Use of bioactive substances such as

Use of bioactive substances such as chitosan to con-
trol post-harvest fungal disease has attracted much
attention due to imminent problems associated with
chemical agents, which include development of public
resistance to fungicide-treated produce, and increasing
the number of fungicide tolerant post-harvest pathogens
and a number of fungicides that are still under obser-
vation [18]. Chitosan reduces the in vitro growth of
numerous fungi with the exception Zygomycetes, i.e the
fungi containing chitosan as a major component of its cell walls [53]. In addition to the formation of gas
permeable Rlms, chitosan has a dual function, that is
direct interference of fungal growth and activation of
several defense processes [54]. These defense mechan-
isms include accumulation of chitinases, synthesis of
proteinase inhibitors, and ligniRcation and induction of
callous synthesis [55].
The antifungal e€ect of chitosan on in vitro growth of
common post-harvest fungal pathogens in strawberry
fruits was studied by El Ghaouth et al. [18]. According
to that study, chitosan (with 7.2% NH2) reduced
markedly the radial growth of Botrytis cinerea and Rhi-
zopus stolonifer, with a greater e€ect at higher con-
centrations. These authors further conRrmed the
importance of a large number of alternating positively
charged groups along the length of the polymer chain
because low antifungal activity was observed with N,O-
carboxymethylchitosan compared with that of chitosan
itself [18]. In an in vivo study, El Ghaouth et al. [55]
reported signs of infection in chitosan-coated fruits after
5 days of storage at 13C compared with 1 day for the
control treatment. After 14 days of storage, chitosan
coating at 15 mg/mL reduced decay of strawberries
caused by the same fungi by more than 60%, and also
observed that coated fruits ripened normally and did
not show any apparent sign of phytotoxicity. In another
study, Fang et al. [20] reported the preservative e€ect of
chitosan on low-sugar candied kumquat (fruit). The
growth of Aspergillus niger was inhibited by the addi-
tion of chitosan (0.1}5 mg/mL) to the medium (pH 5.4),
whereas at less than 2 mg/mL chitosan was not e€ective
in inhibiting mold growth and aPatoxin production by
Aspergillus parasiticus. In a similar study, Cuero et al.
[48] observed that N-carboxymethylchitosan reduced
aPatoxin production in A. Pavus and A. parasiticus by
more than 90% while fungal growth was reduced to less
than half. Savage and Savage [56] also reported that
apples coated with chitosan reduced the incidence of
molds occuring on the apples over a period of 12 weeks.
A study carried out on chitosan coating for the inhibi-
tion of Sclerotinia rot of carrot showed that the inci-
dence of rotting was signiRcantly reduced (from 88 to
28%) by coating carrot roots with 2 or 4% chitosan
[57]. Chitosan also induced a plant-defense enzyme,
chitinase, in plant tissues, which degrades fungal cell
walls [58], and induced the accumulation of the anti-
fungal phytoalexin pisatin in pea pods [59, 60]. These
results suggest that coating fruits and vegetables with
chitosan or its derivatives may have some positive
advantages for long term storage of these foods.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ใช้สารกรรมการกเช่นไคโตซานกับคอน-โรคเชื้อราหลังการเก็บเกี่ยว trol ได้ดึงดูดมากความสนใจเนื่องจากปัญหาที่เกี่ยวข้องกับพายุฝนฟ้าคะนองตัวแทนเคมี ซึ่งรวมถึงการพัฒนาของประชาชนความต้านทานต่อสารเคมีรับผลิต และเพิ่มขึ้นจำนวนโรคหลังเก็บเกี่ยวทนกับสารเคมีและจำนวนซึ่งเกิดจากเชื้อที่ยังอยู่ใต้ obser-vation [18] ไคโตซานช่วยลดการเจริญเติบโตการเพาะเลี้ยงของเชื้อรายกเว้น Zygomycetes จำนวนมาก อาทิการเชื้อราที่ประกอบด้วยไคโตซานเป็นส่วนประกอบสำคัญของผนังเซลล์ของ [53] นอกจากการก่อตัวของก๊าซpermeable Rlms ไคโตซานมีสองฟังก์ชัน คือสัญญาณรบกวนโดยตรงของการเจริญเติบโตของเชื้อราและเปิดใช้งานหลายป้องกันกระบวนการ [54] เหล่านี้ป้องกัน mechan-isms รวมสะสมของ chitinases สังเคราะห์proteinase inhibitors และ ligniRcation และการเหนี่ยวนำของไม่รู้สึกสังเคราะห์ [55]อีอาการ €ect ของไคโตซานในการเพาะเลี้ยงการเจริญเติบโตของทั่วไปหลังการเก็บเกี่ยวโรคเชื้อราในสตรอเบอร์รี่ผลไม้ถูกศึกษาโดย El Ghaouth et al. [18] ตามการศึกษาที่ ไคโตซานกับ 7.2% NH2) ลดลงอย่างเด่นชัดการเติบโตรัศมีของ Botrytis cinerea และ Rhizopus stolonifer กับอีมากกว่า €ect ที่สูงคอน -centrations ผู้เขียนเหล่านี้เพิ่มเติม conRrmedความสำคัญของจำนวนบวกสลับคิดกลุ่มตามความยาวของโซ่พอลิเมอร์เนื่องจากมีสังเกตกิจกรรมต่ำต้านเชื้อรา ด้วย N, O -carboxymethylchitosan เปรียบเทียบกับไคโตซานเอง [18] ในการศึกษาในสัตว์ทดลอง เอล Ghaouth et al. [55]รายงานสัญญาณในไคโตซานเคลือบผลไม้หลังจากการติดเชื้อ5 วันของการจัดเก็บที่ 13 C เมื่อเทียบกับ 1 วันควบคุมรักษา หลังจาก 14 วันของการจัดเก็บ ไคโตซานเคลือบที่ 15 mg/mL ลดการผุของสตรอเบอร์รี่เกิดจากเชื้อราเหมือนกัน โดยมากกว่า 60% และสังเกตว่า เคลือบผลไม้สุกปกติ และไม่ได้ไม่แสดงสัญญาณใด ๆ ชัดเจนของ phytotoxicity ในอีกศึกษา al. et ฟาง [20] รายงานการอี preservative €ect ของไคโตซานบนต่ำน้ำตาลตกผลึกอย่างไร kumquat (ผลไม้) ที่เจริญเติบโตของ Aspergillus ไนเจอร์ถูกห้าม โดย addi-สเตรชันของไคโตซาน (0.1 } 5 mg/mL) ปานกลาง (pH 5.4),ในขณะที่น้อยกว่า 2 มิลลิกรัม/มิลลิลิตร ไคโตซานไม่ใช่ e€ ectiveใน inhibiting ราเจริญเติบโตและการผลิต Patoxin โดยAspergillus parasiticus ในการคล้ายศึกษา Cuero et al[48] สังเกตว่า N-carboxymethylchitosan ลดลงการผลิต Patoxin A. Pavus และ A. parasiticus โดยมากกว่า 90% ในขณะที่เชื้อราเจริญเติบโตที่ลดน้อยลงกว่าครึ่งหนึ่ง Savage และ Savage [56] ยังรายงานว่าแอปเปิ้ลที่เคลือบ ด้วยไคโตซานลดอุบัติการณ์ของแม่พิมพ์เกิดบนแอปเปิ้ลเป็นระยะเวลา 12 สัปดาห์การศึกษาที่ดำเนินการบนเคลือบไคโตซานสำหรับ inhibi-สเตรชันของเน่า Sclerotinia ของแครอทพบว่า inci-dence ของหึ่งถูกลดลง (จาก 88 ไป signiRcantly28%) โดยเคลือบรากแครอท ด้วยไคโตซาน 2 หรือ 4%[57] . ไคโตซานยังทำให้เกิดการป้องกันพืชเอนไซม์chitinase ในเนื้อเยื่อพืช การเสื่อมเซลล์เชื้อราผนัง [58], และทำให้เกิดการสะสมของ anti -pisatin phytoalexin เชื้อราในถั่วฝัก [59, 60] เหล่านี้ผลแนะนำว่า เคลือบผลไม้และผักด้วยไคโตซานหรืออนุพันธ์อาจมีบวกบางข้อดีสำหรับระยะยาวเก็บอาหารเหล่านี้

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

การใช้สารออกฤทธิ์ทางชีวภาพเช่นไคโตซานไปจึงดู
trol โรคหลังการเก็บเกี่ยวของเชื้อราได้ดึงดูดมาก
ให้ความสนใจเนื่องจากปัญหาใกล้เข้ามาเกี่ยวข้องกับ
สารเคมีซึ่งรวมถึงการพัฒนาของประชาชน
ความต้านทานต่อการผลิตสารกำจัดเชื้อรารับการรักษาและเพิ่ม
จำนวนโพสต์ใจกว้างเชื้อรา เชื้อโรคเก็บเกี่ยว
และจำนวนสารฆ่าเชื้อราที่ยังคงอยู่ภายใต้การ obser-
vation [18] ไคโตซานช่วยลดในหลอดทดลองการเจริญเติบโตของ
เชื้อราจำนวนมากที่มีข้อยกเว้น Zygomycetes คือ
เชื้อราที่มีไคโตซานเป็นองค์ประกอบที่สำคัญของผนังเซลล์ของ [53] นอกเหนือไปจากการก่อตัวของก๊าซ
Rlms ดูดซึมไคโตซานมีฟังก์ชั่นที่สองที่มี
การแทรกแซงโดยตรงจากการเจริญเติบโตของเชื้อราและการทำงานของ
กระบวนการป้องกันหลาย [54] แรงเชิงกลป้องกันเหล่านี้
ISMS รวมถึงการสะสมของ chitinases สังเคราะห์
ยับยั้งและ ligniRcation และการชักนำของ
การสังเคราะห์ใจแข็ง [55].
อี€เชื้อรา ect ของไคโตซานในหลอดทดลองการเจริญเติบโตของ
เชื้อโรคเชื้อราหลังการเก็บเกี่ยวที่พบบ่อยในสตรอเบอร์รี่
ผลไม้ที่ได้รับการศึกษาโดย El Ghaouth et al, [18] ตาม
การศึกษาที่ไคโตซาน (กับ 7.2% NH2) ลดลง
อย่างเห็นได้ชัดการเจริญเติบโตในแนวรัศมีของ Botrytis ซีเนเรียและ Rhi-
zopus stolonifer กับอีมากขึ้น€ ect ที่สูงขึ้นอย่างต่อ
centrations ผู้เขียนเหล่านี้ต่อไป conRrmed
ความสำคัญของการเป็นจำนวนมากสลับบวก
กลุ่มเรียกเก็บตามความยาวของห่วงโซ่พอลิเมอ
เนื่องจากกิจกรรมต้านเชื้อราต่ำพบว่ามี N, O-
carboxymethylchitosan เมื่อเทียบกับที่ของไคโตซานที่
ตัวเอง [18] ในการศึกษาในร่างกาย, El Ghaouth et al, [55]
รายงานสัญญาณของการติดเชื้อในผลไม้เคลือบไคโตซานหลังจาก
5 วันของการจัดเก็บที่ 13 องศาเซลเซียสเมื่อเทียบกับ 1 วันสำหรับ
การรักษาควบคุม หลังจาก 14 วันของการจัดเก็บไคโตซาน
เคลือบที่ 15 มิลลิกรัม / มิลลิลิตรลดการสลายตัวของสตรอเบอร์รี่
ที่เกิดจากเชื้อราเดียวกันโดยกว่า 60% และยัง
ตั้งข้อสังเกตว่าผลไม้เคลือบสุกตามปกติและไม่
ได้แสดงสัญญาณใด ๆ ที่ชัดเจนของพิษ อีก
การศึกษาฝาง et al, [20] รายงาน ect อี€สารกันบูดของ
ไคโตซานต่อน้ำตาลต่ำหวาน Kumquat (ผลไม้)
การเจริญเติบโตของเชื้อรา Aspergillus ไนเจอร์ถูกยับยั้งโดยแก้ที่ดีนอกจาก
การของไคโตซาน (0.1 ??} 5 มิลลิกรัม / มิลลิลิตร) กลาง (pH 5.4)
ในขณะที่น้อยกว่า 2 มิลลิกรัม / มิลลิลิตรไคโตซานไม่ได้ e € ective
ในการยับยั้งการเจริญเติบโตของเชื้อรา และ ?? Patoxin ผลิตโดย
เชื้อรา Aspergillus parasiticus ในการศึกษาที่คล้ายกัน Cuero et al.
[48] ข้อสังเกตว่า N-carboxymethylchitosan ลดลง
?? Patoxin ในการผลิตเอ ?? Pavus และ A. parasiticus โดย
มากกว่า 90% ในขณะที่การเจริญเติบโตของเชื้อราได้รับการลดลงน้อย
กว่าครึ่งหนึ่ง และโหดโหด [56] นอกจากนี้ยังมีรายงานว่า
แอปเปิ้ลเคลือบด้วยไคโตซานลดอุบัติการณ์ของ
แม่พิมพ์ที่เกิดขึ้นในแอปเปิ้ลในช่วง 12 สัปดาห์ที่ผ่านมา.
การศึกษาดำเนินการในการเคลือบไคโตซานเพื่อ inhibi-
การเน่า Sclerotinia แครอทแสดงให้เห็นว่า Inci -
มั่นใจของเน่าเปื่อยก็ลดลง signiRcantly (จาก 88 กับ
28%) โดยการเคลือบรากแครอทมี 2 หรือ 4% ไคโตซาน
[57] ไคโตซานยังเหนี่ยวนำเอนไซม์จากพืชป้องกัน
ไคติเนสในเนื้อเยื่อพืชซึ่งลดเซลล์เชื้อรา
ผนัง [58] และเหนี่ยวนำให้เกิดการสะสมของสารต้าน
pisatin phytoalexin เชื้อราในถั่วฝัก [59, 60] เหล่านี้
ชี้ให้เห็นว่าผลการเคลือบผักและผลไม้ที่มี
ไคโตซานหรืออนุพันธ์อาจจะมีบวกบาง
ข้อได้เปรียบสำหรับการจัดเก็บระยะยาวของอาหารเหล่านี้

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

การใช้สารออกฤทธิ์ทางชีวภาพ เช่น ไคโตซาน -
trol con หลังการเก็บเกี่ยวโรคเชื้อราได้ดึงดูดความสนใจมาก

เนื่องจากข ปัญหาที่เกี่ยวข้องกับสารเคมี ซึ่งรวมถึงการพัฒนาความต้านทานต่อสารเคมีประชาชน

รับผลิตและเพิ่มจำนวนสารเคมีใจกว้างหลังการเก็บเกี่ยวเชื้อโรค
และหมายเลขของสารเคมีนั้น อยู่ภายใต้ obser -
สังเกต [ 18 ]ไคโตซาน ลดการเจริญเติบโตของเชื้อราในหลอดทดลองที่มีข้อยกเว้นมากมาย

zygomycetes เช่นเชื้อราที่มีไคโตซานเป็นองค์ประกอบหลักของผนังเซลล์ของ [ 53 ] นอกจากการ rlms แก๊ส
permeable , ไคโตซานมีฟังก์ชั่นที่สอง นั่นคือ
รบกวนโดยเชื้อราและเปิดใช้งานของ
ป้องกันหลายกระบวนการ [ 54 ] เหล่านี้ป้องกันกลศาสตร์ -
ด้าน ได้แก่ การสะสมของโปรตีนยับยั้งเอนไซม์ไคติเนส การสังเคราะห์
และ lignircation induction ของ
ใจดำสังเคราะห์ [ 55 ] .
โลกของไคโตซานต่อเชื้อราและ ect ในหลอดทดลอง การเจริญเติบโตของเชื้อราเชื้อโรคทั่วไป
หลังการเก็บเกี่ยวผลไม้สตรอเบอรี่
ศึกษาโดย El ghaouth et al . [ 18 ] ตาม
ศึกษาว่า ไคโตซาน ( 7.2% nh2
) ลดลงอย่างเด่นชัด รัศมีการ Botrytis cinerea และรี -
zopus stolonifer กับลูกค้ามากขึ้นและ ect ระดับคอน -
centrations . ผู้เขียนเหล่านี้ต่อไป conrrmed
ความสำคัญของจํานวนสลับบวก
เรียกกลุ่มตามความยาวของสายโซ่พอลิเมอร์
เพราะฤทธิ์ต้านราต่ำ ) กับ N , O -
carboxymethylchitosan เมื่อเทียบกับที่ของไคโตซาน
เอง [ 18 ]ในการศึกษาในสัตว์ทดลอง เอล ghaouth et al . [ 55 ]
รายงานสัญญาณของการติดเชื้อในผลไม้ที่เคลือบด้วยไคโตแซนหลังจาก
5 วันของกระเป๋าที่ 13  C เมื่อเทียบกับ 1 วัน
รักษาควบคุม หลังของกระเป๋า 14 วัน ไคโตซานเคลือบ
ที่ 15 มก. / มล. ลดการสลายตัวของสตรอเบอร์รี่
เกิดจากเชื้อราเดียวกันมากกว่า 60 เปอร์เซ็นต์ และยังพบว่าผลไม้สุกตามปกติ

และเคลือบไม่แสดงเครื่องหมายใด ๆที่ชัดเจนของเขต . ในอีกการศึกษา
ฟาง et al . [ 20 ] รายงานสารกันบูด E ด้าน ect ของ
ไคโตซานต่อน้ำตาลต่ำหวานส้มจี๊ด ( ผลไม้ )
การเจริญเติบโตของเชื้อรา Aspergillus niger ถูกยับยั้งโดย addi -
tion ของไคโตซาน ( 0.1 ? } 5 mg / ml ) กลาง ( pH 5.4 )
ส่วนที่น้อยกว่า 2 มก. / มล. และไคโตซาน ไม่ใช่ด้าน ective
ยับยั้งการเจริญเติบโตและการผลิตแม่พิมพ์ patoxin โดย
?Aspergillus ผู้ดูแล . ในการศึกษาที่คล้ายกัน cuero et al .
[ 48 ] สังเกตได้ว่า n-carboxymethylchitosan ลดลง : ? patoxin การผลิตใน A และ A . ? pavus ผู้ดูแลโดย
กว่า 90% ในขณะที่การเจริญเติบโตก็ลดลงน้อยลง
มากกว่าครึ่ง โหดร้ายและป่าเถื่อน [ 56 ] ยังรายงานว่า
แอปเปิ้ลที่เคลือบด้วยไคโตซาน ลดการเกิดเชื้อราเกิดขึ้นบนแอปเปิ้ล
ตลอดระยะเวลา 12 สัปดาห์
การศึกษาเกี่ยวกับไคโตซานเคลือบสำหรับ inhibi -
tion ของ sclerotinia เน่าของแครอท พบว่า inci -
dence ของเน่าก็ signircantly ลดลง ( จาก 88

28 % ) โดยเคลือบแครอทรากด้วย 2 หรือ 4 % ไคโตซาน
[ 57 ] ไคโตซานยังทำให้พืชป้องกันเอนไซม์ ,
( ในเนื้อเยื่อพืช ซึ่งบั่นทอนเชื้อราผนังเซลล์
[ 58 ] และเกิดการสะสมของ anti -
เฮเลนแห่งทรอย pisatin เชื้อราในถั่วฝัก [ 59 , 60 ) ผลลัพธ์เหล่านี้
แนะนำให้เคลือบผักและผลไม้ด้วย
หรืออนุพันธ์ไคโตซานอาจจะมีบางข้อได้เปรียบบวก
เก็บอาหารเหล่านี้ในระยะยาว