จำเป็นในการดำเนินการวิเคราะห์ทางวัฒนธรรมจะเป็นประมาณ 120 ชั่วโมงได้138 ชั่วโมง ดังนั้นเวลาที่เกิดขึ้นจริงที่บันทึกไว้โดยใช้ดีเอ็นเอทดสอบพันธุ์ 26 ชั่วโมงหรือแนบเนียน, 1 วัน. วิธีการที่ใช้โดย NRMRL เป็นไปตามขั้นตอนการตกแต่งตามที่ระบุไว้ในการอ้างอิงทางเทคนิคคู่มือแทนขั้นตอนก่อนการตกแต่งโดยใช้BPW ( 24 ชั่วโมง) ตามด้วยการเพิ่มคุณค่าเดียวใน RV (24 ชั่วโมง) นี้ชุดของขั้นตอนการตกแต่งมีผลเป็นเวลารวมถึง 48 ชม. เมื่อเพิ่มเวลาที่จำเป็นเพื่อให้ดีเอ็นเอทดสอบพันธุ์ผลอาจจะได้รับใน 52 ชั่วโมงหรือภายใน3 วัน. นอกจากจะช่วยลดเวลาในการพิจารณาการแสดงตนของ Salmonellae ภายในตัวอย่างพันธุ์ดีเอ็นเอเทคนิคไม่ต้องใช้สื่อที่ใช้เวลาเตรียมการและขั้นตอนการประเมินผลตามแบบฉบับของวัฒนธรรมตามเทคนิคที่ใช้กันทั่วไป นอกจากนี้ GENETRAK ระบบทดสอบเชื้อ Salmonella จะขายเป็นชุดที่ที่เราพบว่ามีค่อนข้างง่ายต่อการใช้ ชุดเริ่มต้นที่สามารถใช้ได้จากซัพพลายเออร์ซึ่งรวมถึงชั้นวางท่อวัฒนธรรมล้างอ่างแช่ผู้ถือติดและมาตรวัด ชุดทดสอบรวมทุกสารเคมีและอุปกรณ์ที่จำเป็นสำหรับการเป็นจำนวนที่กำหนดของการตรวจ เราพบว่าเพียงชิ้นเพิ่มเติมของอุปกรณ์ที่จำเป็นในการดำเนินดีเอ็นเอทดสอบพันธุ์มีอ่างน้ำ, ปิเปตและ12 · 75 มิลลิเมตรหลอดวัฒนธรรมทิ้ง. ผลลัพธ์ที่ได้จากตารางที่ 1 แสดงให้เห็นว่าการผสมข้ามพันธุ์ดีเอ็นเอทดสอบสามารถใช้ในการตรวจสอบและระบุSalmonellae ในกากชีวภาพได้รับการรักษา ตัวอย่างองศากับที่ทำงานได้Salmonellae แสดงให้เห็นว่าสิ่งมีชีวิตดังกล่าวอาจจะหายจากเมทริกซ์นี้หากพวกเขาอยู่ในปัจจุบัน แต่เป็นวัฒนธรรม RV เพียงการจัดแสดงพันธุ์ดีเอ็นเอยืนยันคุณสมบัติทางชีวเคมีเราไม่สามารถที่จะตรวจสอบว่ามีการตอบสนองเชิงลบเท็จสำหรับข้อมูลชุดนี้. ผลลัพธ์ที่ได้จากตารางที่ 2 จริงแสดงให้เห็นว่าลบเท็จอาจจะถูกตรวจพบว่าเป็นผลมาจากการใช้เวลาลดลง(24 ชั่วโมง) สำหรับการตกแต่ง RV มันอาจจะแย้งว่าโดยการกำจัดน้ำซุป GN ขั้นตอน postenrichment เป็นเท็จเพิ่มเติมในเชิงลบนอกจากนี้ยังพบว่า แต่ความจริงที่เป็นเท็จไม่เชิงลบถูกตั้งข้อสังเกตสำหรับตะกอนดิบและมะนาวได้รับการรักษาตัวอย่างbiosolid (ตารางที่ 3) แสดงให้เห็นว่าความถี่ของปลอมเนกาทีฟ(2 160 ¼1Æ25%) อาจจะค่อนข้างต่ำแม้เมื่อครั้งการตกแต่งจะลดลง. ความถี่ของการเท็จนี้ฟิล์มเปรียบเทียบค่อนข้างเหมาะกับค่าตีพิมพ์ข้อสังเกต(1Æ5%) เมื่อเทคนิคการผสมข้ามพันธุ์ดีเอ็นเอเปรียบเทียบกับเทคนิคทางวัฒนธรรมในตัวอย่างอาหาร(เดอร์บันและ Mozola, 1999). การใช้เทคนิคการผสมข้ามพันธุ์ดีเอ็นเอสำหรับการวิเคราะห์ของตัวอย่าง biosolid ดูเหมือนจะ จะเทียบเท่ากับ RV เพิ่มคุณค่าการวิเคราะห์วัฒนธรรมตาม แต่การทำงานที่ผ่านมาดำเนินการโดย Yanko et al, (2001) แสดงให้เห็นว่ารถ RV วิธีการตกแต่งไม่อาจจะเป็นเทคนิคที่ดีที่สุดสำหรับการกู้คืน Salmonellae จากกากชีวภาพ นักวิจัยเหล่านี้พบว่าการใช้น้ำซุปถั่วเหลือง tryptic ที่ (TSB) preenrichment ตามด้วยรถ RV ผสมสูตรการปรับเปลี่ยน (MSRV) กลางเพิ่มคุณค่า (Desmedt et al. 1986) เป็นดีขึ้นสามารถที่จะกู้คืนSalmonellae จากตัวอย่างปุ๋ยหมักที่ได้ถูกแทงกว่าเทคนิคRV ที่ใช้ในการศึกษาครั้งนี้ . นี้แสดงให้เห็นว่าการทำงานต่อไปจะแล้วเสร็จโดยใช้การตกแต่ง TSB ก่อนและเพิ่มคุณค่าMSRV ก่อนที่จะมีการยืนยันสำหรับ Salmonellae โดยการผสมข้ามพันธุ์DNA และชุบเลือกและทางชีวเคมีและการยืนยันเรื่องเซรุ่ม

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

การอภิปรายของแต่ละการประเมินห้องปฏิบัติการ

gene-trak Salmonella assay เป็นอิสระขึ้นและเสร็จสิ้น
โดยความร่วมมือ ดังนั้นรูปแบบบางส่วนใน
วิธีการเปรียบเทียบ DNA hybridization เทคนิค
เพื่อวัฒนธรรมตามเทคนิคได้ วิธีการที่ใช้โดย mmsdml

เพื่อติดตามขั้นตอนการตามที่ระบุไว้ในคู่มืออ้างอิง
เทคนิคแทนการใช้ก่อนขั้นตอน BPW
( 24 ชั่วโมง ) ตามด้วย enrichments RV ( 48 ชั่วโมง ) และ GN
า ( 15 – 18 H ) ชุดนี้ของขั้นตอนการเพิ่มผลผลิต
รวมเวลาถึง 90 ชั่วโมง การทดสอบดีเอ็นเอ hybridization สามารถ
จะแล้วเสร็จในประมาณ 4 ชั่วโมง โดยห้องปฏิบัติการบุคลากรที่มีประสบการณ์ .
นี้ผลลัพธ์ในเวลารวมประมาณ 94 H หรือ 4 วัน

เสร็จสมบูรณ์ในการวิเคราะห์ ให้เสร็จสมบูรณ์โดย
ตามวัฒนธรรมขั้นตอนต่อไปนี้ก่อนการเสริมและการเสริม
ต้อง 24 ชั่วโมง สำหรับการสร้างอาณานิคมบนสื่อเลือก
ตามด้วย 24 ชั่วโมงของการเติบโตในส่วนวุ้น slants สำหรับ
เวลารวมประมาณ 138 H หรือสั่ง 6 วัน ดังนั้นการใช้ DNA hybridization

เทคนิคที่ใช้โดย mmsdml เป็นผลในการลดเวลาที่ต้องใช้

อิโดยสมบูรณ์หรือ 48 ชั่วโมง GN broth
การแนะนำระบบ gene-trak
เป็นขั้นตอน postenrichment เพื่อเพิ่มความหนาแน่นของเซลล์ก่อนการสลาย และมักจะไม่รวมอยู่ในวิธีการที่วัฒนธรรม
จากนั้น หากขั้นตอนนี้ไม่รวมเวลาที่จำเป็นในการ
ทําการวิเคราะห์วัฒนธรรมจะประมาณ 120 H ,
3 H . ด้วยเหตุนี้ , เวลาจริงบันทึก โดยใช้ดีเอ็นเอ hybridization ) เป็น 26
H
หรือสั่ง 1 วันวิธีการที่ใช้โดย nrmrl ก็ตาม
ขั้นตอนการตามที่ระบุไว้ในคู่มืออ้างอิง
เทคนิค แทนการใช้ก่อนขั้นตอน BPW
( 24 ชั่วโมง ) ตามด้วยวิธีเดียวใน RV ( ตลอด 24 ชั่วโมง ) ชุดนี้
ขั้นตอนการผลผลิตรวมเวลาถึง 48 ชั่วโมง
เมื่อเพิ่มเวลาที่จำเป็นเพื่อให้ดีเอ็นเอ
hybridization โดยผลลัพธ์อาจได้รับในปี 52
H หรือภายใน 3 วัน .
นอกจากการลดเวลาสำหรับการปรากฏตัวของอิ
ภายในตัวอย่าง DNA hybridization
เทคนิคไม่ต้องใช้เวลานานในการเตรียม และขั้นตอนการประเมินผลโดยทั่วไปของสื่อ

วัฒนธรรมตามเทคนิคที่ใช้กันทั่วไป . นอกจากนี้ genetrak
Salmonella ในระบบมีขายเป็นชุด ซึ่งเรา
พบจะค่อนข้างง่ายที่จะใช้ชุดเริ่มต้นใช้ได้
จากผู้ผลิตซึ่งรวมถึงชั้นวางหลอดวัฒนธรรมล้าง
อ่างจุ่ม , ผู้ติด , และ , . การทดสอบชุด
รวมที่จำเป็นทั้งหมดและวัสดุเพื่อการ extract : จำนวนที่กำหนดของยีน . เราพบว่ามีเพียง
เพิ่มเติมชิ้นของอุปกรณ์ที่จำเป็นเพื่อให้ DNA hybridization ) เป็นบาท

น้ำ , ปิเปต , และ12 ด้วย 75 ทิ้งวัฒนธรรมหลอด จากตารางที่ 1 แสดงให้เห็นว่าผล

วิธี DNA hybridization สามารถตรวจจับ และระบุในการรักษา biosolids อิ
. ขึ้นตัวอย่างได้
อิ พบว่าสิ่งมีชีวิตดังกล่าวอาจจะเป็น
หายจากเมทริกซ์นี้ ถ้าเป็นปัจจุบัน แต่เป็นเพียงวัฒนธรรมจาก DNA hybridization RV

biochemically ) ยืนยันเราไม่สามารถตรวจสอบว่ามีการตอบสนองเชิงลบเท็จ

สำหรับข้อมูลชุดนี้ . ผลลัพธ์ที่ได้จากตารางที่ 2 แน่นอนแสดงให้เห็นว่าลบปลอม
สามารถตรวจพบได้ เป็นผลมาจากการลดเวลา ( 24 ชั่วโมง )
สำหรับ RV เสริมสมรรถนะ มันอาจจะแย้งว่า โดยขจัด
GN broth postenrichment ขั้นตอนการเชิงลบเท็จ
เพิ่มเติมพบว่า . อย่างไรก็ตาม การที่ไม่มีเท็จ
ลบที่พบในตะกอนดิบและมะนาวรักษา
ตัวอย่าง biosolid ( ตารางที่ 3 ) พบว่า ความถี่ของ
ลบเท็จ ( 2 160 ¼ 1 กู้ 25% ) อาจจะค่อนข้างต่ำแม้
เมื่อครั้งมีการลดลง นี้ความถี่ของเชิงลบเท็จ
เปรียบเทียบค่อนข้างเหมาะจะเผยแพร่ค่าสังเกต (
1 กู้ร้อยละ 5 ) เมื่อ DNA hybridization เทคนิค
เมื่อเทียบกับเทคนิคทางวัฒนธรรมในตัวอย่างอาหาร
( เดอร์ และ mozola , 1999 ) .
ใช้เทคนิคการวิเคราะห์ตัวอย่างดีเอ็นเอไฮบริ
biosolid ปรากฏจะเทียบเท่ากับ RV
เสริมวัฒนธรรมการทดสอบตาม อย่างไรก็ตาม ล่าสุด
โดยยันโกะ et al . ( 2001 ) พบว่า การเสริมวิธี RV
อาจจะดีที่สุดของเทคนิค
สำหรับการกู้คืนจาก biosolids อิ . นักวิจัยเหล่านี้
พบว่าการใช้อาหารซุปถั่วเหลือง ( TSB ) preenrichment
ตามแก้ไข semisolid RV ( msrv )
เสริมกลาง ( desmedt et al . 2529 ) คือสามารถกู้ดีกว่า
อิ จากตัวอย่างปุ๋ยหมักแหลมกว่า
รถบ้าน เทคนิคที่ใช้ในการศึกษาครั้งนี้ นี้แสดงให้เห็นว่างานเสร็จสมบูรณ์ด้วย

msrv และ TSB ก่อนการเสริมก่อนที่จะยืนยันสำหรับ
อิโดยสาร DNA และชุบด้านชีวเคมีและยืนยัน

test แต่ต้นทุน .