The purification process consists of three main steps:
extraction, addition of precipitant, and cooling crystallization.
After each step, any solid and liquid phases are separated by
centrifugation and characterized. For all experiments centrifugation was carried out with an acceleration of 20 000 g for
10 min and at a temperature set to that of the preceding step in
the separation process in order to avoid any additional
temperature effects.
Extraction was carried out in a temperature controlled
100 mL beaker. 10 g of JBM were suspended in 50 mL of solvent.
The solvents employed were (1) 32% (v/v) acetone in deionised
water as used bySumner and Hand (1928), (2) 32% (v/v) acetone
in 0.1 M phosphate buffer at pH 7, (3) deionised water, and (4)
0.1 M phosphate buffer at pH 7. The protein solution was
stirred for up to 7 min using a motorised overhead stirrer
operating at 800 rpm equipped with a paddle type radial
impeller. After the extraction the suspension was separated by
centrifugation. A total of three successive extractions steps,
each with a fresh aliquot of solvent, were carried out for each
JBM sample. In those experiments using solvents (3) and (4),
acetone was added later to the first extract after separation of
the solid and liquid fractions and to a final concentration of
32% (v/v). In order to avoid local supersaturation and a
potential degradation of urease, 1 mL of acetone was added
every 5 s under constant stirring until the required concentration was reached.
Cooling crystallization was carried out in a cold room. The
solutions were allowed to cool naturally from the extraction
temperature (28 8C except for experiments to optimise the
extraction procedure described elsewhere; Weber et al., 2005)
to the temperature of the cold room (4 8C). The cooling rate was
not monitored. The crystallization temperature of 4 8C was
reached after a short period of time and was maintained for
the remainder of the experiment. Seeding techniques were not
employed and the solutions were not agitated during the
crystallization process. Irrespective of the initial protein
concentration as determined by the extraction procedure, a
residence time of 2 days was allowed before sampling for
crystals in all cases. During this time the protein solution was
periodically checked for precipitate by optical microscopy.
After formation of a precipitate, this was separated from the
solution and both liquid and solid phases were characterized.
Extraction and crystallization experiments were also
carried out in the presence of three additives, 2-mercaptoethanol, nickel sulfate and ethylenediamine tetraacetate. The procedure employed was identical to that described
above. The concentrations of 2-mercaptoethanol ranged from
0.05 to 0.3 M, for NiSO4 the concentration was 0.5 M and for
EDTA a concentration of 0.1 M was used.
The purification process consists of three main steps:extraction, addition of precipitant, and cooling crystallization.After each step, any solid and liquid phases are separated bycentrifugation and characterized. For all experiments centrifugation was carried out with an acceleration of 20 000 g for10 min and at a temperature set to that of the preceding step inthe separation process in order to avoid any additionaltemperature effects.Extraction was carried out in a temperature controlled100 mL beaker. 10 g of JBM were suspended in 50 mL of solvent.The solvents employed were (1) 32% (v/v) acetone in deionisedwater as used bySumner and Hand (1928), (2) 32% (v/v) acetonein 0.1 M phosphate buffer at pH 7, (3) deionised water, and (4)0.1 M phosphate buffer at pH 7. The protein solution wasstirred for up to 7 min using a motorised overhead stirreroperating at 800 rpm equipped with a paddle type radialimpeller. After the extraction the suspension was separated bycentrifugation. A total of three successive extractions steps,each with a fresh aliquot of solvent, were carried out for eachJBM sample. In those experiments using solvents (3) and (4),acetone was added later to the first extract after separation ofthe solid and liquid fractions and to a final concentration of32% (v/v). In order to avoid local supersaturation and apotential degradation of urease, 1 mL of acetone was addedevery 5 s under constant stirring until the required concentration was reached.Cooling crystallization was carried out in a cold room. Thesolutions were allowed to cool naturally from the extractiontemperature (28 8C except for experiments to optimise theextraction procedure described elsewhere; Weber et al., 2005)to the temperature of the cold room (4 8C). The cooling rate wasnot monitored. The crystallization temperature of 4 8C wasreached after a short period of time and was maintained forthe remainder of the experiment. Seeding techniques were notemployed and the solutions were not agitated during thecrystallization process. Irrespective of the initial proteinconcentration as determined by the extraction procedure, aresidence time of 2 days was allowed before sampling forcrystals in all cases. During this time the protein solution wasperiodically checked for precipitate by optical microscopy.After formation of a precipitate, this was separated from thesolution and both liquid and solid phases were characterized.Extraction and crystallization experiments were alsocarried out in the presence of three additives, 2-mercaptoethanol, nickel sulfate and ethylenediamine tetraacetate. The procedure employed was identical to that describedabove. The concentrations of 2-mercaptoethanol ranged from0.05 to 0.3 M, for NiSO4 the concentration was 0.5 M and forEDTA a concentration of 0.1 M was used.
การแปล กรุณารอสักครู่..

ที่ Puri ในกระบวนการจึงประกอบด้วยสามขั้นตอนหลัก :
การสกัด และหุนหันพลันแล่น และการระบายความร้อน
หลังจากแต่ละขั้นตอนใดขั้นตอนที่เป็นของแข็งและของเหลวจะถูกแยกออกโดย
ปั่นเพียง สำหรับการทดลองทำการปั่นด้วยการเร่งความเร็วของ 20 000 g
10 นาทีและที่อุณหภูมิตั้งไว้ที่ของขั้นตอนก่อนหน้านี้ใน
การแยกกระบวนการเพื่อหลีกเลี่ยงผลกระทบของอุณหภูมิเพิ่มเติม
.
สกัดออกมาควบคุมอุณหภูมิ
บีกเกอร์ 100 ml . 10 กรัม jbm หยุดชั่วคราวใน 50 มิลลิลิตร สารละลายที่ใช้เป็นตัวทำละลาย
( 1 ) 32 เปอร์เซ็นต์ ( v / v ) อะซิโตนใน deionised
น้ำที่ใช้ bysumner และมือ ( 2471 ) , ( 2 ) 32 เปอร์เซ็นต์ ( v / v )
) 0.1 M ฟอสเฟตบัฟเฟอร์ pH 7 3 deionised น้ำ ) และ ( 4 )
01 M ฟอสเฟตบัฟเฟอร์ pH 7 โปรตีนในสารละลาย
กวนนานถึง 7 นาที โดยใช้มอเตอร์ ค่าใช้จ่าย 800 รอบต่อนาทีหมุน
ปฏิบัติการที่ติดตั้งใบพัดแบบเรเดียล
ใบพัด . หลังจากการสกัดการแยกโดย
3 . ทั้งหมดสามต่อเนื่องสกัดขั้นตอน
แต่ละกับส่วนลงตัวสดของตัวทำละลาย พบว่าในแต่ละ
jbm ตัวอย่างในการทดลองที่ใช้ตัวทำละลาย ( 3 ) และ ( 4 ) ,
) ถูกเพิ่มเข้ามาในภายหลังเพื่อสกัดจึงตัดสินใจเดินทางหลังจากแยก
เศษส่วนที่เป็นของแข็งและของเหลวและการถ่ายทอด นาล ความเข้มข้นของ
32 เปอร์เซ็นต์ ( v / v ) เพื่อหลีกเลี่ยงต่ำท้องถิ่นและการย่อยสลายของที่มีศักยภาพ
,
1 มิลลิลิตร สำหรับเพิ่มทุก 5 s ภายใต้การควบคุมที่กวนจนต้องใช้สมาธิมงคล
เย็นทำให้เป็นรูปธรรมได้ออกมาพักให้เย็น
โซลูชั่นได้รับอนุญาตให้เย็นตามธรรมชาติจากอุณหภูมิในการสกัด
( 28 8C ยกเว้นการทดลองเพื่อเพิ่มประสิทธิภาพ
ขั้นตอนการสกัดอธิบายที่อื่น ; เวเบอร์ et al . , 2005 )
ให้อุณหภูมิในห้องเย็น ( 8B ) อัตราความเย็นคือ
ไม่ตรวจสอบ การตกผลึกที่อุณหภูมิ 4 8C คือ
ถึงหลังจากช่วงเวลาสั้นของเวลาและมีการรักษาสำหรับ
ส่วนที่เหลือของการทดลอง การใช้เทคนิคไม่ได้
และโซลูชั่นไม่ปั่นป่วนในระหว่าง
กระบวนการการตกผลึก โดยไม่คำนึงถึงการโปรตีน
ความเข้มข้นตามที่กําหนด โดยขั้นตอนการสกัด ,
ระยะเวลา 2 วันได้รับอนุญาตก่อนที่คน
ผลึกในทุกกรณีในช่วงเวลานี้ โปรตีนในสารละลายเป็นระยะๆการตรวจสอบและโดยแสง
ใช้หลังจากการก่อตัวของตะกอนนี้ถูกแยกออกจาก
โซลูชั่นและทั้งของเหลวและของแข็งขั้นตอนการสกัดและการตกผลึกเป็นลักษณะ .
ซึ่งยังดำเนินการต่อหน้าสามสาร , อย่างเดียว , ซัลเฟตนิกเกิลลลีนไดแอม tetraacetate .ขั้นตอนการใช้ก็เหมือนกับที่อธิบาย
ข้างบน ความเข้มข้นของอย่างเดียวค่า
0.05 0.3 เมตร สำหรับ niso4 ความเข้มข้น 0.5 m และ EDTA ความเข้มข้น 0.1 M
ถูกใช้
การแปล กรุณารอสักครู่..
