The antimutagenic activity was eval

The antimutagenic activity was evaluated using the Salmonella
mutagenicity test described by Maron and Ames
. First, toxicity and mutagenicity assays were performed
using the same conditions as those of the Ames test,
with and without metabolic activation of rat liver homogenate
. No toxic or mutagenic effects were shown at
the tested concentrations of 2.4, 4.8 and 9.6 mg of lyophilized
spent coffee extracts per plate; 2.4, 4.8 and 7.2 mg of lyophilized
coffee brew extracts per plate; standard solutions of
caffeoylquinic acid (190, 320 and 750 g/plate); caffeine (120,
250 and 700 g/plate); caffeic acid (120, 230 and 480 g/plate);
ferulic acid (20, 70 and 180 g/plate); or CQA/caffeine standards
mixtures (190/120, 320/350, 750/350 and 750/750). Next,
a bacterial suspension of 2.0 × 108 cfu/mL was prepared in order
to determine the antimutagenic activity. Assays without metabolic
activation (−S9) were performed mixing 50 L of each
sample or standard solution with 450 L of phosphate buffer
(0.1M, pH 7.4), 100 L of bacteria suspension and 50 L of
mutagen solution (NPD 20 g/plate). After 60 min of incubation,
2 mL of molten top agar supplemented with traces of
histidine and biotin (Sigma-Aldrich St. Louis, MO, USA) (50 M
each, final concentration) was added, rapidly vortexed and
poured onto agar plates. Assays with metabolic activation (+S9)
were performed similarly, replacing phosphate buffer by an
equal volume of S9 mix and the mutagen solution by 2-AF 10 g/
plate. Negative and positive controls were also included in each
assay. Each experimental condition was tested in triplicate. After
48 h of incubation at 37 °C, the revertant colonies were counted.
Three independent assays were carried out for each experimental
condition. The data were expressed as the number of
revertants (cfu/plate) and as the percentage of inhibition:
(Sample plate revertants – spontaneous revertants)/(positive
control revertants − spontaneous revertants) × 100.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

กิจกรรม antimutagenic ถูกประเมินโดยใช้ระดับการการศึกษาทดสอบโดย Maron และเอมส์. ครั้งแรก ดำเนิน assays เป็นพิษและการศึกษาใช้เงื่อนไขเดียวกันที่การทดสอบเอมส์มี และไม่ มีการเปิดใช้งานเผาผลาญของตับหนู homogenate. ไม่มีพิษ หรือ mutagenic ผลที่แสดงในความเข้มข้นที่ผ่านการทดสอบของ 2.4, 4.8 และ 9.6 มิลลิกรัมของ lyophilizedใช้สารสกัดจากกาแฟต่อจาน 2.4, 4.8 และ 7.2 มิลลิกรัมของ lyophilizedbrew กาแฟแยกต่อจาน โซลูชั่นมาตรฐานกรด caffeoylquinic (190, 320 และ 750 g/จาน); คาเฟอีน (120250 และ 700 g/จาน); กรด caffeic (120, 230 และ 480 g/จาน);กรด ferulic (20, 70 และ 180 g/จาน); หรือมาตรฐาน CQA/คาเฟอีนน้ำยาผสม (190/120, 320/350, 750/350 และ 750/750) ถัดไประงับแบคทีเรีย 2.0 × 108 cfu/mL เตรียมไว้ตามลำดับเพื่อกำหนดกิจกรรม antimutagenic Assays โดยไม่มีการเผาผลาญเปิดใช้งาน (−S9) ได้ทำการผสม L 50 ของแต่ละตัวอย่างหรือโซลูชันมาตรฐานกับ L 450 ฟอสเฟตบัฟเฟอร์(0.1M ค่า pH 7.4), L 100 การระงับแบคทีเรียและ 50 Lโซลูชัน mutagen (g NPD 20 แผ่น) หลังจาก 60 นาทีของคณะทันตแพทยศาสตร์2 mL ของหลอมละลาย agar ด้านเสริม ด้วยร่องรอยของhistidine และไบโอติน (Aldrich ซิก St. Louis, MO สหรัฐอเมริกา) (50 เมตรความเข้มข้นละ สุดท้าย) ถูกเพิ่มเข้ามา อย่างรวดเร็ว vortexed และpoured บนแผ่น agar Assays เปิดเผาผลาญ (+ S9)ดำเนินทำนอง แทนฟอสเฟตบัฟเฟอร์โดยการเท่ากับปริมาตรของ S9 ผสมและโซลูชัน mutagen ด้วย 2 AF 10 กรัม /จาน ควบคุมค่าลบ และค่าบวกยังรวมอยู่ในแต่ละวิเคราะห์ เงื่อนไขแต่ละเงื่อนไขทดลองได้รับการทดสอบใน triplicate หลังจาก48 h ของบ่มที่ 37 ° C อาณานิคม revertant นับได้อิสระ assays สามได้ดำเนินการสำหรับแต่ละทดลองเงื่อนไขการ ข้อมูลถูกแสดงเป็นจำนวนrevertants (cfu/จาน) และเปอร์เซ็นต์การยับยั้งการเปลี่ยน:(ตัวอย่างแผ่น revertants-revertants อยู่) / (ค่าบวกควบคุม revertants −อยู่ revertants) × 100

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

กิจกรรมฤทธิ์ยับยั้งการกลายถูกประเมินโดยใช้เชื้อ Salmonella
การทดสอบฤทธิ์ก่อกลายพันธุ์อธิบายโดย Maron
และเอมส์ ความเป็นพิษครั้งที่หนึ่งและชุดตรวจก่อกลายพันธุ์ได้ดำเนินการ
โดยใช้เงื่อนไขเดียวกันกับที่ของการทดสอบอาเมส
ที่มีและไม่มีการเปิดใช้งานการเผาผลาญของ
homogenate ตับหนู ไม่มีความเป็นพิษหรือการกลายพันธุ์ที่มีการแสดงที่
ผ่านการทดสอบความเข้มข้น 2.4, 4.8 และ 9.6 มิลลิกรัมของแห้ง
สารสกัดจากกาแฟต่อแผ่นใช้เวลา; 2.4, 4.8 และ 7.2 มิลลิกรัมของแห้ง
สารสกัดชงกาแฟต่อแผ่น; การแก้ปัญหามาตรฐานของ
กรด caffeoylquinic (190, 320 และ 750 กรัม / แผ่น); คาเฟอีน (120,
250 และ 700 กรัม / แผ่น); กรด caffeic (120, 230 และ 480 กรัม / แผ่น);
กรด ferulic (20 70 และ 180 กรัม / แผ่น); หรือ CQA / มาตรฐานคาเฟอีน
ผสม (190/120, 320/350, 750/350 และ 750/750) ถัดไป
ระงับแบคทีเรีย 2.0 × 108 โคโลนี / มิลลิลิตรถูกจัดทำขึ้นเพื่อ
ที่จะตรวจสอบกิจกรรมฤทธิ์ยับยั้งการกลาย การตรวจโดยไม่ต้องเผาผลาญ
ยืนยันการใช้งาน (-S9) ได้ดำเนินการผสม 50 ลิตรของแต่ละ
ตัวอย่างหรือวิธีการแก้ปัญหามาตรฐานที่มี 450 ลิตรฟอสเฟตบัฟเฟอร์
(0.1M ค่า pH 7.4) 100 L ของแบคทีเรียระงับและ 50 ลิตร
วิธีการแก้ปัญหาสารก่อกลายพันธุ์ (NPD 20 กรัม / แผ่น ) หลังจาก 60 นาทีของการบ่ม,
2 มิลลิลิตรด้านบนอาหารเลี้ยงเชื้อเหลวเสริมด้วยร่องรอยของ
ฮิสติดีนและไบโอติน (Sigma-Aldrich เซนต์หลุยส์สหรัฐอเมริกา) (50 M
แต่ละความเข้มข้นสุดท้าย) ที่เพิ่มขึ้นอย่างรวดเร็วและการ vortex
เทลงบนจานอาหารเลี้ยงเชื้อ การตรวจยืนยันการใช้งานกับการเผาผลาญอาหาร (+ S9)
ได้ดำเนินการในทำนองเดียวกันการเปลี่ยนฟอสเฟตบัฟเฟอร์โดย
ปริมาณที่เท่ากันของผสม S9 และวิธีการแก้ปัญหาสารก่อกลายพันธุ์โดย 2 เอเอฟ 10 กรัม /
แผ่น การควบคุมเชิงลบและบวกยังรวมถึงการได้รับในแต่ละ
การทดสอบ แต่ละสภาพการทดลองได้รับการทดสอบในเพิ่มขึ้นสามเท่า หลังจาก
48 ชั่วโมงของการบ่มที่อุณหภูมิ 37 องศาเซลเซียสอาณานิคม revertant นับ.
สามอิสระตรวจได้ดำเนินการในแต่ละการทดลอง
สภาพ ข้อมูลที่ได้มาแสดงเป็นจำนวน
revertants (โคโลนี / แผ่น) และในขณะที่ร้อยละของการยับยั้ง:
(แผ่นตัวอย่าง revertants - revertants ที่เกิดขึ้นเอง) / (บวก
revertants ควบคุม - revertants ที่เกิดขึ้นเอง) × 100

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

กิจกรรมการประเมินฤทธิ์ต้านการก่อกลายพันธุ์ Salmonella
ทดสอบและอธิบายโดยมารอนเอม

แรก , ความเป็นพิษและสารก่อกลายพันธุ์หรือมีการปฏิบัติ
ใช้เงื่อนไขเดียวกับการทดสอบของเอมส์
ที่มีและไม่มีกระตุ้นการเผาผลาญอาหารของตับหนู อน

ไม่มีผลที่เป็นพิษหรือสารก่อกลายพันธุ์ ถูกแสดงที่
ทดสอบความเข้มข้นของ 2.4 , 4.8 และ 9.6 mg ของไลโอ
ใช้กาแฟสกัดต่อแผ่น ; 2.4 และ 4.8 7.2 มิลลิกรัมต่อจานเบียร์กาแฟที่สกัดแห้ง

; โซลูชั่นมาตรฐานของ caffeoylquinic กรด ( 190 , 320 และ 750 กรัม / จาน ) ; คาเฟอีน ( 120
250 และ 700 กรัม / จาน ) ; กรด Caffeic ( 120 , 230 และ 480 กรัม / แผ่น )
ferulic acid ( 20 , 70 และ 180 กรัม / จาน ) ; หรือ CQA / คาเฟอีนผสมมาตรฐาน
( 190 / 120 , 320 / 350 , 350 และ 750 / 750 / 750 ) ถัดไป : bacterial suspension ของ 20 × 108 CFU / ml ได้ถูกเตรียมไว้เพื่อการตรวจสอบกิจกรรม
ตัวอย่าง . โดยการสลาย
) ( − 3 ) การผสม 50 ลิตรละ
ตัวอย่างหรือสารละลายมาตรฐานกับ 450 ลิตร
( 0.1m ฟอสเฟตบัฟเฟอร์ pH 7.4 ) , 100 ลิตรแบคทีเรียระงับและ 50 ลิตร
( NPD ) สารละลาย 20 กรัม / แผ่น ) หลังจาก 60 นาทีของระยะเวลา
2 ml ของโลหะด้านบน agar ที่เติมร่องรอย
ีนและไบโอติน ( ซิกม่า Aldrich St . Louis , MO , USA ) ( 50 M
แต่ละความเข้มข้นสุดท้าย ) คือการเพิ่มอย่างรวดเร็วและอาหาร vortexed
เทลงบนจาน ) มีหลายชนิด ( S9 )
มีการปฏิบัติในฟอสเฟตบัฟเฟอร์แทนโดย
ขนาดเท่ากัน เมื่อผสมและโซลูชั่นเช่นกัน โดย 2-af 10 g /
จาน การควบคุมในด้านบวกและลบ ยังรวมอยู่ในแต่ละ
( . . .ทดลองแต่ละสภาวะการทดสอบทั้งสามใบ 48 ชั่วโมงหลังจาก
บ่มที่ 37 ° C , อาณานิคม รีเวอร์ ทนต์ถูกนับ .
3 ) อิสระได้ดำเนินการสำหรับแต่ละการทดลอง
เงื่อนไข ข้อมูลที่แสดงเป็นหมายเลขของ
revertants CFU / จาน ) และร้อยละของการยับยั้ง :
( ตัวอย่างแผ่น revertants –ธรรมชาติ revertants ) /
( บวกควบคุม revertants −ธรรมชาติ revertants ) × 100