Cysts will not be detectable in clinical samples from
all human giardiasis cases, and the absence of trophozoites and cysts in repeated submissions of samples
from symptomatic individuals does not necessarily
indicate the absence of infection. Apart from recuperating immunocompetent cases, where trophozoite
and cyst abundance can be low, low cyst abundance
can occur because of fl uctuations in trophozoite abundance and intestinal motility, resulting in sporadic
cyst excretion. In these instances, and particularly
when clinical suspicion is high, trophozoite and cyst
negative stool samples should be subjected to antigen
and/or PCR-based detection, as sufficient Giardia antigen or DNA from trophozoites should be present in
faeces. For PCR-based methods, nested PCR methods, being more sensitive than direct PCR methods,
are likely to have a higher diagnostic index, particularly when single copy gene loci are used.
When trophozoites or cysts, Giardia antigen or
DNA cannot be found following extensive examination of repeat stool samples, and giardiasis is suspected clinically, more invasive procedures, such as the
examination of duodenal or jejunal fluid and/or tissue
biopsy may be indicated. Both are invasive procedures, requiring close liaison with other health professionals and should be used with caution. Duodenal or
jejunal fl uid can be sampled by endoscopy or the Enterotest® (a rubber-lined weighted gelatine capsule
containing a nylon string which is swallowed whilst
the free end of the string is taped to the side of the
mouth. The Enterotest® is left in place for 4–8 h, by
which time the string extends to its full length, and its
distal half becomes saturated with bile-stained mucus.
Once removed, the mucus is scraped off the string
mixed with warm (37ºC) saline, and trophozoites
present in the mucus are detected microscopically as
they are still motile. Duodenal or jejunal aspirates can
reveal the presence of motile trophozoites that can be
cultured in vitro in TYI-S-33 (Keister, 1983) for research purposes, while histopathology of biopsy material can reveal the presence of trophozoites adjacent
to villi. The fact that laboratory identification consists
of multiple analyses using different matrices identifies
the diffi culties encountered with Giardia diagnosis.
More sensitive detection techniques, which detect
G. duodenalis sub-cellular components, should also
be considered for adoption into the routine diagnostic
algorithm. These techniques, and other research-orientated techniques, are included in this chapter and
should prove useful for laboratory and epidemiological investigations and research into parasite biology.
Once they have been evaluated fully and compared
with accepted methods in individual laboratories or
as interlaboratory quality assurance investigations
they can be regarded as an adjunct to the conventional
detection and identifi cation techniques used for laboratory diagnosis.
ซีสต์จะไม่ถูกตรวจพบในคลินิกตัวอย่างจาก
กรณีมนุษย์ giardiasis ทั้งหมด และการขาด trophozoites ซีสต์ในซ้ำและส่งของตัวอย่าง
จากบุคคลแบบไม่จําเป็นต้อง
แสดงว่าไม่มีการติดเชื้อ นอกจากกรณี immunocompetent พักฟื้นที่ทรอพโฟซ้อยต์
และซีสต์ที่อุดมสมบูรณ์สามารถต่ำ ความอุดมสมบูรณ์ต่ำ
ซีสสามารถเกิดขึ้นได้เพราะใน uctuations ในความอุดมสมบูรณ์ทรอพโฟซ้อยต์และลำไส้เคลื่อนไหวส่งผลให้ประปราย
ถุงปัสสาวะ ในกรณีเหล่านี้ และโดยเฉพาะอย่างยิ่ง
เมื่อความสงสัยทางคลินิกจะสูง ทรอพโฟซ้อยต์และซีสต์
ลบอุจจาระตัวอย่างควรจะอยู่ภายใต้แอนติเจน
และ / หรือ PCR ตรวจหาแอนติเจนหรือใช้อย่างเพียงพอ Giardia ดีเอ็นเอจาก trophozoites ควรจะมีอยู่ใน
อุจจาระสำหรับวิธี PCR โดยซ้อนกันวิธี PCR , อ่อนไหวมากกว่าวิธี PCR โดยตรง
น่าจะมีสูงกว่าการวินิจฉัยดัชนี โดยเฉพาะอย่างยิ่งเมื่อโลกัสยีนคัดลอกเดียวใช้ .
เมื่อ trophozoites หรือซีสต์ Giardia , แอนติเจนหรือ DNA พบต่อไปนี้
ไม่ได้ตรวจสอบอย่างละเอียด และตัวอย่างอุจจาระซ้ำ , giardiasis ทางการแพทย์สงสัย , วิธีการรุกรานมากขึ้น เช่น
ตรวจลำไส้ หรือ jejunal ของเหลวและ / หรือ เนื้อเยื่อเนื้อเยื่อ
อาจจะระบุ ทั้งสองเป็นวิธีการรุกราน โดยประสานงานใกล้ชิดกับผู้เชี่ยวชาญด้านสุขภาพอื่น ๆ และควรใช้ด้วยความระมัดระวัง ลำไส้หรือ
jejunal FL อิ๊ดสามารถเก็บตัวอย่างโดยการส่องกล้อง หรือ® enterotest ( ยางเส้นหนักเจลาตินแคปซูล
ที่มีสตริงไนลอนซึ่งกลืนขณะที่
สุดท้ายฟรีของสตริงจะแปะไว้ที่ด้านข้างของ
ปาก การ® enterotest เหลืออยู่ในสถานที่สำหรับ 4 – 8 H ,
เวลาที่สายขยายเต็มความยาวของมัน และปลายครึ่งหนึ่งของ
กลายเป็นอิ่มตัวกับน้ำดี คราบเมือก
เมื่อออกเมือกคือขูดออกสาย
ผสมกับน้ำอุ่น ( 37 º C ) เกลือ และ trophozoites
ปัจจุบัน ในเสมหะตรวจพบผลเป็น
พวกเขายังคงเคลื่อนที่ .ลำไส้หรือ jejunal aspirates สามารถ
เปิดเผยสถานะของ trophozoites เคลื่อนที่ ที่สามารถเพาะเลี้ยงในหลอดทดลองใน tyi-s-33
( บั้นท้าย , 1983 ) เพื่อศึกษา ในขณะที่การเปลี่ยนแปลงวัสดุตรวจชิ้นเนื้อสามารถเปิดเผยสถานะของ trophozoites ติดกัน
ให้วิไล . ข้อเท็จจริงที่ระบุปฏิบัติการประกอบด้วย
การวิเคราะห์ต่างๆโดยใช้เมทริกซ์ที่แตกต่างกันระบุ
การ diffi culties พบกับไกการวินิจฉัย .
เทคนิคการตรวจจับความอ่อนไหว ซึ่งตรวจสอบ
G . duodenalis ย่อยของเซลล์ส่วนประกอบควร
ถือว่าสําหรับการนําไปใช้ในขั้นตอนวิธีการวินิจฉัย
ตามปกติ เทคนิคเหล่านี้ และงานวิจัยอื่นๆ เน้นเทคนิค จะรวมอยู่ในบทนี้และ
ควรพิสูจน์ประโยชน์สำหรับห้องปฏิบัติการและการสอบสวนทางระบาดวิทยาและการวิจัยเกี่ยวกับชีววิทยาของปรสิต .
เมื่อพวกเขาได้รับการประเมินอย่างเต็มรูปแบบ และเมื่อเทียบกับการยอมรับวิธีการทางห้องปฏิบัติการ
เป็นบุคคลหรือการประกันคุณภาพในตำรับ
พวกเขาสามารถถือเป็นการใช้วิธีและเทคนิคในการ identifi
ตรวจจับที่ใช้ในการวินิจฉัยทางห้องปฏิบัติการ
การแปล กรุณารอสักครู่..