4. DiscussionEarly spotting in cv.

4. Discussion

Early spotting in cv. Sucrier banana was not suppressed by treatments with compounds that are normally effective

against postharvest fungal diseases in banana fruit, such as benomyl, carbendazim and prochloraz. These chemicals were used as preharvest or as postharvest applications. The results might indicate that the spotting is not due to late infection by fungi. However, the experiments seem inadequate proof for the idea that a fungus or other microorganism is not involved in early spotting. The spotting might be due, at least the- oretically, to a latent infection beneath the peel, which is not inhibited by an antifungal spray on the peel surface. We previously used the term ‘senescent’ spotting for the early peel spotting in cv. Sucrier banana (Choehom et al., 2004; Uthaichay et al., 2005). This might be interpreted to imply that spotting is not due to a pathogen. To avoid this ambiguity, we have now chosen to drop the term ‘senescent’. Keeping the banana fruit at lower than ambient temperature decreased peel spotting. This effect may be due to a temperature effect on enzyme activity. Holding the fruit at a lower temperature also resulted in slower changes in peel colour, firmness and in the decrease of starch and the increase in soluble sugar. The data show that ripening was delayed at lower temperatures,
and that there was, at the lower temperatures used (12–18 ◦C,
rather than 28–30 ◦C), no chilling injury.
Peel spotting was effectively blocked by holding the fruit at 12 ◦C, the lowest storage temperature for ‘Sucrier’ bananas
that does not induce chilling injury. The results indicate, therefore, that it is possible to prevent most peel spotting even until display in the supermarkets, provided that the product




Fig. 3. Phenylalanine ammonia lyase activities in the peel of cv. Sucrier bananas. (A) Fruit held continuously at room temperature (∗), 18 ◦C ( ) or 12 ◦C ( ). (B) Fruit held continuously at room temperature (∗) or 12 ◦C ( ), held at room temperature for 2 days and then transferred to 12 ◦C ( ) or first held at 12 ◦C for 4 days and then transferred to room temperature ( ) at the time indicated by arrows. Room temperature was 26–27 ◦C. The bar
shows LSD at P = 0.01.
is stored at about 12 ◦C. At these temperatures, however, the peel will not show yellowing. After the product is brought to the home of the consumer, assuming that no further refriger- ation is applied, the spotting will show very quickly and the peel is likely to become more yellow.
Bananas held at room temperature (25–27 ◦C), or at 18,
15 and 12 ◦C showed weight loss of 19, 6, 6 and 4%, respec-
tively, at the end of study period (Table 3). The differences

Table 3
Percentage of weight loss of bananas held continuously at room temperature,
18, 15 and 12 ◦ C
Treatment (◦C) Weight loss (%)a

Days after colour index 3–4


Fig. 4. Polyphenol oxidase activities in the peel of cv. Sucrier bananas. (A) Fruit held continuously at room temperature (∗), 18 ◦C ( ) or 12 ◦C ( ). (B) Fruit held continuously at room temperature (∗) or 12 ◦C ( ), held at room temperature for 2 days and then transferred to 12 ◦C ( ) or first held at 12 ◦C for 4 days and then transferred to room temperature ( ) at the time indicated by arrows. Room temperature was 26-27 ◦C. The bar shows LSD
at P = 0.01.



in weight losses were not correlated with peel spotting. Our previous data had also indicated that weight loss was not a cause of peel spotting. Although spotting was prevented even at ambient temperature, if the fruit was held at RH close to
100% (Choehom et al., 2004), other experiments showed that at RH between 65 and 95% spotting was independent of RH (Uthaichay et al., 2005). In the present study the RH, and the associated vapour pressure deficits, fell within the range studied by Uthaichay et al. (2005).
We did not find evidence for a role of PAL or PPO in early peel spotting. PPO is the enzyme that usually causes brown- ing in plants. It uses a pool of free phenolic acids and PAL may replete this pool (Mayer and Harel, 1979; Martinez and








a Means comparison within columns by least significant difference at
P = 0.05.
* Significant at P = 0.05.
** Significant at P = 0.01.

resent in vivo activity. However, even when using dopamine as a substrate, Weaver and Charley (1974) reported that there was no relationship between PPO activity and browning of the banana pulp. The present data tend to confirm this. Using

catechol as a substrate, we previously also found a very low correlation coefficient between PPO activities and peel spot- ting (Choehom et al., 2004).
In the present experiments we observed a positive rela- tionship between the level of total free phenolics and peel spotting (0.88). It is at present unclear what this correla- tion signifies. It is not known if accumulation of pheno- lics is a cause or a result of the reaction leading to the spotting.
PAL catalyzes the first step in the production of pheno- lic compounds, using the shikimate pathway (Camm and Towers, 1973). We have now observed a poor relationship between peel spot and PAL activity in banana peel, indi- cating that PAL activity is not rate limiting. This is in contrast with our previous data (Choehom et al., 2004), which suggested that PAL might be involved in the browning reaction.
It is concluded that peel spotting in banana peel is effec- tively prevented by holding the fruit at 12 ◦C. Since no rela-
tionship was observed between spotting and the activities of PAL or PPO, these enzymes may not be rate limiting. Mod- ulating their activity does not seem promising, therefore, to reduce the disorder.


Acknowledgement

The research was financially supported by the Thailand
Research Fund (TRF).


References

Bradford, M.M., 1976. A rapid and sensitive method for the quanti- tation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein–dye binding. Anal. Biochem. 72, 248–254.
Camm, E.C., Towers, G.H.N., 1973. Phenylalanine ammonia lyase. Phy- tochemistry 12, 961–973.

Chaitrakulsap, T., 1980. Changes in nitrogen and carbohydrate contents in leaves and shoots of lychee cv Hong Huay in round-year. M.S. Thesis. Kasetsart University, Bangkok.
Choehom, R., Ketsa, S., van Doorn, W.G., 2004. Senescent spotting of banana peel is inhibited by modified atmosphere packaging. Posthar- vest Biol. Technol. 31, 167–175.
Griffiths, L.A., 1961. Relationship between 3,4-dihydroxyphenyl- ethylamine content and the genome of Musa acuminata. Nature 192,
84–85.
Hodge, J.E., Holfreither, M., 1962. Determination of reducing sugars and carbohydrates. In: Whilster, R.L., Wolfron, M.L. (Eds.), Meth- ods in Carbohydrate Chemistry, vol. 1. Academic Press, New York, pp. 380–394.
Kanazawa, K., Sakakibara, H., 2000. High content of dopamine, a strong antioxidant, in Cavendish banana. J. Agric. Food Chem. 48, 844–848. Ketsa, S., 2000. Development and control of senescent spotting in banana.
Food Preserv. Sci. 26, 173–178.
Lizada, M.C.C., Pantastico, E.B., Shukor, A.R., Sabari, S.D., 1990. Ripen- ing of banana: changes during ripening in banana. In: Hassan, A., Pantastico, E.B. (Eds.), Banana: Fruit Development, Postharvest Phys- iology, Handling and Marketing in ASEAN. ASEAN Food Handling Bureau, Kuala Lumpur, pp. 65–72.
Luh, B.S., Phitakpol, B., 1972. Characteristics of polyphenol oxidase related to browning in cling peaches. J. Food Sci. 37, 264–268.
Marriot, J., 1980. Banana. Physiology and biochemistry of storage and ripening for optimum quality. CRC Crit. Rev. Food Sci. Nutri. 13,
41–88.
Martinez, M.V., Whitaker, J.R., 1995. The biochemistry and control of enzymatic browning. Trends Food Sci. Technol. 6, 195–200.
Mayer, A.M., Harel, E., 1979. Polyphenol oxidases in plants. Phytochem- istry 18, 193–215.
Uthaichay, N., Ketsa, S., van Doorn, W.G., 2005. Effect of gas composi- tion and relative humidity on senescent spotting in banana fruit. Thai J. Agric. Sci., in press.
Sapiah, M., Acedo, A.L., Sabari, S.D., Ilag, L.L., Kuthubutheen, A.J.,
1990. Postharvest pathology and entomology of banana. In: Hassan, A., Pantastico, E.B. (Eds.), Banana: Fruit Development, Postharvest Physiology, Handling and Marketing in ASEAN. ASEAN Food Han- dling Bureau, Kuala Lumpur, pp. 104–111.
Singleton, V.L., Rossi, J.A., 1965. Colorimetry of total phenolics with phosphomolybdenic-phosphotungstic acid reagents. Am. J. Enol. Vitic.
16, 144–158.
Weaver, C., Charley, H., 1974. Enzymatic browning of ripening bananas.
J. Food Sci. 39, 1200–1202.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

4. สนทนาไม่ถูกระงับไว้ก่อนจำในพันธุ์ Sucrier กล้วย โดยมีสารที่มีประสิทธิภาพโดยปกติ กับหลังการเก็บเกี่ยวโรคเชื้อราในกล้วยผลไม้ เช่น benomyl, carbendazim และ prochloraz สารเคมีเหล่านี้ถูกใช้ เป็น preharvest หรือใช้งานหลังการเก็บเกี่ยว ผลลัพธ์อาจบ่งชี้ว่า จำที่ไม่ล่าช้าติดเชื้อโดยเชื้อรา อย่างไรก็ตาม การทดลองดูเหมือน หลักฐานไม่เพียงพอสำหรับความคิดที่ว่า เป็นเชื้อราหรือจุลินทรีย์อื่น ๆ ไม่เกี่ยวข้องในช่วงจำ การจำอาจจะครบกำหนด น้อย - oretically การติดเชื้อที่แฝงอยู่ภายใต้เปลือก ซึ่งไม่ถูกห้าม โดยการสเปรย์ต้านเชื้อราบนผิวเปลือก เราเคยใช้ระยะ 'senescent' จำสำหรับเปลือกต้นที่จำในพันธุ์กล้วย Sucrier (Choehom et al., 2004 Uthaichay et al., 2005) นี้อาจตีความนัยว่า จำไม่ได้เนื่องจากเป็นการศึกษา เพื่อหลีกเลี่ยงความคลุมเครือนี้ เราได้ตอนนี้เลือกที่จะฝากคำ 'senescent' เก็บผลไม้กล้วยที่ต่ำกว่าอุณหภูมิลดลงเปลือกจำ ผลกระทบนี้อาจเป็น เพราะอุณหภูมิผลเอนไซม์ เก็บผลไม้ที่อุณหภูมิต่ำกว่าส่งผลให้เปลี่ยนแปลงช้าลงเปลือก สี ไอซ์ และลดลงของแป้งและการเพิ่มขึ้นของน้ำตาลที่ละลายยัง ข้อมูลแสดงว่า ripening ล่าช้าที่อุณหภูมิใช้ (12 – 18 ◦C ที่ มี ที่อุณหภูมิต่ำลงมากกว่า 28-30 ◦C), บาดเจ็บรำคาญไม่เปลือกจำบล็อกไว้ได้อย่างมีประสิทธิภาพ โดยถือผลไม้ที่ 12 ◦C อุณหภูมิการจัดเก็บต่ำสุดสำหรับ 'Sucrier' กล้วยที่ไม่ก่อให้เกิดการบาดเจ็บรำคาญ ผลลัพธ์บ่งชี้ ดังนั้น ว่า มันสามารถป้องกันไม่ให้เปลือกส่วนใหญ่จำได้จนกระทั่งแสดงในซูเปอร์มาร์เก็ต ไว้ที่ผลิตภัณฑ์ Fig. 3 กิจกรรม lyase แอมโมเนีย phenylalanine ในเปลือกกล้วย Sucrier พันธุ์ (A) ผลไม้จัดขึ้นอย่างต่อเนื่องที่อุณหภูมิห้อง (∗), (◦C 18) หรือ(◦C 12) (ข) ผลไม้จัดขึ้นอย่างต่อเนื่องที่อุณหภูมิห้อง (∗) หรือ 12 ◦C () จัดขึ้นที่อุณหภูมิห้อง 2 วันแล้ว โอนย้ายไป 12 ◦C () หรือครั้งแรก จัดขึ้นที่ 12 ◦C 4 วัน และโอนไป(อุณหภูมิห้อง)ในเวลาที่ระบุ โดยลูกศร อุณหภูมิห้อง 26 – 27 ◦C แถบแสดง LSD ที่ P = 0.01ตั้งอยู่ที่ประมาณ 12 ◦C ที่อุณหภูมิเหล่านี้ อย่างไรก็ตาม เปลือกจะไม่แสดงสีเหลือง หลังจากที่ผลิตภัณฑ์นำไป บ้านของผู้บริโภค สมมติว่า ใช้ refriger-ation ไม่เพิ่มเติม การจำจะแสดงได้อย่างรวดเร็วและเปลือกมีแนวโน้มที่จะกลายเป็นสีเหลืองมากขึ้นกล้วยที่จัดขึ้น ที่อุณหภูมิห้อง (25 – 27 ◦C), หรือ 1812 และ 15 ◦C ที่แสดงให้เห็นว่าน้ำหนักของ 19, 6, 6 และ 4%, respec-tively ที่จุดสิ้นสุดของรอบระยะเวลาการศึกษา (ตาราง 3) ความแตกต่างตาราง 3เปอร์เซ็นต์ของน้ำหนักของกล้วยที่จัดขึ้นอย่างต่อเนื่องที่อุณหภูมิห้อง◦ 18, 15 และ 12 C รักษา (◦C) น้ำหนัก (%) การวันหลังจากสีดัชนีราคา 3-4 Fig. 4 กิจกรรมใน Polyphenol oxidase ในเปลือกกล้วย Sucrier พันธุ์ (A) ผลไม้จัดขึ้นอย่างต่อเนื่องที่อุณหภูมิห้อง (∗), (◦C 18) หรือ(◦C 12) (ข) ผลไม้จัดขึ้นอย่างต่อเนื่องที่อุณหภูมิห้อง (∗) หรือ 12 ◦C () จัดขึ้นที่อุณหภูมิห้อง 2 วันแล้ว โอนย้ายไป 12 ◦C () หรือครั้งแรก จัดขึ้นที่ 12 ◦C 4 วัน และโอนไป(อุณหภูมิห้อง)ในเวลาที่ระบุ โดยลูกศร อุณหภูมิห้อง 26-27 ◦C แถบแสดง LSDที่ P = 0.01น้ำหนัก ขาดทุนได้ไม่ correlated กับเปลือกจำ ข้อมูลของเราก่อนหน้านี้ก็ยังระบุว่า น้ำหนักไม่สาเหตุของเปลือกจำ แม้ว่าจำถูกป้องกันได้แม้ที่อุณหภูมิ ถ้าผลไม้จัดขึ้นที่ RH ใกล้เคียงกับ100% (Choehom et al., 2004), ทดลองอื่น ๆ พบว่า ที่ระหว่าง 65 และ 95% RH จำเป็นขึ้นอยู่กับ RH (Uthaichay et al., 2005) ในปัจจุบันศึกษา RH และที่เกี่ยวข้อง vapour ดันขาดดุล ตกอยู่ในช่วงศึกษาโดย Uthaichay et al. (2005)เราไม่พบหลักฐานสำหรับบทบาทของ PAL หรือ PPO ในเปลือกต้นจำ PPO เป็นเอนไซม์ที่ปกติทำให้บริษัทน้ำตาลในพืช ใช้สระกรดฟีนอฟรี และ PAL หนำพฤษภาคมนี้สระว่ายน้ำ (เมเยอร์และ Harel, 1979 มาติเน่ และ หมายถึงเปรียบเทียบภายในคอลัมน์โดยความแตกต่างอย่างมีนัยสำคัญน้อยที่สุดที่P = 0.05* อย่างมีนัยสำคัญที่ P = 0.05** อย่างมีนัยสำคัญที่ P = 0.01 ส่งกิจกรรมในสัตว์ทดลอง อย่างไรก็ตาม แม้เมื่อใช้โดพามีนเป็นพื้นผิวแบบ ช่างทอผ้าและ Charley (1974) รายงานว่า มีความสัมพันธ์ใด ๆ ระหว่างกิจกรรม PPO และ browning ของเยื่อกล้วย นำเสนอข้อมูลมักจะ ยืนยันนี้ โดยใช้ catechol เป็นพื้นผิว เราก่อนหน้านี้ยังพบคำสัมประสิทธิ์สหสัมพันธ์ต่ำมากระหว่างกิจกรรม PPO และเปลือกจุด-ทิง (Choehom et al., 2004)ในการทดลองปัจจุบัน เราสังเกต rela-tionship บวกที่ระดับ phenolics รวมฟรีและเปลือกจำ (0.88) มันเป็นปัจจุบันชัดเจนนี้สเตรชัน correla หมาย ไม่ทราบว่าสะสมของ pheno lics สาเหตุหรือผลลัพธ์ของปฏิกิริยาที่นำไปสู่การจำPAL catalyzes ขั้นตอนแรกในการผลิตของสารประกอบที่ pheno lic ใช้ทางเดิน shikimate (Camm แอนด์ทาวเวอร์ 1973) ตอนนี้เราได้ดำเนินความสัมพันธ์ที่ดีระหว่างจุดเปลือกและกิจกรรม PAL ในเปลือกกล้วย cating indi ที่ PAL กิจกรรมคืออัตราการจำกัดการ นี่คือ in contrast with ข้อมูลก่อนหน้า (Choehom et al., 2004), ซึ่งแนะนำว่า PAL อาจเกี่ยวข้องในปฏิกิริยา browningมันจะสรุปว่า จำในเปลือกกล้วยเปลือก effec-tively โดยเก็บผลไม้ที่ 12 ◦C ตั้งแต่ rela ไม่-tionship ถูกตรวจสอบระหว่างการจำและกิจกรรมของ PAL หรือ PPO เอนไซม์เหล่านี้อาจเป็นอัตราจำกัด Mod ulating กิจกรรมของพวกเขาดูเหมือนไม่ได้สัญญา ดังนั้น ลดโรคที่ยอมรับการวิจัยทางการเงินได้รับการสนับสนุน โดยไทยวิจัย (สกว.)การอ้างอิงแบรดฟอร์ด ม.ม. 1976 วิธีที่รวดเร็ว และมีความสำคัญสำหรับ quanti-tation microgram ปริมาณของโปรตีนที่ใช้หลักการของโปรตีน – ย้อมผูกกัน ทางทวารหนัก Biochem 72, 248-254Camm, E.C. ทาวเวอร์ G.H.N., 1973 Lyase phenylalanine แอมโมเนีย Phy-tochemistry 12, 961-973 Chaitrakulsap ต. 1980 เปลี่ยนแปลงเนื้อหาไนโตรเจนและคาร์โบไฮเดรตในใบและยอดของลิ้นจี่ cv ห้วย Hong ในรอบปี วิทยานิพนธ์เด้นกวาน มหาวิทยาลัยเกษตรศาสตร์ กรุงเทพมหานครChoehom, R. เกตุษา s ได้ แวน Doorn, W.G., 2004 จำ senescent ของเปลือกกล้วยถูกห้าม โดยบรรจุภัณฑ์ปรับเปลี่ยนบรรยากาศ เสื้อ Posthar Biol. Technol. 31, 167-175Griffiths แอลเอ 1961 ความสัมพันธ์ระหว่างเนื้อหา 3, 4-dihydroxyphenyl-ethylamine และกลุ่มของกล้วย ธรรมชาติ 19284-85Hodge, J.E., Holfreither เมตร 1962 กำหนดลดน้ำตาลและคาร์โบไฮเดรต ใน: Whilster, R.L., Wolfron หม่อมหลวง (Eds.) จาก - ods คาร์โบไฮเดรตเคมี ปี 1 ศึกษากด นิวยอร์ก นำ 380-394คานาซาวะ เค Sakakibara, H., 2000 เนื้อหาที่สูงของโดปามีน ความแข็งแรงต้านอนุมูลอิสระ ในกล้วยหอม เจอาหาร agric. Chem. 48, 844-848 เกตุษา S., 2000 พัฒนาและควบคุมจำ senescent ในกล้วยอาหาร Preserv Sci. 26, 173-178Lizada, M.C.C., Pantastico, E.B., Shukor, A.R. ซาบารี S.D., 1990 สุกงอมกำลังของกล้วย: เปลี่ยนแปลงระหว่าง ripening ในกล้วย ใน: Hassan, A., Pantastico, E.B. (Eds.), กล้วย: ผลไม้พัฒนา หลังมีอยู่จริง - iology การจัดการ และการตลาดในอาเซียน อาหารอาเซียนจัดการสำนัก กัวลาลัมเปอร์ นำ 65-72Luh ปริญญาตรี Phitakpol เกิด ๒๕๑๕ ลักษณะของ polyphenol oxidase ที่เกี่ยวข้องกับ browning ในยึดลูกพีช เจอาหาร Sci. 37, 264-268Marriot, J., 1980 กล้วย สรีรวิทยาและชีวเคมี ripening คุณภาพเหมาะสมและเก็บ CRC ย้อนหลัง Crit. อาหาร Sci. Nutri 1341 – 88มาติเน่ M.V. วิตเทกเกอร์ J.R., 1995 ชีวเคมีและการควบคุมของเอนไซม์ในระบบ browning แนวโน้มอาหาร Sci. Technol. 6, 195-200เมเยอร์ น. Harel ตะวันออก 1979 Oxidases Polyphenol ในพืช Phytochem-istry 18, 193-215Uthaichay, N. เกตุษา s ได้ แวน Doorn, W.G., 2005 ผลของก๊าซ composi สเตรชันและความชื้นสัมพัทธ์บนจำ senescent ในผลไม้กล้วย ไทยเจ Agric. Sci. ในข่าวSapiah เมตร Acedo, A.L. ซาบารี S.D., Ilag, L.L., Kuthubutheen, A.J.ปี 1990 หลังการเก็บเกี่ยวพยาธิวิทยาและกีฏวิทยาของกล้วย ใน: Hassan, A., Pantastico, E.B. (Eds.), กล้วย: พัฒนาผลไม้ สรีรวิทยาหลังการเก็บเกี่ยว การจัดการ และการตลาดในอาเซียน อาเซียนอาหารฮั่น - dling สำนักงาน กัวลาลัมเปอร์ นำ 104-111ซิงเกิลตัน วีแอล Rossi โรงแรมเจเอ 1965 Colorimetry ของ phenolics รวมกับ reagents กรด phosphomolybdenic-phosphotungstic น.เจ Enol Vitic16, 144-158ช่างทอผ้า C., Charley, H., 1974 เอนไซม์ในระบบ browning ของ ripening กล้วยเจอาหาร Sci. 39, 1200-1202

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

4. การอภิปรายในช่วงต้นของการจำพันธุ์ กล้วย Sucrier ไม่ได้ถูกระงับโดยการรักษาด้วยสารที่มีตามปกติที่มีประสิทธิภาพป้องกันโรคเชื้อราหลังการเก็บเกี่ยวผลไม้กล้วยเช่นbenomyl, carbendazim และ prochloraz สารเคมีเหล่านี้ถูกนำมาใช้เป็น preharvest หรือการใช้งานหลังการเก็บเกี่ยว ผลการศึกษาแสดงให้เห็นว่าอาจจะจำไม่ได้จากการติดเชื้อในช่วงปลายจากเชื้อรา อย่างไรก็ตามการทดลองดูเหมือนหลักฐานไม่เพียงพอสำหรับความคิดที่ว่าเชื้อราหรือเชื้อจุลินทรีย์อื่น ๆ ที่ไม่ได้มีส่วนร่วมในการจำในช่วงต้น จุดอาจเป็นเพราะอย่างน้อย the- oretically, การติดเชื้อที่แฝงอยู่ภายใต้เปลือกที่ไม่ได้ยับยั้งโดยเชื้อราสเปรย์บนพื้นผิวเปลือก ก่อนหน้านี้เราใช้คำว่า 'senescent' จำสำหรับการจำเปลือกต้นพันธุ์ กล้วย Sucrier (Choehom et al, 2004;.. Uthaichay et al, 2005) นี้อาจจะมีการตีความที่จะบ่งบอกว่าจำไม่ได้เกิดจากเชื้อโรค เพื่อหลีกเลี่ยงความคลุมเครือนี้เราได้เลือกที่จะลดลงในขณะนี้คำว่า 'senescent' การเก็บรักษาผลไม้กล้วยที่ต่ำกว่าอุณหภูมิลดลงจำเปลือก ผลกระทบนี้อาจจะเกิดจากผลกระทบของอุณหภูมิในกิจกรรมเอนไซม์ โฮลดิ้งผลไม้ที่อุณหภูมิต่ำนอกจากนี้ยังส่งผลให้เกิดการเปลี่ยนแปลงที่ช้าลงในสีเปลือกความกระชับและลดลงแป้งและการเพิ่มขึ้นของน้ำตาลที่ละลายน้ำได้ ข้อมูลที่แสดงให้เห็นว่าล่าช้าสุกที่อุณหภูมิต่ำกว่าและมีที่ใช้อุณหภูมิต่ำ (12-18 ◦C, มากกว่า 28-30 ◦C) ไม่มีอาการสะท้านหนาว. พีจำถูกบล็อกได้อย่างมีประสิทธิภาพโดยถือผลไม้ 12 ◦Cอุณหภูมิการจัดเก็บข้อมูลที่ต่ำที่สุดสำหรับกล้วย 'Sucrier' ที่ไม่ก่อให้เกิดอาการสะท้านหนาว ผลการศึกษาพบจึงว่ามันเป็นไปได้ที่จะป้องกันไม่ให้เปลือกมากที่สุดจำจนการแสดงผลในซูเปอร์มาร์เก็ตโดยมีเงื่อนไขว่าผลิตภัณฑ์รูป 3. กิจกรรมไอเลสแอมโมเนีย Phenylalanine ในเปลือกพันธุ์ Sucrier กล้วย (A) ที่จัดขึ้นอย่างต่อเนื่องผลไม้ที่อุณหภูมิห้อง (*), 18 ◦C () หรือ 12 ◦C () (ข) ที่จัดขึ้นอย่างต่อเนื่องผลไม้ที่อุณหภูมิห้อง (*) หรือ 12 ◦C () ซึ่งจัดขึ้นที่อุณหภูมิห้องเป็นเวลา 2 วันและโอนไปแล้ว 12 ◦C () หรือที่จัดขึ้นเป็นครั้งแรกที่ 12 ◦Cเป็นเวลา 4 วันและจากนั้นก็ย้ายไปที่ห้อง อุณหภูมิ () ในเวลาที่ระบุโดยลูกศร อุณหภูมิห้องเป็น 26-27 ◦C บาร์แสดง LSD ที่ p = 0.01. จะถูกเก็บไว้ที่ประมาณ 12 ◦C ที่อุณหภูมิเหล่านี้ แต่เปลือกจะไม่แสดงสีเหลือง หลังจากที่สินค้าจะถูกนำไปที่บ้านของผู้บริโภคสมมติว่าไม่มี ation refriger- ต่อไปจะนำไปใช้จุดจะแสดงได้อย่างรวดเร็วและเปลือกมีแนวโน้มที่จะกลายเป็นสีเหลืองมากขึ้น. กล้วยจัดขึ้นที่อุณหภูมิห้อง (25-27 ◦C) หรือที่ 18, 15 และ 12 ◦Cแสดงให้เห็นว่าการสูญเสียน้ำหนักของ 19, 6, 6 และ 4% ตามลําดับในตอนท้ายของระยะเวลาการศึกษา(ตารางที่ 3) ความแตกต่างที่ตารางที่ 3 ร้อยละของการสูญเสียน้ำหนักของกล้วยที่จัดขึ้นอย่างต่อเนื่องที่อุณหภูมิห้อง18, 15 และ 12 ◦ C รักษา (◦C) การสูญเสียน้ำหนัก (%) ต่อวันหลังจากที่ดัชนีสี3-4 รูป 4. กิจกรรม Polyphenol oxidase ในเปลือกพันธุ์ Sucrier กล้วย (A) ที่จัดขึ้นอย่างต่อเนื่องผลไม้ที่อุณหภูมิห้อง (*), 18 ◦C () หรือ 12 ◦C () (ข) ที่จัดขึ้นอย่างต่อเนื่องผลไม้ที่อุณหภูมิห้อง (*) หรือ 12 ◦C () ซึ่งจัดขึ้นที่อุณหภูมิห้องเป็นเวลา 2 วันและโอนไปแล้ว 12 ◦C () หรือที่จัดขึ้นเป็นครั้งแรกที่ 12 ◦Cเป็นเวลา 4 วันและจากนั้นก็ย้ายไปที่ห้อง อุณหภูมิ () ในเวลาที่ระบุโดยลูกศร อุณหภูมิห้องเป็น 26-27 ◦C บาร์แสดง LSD ที่ p = 0.01. ในการสูญเสียน้ำหนักที่ไม่ได้มีความสัมพันธ์กับการจำเปลือก ข้อมูลก่อนหน้านี้เรายังได้ชี้ให้เห็นว่าการลดน้ำหนักไม่ได้เป็นสาเหตุของการจำเปลือก แม้ว่าจะป้องกันไม่ให้เกิดการจำได้แม้กระทั่งที่อุณหภูมิห้องถ้าเป็นผลไม้ที่ถูกจัดขึ้นที่อาร์เอชใกล้กับ100% (Choehom et al., 2004) การทดลองอื่น ๆ ที่แสดงให้เห็นว่าในระหว่าง RH 65 จุดและ 95% เป็นอิสระจาก RH (Uthaichay et al, 2005) ในการศึกษาปัจจุบัน RH, และการขาดดุลความดันไอที่เกี่ยวข้องลดลงในช่วงการศึกษาโดย Uthaichay et al, (2005). เราไม่พบหลักฐานสำหรับบทบาทของ PAL หรือ PPO ในจุดเปลือกต้น PPO เป็นเอนไซม์ที่มักจะทำให้เกิดไอเอ็นจีสีน้ำตาลในพืช จะใช้สระว่ายน้ำของกรดฟีนอลฟรีและ PAL อาจเต็มและสระว่ายน้ำนี้ (เมเยอร์และ Harel 1979; มาร์ติเนและการเปรียบเทียบวิธีการที่อยู่ในคอลัมน์อย่างน้อยแตกต่างกันที่. p = 0.05. * ที่สําคัญที่ p = 0.05 ** สําคัญที่ P = 0.01. ไม่พอใจในกิจกรรมทางร่างกาย. อย่างไรก็ตามแม้เมื่อใช้โดปามีนเป็นสารตั้งต้นประกอบและชาร์ลี (1974) รายงานว่ามีความสัมพันธ์ระหว่างกิจกรรม PPO และไม่มีการเกิดสีน้ำตาลของเยื่อกล้วย. ข้อมูลในปัจจุบันมีแนวโน้มที่จะยืนยันเรื่องนี้. ใช้catechol เป็น พื้นผิวเราก่อนหน้านี้ยังพบว่ามีค่าสัมประสิทธิ์สหสัมพันธ์ที่ต่ำมากระหว่างกิจกรรม PPO และเปลือกจ่ายเงินและส่งทิ้ง (Choehom et al., 2004). ในการทดลองในปัจจุบันที่เราสังเกตเห็น tionship สัมพันธ์เชิงบวกระหว่างระดับของฟีนอลฟรีรวมและจุดเปลือก (0.88). มันเป็นในปัจจุบันไม่มีความชัดเจนว่าหมายถึงการ correla- นี้. มันเป็นเรื่องที่ไม่มีใครรู้ว่าการสะสมของ lics pheno- เป็นสาเหตุหรือเป็นผลมาจากปฏิกิริยาที่นำไปสู่การจำได้. PAL กระตุ้นขั้นตอนแรกในการผลิต pheno - สารประกอบ LIC โดยใช้ทางเดิน shikimate (Camm and Towers, 1973) เราได้ตั้งข้อสังเกตในขณะนี้มีความสัมพันธ์ที่ไม่ดีระหว่างจุดเปลือกและกิจกรรม PAL ในเปลือกกล้วย, -cating ความบอกสิ่งนั่นกิจกรรม PAL ไม่ได้ประเมิน จำกัด นี้เป็นในทางตรงกันข้ามกับข้อมูลก่อนหน้านี้เรา (Choehom et al., 2004) ซึ่งชี้ให้เห็นว่า PAL อาจจะมีส่วนร่วมในการทำปฏิกิริยาสีน้ำตาล. มันเป็นข้อสรุปว่าจุดเปลือกในเปลือกกล้วยจะป้องกันไม่ให้เกิดประสิทธิผลลำดับโดยถือผลไม้ที่ 12 ◦ ซี เนื่องจากไม่มีสัมพันธ์tionship ถูกพบระหว่างการจำและกิจกรรมของ PAL หรือ PPO เอนไซม์เหล่านี้อาจจะไม่ จำกัด อัตรา Mod- ulating กิจกรรมของพวกเขาไม่ได้ดูเหมือนมีแนวโน้มดังนั้นเพื่อลดความผิดปกติ. Acknowledgement การวิจัยได้รับการสนับสนุนทางการเงินจากประเทศไทยกองทุนสนับสนุนการวิจัย (สกว.) อ้างอิงแบรดฟอ MM 1976 วิธีการอย่างรวดเร็วและมีความสำคัญสำหรับช่อ quanti- ของ ไมโครกรัมปริมาณของโปรตีนที่ใช้หลักการของโปรตีนย้อมที่มีผลผูกพัน ก้น Biochem 72, 248-254. Camm, EC, ทาวเวอร์ GHN 1973 Phenylalanine ไอเลสแอมโมเนีย Phy- tochemistry 12, 961-973. Chaitrakulsap ตันปี 1980 การเปลี่ยนแปลงในไนโตรเจนและเนื้อหาคาร์โบไฮเดรตในใบและยอดลิ้นจี่พันธุ์ฮงห้วยในรอบปี MS วิทยานิพนธ์ มหาวิทยาลัยเกษตรศาสตร์. Choehom หม่อมราชวงศ์เกตุษาเอสแวน Doorn, WG 2004 ตกกระของเปลือกกล้วยถูกยับยั้งโดยดัดแปลงบรรยากาศ Posthar- เสื้อกั๊ก Biol วิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี 31 167-175. Griffiths, LA, 1961 ความสัมพันธ์ระหว่าง 3,4-dihydroxyphenyl- เนื้อหา ethylamine และจีโนมของกล้วยป่า ธรรมชาติ 192, 84-85. ฮ็อดจ์ JE, Holfreither, M. , 1962 การกำหนดของการลดน้ำตาลและคาร์โบไฮเดรต ใน:. (สหพันธ์) Whilster, RL, Wolfron, ML, เมธอดน่าในคาร์โบไฮเดรตเคมีฉบับ 1. นักวิชาการสื่อมวลชนนิวยอร์กได้ pp. 380-394. คะนะซะวะเค Sakakibara เอช 2000 เนื้อหาสูงของโดพามีน, สารต้านอนุมูลอิสระที่แข็งแกร่งในกล้วยคาเวนดิช เจ Agric เคมีอาหาร 48, 844-848 เกตุษาเอส 2000 การพัฒนาและการควบคุมของการตกกระในกล้วย. อาหาร preserv วิทย์ 26 173-178. Lizada, MCC, Pantastico, EB, Shukor, AR, Sabari, SD, 1990 Ripen- ไอเอ็นจีกล้วย: การเปลี่ยนแปลงในระหว่างการสุกกล้วย ใน: ฮัสซัน, a, Pantastico, EB (ชั้นเลิศ.), กล้วย: การพัฒนาผลไม้หลังการเก็บเกี่ยว Phys- iology, การจัดการและการตลาดในภูมิภาคอาเซียน อาเซียนจัดการอาหารสำนักกัวลาลัมเปอร์ได้ pp. 65-72. Luh, BS, Phitakpol บี 1972 ลักษณะของเอนไซม์โพลีฟีนที่เกี่ยวข้องกับการเกิดสีน้ำตาลในยึดลูกพีช อาหารเจวิทย์ 37, 264-268. แมริออท, เจ, 1980. กล้วย สรีรวิทยาและชีวเคมีของการจัดเก็บและการทำให้สุกสำหรับคุณภาพที่ดีที่สุด ซีอาร์ซี Crit รายได้อาหารวิทย์ Nutri 13, 41-88. มาร์ติเน MV, วิเทเกอร์จูเนียร์ปี 1995 ชีวเคมีและการควบคุมการเกิดสีน้ำตาลของเอนไซม์ แนวโน้มอาหารวิทย์ วิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี 6, 195-200. เมเยอร์, ​​AM, Harel อี 1979 Polyphenol oxidases ในพืช istry Phytochem- 18, 193-215. Uthaichay เอ็น, เกตุษาเอสแวน Doorn, WG 2005 ผลของการ composi- ก๊าซและความชื้นสัมพัทธ์ในตกกระในผลไม้กล้วย ไทยเจ Agric วิทย์. ในการกด. Sapiah เมตร Acedo, AL, Sabari, SD, Ilag, LL, Kuthubutheen, AJ, 1990 พยาธิสภาพหลังการเก็บเกี่ยวและกีฏวิทยากล้วย ใน: ฮัสซัน, a, Pantastico, EB (ชั้นเลิศ.), กล้วย: การพัฒนาผลไม้หลังการเก็บเกี่ยวสรีรวิทยาการจัดการและการตลาดในภูมิภาคอาเซียน อาเซียนอาหารคา DLing สำนักกัวลาลัมเปอร์ได้ pp. 104-111. โทน VL รอสซี, JA, 1965 colorimetry ของฟีนอลรวมกับสารเคมีกรด phosphomolybdenic-phosphotungstic Am เจ Enol Vitic. 16, 144-158. ประกอบซี, ชาร์ลีเอชปี 1974 สีน้ำตาลของเอนไซม์สุกกล้วย. เจ อาหารวิทย์ 39, 1200-1202

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

4 . การอภิปราย

แรกเฉพาะในพันธุ์ sucrier กล้วยไม่หยุดยั้งโดยการรักษาด้วยสารประกอบที่เป็นปกติมีประสิทธิภาพ

กับเชื้อราก่อโรคในกล้วยผลไม้หลังการเก็บเกี่ยว เช่น เบนโนมิลปลาโปรคลอราช . สารเคมีเหล่านี้ถูกใช้เป็น preharvest หรือหลังการใช้งาน ผลลัพธ์ที่อาจบ่งชี้ว่าระบุไม่ได้เนื่องจากการติดเชื้อ ล่าช้า โดยเชื้อรา อย่างไรก็ตามการทดลองดูหลักฐานไม่เพียงพอสำหรับความคิดที่เชื้อราหรือจุลินทรีย์อื่น ๆที่เกี่ยวข้องในช่วงแรกไม่ระบุ ระบุ อาจจะเนื่องจาก อย่างน้อย - oretically , การติดเชื้อแฝงอยู่ใต้เปลือก ซึ่งถูกห้ามโดยการพ่นเชื้อราบนผิวเปลือก เราเคยใช้คำว่า ' ' เฉพาะในช่วงต้นชราภาพเปลือกเฉพาะในพันธุ์sucrier กล้วย ( choehom et al . , 2004 ; สา ทรงไตรย์ et al . , 2005 ) นี้อาจจะตีความนัยที่ระบุไม่ได้เกิดจากเชื้อโรค เพื่อหลีกเลี่ยงความคลุมเครือนี้ ตอนนี้เราเลือกที่จะทิ้งคำว่า " ชราภาพ " เก็บกล้วยผลไม้ที่อุณหภูมิต่ำกว่าอุณหภูมิลดลงเปลือกระบุ ผลกระทบนี้อาจจะเนื่องจากมีอุณหภูมิที่มีผลต่อกิจกรรมของเอนไซม์ถือผลไม้ที่อุณหภูมิต่ำ และก่อให้เกิดการเปลี่ยนแปลงสีเปลือกช้าลง ความแน่นเนื้อ และปริมาณของแป้ง และเพิ่มปริมาณน้ำตาล ข้อมูลแสดงให้เห็นว่าสุกช้าที่อุณหภูมิต่ำ
และก็ที่ใช้ลดอุณหภูมิ ( 12 – 18 ◦ C
มากกว่า 28 – 30 ◦ C )
ไม่สะท้านหนาว .ลอกเฉพาะได้อย่างมีประสิทธิภาพบล็อกโดยถือผลไม้ที่ 12 ◦ C ค่าอุณหภูมิของ sucrier ' กล้วย
ที่ไม่ก่อให้เกิดการสะท้านหนาว . ผลการศึกษาแสดงให้เห็น ดังนั้น มันเป็นไปได้เพื่อป้องกันไม่ให้เปลือกมากที่สุด เฉพาะจนถึงแสดงในซุปเปอร์มาร์เก็ต ระบุว่าผลิตภัณฑ์




รูปที่ 3 ฟีนิลอะลานีนแอมโมเนีย lyase กิจกรรมในเปลือกของพันธุ์sucrier กล้วย ( ก ) ผลไม้ที่จัดขึ้นอย่างต่อเนื่องที่อุณหภูมิห้อง ( ∗ ) , 18 ◦ C ( ) หรือ 12 ◦ C ( ) ( ข ) ผลไม้ที่จัดขึ้นอย่างต่อเนื่องที่อุณหภูมิห้อง ( ∗ ) หรือ 12 ◦ C ( ) จัดขึ้นที่อุณหภูมิห้องเป็นเวลา 2 วันแล้วย้ายไป 12 ◦ C ( ) หรือ ครั้งแรกจัดขึ้นที่ 12 ◦ เป็นเวลา 4 วัน แล้วย้ายไปที่อุณหภูมิห้อง ( ที่แสดงโดยลูกศร อุณหภูมิห้อง 26 – 27 ◦บาร์
Cแสดง LSD ที่ระดับ 0.01 .
ถูกเก็บไว้ที่ประมาณ 12 ◦ C ที่อุณหภูมิเหล่านี้ แต่เปลือกจะไม่แสดงสีเหลือง . หลังจากสินค้ามาถึงบ้านของผู้บริโภค สมมติว่าไม่ต่อไม่ได้จับการกระทำที่ใช้ ระบุจะแสดงได้อย่างรวดเร็วมาก และเปลือกมีแนวโน้มที่จะกลายเป็นเหลืองมากขึ้น
กล้วยจัดขึ้นที่อุณหภูมิห้อง ( 25 – 27 ◦ C ) หรือที่
1815 และ 12 ◦ C พบการสูญเสียน้ำหนัก 19 , 6 , 6 และ 4 % respec -
มีที่สิ้นสุดของระยะเวลาการศึกษา ( ตารางที่ 3 ) ความแตกต่างที่โต๊ะ

3
ร้อยละของการสูญเสียน้ำหนักของกล้วยที่จัดขึ้นอย่างต่อเนื่องที่อุณหภูมิ ห้อง
18 , 15 และ 12 ◦ C
รักษา ( ◦ C ) น้ำหนัก ( % )

วันหลังสีดัชนี 3 – 4


รูปที่ 4 โพลีฟีนอล กซิเดสกิจกรรมในเปลือกของพันธุ์ sucrier กล้วย( ก ) ผลไม้ที่จัดขึ้นอย่างต่อเนื่องที่อุณหภูมิห้อง ( ∗ ) , 18 ◦ C ( ) หรือ 12 ◦ C ( ) ( ข ) ผลไม้ที่จัดขึ้นอย่างต่อเนื่องที่อุณหภูมิห้อง ( ∗ ) หรือ 12 ◦ C ( ) จัดขึ้นที่อุณหภูมิห้องเป็นเวลา 2 วันแล้วย้ายไป 12 ◦ C ( ) หรือ ครั้งแรกจัดขึ้นที่ 12 ◦ เป็นเวลา 4 วัน แล้วย้ายไปที่อุณหภูมิห้อง ( ที่แสดงโดยลูกศร อุณหภูมิห้อง 26-27 ◦ C . แถบแสดงข้อมูล
P



= 0.01ในการสูญเสียน้ำหนักไม่มีความสัมพันธ์กับเปลือกระบุ ข้อมูลเดิมก็พบว่า มีการสูญเสียน้ำหนักไม่ได้เป็นสาเหตุของเปลือกระบุ แม้ว่าจะถูกขัดขวาง แม้จุดที่อุณหภูมิห้อง ถ้าผลไม้ที่ถูกจัดขึ้นที่ความชื้นสัมพัทธ์ใกล้
100% ( choehom et al . , 2004 ) , การทดลองอื่น ๆ พบว่า ที่ความชื้นสัมพัทธ์ระหว่าง 65 และ 95% ระบุเป็นอิสระของ Rh ( สา ทรงไตรย์ et al . , 2005 )ในปัจจุบันการศึกษาและความชื้นสัมพัทธ์ที่ความดันสูง อยู่ในช่วงศึกษาโดยสา ทรงไตรย์ et al . ( 2548 ) .
เราไม่พบหลักฐานที่เป็นบทบาทของ Pal หรือ PPO ในเปลือกต้นระบุ PPO เป็นเอนไซม์ที่มักจะทำให้เกิดสีน้ำตาล - ing ในพืช ใช้สระว่ายน้ำของกรดฟีโนลิก ฟรี และเพื่อนอาจไปสระนี้ ( เมเยอร์ และ HAREL , 1979 ; มาติ








และหมายถึงการเปรียบเทียบภายในคอลัมน์ โดยอย่างน้อยมีนัยสำคัญทางสถิติที่ P = 0.05
.
* อย่างมีนัยสำคัญที่ระดับ 0.05 .
* * อย่างมีนัยสำคัญที่ระดับ 0.01

พอใจในกิจกรรมของสิ่งมีชีวิต อย่างไรก็ตาม แม้เมื่อใช้สารโดปามีนเป็นสารตั้งต้น , วีเวอร์กับชาร์ลี ( 1974 ) รายงานว่า ไม่มีความสัมพันธ์ระหว่างกิจกรรมของเอนไซม์ PPO และการเกิดสีน้ำตาลของต้นกล้วย เยื่อกระดาษ จากข้อมูลปัจจุบันมีแนวโน้มที่จะยืนยันเรื่องนี้ ใช้

แคติคอลเป็นสารตั้งต้น เราเคยพบน้อยมากความสัมพันธ์ระหว่างกิจกรรมและเปลือกจุด - PPO ติ่ง ( choehom et al . , 2004 ) .
ในการทดลองปัจจุบันที่เราสังเกตได้จริง - บวกความสัมพันธ์ระหว่างระดับของโพลีฟีนอลฟรีทั้งหมดและเปลือกจุด ( 0.88 ) มันคือปัจจุบัน ไม่ชัดเจนอะไร correla - tion หมายถึง .มันไม่เป็นที่รู้จักถ้าสะสม pheno - lics เป็นสาเหตุหรือผลของปฏิกิริยาที่นำไปสู่การระบุ
เพื่อนและขั้นตอนแรกในการผลิต pheno - Lic สารประกอบใช้ชิคิเมตเส้นทาง ( แคมม์และอาคาร , 1973 ) ตอนนี้เราได้พบความสัมพันธ์ที่ไม่ดีระหว่างจุดกิจกรรมเปลือกกล้วยเปลือกและ PAL , PAL indi - Cating กิจกรรมอัตราไม่จำกัดนี้เป็นในทางตรงกันข้ามกับข้อมูลเดิม ( choehom et al . , 2004 ) ซึ่งชี้ให้เห็นว่าเพื่อนอาจจะเกี่ยวข้องในปฏิกิริยาการเกิดสีน้ำตาล .
สรุปได้ว่าเปลือกเฉพาะในเปลือกกล้วยมี effec mixing bord - มีการป้องกันโดยถือผลไม้ที่ 12 ◦ C เนื่องจากไม่มีมาร์ติน
ความสัมพันธ์พบระหว่างเฉพาะและ กิจกรรมของเอนไซม์ PPO PAL หรือ , เหล่านี้อาจไม่เท่ากัน จํากัดมด - ulating กิจกรรมของพวกเขาไม่ได้ดูสัญญา ดังนั้น เพื่อลดโรค


ขอบคุณ

การวิจัยทางการเงิน สนับสนุนโดย กองทุนการวิจัย ( สกว. )
)


อ้างอิง

Bradford , Ph.D . , 1976 . อย่างรวดเร็ว และมีวิธีการสำหรับการไฟฟ้า - tation ของปริมาณไมโครกรัมโปรตีนโดยใช้หลักการของโปรตีน–สีย้อมผูก ทวารหนัก วิชาเคมี 72 , 248 - 254 .
แคมม์อีซี , ,อาคาร g.h.n. 2526 ฟีนิลอะลานีนแอมโมเนีย lyase . phy - tochemistry 12 , 961 - 973 .

chaitrakulsap . 2523 การเปลี่ยนแปลงของปริมาณไนโตรเจน และคาร์โบไฮเดรตในใบและยอดของเนื้อหาลิ้นจี่พันธุ์ฮงห้วยในรอบปี . วิทยานิพนธ์ มหาวิทยาลัยเกษตรศาสตร์ , กรุงเทพฯ choehom R .
, เกตุษา , S . , รถตู้ Doorn w.g. , 2004 ชราภาพเฉพาะของเปลือกกล้วยจะยับยั้งโดยการบรรจุแบบดัดแปลงบรรยากาศposthar - เสื้อกั๊ก วท บ วท . Technol . 31 , 167 – 175 .
Griffiths , แอลเอ , 1961 . ความสัมพันธ์ระหว่าง 3,4-dihydroxyphenyl - เนื้อหาเอตทิลามีนและพันธุกรรมของกล้วยป่า . ธรรมชาติ 192 , 84 และ 85
.
ฮอดจ์ j.e. holfreither , เมตร , 2505 . การลดน้ำตาลและคาร์โบไฮเดรต ใน : whilster R.L . , , wolfron ม.ล. ( แผนที่ ) ODS ยาบ้า - เคมีคาร์โบไฮเดรต เล่มที่ 1 กดนิวยอร์กวิชาการ , pp . 380 ) 394 .
คานาซาว่า เค sakakibara , H . , 2000 เนื้อหาสูงของโดพามีน เป็นสารต้านอนุมูลอิสระที่แข็งแกร่ง ในกล้วยหอม . J . Agric . เคมีอาหาร 48 , 844 - 095 . เกตุษา , S . , 2000 การพัฒนาและควบคุมชราภาพเฉพาะกล้วย .
preserv อาหาร สภาวะโลกร้อน 26 , 173 - 178 .
m.c.c. lizada , , pantastico อีบี ชูโกร์ทางซาบารี , , , S.D . , 1990 ไอเอ็นจีของกล้วยสุก - : การเปลี่ยนแปลงระหว่างการสุกในกล้วย ใน : ฮัสซัน อ. pantastico , ,อีบี ( แผนที่ ) , กล้วย : การพัฒนาผลไม้หลังการเก็บเกี่ยวว. - iology การจัดการ และการตลาดในอาเซียน อาหารอาเซียน การจัดการสำนักงาน , กัวลาลัมเปอร์ , pp . 65 - 72
ลุ้ฮ์ , B.S . phitakpol , บี , 2515 . คุณลักษณะของเอนไซม์พอลิฟีนอล ที่เกี่ยวข้องกับการเกิดสีน้ำตาลในยึดลูกพีช วิทยาศาสตร์อาหาร . . 37 , 264 และ 268 .
ภายใน , J . , 1980 กล้วย สรีรวิทยาและชีวเคมีของการเก็บและบ่มเพื่อคุณภาพสูงสุด ซีอาร์ซี Crit .บาทหลวง วิทย์อาหาร นูทริ . 13
41 – 88 .
Martinez , เอ็มวี วิทเทคเกอร์ , เจอาร์ , 2538 ชีวเคมีและการควบคุมของสีน้ำตาล . แนวโน้มอาหาร Sci . Technol . 6 , 195 - 200 .
เมเยอร์ น. HAREL , E . , 2522 . โพลีฟีนอลอ ซิเดสในพืช PHYTOCHEM - 18 istry 193 – 215
สา ทรงไตรย์ , เอ็น , เกตุษา , S . , รถตู้ Doorn w.g. , 2548 ผลของ composi แก๊ส tion และความชื้นสัมพัทธ์ต่อชราภาพเฉพาะกล้วยผลไม้ไทยเจ Agric . วิทย์ , ในกด .
sapiah ม. acedo a.l. ซาบารี , , , , S.D . , ilag ชะ ชะ kuthubutheen , , , เอ. เจ.
1990 โรคหลังการเก็บเกี่ยวและกีฏวิทยาของกล้วย ใน : ฮัสซาน เอ pantastico อีบี ( แผนที่ ) กล้วยผลไม้หลังการเก็บเกี่ยว : พัฒนาการ , สรีรวิทยา , การจัดการและการตลาดในอาเซียน ฮัน - dling อาหารอาเซียนสำนักงานกัวลาลัมเปอร์ , pp . 104 ) 111 .
Singleton v.l. รอสซี่ j.a. , 2508 .ชีสของฟีนอลิกรวมกับ phosphomolybdenic ฟอสโฟทังสติกแอซิด reagents เป็น เจ นอล . vitic .
16 , 144 ) 158 .
วีเวอร์ , C , ชาลี , 1974 , เอช. . สีน้ำตาลของอาหารสุก กล้วย
Sci . . 39 , 200 – 1202 .