These naturally occurring antimicro

These naturally occurring antimicrobials have extensive histories
of their use in foods and can be identified from various
components of the plants leaves, barks, stems, roots, flowers and
fruits (Erasto, Bojase-Moleta, & Majinda, 2004; Rahman & Gray,
2002; Zhu, Zhang, & Lo, 2004). Essential oils are not strictly oils, but
are often poorly soluble inwater as are oils. Essential oils often have
a pleasant odor and sometimes a distinctive taste and are therefore
used in significant amounts in the flavoring and perfume industries
(Burt, 2004). Essential oils are usually prepared by fragrance
extraction techniques such as distillation (including steam distillation),
cold pressing, or extraction (maceration) (Burt, 2004; Edris,
2007; Faleiro, 2011; Kelkar, Geils, Becker, Overby, & Neary, 2006;
Shannon, Milillo, Johnson, & Ricke, 2011a; Sol
orzano-Santos &
Miranda-Novales, 2012). Typically, EOs are highly complex mixtures
of often hundreds of individual aroma compounds. Herbs and
spices commonly used in foods have provided most of the EOs that
have been studied for their antimicrobial activity (Cueva et al.,
2010; Negi, 2012; Tajkarimi, Ibrahim, & Cliver, 2010). Table 1
presents a list of some common EOs, their sources and the most
abundant chemical compounds found in the oils.
2.1. Properties of essential oils
The antimicrobial or other biological activities of EOs are
directly correlated to the presence of their bioactive volatile components
(Mahmoud & Croteau, 2002). Chemically the EOs consist of
terpene compounds (mono-, sesqui- and diterpenes), alcohols,
acids, esters, epoxides, aldehydes, ketones, amines and sulfides
(Bakkali, Averbeck, Averbeck, & Idaomar, 2008). The components of
EOs can be divided into two groups: (i) terpene compounds and (ii)
aroma compounds (Bakkali et al., 2008; Pichersky, Noel, &
Dudareva, 2006).
Composition of the EOs of any particular plant can be dependent
on what part of the plant is used: flowers, green parts (leaves and
stems), bark, wood, whole fruits, pericarp or seed only, or roots
(Novak, Draxler, Gohler, & Franz, 2005; Olawore, Ogunwande,
Ekundayo, & Adeleke, 2005). Kuropka, Neugebauer, and
Glombitza (1991) demonstrated that in Achillea ptarmica the
mono-terpenes were found in very small amounts in oils from the
green parts and roots, while high levels were found in EOs from the
flowers.
Essential oils are thought to be produced by plants in response
to stressors and therefore the conditions of growth may affect the
yield and content of EOs (Theis & Lerdau, 2003). Rebey et al. (2012)
found that a moderate water deficit (MWD) increased the number
of seeds produced by cumin plants but a severewater deficit (SWD)
decreased yield. Essential oil yield increased by 1.4 fold under
MWD, but decreased by 37.2% under SWD in comparison. Water
deficits also changed the profile of constituents in EOs from predominantly
g-terpinene/phenyl-1,2 ethanediol in the control seeds
to g-terpinene/cuminaldehyde in stressed ones.
Badi, Yazdani, Ali, and Nazari (2004) studied the effects of plant
spacing and time of harvest on the yield of EOs in thyme. Plants
were harvested either at the beginning of blooming, full blooming
or fruit set. Planting space did not significantly affect EO content,
but time of harvest did. The maximum yield of EO and of thymol
content were obtained when plants were placed 15 cm apart and
harvested at the beginning of blooming stage.
Many parameters affect EO yield and chemical composition of
aromatic plants, such as drying methods or extraction processes
(Fathi & Sefidkon, 2012). Fathi and Sefidkon (2012) obtained fresh
leaves of Eucalyptus sargentii and used five different drying
methods: sun-drying, shade-drying, and oven-drying (30, 40 and
50 C). Distillation methods included hydro-, water- and steamdistillation.
Obtained oils were analyzed by capillary GC and
GCeMS. Shade-dried samples produced the highest oil yield and
1,8-cineole content of all the drying methods used, while hydrodistillation
produced the highest oil yield; however, the highest
percentage of 1,8-cineole, the major constituent of Eucalyptus oil
(Table 1) was obtained by water and steam distillation. Thus many
chemical and physical factors can affect the amount and composition
of the EOs obtained from aromatic plants. Conditions of growth
and extraction can also affect the amounts of the major antimicrobial
components of the EOs.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

Antimicrobials ที่เกิดขึ้นตามธรรมชาติเหล่านี้มีประวัติอย่างละเอียดของการใช้ในอาหาร และสามารถระบุได้จากที่ต่าง ๆออกจากส่วนประกอบของพืช เปลือก ลำต้น ราก ดอกไม้ และผลไม้ (Erasto, Bojase Moleta, & Majinda, 2004 Rahman และสีเทา2002 ซู จาง และ หล่อ 2004) น้ำมันไม่เคร่งครัดน้ำมัน แต่มัก inwater ไม่ดีละลายเป็นน้ำมัน มักจะมีน้ำมันหอมระเหยกลิ่นดีและบางครั้งยังโดดเด่นรสชาติ และดังใช้จำนวนเงินที่สำคัญในอุตสาหกรรม flavoring และน้ำหอม(เบิร์ต 2004) ระเหยมักจะเตรียม โดยหอมเทคนิคการสกัดเช่นกลั่น (รวมทั้งไอน้ำกลั่น),รีดเย็น หรือสกัด (maceration) (เบิร์ต 2004 อิดรีส2007 Faleiro, 2011 แห่ง Geils, Becker, Overby, & Neary, 2006แชนนอน Milillo, Johnson, & Ricke, 2011a โซล orzano-ซานโตสและMiranda-Novales, 2012) โดยปกติ EOs มีส่วนผสมที่ซับซ้อนมากมักหลายร้อยของสารประกอบแต่ละกลิ่น สมุนไพร และเครื่องเทศที่ใช้กันทั่วไปในอาหารให้มากที่สุดของกล้องดิจิตอลที่มีการศึกษากิจกรรมของจุลินทรีย์ (Cueva et al.,2010 Negi, 2012 Tajkarimi อิบรอฮีม & Cliver, 2010) ตารางที่ 1แสดงรายการของ EOs บางทั่วไป แหล่งที่มา และสุดอุดมสมบูรณ์สารประกอบทางเคมีในน้ำมันหอมระเหย2.1. คุณสมบัติของน้ำมันหอมระเหยการต้านจุลชีพหรือกิจกรรมอื่น ๆ ทางชีวภาพของ EOscorrelated ตรงกับสถานะของคอมโพเนนต์ระเหยกรรมการก(Mahmoud & Croteau, 2002) กล้องดิจิตอลส่วนประกอบของสารเคมีเทอร์พีนสารประกอบ alcohols (ขาวดำ- sesqui - และ diterpenes),กรด esters, epoxides, aldehydes คีโตน amines และ sulfides(Bakkali, Averbeck, Averbeck, & Idaomar, 2008) ส่วนประกอบของEOs สามารถแบ่งออกเป็น 2 กลุ่ม: (i) เทอร์พีนสารประกอบและ (ii)สารอะโรมา (Bakkali et al., 2008 Pichersky, Noel, &Dudareva, 2006)องค์ประกอบของ EOs ของพืชเฉพาะใด ๆ จะขึ้นอยู่กับในส่วนของพืชที่ใช้: ส่วนดอกไม้ สีเขียว (ใบ และลำ), เปลือก ไม้ ทั้ง ผลไม้ pericarp หรือเมล็ดเท่านั้น หรือราก(โนวัคในฮวาร์ Draxler, Gohler และ ฟรานซ์ 2005 Olawore, OgunwandeEkundayo, & Adeleke, 2005) Kuropka, Neugebauer และGlombitza (1991) สาธิต ptarmica Achillea ที่ในการโมโน-terpenes พบในจำนวนน้อยมากในน้ำมันจากการสีเขียวส่วนและราก ในขณะที่ระดับสูงพบใน EOs จากการดอกไม้ระเหยจะคิดที่จะผลิต โดยพืชตอบสนองต่อลดและสภาพของการเจริญเติบโตอาจมีผลต่อการผลตอบแทนและเนื้อหาของ EOs (Theis & Lerdau, 2003) Rebey et al. (2012)พบว่า ดุลน้ำปานกลาง (MWD) เพิ่มขึ้นจำนวนของเมล็ดพันธุ์ที่ผลิต โดยพืชผงยี่หร่าแต่ขาดดุล severewater (สงเคราะห์ผลผลิตลดลง ผลผลิตน้ำมันเพิ่มขึ้น 1.4 พับภายใต้MWD แต่ลดลง 37.2% ภายใต้ SWD ในเปรียบเทียบ น้ำขาดดุลยังเปลี่ยนโพรไฟล์ constituents ใน EOs จากส่วนใหญ่ethanediol g-terpinene/phenyl-1, 2 ในเมล็ดพันธุ์ควบคุมให้ g-terpinene/cuminaldehyde ในเน้นคนBadi, Yazdani อาลี และ Nazari (2004) ได้ศึกษาผลของพืชระยะห่างและเวลาเก็บเกี่ยวบนผลตอบแทนของ EOs ใน thyme พืชได้เก็บเกี่ยวในต้น blooming เต็มบลูมมิ่งหรือชุดผลไม้ ปลูกพื้นที่ได้อย่างมีนัยสำคัญมีผลต่อเนื้อหาของอีโอแต่เวลาเก็บเกี่ยวได้ ผลตอบแทนสูงสุด ของอีโอ และ thymolเนื้อหาที่ได้รับเมื่อพืชถูกวาง 15 ซม.ห่างกัน และเก็บเกี่ยวที่ระยะช่วงต้นร้ายพันธุพารามิเตอร์มากส่งผลกระทบต่ออีโอผลผลิตและสารเคมีส่วนประกอบของพืชหอม เช่นอบแห้งวิธีหรือกระบวนการแยก(Fathi & Sefidkon, 2012) Fathi และ Sefidkon (2012) รับสดใบยูคาลิปตัส sargentii และใช้ห้าแตกแห้งวิธีการ: อาทิตย์แห้ง อบสี และเตาอบแห้ง (30, 40 และ50 C) วิธีการกลั่นรวมน้ำ น้ำ - และ steamdistillationน้ำมันที่ได้รับถูกวิเคราะห์ ด้วย GC รูพรุน และGCeMS ตัวอย่างสีแห้งผลิตผลผลิตน้ำมันสูงสุด และ1, 8-cineole เนื้อหาวิธีการอบแห้งทั้งหมดที่ใช้ ในขณะที่ hydrodistillationผลิตผลผลิตน้ำมันสูงสุด อย่างไรก็ตาม สูงสุดเปอร์เซ็นต์ของ 1, 8-cineole วิภาคหลักน้ำมันยูคาลิปตัส(ตารางที่ 1) ได้รับ ด้วยการกลั่นน้ำและไอน้ำ ดังมากปัจจัยทางเคมี และกายภาพสามารถมีผลต่อจำนวนและองค์ประกอบกล้องดิจิตอลที่ได้รับจากพืชหอม การเจริญเติบโตและสกัดยังมีผลต่อจำนวนของสำคัญจุลินทรีย์ส่วนประกอบของกล้องดิจิตอล

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ยาต้านจุลชีพเหล่านี้เกิดขึ้นตามธรรมชาติมีประวัติที่กว้างขวาง
การใช้งานของพวกเขาในอาหารและสามารถระบุได้จากต่างๆ
ส่วนประกอบของพืชใบเปลือกลำต้นรากดอกและ
ผลไม้ (Erasto, Bojase-Moleta และ Majinda 2004; เราะห์มานและสีเทา,
2002 ; จู้เหวยและ Lo, 2004) น้ำมันหอมระเหยไม่ได้น้ำมันอย่างเคร่งครัด แต่
มักจะละลายน้ำได้ดีเช่นเดียวกับ inwater น้ำมัน น้ำมันหอมระเหยมักจะมี
กลิ่นที่น่ารื่นรมย์และบางครั้งรสชาติที่โดดเด่นและดังนั้นจึงมีการ
ใช้ในปริมาณที่สำคัญในการปรุงรสและอุตสาหกรรมน้ำหอม
(เบิร์ต, 2004) น้ำมันหอมระเหยที่ได้จัดทำขึ้นโดยปกติกลิ่นหอม
เทคนิคการสกัดเช่นการกลั่น (รวมถึงการกลั่นด้วยไอน้ำ)
เย็นกดหรือสกัด (ยุ่ย) (เบิร์ท 2004; Edris,
2007; Faleiro 2011; Kelkar, อัลส์เบกเกอร์, Overby และ Neary, 2006
นอนส์ Milillo, จอห์นสันและ Ricke, 2011a; Sol-orzano ซานโตสและ
มิแรนดา-Novales 2012) โดยปกติ EOS มีผสมที่ซับซ้อนมาก
มักหลายร้อยสารหอมบุคคล สมุนไพรและ
เครื่องเทศที่ใช้กันทั่วไปในอาหารได้ให้มากที่สุดของ EOS ที่
ได้รับการศึกษาฤทธิ์ต้านจุลชีพของพวกเขา (Cueva, et al.
2010; เนกิ 2012; Tajkarimi, อิบราฮิมและ Cliver 2010) ตารางที่ 1
ที่มีการจัดรายการของบางส่วน EOS ที่พบบ่อย, แหล่งที่มาและส่วนใหญ่ของพวกเขา
ที่อุดมสมบูรณ์สารประกอบทางเคมีที่พบในน้ำมัน.
2.1 คุณสมบัติของน้ำมันหอมระเหย
ฤทธิ์ทางชีวภาพหรือยาต้านจุลชีพอื่น ๆ ของ EOS จะ
มีความสัมพันธ์โดยตรงกับการปรากฏตัวขององค์ประกอบสารระเหยออกฤทธิ์ทางชีวภาพของพวกเขา
(Mahmoud & Croteau, 2002) สารเคมี EOS ประกอบด้วย
สารประกอบ terpene (ขาวดำ, sesqui- และ diterpenes), แอลกอฮอล์,
กรด, เอสเทอ epoxides, ลดีไฮด์คีโตนเอมีนและซัลไฟด์
(Bakkali, Averbeck, Averbeck และ Idaomar 2008) ส่วนประกอบของ
EOS สามารถแบ่งออกเป็นสองกลุ่ม (i) สารประกอบ terpene และ (ii)
สารหอม (. Bakkali et al, 2008; Pichersky ประสานเสียงและ
. Dudareva 2006)
องค์ประกอบของ EOS ของพืชใด ๆ โดยเฉพาะอย่างยิ่งที่สามารถ ขึ้นอยู่
กับสิ่งที่เป็นส่วนหนึ่งของพืชที่ใช้: ดอกไม้, ชิ้นส่วนสีเขียว (ใบและ
ลำต้น), เปลือกไม้, ผลไม้ทั้งเปลือกหรือเมล็ดเท่านั้นหรือราก
(โนวัค Draxler, Gohler และฟรานซ์ 2005 Olawore, Ogunwande,
Ekundayo และ Adeleke 2005) Kuropka, Neugebauer และ
Glombitza (1991) แสดงให้เห็นว่าใน Achillea ptarmica
ขาวดำ terpenes พบในปริมาณที่น้อยมากในน้ำมันจาก
ชิ้นส่วนสีเขียวและรากในขณะที่อยู่ในระดับสูงที่พบใน EOS จาก
ดอกไม้.
น้ำมันหอมระเหยที่มีความคิดที่จะเป็น ผลิตโดยโรงงานในการตอบสนอง
เพื่อให้เกิดความเครียดและทำให้เงื่อนไขของการเจริญเติบโตอาจส่งผลกระทบต่อ
ผลผลิตและเนื้อหาของ EOS (Theis & Lerdau 2003) Rebey et al, (2012)
พบว่าการขาดน้ำในระดับปานกลาง (MWD) เพิ่มจำนวน
ของเมล็ดที่ผลิตโดยพืชยี่หร่า แต่การขาดดุล severewater (SWD)
ลดลงผลผลิต ผลผลิตน้ำมันหอมระเหยเพิ่มขึ้น 1.4 เท่าต่ำกว่า
MWD แต่ลดลง 37.2% ภายใต้ SWD ในการเปรียบเทียบ น้ำ
ขาดดุลยังมีการเปลี่ยนแปลงรายละเอียดขององค์ประกอบใน EOS เด่นจาก
G-terpinene / phenyl-1,2 ethanediol ในเมล็ดควบคุม
การ G-terpinene / cuminaldehyde ในคนที่เครียด.
Badi, Yazdani อาลีและ Nazari (2004) ศึกษาผลกระทบ ของพืช
ระยะห่างและเวลาของการเก็บเกี่ยวที่มีต่อผลผลิตของ EOS ในโหระพา พืช
เก็บเกี่ยวทั้งที่จุดเริ่มต้นของการออกดอกบานเต็มรูปแบบ
หรือการติดผล พื้นที่ปลูกไม่ได้ส่งผลกระทบต่อเนื้อหา EO,
แต่เวลาของการเก็บเกี่ยวได้ ผลผลิตสูงสุดของ EO และไทมอล
คอนเทนต์ที่ได้รับเมื่อพืชถูกวางไว้ 15 ซม. ออกจากกันและ
เก็บเกี่ยวที่จุดเริ่มต้นของขั้นตอนบาน.
พารามิเตอร์หลายคนส่งผลกระทบต่ออัตราผลตอบแทน EO และองค์ประกอบทางเคมีของ
พืชที่มีกลิ่นหอมเช่นวิธีการอบแห้งหรือกระบวนการสกัด
(Fathi และ Sefidkon 2012) Fathi และ Sefidkon (2012) ได้รับสด
ใบยูคาลิป sargentii และใช้การอบแห้งที่แตกต่างกันห้า
วิธีการ: อาทิตย์แห้ง, สีแห้งและเตาอบแห้ง (30, 40 และ
50 C) วิธีการกลั่นรวม hydro-, น้ำและ steamdistillation.
น้ำมันที่ได้มาวิเคราะห์โดยฝอย GC และ
GCeMS ตัวอย่างที่ร่มแห้งให้ผลผลิตน้ำมันสูงสุดและ
เนื้อหา 1,8-cineole ของทุกวิธีการอบแห้งที่ใช้ในขณะที่กลั่น
ให้ผลผลิตน้ำมันสูงสุด แต่สูงสุด
ร้อยละของ 1,8-cineole, ส่วนประกอบที่สำคัญของน้ำมันยูคาลิป
(ตารางที่ 1) ได้มาจากน้ำและการกลั่นด้วยไอน้ำ ดังนั้นหลาย
ปัจจัยทางเคมีและกายภาพจะมีผลต่อปริมาณและองค์ประกอบ
ของ EOS ที่ได้จากพืชที่มีกลิ่นหอม เงื่อนไขของการเจริญเติบโต
และการสกัดยังสามารถส่งผลกระทบต่อปริมาณของยาต้านจุลชีพที่สำคัญ
ส่วนประกอบของ EOS

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

เหล่านี้เกิดขึ้นตามธรรมชาติต่อไปได้อย่างกว้างขวาง ประวัติศาสตร์
ของการใช้งานในอาหารและสามารถระบุได้จากส่วนประกอบต่างๆ
ของพืชใบ เปลือกต้น ราก ดอก และผลไม้ ( erasto
, moleta & majinda bojase , 2004 ; Rahman &สีเทา
2002 ; Zhu , จาง , &โล , 2004 ) น้ำมันหอมระเหยน้ำมันจะไม่เคร่งครัด แต่ปริมาณงานใน
มักเป็นตัวขับเคลื่อนน้ํามันหอมระเหย มักจะมีกลิ่นที่น่ารื่นรมย์และบางครั้ง

รสชาติที่โดดเด่นและดังนั้นจึงใช้ในจํานวนมากในการปรุงน้ำหอมอุตสาหกรรม
( เบิร์ท , 2004 ) น้ํามันหอมระเหยมักจะเตรียมโดยเทคนิค เช่น การกลั่น การสกัดกลิ่น
( รวมถึงการกลั่นไอน้ำ )
เย็นกด หรือการสกัด ( ยุ่ย ) ( เบิร์ท , 2004 ; edris
faleiro , 2007 ; 2554 ; kelkar geils , ,เบคเกอร์ โอเวอร์บี้เนียรี่& 2006 ;
, , แชนนอน milillo , Johnson , & ricke 2011a ; โซล ,
orzano ซานโตส&
มิ novales , 2012 ) โดยปกติแล้วกล้องมีความซับซ้อนสูงผสม
มักจะหลายร้อยแต่ละกลิ่นสาร สมุนไพรและเครื่องเทศที่นิยมใช้ในอาหารได้

ให้มากที่สุดของกล้องที่ได้ศึกษาฤทธิ์ต้านจุลชีพของพวกเขา ( ! et al . ,
2010 ; เนกิ , 2012 ; tajkarimi อิบราฮิม ,& cliver , 2010 ) ตารางที่ 1 แสดงรายการของบาง
กล้องทั่วไป แหล่งที่ชุกชุมที่สุด
และสารประกอบทางเคมีที่พบในน้ำมัน .
2.1 . คุณสมบัติของน้ำมันหอมระเหย
จุลชีพ หรือกิจกรรมทางชีวภาพอื่น ๆของกล้อง คือ
ความสัมพันธ์โดยตรงกับการแสดงตนของพวกเขาสารองค์ประกอบที่ระเหย
( Mahmoud & croteau , 2002 ) ประเภทกล้อง ประกอบด้วยสารประกอบโมโนเทอร์ปีน (
,sesqui - ชนิด ) , แอลกอฮอล์ ,
กรดเอสเทอร์ epoxides อัลดีไฮด์ , คีโตน , เอมีน , และ ดิน
( bakkali averbeck averbeck & , , , idaomar , 2008 ) ส่วนประกอบของ
กล้อง สามารถแบ่งออกเป็นสองกลุ่ม : ( ฉัน ) สารเทอร์ปีนและ ( ii )
( สารประกอบอโร bakkali et al . , 2008 ; pichersky , Noel , &
dudareva , 2006 ) .
ส่วนประกอบของกล้อง ของพืชโดยเฉพาะใด ๆที่สามารถขึ้นอยู่กับ
ในส่วนของพืชจะใช้ดอกไม้สีเขียวส่วน ( ใบและลำต้น
) เปลือกไม้ ผลไม้ทั้งเปลือก หรือเมล็ดเท่านั้น หรือราก
( โนวัค draxler gohler & , , ฟรานซ์ , 2005 ; olawore ogunwande ekundayo &
, , , adeleke , 2005 ) kuropka neugebauer , ,
glombitza ( 2534 ) พบว่า ใน achillea ptarmica
โมโนเทอร์ปีน พบในปริมาณที่น้อยมากในน้ำมันจาก
ส่วนสีเขียว และรากในขณะที่ระดับสูงที่พบในกล้อง จาก

ดอกไม้ น้ำมันหอมระเหยมีความคิดที่จะผลิตโดยพืชในการตอบสนองต่อความเครียดและดังนั้น

สภาพการเจริญเติบโตอาจส่งผลกระทบต่อผลผลิตและปริมาณของกล้อง ( แต่& lerdau , 2003 ) rebey et al . ( 2012 )
พบว่าขาดน้ำปานกลาง ( mwd ) เพิ่มจำนวนของเมล็ดยี่หร่า
ผลิตโดยพืช แต่ severewater ดุล ( รักษา )
ผลผลิตลดลง ผลผลิตน้ำมันเพิ่มขึ้น 1.4 เท่า ภายใต้
mwd แต่ลดลง 37.2% ภายใต้ความร้อนลึกในการเปรียบเทียบ น้ำ
ขาดดุลยังเปลี่ยนโปรไฟล์ขององค์ประกอบในกล้อง จากเด่น
g-terpinene / phenyl-1,2 ethanediol ในเมล็ดพันธุ์ควบคุม
เพื่อ g-terpinene / cuminaldehyde ในเครียด . .
บาดี ยาซดานี , อาลี และ nazari ( 2547 ) ศึกษาผลของพืช
ระยะห่างและเวลาเก็บเกี่ยวต่อผลผลิต ของกล้อง ในโหระพา พืช
เก็บให้ที่จุดเริ่มต้นของบานเต็ม
หรือผลไม้ตั้งบาน พื้นที่ปลูกไม่มีผลต่อ EO เนื้อหา
แต่เวลาของการเก็บเกี่ยวได้ ให้ผลของ EO และไทมอล
เนื้อหาที่ได้รับ เมื่อพืชถูกวางไว้ 15 ซม. ออกจากกันและเก็บเกี่ยวที่จุดเริ่มต้นของเวที

บานตัวแปรหลายอย่างที่ส่งผลกระทบต่อผลผลิตและองค์ประกอบทางเคมีของ
EO พืชที่มีกลิ่นหอม เช่น วิธีการอบแห้งหรือการสกัด
( fathi & sefidkon , 2012 ) fathi sefidkon ( 2012 ) และได้ใบของยูคาลิปตัสสด
sargentii ใช้ห้าที่แตกต่างกันและวิธีการอบแห้ง
: ตากแดด , สีอบแห้ง , เตาอบแห้ง ( 30 , 40 และ 50 
c ) วิธีการกลั่นด้วยน้ำ น้ำ - steamdistillation .
ได้ขับมาวิเคราะห์โดย GC และฝอย
gcems . สีแห้งตัวอย่างผลิตน้ำมันสูงสุดต่อ
1,8-cineole เนื้อหาทั้งหมดของวิธีการอบแห้ง ใช้ ในขณะที่วิธีการต้มกลั่น
ผลิต ผลผลิตน้ำมันสูงสุด อย่างไรก็ตาม ร้อยละสูงสุด
ของ 1,8-cineole , องค์ประกอบหลักของน้ำมันยูคาลิปตัส
( ตารางที่ 1 ) โดยนำน้ำและการกลั่นด้วยไอน้ำ . ดังนั้นหลาย
ปัจจัยทางเคมีและทางกายภาพที่มีผลต่อปริมาณและส่วนประกอบของกล้อง
ได้จากพืชหอม เงื่อนไขการเจริญเติบโต
และสกัดยังมีผลต่อปริมาณจุลชีพ
ส่วนประกอบหลักของกล้อง .