2. Results2.1. Effects of NaCl on t

2. Results

2.1. Effects of NaCl on tomato growth
In LN medium (0.1 mM NO3–), tomato biomass was about 50% relative to that in HN medium (5 mM NO3–) (Fig. 1A).
Exposure of plants to 100 mM NaCl during 10 days reduce the leaf surface by 35% and 10% in HN and LN plants, respectively (Fig. 1A). DW production was decreased by 35% in HN plants and by 20% in LN plants (Fig. 1A). In both plants,leaves and stems-petioles were more affected by salt stress than roots. In HN plants, salinity decreased DW production in the leaves (40%), stems-petioles (30%) and roots (20%). In LN plants, DW production was decreased by 25% in the leaves and stems-petioles and by 10% in roots.
Total extractable chlorophyll (Chl) decreased in HN leaves with higher salt sensitivity of Chl a (Fig. 1B). In LN leaves,total leaf Chl contents were not affected by salt treatment. Thechanges in carotenoids (cart) contents by NaCl were low in both HN and LN plants (Fig. 1B). The NaCl treatment decreased soluble protein contents by about 20% and 15% in the leaves from HN and LN plants, respectively (Fig. 1C). In HN plants, soluble protein contents slightly increased in the stems-petioles and roots. In contrast, the increase in soluble protein contents were observed in stems-petioles of salt treated LN plants (Fig. 1C).

2.2. Effects of NaCl on the enzymes of nitrogen metabolism during a day/night cycle

2.2.1. NR and activation state
The dark to light transition induced a fast increase in nitrate reductase activity (NRA) in the leaves (Fig. 2A, B). Leaf NRA in HN plants was higher than that in LN plants. Maximum NRA (NRAmax) occurred 3–6 hours after illumination. NRAmax was about 2.7-fold higher in HN than in LN leaves. By the addition of NaCl, the NRAmax was inhibited in HN and
LN plants (Fig. 2A, B). The presence of NaCl did not affect the timing of the NRAmax, although it reduced the amplitude of
the changes in both HN and LN plants. The leaf NR activation state showed a similar pattern to that of activity (Fig. 2A, B).
The highest NR activation state (80%) occurred concomitantly with the NRAmax in both HN and LN plants. Under NaCl
stress, the NR activation state and NRA did not show similar diurnal changes. In both HN and LN plants, the NR activation
state was diminished in the light, but it was increased in darkness.
The NRA exhibited a clear diurnal pattern in the stemspetioles (Fig. 2A, B). NRA was higher in HN than that in LN plants, and it increased in the night and reached maximum activity after 3 hours of illumination in both HN and LN plants.
It can be noted that stem-petiole NRA decreased in the light despite a high NR activation state (Fig. 2A, B). This may
reflect the NR protein synthesis rather than a NR inactivation via a phosphorylation/dephosphorylation process. In darkness,the NRA and NR activation state remained at lower levels. Salt stress inhibited NRA, but NRA showed a similar diurnal changes in both HN and LN plants. However, the NR activation state was not changed by salt stress in LN plants (Fig. 2B).
In the roots, NRA was higher in HN than in the LN plants,and it showed a similar diurnal pattern to that found in the stemspetioles.NRA showed a peak 3 hours after illumination in both HN and LN plants (Fig. 2A, B). The NRA and NR activation state exhibited similar diurnal changes. In contrast to the leaves and stems-petioles, the NaCl stress stimulated NRA in both HN and LN plant roots. However, the diurnal pattern remained similar with a peak 3 hours into the light phase. The increase in the root NRA by the salt stress was associated with an increase in the NR activation state (Fig. 2A, B).

2.2.2. NiR
There were no diurnal changes in the specific nitrite reductase activity (NiRA), irrespective of the plant tissue, the nitrogen regime and NaCl treatment (data not shown). The high nitrogen regime increased NiRA in the leaves, stems-petioles and roots relative to the low nitrogen regime (Table 1). The addition of 100 mM NaCl decreased the leaf NiRA by about 15% in HN plants and by 30% in LN plants (Table 1). NiRA levels were about ninefold and fivefold higher than the NRA in HN and LN plant leaves, respectively (Fig. 2A, B and Table 1).In both N medium, salt stress provoked a slight decrease (10–12%) of NiRA in the stems-petioles and roots. NiRA was 10–20-fold higher than NRA in the stems-petioles, and at least 10-fold higher than NRA in roots (Fig. 2A, B and Table 1).

2.2.3. GS
In the leaves of HN plants, the total GS activity showed a diurnal change (Fig. 3A). GS activity remained high in the dark period, and it started to decline before the beginning of the light period to a minimum level at the middle of the light period.GS protein was detected only as a GS2 isoform in the leaves (Fig. 4A). During the light phase, the highest GS protein amount was associated with the high GS activity at 21 h (Fig. 3A). The addition of NaCl inhibited the total GS activity, and a similar diurnal change was observed showing a minimum level at the middle of the light period. GS activity did not strictly correlate with the GS protein. At 6–12 hours after illumination, GS activity was inhibited by 40–60% (Fig. 3A),whereas GS protein content was lowered only by 17% (Fig. 4A). GS activity in LN plant leaves showed lesser
changes during the day/night cycle (Fig. 3B), and was less affected by salinity than in HN plant leaves. GS activity levels
were similar to those obtained in the leaves from HN control plants. Salt stress decreased GS protein and activity by about
35% in LN plant leaves during the early hours of light period (Fig. 4B).
GS exhibited contrasting diurnal changes in the stemspetioles from both HN and LN plants (Fig. 3A, B). The GS
activity peak occurred 6 h after illumination, then it declined gradually until the end of the light period. The GS activity was
slightly decreased by NaCl in the HN plants (Fig. 3A). The salt stress induced a pronounced decrease of GS activity in the LN plants in the second half of the light period (Fig. 3B). Similar diurnal variations of GS activity were observed in the roots from HN plants (Fig. 3A). The activity was higher during the second part of the light period, and it decreased progressively during darkness. However, in the LN plants, GS was lower in the light period and displayed an early activity peak in the dark, 3 h before illumination (Fig. 3B). The addition of NaCl increased GS activity in the root with a similar diurnal pattern in HN and LN plants (Fig. 3A, B).

2.2.4. Glutamate synthase
Fd-GOGAT represented the major form of the enzyme in the leaves, and NADH-GOGAT activity accounted for less
than 30% of the Fd-GOGAT activity (data not shown). Fd-GOGAT activity exhibited diurnal changes (Fig. 3A). It was progressively increased after illumination and reached a maximum of activity at the second half of light period (15–18 h).
The highest Fd-GOGAT activity levels were concurrent with high Fd-GOGAT protein contents (Fig. 4C). Low activity levels were measured at night, despite a high Fd-GOGAT protein amounts. The inhibition of Fd-GOGAT activity by NaCl
occurred during the first hours following illumination. Fd-GOGAT activity was decreased by 40–60%. It was associated
with about 30–50% decrease in Fd-GOGAT protein.

2.2.5. Glutamate dehydrogenase (GDH)
There were no clear diurnal changes in GDH activity in the HN plant tissues. In HN untreated plants, NAD-GDH deaminating activity in the leaves was sixfold higher than NADHGDH aminating activity (Table 2). In contrast, aminating activity was always higher than deaminating activity in LN plants leaves (Fig. 5). The addition of 100 mM NaCl to HN medium inhibited deaminating activity by about 70% and induced aminating activity (sixfold) (Table 2). In LN plants, NaCl treatment induced both aminating and deaminating activities in the leaves, giving an apparent aminating activity peak in the second half of light cycle (Fig. 5). Under salt stress, LN plants preserved NADH-GDH/NAD-GDH ratios in the leaves, similar to those in control plants (Table 3). Whereas this ratio was enhanced in HN plant leaves; it was increased by NaCl treatment ranging from 0.2 to 6.
The aminating activity was higher than the deaminating activity in the stems-petioles and roots, irrespective of nitrogen regime (Fig. 5 and Table 2). The NaCl stress inhibited the deaminating activity in the stems-petioles (50–60%) and roots (30%) from both HN and LN plants, except that the deaminating activity in the LN roots was stimulated. The aminating activity was stimulated by NaCl in the stems-petioles and roots from LN and HN plants (Fig. 5 and Table 2). We calculated nearly threefold and twofold increase in the aminating/deaminating ratio in the stems-petioles from HN and LN treated plants, respectively (Table 3). It can be noted that high aminating activity was detected in the roots from control as well as treated LN plants. The NADH-GDH/NAD-GDH ratio in the LN plant roots remained high despite the salt stress
(Table 3).

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2. ผลลัพธ์2.1. ผลของ NaCl มะเขือเทศเจริญเติบโต ใน LN (0.1 mM NO3-), มะเขือเทศชีวมวลถูกประมาณ 50% เมื่อเทียบกับที่ใน HN (5 mM NO3-) (Fig. 1A)แสงของพืช 100 มม. NaCl ในระหว่างวันที่ 10 ลดพื้นที่ใบ โดย 35% และ 10% ในพืช HN และ LN ตามลำดับ (Fig. 1A) ผลิต DW ถูกลดลง 35% ในพืช HN และ 20% ในพืช LN (Fig. 1A) ในทั้งสองพืช ใบและลำต้น-petioles ขึ้นถูกกระทบจากความเครียดเกลือมากกว่าราก ในพืช HN เค็มลดลงผลิต DW ในใบไม้ (40%), ลำต้น-petioles (30%) และราก (20%) ใน LN พืช ผลิต DW ถูกลดลง 25% ในใบและลำต้น petioles และ 10% ในราก รวม extractable คลอโรฟิลล์ (Chl) ลดลง HN ในใบ มีความไวต่อเกลือสูงของ Chl (Fig. 1B) ในใบไม้ LN รวม Chl เนื้อหาไม่ถูกกระทบจากเกลือ Thechanges ในเนื้อหา carotenoids (รถเข็น) โดย NaCl ได้ต่ำสุดในพืชทั้ง HN และ LN (Fig. 1B) รักษา NaCl ลดเนื้อหาละลายโปรตีน 20% และ 15% ในใบจากพืช HN และ LN ตามลำดับ (Fig. 1C) ในพืช HN เนื้อหาโปรตีนที่ละลายน้ำได้เล็กน้อยขึ้นใน petioles ลำต้นและราก ในทางตรงข้าม เพิ่มเนื้อหาโปรตีนที่ละลายน้ำได้สังเกตในลำ petioles เกลือบำบัดพืช LN (Fig. 1C)2.2. ผลของ NaCl เอนไซม์ของไนโตรเจนในระหว่างรอบกลางวัน/กลางคืน2.2.1. NR และเปิดใช้งานสถานะ มืดในการเปลี่ยนแสงทำให้เกิดการเพิ่มขึ้นอย่างรวดเร็วในไนเตรต reductase กิจกรรม (NRA) ในใบไม้ (Fig. 2A, B) ใบไม้ NRA ในพืช HN สูงกว่าในพืช LN สูงสุด NRA (NRAmax) เกิด 3-6 ชั่วโมงหลังจากไฟส่องสว่าง NRAmax เกี่ยวกับ 2.7-fold สูงใน HN กว่าใน LN ใบไม้ได้ ด้านนอกของ NaCl, NRAmax ถูกห้ามใน HN และLN พืช (Fig. 2A, B) ของ NaCl ไม่มีผลต่อเวลาของ NRAmax แม้ว่ามันลดความกว้างของการเปลี่ยนแปลงในพืชทั้ง HN และ LN รัฐเปิด NR ใบแสดงให้เห็นรูปแบบคล้ายกับกิจกรรม (Fig. 2A, B)สูงสุด NR เปิดใช้งานสถานะ (80%) เกิดขึ้น concomitantly กับ NRAmax ในพืชทั้ง HN และ LN ภายใต้ NaClความเครียด สถานะการเปิดใช้งาน NR และ NRA ได้แสดง diurnal เปลี่ยนคล้าย ในพืชทั้ง HN และ LN เปิด NRรัฐลดลงในไฟ แต่มันเพิ่มขึ้นในความมืด NRA จัดแสดงลวดลายชัดเจน diurnal ใน stemspetioles (Fig. 2A, B) NRA ได้มากกว่าใน HN ที่ LN พืช และจะเพิ่มขึ้นในเวลากลางคืน และถึงกิจกรรมสูงสุดหลังจาก 3 ชั่วโมงของแสงสว่างในพืชทั้ง HN และ LNมันสามารถบันทึกว่า NRA petiole ก้านลดแสงแม้สูง NR เปิดใช้งานสถานะ (Fig. 2A, B) พฤษภาคมนี้สะท้อนถึงการสังเคราะห์โปรตีน NR แทนที่ยกเลิกการเรียก NR ผ่านกระบวนการ phosphorylation/dephosphorylation ในความมืด สถานะการเปิดใช้งาน NRA และ NR ยังคงอยู่ในระดับต่ำกว่า ความเครียดเกลือห้าม NRA แต่ NRA พบ diurnal คล้าย HN และ LN พืชเปลี่ยนแปลง อย่างไรก็ตาม รัฐเปิด NR ไม่เปลี่ยนแปลง โดยความเครียดเกลือในพืช LN (Fig. 2B) ในราก NRA สูงกว่า HN กว่าในพืช LN และพบว่ารูปแบบ diurnal คล้ายกับที่พบใน stemspetioles NRA ที่พบสูงสุด 3 ชั่วโมงหลังจากไฟส่องสว่างในพืชทั้ง HN และ LN (Fig. 2A, B) สถานะเปิดใช้งาน NRA และ NR จัดแสดงแปลงคล้าย diurnal ตรงข้ามใบและลำต้น petioles, NaCl ความเครียดถูกกระตุ้น NRA ในรากพืชทั้ง HN และ LN อย่างไรก็ตาม diurnal รูปแบบยังคงคล้ายกับสูงสุด 3 ชั่วโมงเป็นระยะแสง เพิ่มราก NRA โดยความเครียดเกลือเกี่ยวข้องกับการเพิ่มขึ้นของรัฐเปิด NR (Fig. 2A, B) ได้2.2.2 การ NiR มีอยู่ไม่เปลี่ยนแปลง diurnal ในกิจกรรมเฉพาะไนไตรต์ reductase (NiRA), แก่เนื้อเยื่อพืช ไนโตรเจนระบอบการปกครองและรักษา NaCl (ข้อมูลไม่แสดง) ระบอบไนโตรเจนสูงเพิ่ม NiRA ใบไม้ petioles ลำต้น และรากฐานสัมพันธ์กับระบอบไนโตรเจนต่ำ (ตารางที่ 1) นอกจากนี้ NaCl 100 มม.ลดลงใบ NiRA โดย HN พืชประมาณ 15% และ 30% ใน LN พืช (ตารางที่ 1) NiRA ระดับได้ประมาณ ninefold และ fivefold สูงกว่า NRA HN และ LN พืชใบไม้ ตามลำดับ (Fig. 2A, B และตารางที่ 1) ในสื่อทั้ง N ความเครียดเกลือท่านลดลงเล็กน้อย (10-12%) ของ NiRA petioles ลำต้นและราก NiRA ได้ลึก 10-20 มากกว่า NRA petioles ลำ และ ที่น้อย 10-fold มากกว่า NRA ในราก (Fig. 2A, B และตารางที่ 1)2.2.3. GS ในใบของพืช HN กิจกรรม GS รวมแสดงให้เห็นการเปลี่ยนแปลง diurnal (Fig. 3A) กิจกรรม GS ยังคงสูงในช่วงมืด และมันเริ่มลดลงก่อนการเริ่มต้นของแสงที่ระดับต่ำสุดที่ตรงกลางของแสง ตรวจพบโปรตีน GS เป็น isoform GS2 ในใบไม้ (Fig. 4A) เท่านั้น ระยะแสง โปรตีนยอดสูงสุดของ GS ที่สัมพันธ์กับกิจกรรม GS สูงที่ 21 h (Fig. 3A) การเพิ่มของ NaCl ห้ามกิจกรรม GS รวม และเปลี่ยน diurnal คล้ายถูกสังเกตการแสดงในระดับต่ำสุดของรอบระยะเวลาแสง กิจกรรม GS ได้ไม่เคร่งครัดซึ่ง มีโปรตีน GS ที่ 6 – 12 ชั่วโมงหลังจากไฟส่องสว่าง กิจกรรม GS ถูกห้าม โดย 40-60% (Fig. 3A), ในขณะที่โปรตีน GS ถูกลดลงเพียง 17% (Fig. 4A) กิจกรรม GS ใน LN พืชใบพบน้อยกว่าเปลี่ยนแปลงระหว่างวัน/คืนรอบ (Fig. 3B), และมีน้อยได้รับผลกระทบ โดยเค็มกว่า HN ในใบของพืช ระดับกิจกรรม GSได้เหมือนกับผู้รับในใบจากพืชควบคุม HN ลดความเครียดเกลือโปรตีน GS และกิจกรรมโดยเกี่ยวกับ35% ใน LN พืชใบในช่วงชั่วโมงแรกของช่วงแสง (Fig. 4B) GS จัดแสดงการเปลี่ยนแปลง diurnal ที่แตกต่างกันใน stemspetioles จากพืช HN และ LN (Fig. 3A, B) GSคกิจกรรมเกิด 6 h หลังรัศมี แล้วก็ปฏิเสธทีละน้อยจนถึงจุดสิ้นสุดของรอบระยะเวลาแสง กิจกรรม GS ถูกเล็กน้อยลดลง โดย NaCl ในพืช HN (Fig. 3A) ความเครียดเกลือเกิดจากการออกเสียงลดกิจกรรม GS ในพืช LN ในครึ่งหลังของรอบระยะเวลาแสง (Fig. 3B) รูปคล้าย diurnal กิจกรรม GS สุภัครากจาก HN พืช (Fig. 3A) กิจกรรมสูงระหว่างส่วนสองของรอบระยะเวลาแสง และมันลดความก้าวหน้าในความมืด อย่างไรก็ตาม ในพืช LN, GS ถูกล่างในช่วงแสง และแสดงคเป็นกิจกรรมแรก ๆ ใน h 3 เข้ม ก่อนรัศมี (Fig. 3B) การเพิ่มของ NaCl เพิ่มกิจกรรม GS ในรากกับ diurnal คล้ายในพืช HN และ LN (Fig. 3A, B)2.2.4 การ Glutamate synthase Fd GOGAT แสดงแบบฟอร์มที่สำคัญของเอนไซม์ในใบ และ NADH GOGAT กิจกรรมคิดน้อยกว่า 30% ของกิจกรรม Fd GOGAT (ข้อมูลไม่แสดง) Fd GOGAT กิจกรรมจัดแสดงแปลง diurnal (Fig. 3A) มันมีความก้าวหน้าเพิ่มขึ้นหลังจากที่รัศมี และถึงจำนวนกิจกรรมที่ครึ่งหลังของช่วงแสง (h 15-18)กิจกรรมระดับสูงสุดของ Fd GOGAT พร้อม ด้วยเนื้อหาสูง Fd GOGAT โปรตีน (Fig. 4C) ได้ ระดับกิจกรรมต่ำสุดที่วัดในเวลากลางคืน แม้มีจำนวนโปรตีนของ Fd GOGAT สูง ยับยั้งกิจกรรม Fd GOGAT โดย NaClเกิดขึ้นระหว่างชั่วโมงแรกต่อรัศมี กิจกรรม Fd GOGAT ถูกลด 40-60% เกี่ยวข้องประมาณ 30-50% ลดโปรตีน Fd-GOGAT2.2.5. Glutamate dehydrogenase (GDH) There were no clear diurnal changes in GDH activity in the HN plant tissues. In HN untreated plants, NAD-GDH deaminating activity in the leaves was sixfold higher than NADHGDH aminating activity (Table 2). In contrast, aminating activity was always higher than deaminating activity in LN plants leaves (Fig. 5). The addition of 100 mM NaCl to HN medium inhibited deaminating activity by about 70% and induced aminating activity (sixfold) (Table 2). In LN plants, NaCl treatment induced both aminating and deaminating activities in the leaves, giving an apparent aminating activity peak in the second half of light cycle (Fig. 5). Under salt stress, LN plants preserved NADH-GDH/NAD-GDH ratios in the leaves, similar to those in control plants (Table 3). Whereas this ratio was enhanced in HN plant leaves; it was increased by NaCl treatment ranging from 0.2 to 6. กิจกรรม aminating สูงกว่ากิจกรรม deaminating petioles ลำต้นและราก แก่ระบอบไนโตรเจน (Fig. 5 และตารางที่ 2) ความเครียดของ NaCl ห้ามกิจกรรม deaminating ในลำต้น-petioles (50-60%) และราก (30%) จากพืช HN และ LN ยกเว้นว่ามีถูกกระตุ้นกิจกรรม deaminating ในราก LN กิจกรรม aminating ที่ถูกกระตุ้น โดย NaCl petioles ลำต้นและรากจาก LN และ HN พืช (Fig. 5 และตารางที่ 2) เราได้เกือบ threefold และเพิ่มขึ้นสองเท่าในอัตราส่วน aminating/deaminating ใน petioles ลำจาก HN และ LN ถือว่าพืช ตามลำดับ (ตาราง 3) มันสามารถจะสังเกตว่า aminating สูงกิจกรรมพบในรากจากการควบคุม ตลอดจนรักษาพืช LN อัตราส่วน NADH-เฮ/และเฮในรากพืช LN ยังคงสูงแม้ มีความเครียดเกลือ(ตาราง 3)

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2. ผล2.1 ผลของโซเดียมคลอไรด์ต่อการเจริญเติบโตมะเขือเทศในกลาง LN (0.1 มิลลิ NO3-) ชีวมวลมะเขือเทศเป็นประมาณ 50% เมื่อเทียบกับว่าในกลาง HN (5 มิลลิ NO3-) (รูป. 1A). การรับแสงของพืชถึง 100 มิลลิโซเดียมคลอไรด์ในช่วง 10 วัน ลดผิวใบ 35% และ 10% ใน HN และ LN พืชตามลำดับ (รูป. 1A) การผลิต DW ลดลง 35% ในพืช HN และ 20% ในพืช LN (รูป. 1A) ในพืชทั้งสองใบและลำต้นก้านใบ-ได้รับผลกระทบมากขึ้นจากความเครียดเกลือกว่าราก ในพืช HN, ความเค็มลดลงการผลิตใบสำคัญแสดงสิทธิอนุพันธ์ในใบ (40%) ลำต้น-ก้านใบ (30%) และราก (20%) ในพืช LN ผลิต DW ลดลง 25% ในใบและลำต้น-ก้านใบและ 10% อยู่ในราก. รวมคลอโรฟิลที่สกัด (Chl) ลดลง HN ใบเกลือที่มีความไวสูงขึ้นของ Chl (รูป. 1B) ในใบ LN ใบรวมเนื้อหา Chl ที่ไม่ได้รับผลกระทบจากการรักษาเกลือ Thechanges ในนอยด์ (ซื้อ) เนื้อหาโดยโซเดียมคลอไรด์อยู่ในระดับต่ำทั้งใน HN และพืช LN (รูป. 1B) การรักษาโซเดียมคลอไรด์ลดลงปริมาณโปรตีนที่ละลายน้ำได้ประมาณ 20% และ 15% ในใบจาก HN และพืช LN ตามลำดับ (รูป. 1C) ในพืช HN, โปรตีนที่ละลายน้ำได้เพิ่มขึ้นเล็กน้อยในลำต้น-ก้านใบและราก ในทางตรงกันข้ามการเพิ่มขึ้นของปริมาณโปรตีนที่ละลายน้ำได้พบในลำต้น-ก้านใบของเกลือได้รับการรักษาพืช LN (รูป. 1C). 2.2 ผลของโซเดียมคลอไรด์ในเอนไซม์ของการเผาผลาญไนโตรเจนในช่วงวัน / คืนรอบ2.2.1 NR และรัฐยืนยันการใช้งานมืดที่จะเหนี่ยวนำให้เกิดการเปลี่ยนแปลงของแสงที่เพิ่มขึ้นอย่างรวดเร็วในกิจกรรมreductase ไนเตรต (NRA) ในใบ (รูป. 2A, B) ชมรมใบในพืช HN สูงกว่าในพืช LN ชมรมสูงสุด (NRAmax) ที่เกิดขึ้น 3-6 ชั่วโมงหลังจากไฟส่องสว่าง NRAmax เป็นประมาณ 2.7 เท่าสูงใน HN กว่าในใบ LN โดยนอกเหนือจากโซเดียมคลอไรด์ที่ NRAmax ถูกยับยั้งใน HN และพืชLN (รูป. 2A, B) การปรากฏตัวของโซเดียมคลอไรด์ไม่ได้ส่งผลกระทบต่อระยะเวลาของการ NRAmax ที่แม้ว่ามันจะลดความกว้างของการเปลี่ยนแปลงทั้งในHN และพืช LN ใบยืนยันการใช้งานรัฐ NR แสดงให้เห็นรูปแบบที่คล้ายกับที่ของกิจกรรม (รูป. 2A, B). รัฐการเปิดใช้ยางธรรมชาติมากที่สุด (80%) ที่เกิดขึ้นร่วมกันกับ NRAmax ทั้ง HN และพืช LN โซเดียมคลอไรด์ภายใต้ความเครียดรัฐยืนยันการใช้งานยางธรรมชาติและชมรมไม่ได้แสดงการเปลี่ยนแปลงรายวันคล้าย ทั้งใน HN และพืช LN เปิดใช้งานยางธรรมชาติรัฐลดลงในที่มีแสงแต่มันก็เพิ่มขึ้นในความมืด. ชมรมการจัดแสดงรูปแบบรายวันชัดเจนในการ stemspetioles (รูป. 2A, B) ชมรมสูงใน HN กว่าในพืช LN และจะเพิ่มขึ้นในเวลากลางคืนและถึงกิจกรรมสูงสุดหลังจาก 3 ชั่วโมงของการส่องสว่างทั้ง HN และพืช LN. ก็สามารถที่จะตั้งข้อสังเกตว่าลำต้นก้านใบชมรมลดลงในที่มีแสงแม้จะมีสูงยางธรรมชาติ รัฐยืนยันการใช้งาน (รูป. 2A, B) นี้อาจสะท้อนให้เห็นถึงการสังเคราะห์โปรตีนยางธรรมชาติมากกว่าการใช้งานยางธรรมชาติผ่าน phosphorylation / กระบวนการ dephosphorylation ในความมืดชมรมและ NR รัฐยืนยันการใช้งานยังคงอยู่ในระดับที่ต่ำกว่า ความเครียดเกลือยับยั้งชมรม แต่ชมรมแสดงให้เห็นว่าการเปลี่ยนแปลงรายวันคล้ายทั้ง HN และพืช LN อย่างไรก็ตามรัฐยืนยันการใช้งาน NR ไม่เปลี่ยนแปลงจากความเครียดเกลือในพืช LN (รูป. 2B). ในรากชมรมสูงใน HN กว่าในพืช LN และมันแสดงให้เห็นรูปแบบรายวันเดียวกับที่พบใน stemspetioles ชมรมแสดงให้เห็นจุดสูงสุด 3 ชั่วโมงหลังจากที่ไฟส่องสว่างทั้ง HN และพืช LN (รูป. 2A, B) ชมรมและ NR รัฐยืนยันการใช้งานแสดงการเปลี่ยนแปลงรายวันคล้าย ในทางตรงกันข้ามกับใบและลำต้น-ก้านใบความเครียดโซเดียมคลอไรด์กระตุ้นชมรมทั้งในและ HN LN รากพืช อย่างไรก็ตามรูปแบบรายวันยังคงคล้ายกับจุดสูงสุด 3 ชั่วโมงเข้าสู่ขั้นตอนแสง การเพิ่มขึ้นของชมรมรากจากความเครียดเกลือมีความสัมพันธ์กับการเพิ่มขึ้นของรัฐยืนยันการใช้งานยางธรรมชาติ (รูป. 2A, B). 2.2.2 NIR ไม่มีการเปลี่ยนแปลงรายวันในกิจกรรม reductase ไนไตรท์อยู่ที่เฉพาะเจาะจง (Nira) โดยไม่คำนึงถึงเนื้อเยื่อพืชที่ระบอบการปกครองของไนโตรเจนและการรักษาโซเดียมคลอไรด์ (ไม่ได้แสดงข้อมูล) ระบอบการปกครองของไนโตรเจนสูงเพิ่มขึ้น Nira ในใบลำต้น-ก้านใบและรากเทียบกับระบอบการปกครองของไนโตรเจนต่ำ (ตารางที่ 1) นอกเหนือจาก 100 มิลลิโซเดียมคลอไรด์ลดลงใบ Nira โดยประมาณ 15% ในพืช HN และ 30% ในพืช LN (ตารางที่ 1) ระดับ Nira ประมาณห้าเท่าเก้าเท่าและสูงกว่าในชมรม HN และ LN พืชใบตามลำดับ (รูป. 2A, B และตารางที่ 1) ในทั้งขนาดกลางไม่มีความเครียดเกลือเจ็บใจลดลงเล็กน้อย (10-12%) ของ Nira ใน ลำต้น-ก้านใบและราก Nira เป็น 10-20 เท่าสูงกว่าชมรมในลำต้น-ก้านใบและอย่างน้อย 10 เท่าสูงกว่าในชมรมราก (รูป. 2A, B และตารางที่ 1). 2.2.3 GS ในใบของพืช HN ที่กิจกรรม GS รวมแสดงให้เห็นว่ามีการเปลี่ยนแปลงรายวัน (รูป. 3A) กิจกรรม GS ยังคงสูงอยู่ในช่วงเวลาที่มืดและจะเริ่มลดลงก่อนที่จะมีจุดเริ่มต้นของระยะเวลาที่แสงระดับต่ำสุดที่ตรงกลางของโปรตีนแสง period.GS ที่ถูกตรวจพบเป็นเพียงไอโซฟอร์ม GS2 ในใบ (รูป. 4A) . ในระหว่างขั้นตอนแสงปริมาณโปรตีนสูงที่สุด GS เกี่ยวข้องกับกิจกรรม GS ในระดับสูงที่ 21 ชั่วโมง (รูป. 3A) นอกเหนือจากโซเดียมคลอไรด์ยับยั้งกิจกรรม GS รวมและการเปลี่ยนแปลงรายวันคล้ายกันพบว่าการแสดงระดับต่ำสุดที่ตรงกลางของระยะเวลาที่แสง กิจกรรม GS อย่างเคร่งครัดไม่ได้มีความสัมพันธ์กับโปรตีน GS ใน 6-12 ชั่วโมงหลังจากที่ไฟส่องสว่างกิจกรรม GS ถูกยับยั้งโดย 40-60% (รูปที่. 3A) ในขณะที่ปริมาณโปรตีน GS ลดลงเพียง 17% (รูปที่. 4A) กิจกรรม GS ใน LN ใบพืชน้อยแสดงให้เห็นการเปลี่ยนแปลงในระหว่างวัน/ คืนวงจร (รูป. 3B) และได้รับผลกระทบน้อยลงโดยความเค็มกว่าใน HN ใบพืช GS ระดับกิจกรรมมีความคล้ายคลึงกับผู้ที่ได้รับในใบจากพืชควบคุมHN ความเครียดลดลงโปรตีนเกลือ GS และกิจกรรมประมาณ35% ในโรงงาน LN ใบในช่วงชั่วโมงแรกของรอบระยะเวลาแสง (รูป. 4B). GS ตัดกันแสดงการเปลี่ยนแปลงในแต่ละวัน stemspetioles จากทั้ง HN และพืช LN (รูป. 3A, B) จีเอสสูงสุดกิจกรรมที่เกิดขึ้น 6 ชั่วโมงหลังจากไฟส่องสว่างแล้วก็ค่อย ๆ ลดลงจนสิ้นสุดระยะเวลาแสง กิจกรรม GS ได้ลดลงเล็กน้อยจากโซเดียมคลอไรด์ในพืชHN (รูป. 3A) ความเครียดเกลือเหนี่ยวนำให้เกิดการลดลงของกิจกรรมเด่นชัด GS ในพืช LN ในช่วงครึ่งหลังของช่วงเวลาแสง (รูป. 3B) รูปแบบที่คล้ายกันรายวันของกิจกรรม GS พบในรากจากพืช HN (รูป. 3A) กิจกรรมสูงระหว่างส่วนที่สองของช่วงเวลาที่แสงและลดลงในช่วงที่มีความก้าวหน้าในความมืด อย่างไรก็ตามในพืช LN, GS ต่ำในช่วงแสงและแสดงยอดต้นกิจกรรมในที่มืด 3 ชั่วโมงก่อนที่จะส่องสว่าง (รูป. 3B) นอกเหนือจากโซเดียมคลอไรด์ที่เพิ่มขึ้นในกิจกรรม GS รากที่มีรูปแบบคล้าย ๆ กันในแต่ละวัน HN และพืช LN (รูป. 3A, B). 2.2.4 กลูตาเมตเทสFD-GOGAT เป็นตัวแทนของรูปแบบที่สำคัญของเอนไซม์ในใบและกิจกรรม NADH-GOGAT คิดเป็นน้อยกว่า30% ของกิจกรรม FD-GOGAT (ไม่ได้แสดงข้อมูล) กิจกรรม fd-GOGAT แสดงการเปลี่ยนแปลงรายวัน (รูป. 3A) มันก็มีความก้าวหน้าเพิ่มขึ้นหลังจากที่ไฟส่องสว่างและถึงสูงสุดของกิจกรรมในช่วงครึ่งหลังของช่วงเวลาที่แสง (15-18 ชั่วโมง). FD-GOGAT ระดับกิจกรรมได้พร้อมกันกับเนื้อหาสูงโปรตีน FD-GOGAT สูงสุด (รูป. 4C) ระดับกิจกรรมระดับต่ำถูกวัดในเวลากลางคืนแม้จะมีสูง FD-GOGAT จำนวนโปรตีน การยับยั้งของกิจกรรม FD-GOGAT โซเดียมคลอไรด์โดยเกิดขึ้นในช่วงชั่วโมงแรกส่องสว่างต่อไปนี้ กิจกรรม fd-GOGAT ลดลง 40-60% มันมีความสัมพันธ์กับการลดลงประมาณ 30-50% โปรตีน FD-GOGAT. 2.2.5 dehydrogenase กลูตาเมต (GDH) ไม่มีการเปลี่ยนแปลงที่ชัดเจนในแต่ละวันกิจกรรม GDH ในเนื้อเยื่อพืช HN ได้ ได้รับการรักษาในโรง HN, NAD-GDH กิจกรรม deaminating ในใบถูกหกสูงกว่ากิจกรรม NADHGDH aminating (ตารางที่ 2) ในทางตรงกันข้ามกิจกรรม aminating ก็มักจะสูงกว่า deaminating กิจกรรมในพืช LN ใบ (รูปที่. 5) นอกเหนือจาก 100 มิลลิโซเดียมคลอไรด์ที่จะยับยั้งกิจกรรม HN กลาง deaminating โดยประมาณ 70% และกิจกรรม aminating เทพ (หก) (ตารางที่ 2) ในพืช LN รักษาโซเดียมคลอไรด์เหนี่ยวนำทั้งกิจกรรม aminating และ deaminating ในใบให้ยอดกิจกรรม aminating ที่เห็นได้ชัดในช่วงครึ่งหลังของวงจรไฟ (รูปที่. 5) ภายใต้ความเครียดเกลือพืช LN เก็บรักษาไว้ NADH-GDH / NAD-GDH อัตราส่วนในใบคล้ายกับผู้ที่อยู่ในพืชควบคุม (ตารางที่ 3) ในขณะที่อัตราส่วนนี้ได้รับการปรับปรุงในโรงงาน HN ใบ; มันก็เพิ่มขึ้นโดยการรักษาโซเดียมคลอไรด์ตั้งแต่ 0.2 ถึง 6 กิจกรรม aminating สูงกว่ากิจกรรม deaminating ในลำต้น-ก้านใบและรากโดยไม่คำนึงถึงระบอบการปกครองของไนโตรเจน (รูปที่. 5 และตารางที่ 2) ความเครียดโซเดียมคลอไรด์ยับยั้งกิจกรรม deaminating ในลำต้น-ก้านใบ (50-60%) และราก (30%) จากทั้ง HN และพืช LN ยกเว้นว่ากิจกรรม deaminating ในราก LN ได้รับการกระตุ้น กิจกรรม aminating ถูกกระตุ้นด้วยโซเดียมคลอไรด์ในลำต้น-ก้านใบและรากจาก LN และพืช HN (รูปที่. 5 และตารางที่ 2) เราคำนวณเกือบสามเท่าและการเพิ่มขึ้นสองเท่าใน aminating / การ deaminating อัตราส่วนลำต้นก้านใบจาก-HN และได้รับการรักษา LN พืชตามลำดับ (ตารางที่ 3) ก็สามารถที่จะตั้งข้อสังเกตว่ากิจกรรม aminating สูงถูกตรวจพบในรากจากการควบคุมเช่นเดียวกับการได้รับการรักษาพืช LN NADH-GDH / อัตราส่วน NAD-GDH ในรากพืช LN อยู่ในระดับสูงแม้จะมีความเครียดเกลือ(ตารางที่ 3)