3.1. Scanning electron microscopyMi

3.1. Scanning electron microscopy
Micrographs were obtained of sheets previously
immersed in chloroform for 24h in order to solubilize the
PLA and allowed observation of PLA regions in the TPS
matrix. Images were also taken of sheets not immersed in chloroform.
Fig. 1(a) shows the fracture micrograph of theTPS25/PLA sheet (section2.2) and
Fig.1(b)
shows the sheet
previouslyimmersed in chloroform. In Fig.1(a)
it is possible to observe the PLA domains (lighter) distributed in the TPS matrix (darker).
Fig. 1(b)
shows the voids previously occupied by PLA domains, characterizing the immiscibility
between the PLA and TPS. This behavior is associated with
the difference between the hygroscopicity of starch
(hydrophilic) and PLA (hydrophobic). These
findings verify the observations of a previous study of Müller et al.
[8]
.
Fig. 2
shows the surface micrographs of the TPS25/PLA
sheet uncoated (
Fig. 2
a), and coated by spraying (
Fig. 2
b)
or by immersion (
Fig. 2
c) with cross-linked chitosan.
Regardless of the coating process, the micrographs indicate a continuous covering of chitosan on the sheet surface.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

3.1. microscopy อิเล็กตรอนสแกนMicrographs ได้รับแผ่นก่อนหน้านี้ไปเพื่อ solubilize ในคลอโรฟอร์มใน 24 ชมปลาและสังเกตปลาภูมิภาคใน TPS ที่อนุญาตเมตริกซ์การ นอกจากนี้ยังได้นำภาพแผ่นไม่สัมผัสคลอโรฟอร์มFig. 1(a) แสดง micrograph กระดูกของแผ่น theTPS25/ปลา (section2.2) และFig.1(b)แสดงแผ่นงานpreviouslyimmersed ในคลอโรฟอร์ม ใน Fig.1(a)ได้สังเกตปลาโดเมน (ไฟแช็ก) กระจายในเมตริกซ์ TPS (เข้ม)Fig. 1(b)แสดง voids ก่อนหน้านี้ ครอบครอง โดยปลาโด กำหนดลักษณะของการ immiscibilityระหว่างปลาและ TPS ปัญหานี้เกี่ยวข้องกับความแตกต่างระหว่าง hygroscopicity ของแป้ง(hydrophilic) และปลา (hydrophobic) เหล่านี้ผลการวิจัยตรวจสอบสังเกตการณ์การศึกษาก่อนหน้านี้ของ Müller et al[8].Fig. 2แสดง micrographs ผิวของ TPS25/ปลาแผ่น(ไม่เคลือบFig. 2ก) และเคลือบ ด้วยการพ่น(Fig. 2b)หรือ โดยการแช่(Fig. 2c) ด้วยไคโตซาน cross-linkedโดยการเคลือบ micrographs ระบุครอบคลุมอย่างต่อเนื่องของไคโตซานบนพื้นผิวแผ่น

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

3.1 กล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอนไมโครได้รับแผ่นก่อนหน้านี้แช่อยู่ในคลอโรฟอร์มสำหรับ24 ชั่วโมงเพื่อที่จะละลายปลาและได้รับอนุญาตการสังเกตของภูมิภาคPLA ในพีเอสแมทริกซ์ ภาพที่ถูกนำแผ่นยังไม่ได้แช่อยู่ในคลอโรฟอร์ม. รูป 1 (ก) แสดงให้เห็น micrograph แตกหักของแผ่น theTPS25 / ปลา (section2.2) และรูปที่1 (ข) แสดงให้เห็นแผ่นpreviouslyimmersed ในคลอโรฟอร์ม ในรูปที่ 1 (ก) ก็เป็นไปได้ที่จะสังเกตโดเมน PLA (เบา) กระจายอยู่ในเมทริกซ์ TPS (เข้ม). รูป 1 (ข) แสดงให้เห็นถึงช่องว่างที่ถูกครอบครองโดยก่อนหน้านี้โดเมนปลาพัฒนาการ immiscibility ระหว่าง PLA และพีเอส ลักษณะการทำงานนี้มีความเกี่ยวข้องกับความแตกต่างระหว่างการดูดความชื้นของแป้งที่(น้ำ) และ PLA (น้ำ) เหล่านี้ผลการวิจัยตรวจสอบการสังเกตของการศึกษาก่อนหน้านี้Müller et al. [8]. รูป 2 แสดงให้เห็นพื้นผิวไมโครของ TPS25 / ปลาแผ่นเคลือบผิว(รูปที่. 2) และเคลือบโดยการฉีดพ่น (รูปที่. 2 ข) หรือโดยการแช่ (รูปที่2. ค) ที่มีไคโตซาน cross-linked. โดยไม่คำนึงถึงกระบวนการเคลือบ ไมโครบ่งบอกถึงการครอบคลุมอย่างต่อเนื่องของไคโตซานบนพื้นผิวแผ่น

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

3.1 . การสแกนกล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอน
micrographs ได้รับแผ่นก่อนหน้านี้
แช่ในคลอโรฟอร์มสำหรับ 24 ชั่วโมงเพื่อ solubilize
ปลาและให้สังเกตพฤติกรรมของปลาภูมิภาคใน TPS
เมทริกซ์ ภาพถูกถ่ายจากแผ่นไม่ได้แช่อยู่ในคลอโรฟอร์ม
รูปที่ 1 ( ก ) แสดงให้เห็นลักษณะของการแตกหัก thetps25 / ปลาแผ่น ( section2.2 ) ” ( B )


แสดงแผ่นpreviouslyimmersed ในคลอโรฟอร์ม ใน” ( A )
มันเป็นไปได้ที่จะสังเกตปลาโดเมน ( เบา ) แจกจ่ายใน TPS เมทริกซ์ ( เข้ม ) ( B )

รูปที่ 1 แสดงให้เห็นช่องว่างที่ก่อนหน้านี้ถูกครอบครองโดยปลาโดเมนลักษณะ immiscibility
ระหว่าง PLA และ TPS . พฤติกรรมนี้เกี่ยวข้องกับ
ความแตกต่างระหว่างการดูดความชื้นของแป้ง
( น้ำ ) และปลา ( Hydrophobic ) เหล่านี้
ผลการตรวจสอบตัวอย่างจากการศึกษาก่อนหน้านี้ของ M ü ller et al .
[ 8 ]
.
รูปที่ 2
micrographs แสดงพื้นผิวของแผ่นเคลือบผิว tps25 / ปลา

รูปที่ 2
) และพ่นเคลือบด้วย (
รูปที่ 2
b )

รูปที่ 2 โดยแช่หรือ
c ) กับเชื่อมโยงไค
ไม่ว่ากระบวนการเคลือบ , micrographs แสดงอย่างต่อเนื่องครอบคลุมของไคโตซานต่อพื้นผิวแผ่น