Sampling and measurementsGrowth per

Sampling and measurements
Growth performance: The pigs were individually weighed at the start and on d 14 and 28 of the trial, and the average body weight gain (BWG) was calculated.
Blood sample: On d 14 and 28, peripheral blood was obtained through puncture of vena cava from one pig per pen and collected in a 5-mL evacuated tube (Becton Dickinson Vacutainer Systems, Franklin Lakes, NJ). Immediately after blood collection, the tubes were gently rocked several times and centrifuged (1,200g for 15 min). After centrifugation, serum samples were labeled and stored at -80C in cryogenic tubes until concentrations of GH and IGF-I were analyzed. The concentrations of GH and IGF-I were analyzed using commercially available RIA kits (Beijing Huaying Institute of Biological Technology, Beijing, China). All steps of the RIA for the serum GH and IGF-I were performed according to the kit protocol.
Small intestinal morphological structure: On d 14 and 28 of the experimental period, one pig was randomly selected from each pen and killed by intravenous injection of sodium pentobarbital. The gastrointestinal tracts were quickly removed, and approximately 2 cm segments of the duodenum, jejunum and ileum were taken from the middle of each part, cut transversely, washed with physiological saline and covered with tissue-tek O.C.T (Sakura finetek Japan Co., Ltd., Tokyo, Japan). The segments were cut approximately 7 μm thick with a freezing microtome (Leica Microsystems Co., Ltd., Shanghai, China), and stained with haematoxylin and eosin (Nabuurs et al., 1993). A total of ten intact, well-oriented crypt-villus units were selected for each intestinal cross-section. The villus height and the crypt depth were measured using an image processing and analysis system (Version 1, Leica Imaging Systems Co., Ltd., Cambridge, UK), and then the ratio of villus height to crypt depth (VH/CD) was calculated. Villus height was measured from the tip of the villus to villus-crypt junction and crypt depth was defined as the depth of the invagination between adjacent villi (Hou et al., 2006).

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

สุ่มตัวอย่างและการวัดประสิทธิภาพการเจริญเติบโต: สุกรมีน้ำหนักแต่ละ ที่เริ่มต้น และ d 14 และ 28 ของการทดลอง และคำนวณกำไรน้ำหนักตัวเฉลี่ย (BWG)ตัวอย่างเลือด: d 14 และ 28 เลือดต่อพ่วงได้รับผ่านการเจาะของ vena cava จากหมูหนึ่งต่อปากกา และรวบรวมใน 5 mL หลอดสุญญากาศ (ระบบ Vacutainer Becton สัน แฟรงคลินทะเลสาบ NJ) ทันทีหลังจากเก็บเลือด หลอดถูกเบา ๆ rocked centrifuged (1, 200g สำหรับ 15 นาที) และหลายครั้ง หลังจาก centrifugation ตัวอย่างซีรั่มติดป้าย และเก็บไว้ที่ - 80C ในท่อ cryogenic จนความเข้มข้นของ GH และ IGF-ฉันถูกวิเคราะห์ ความเข้มข้นของ GH และ IGF-ถูกวิเคราะห์โดยใช้ชุดเรียใช้ได้ในเชิงพาณิชย์ (ปักกิ่ง Huaying สถาบันชีวภาพเทคโนโลยี ปักกิ่ง จีน) ขั้นตอนทั้งหมดของเรียในซีรั่ม GH และ IGF-ฉันดำเนินตามโพรโทคอลชุดโครงสร้างของลำไส้เล็ก: d 14 และ 28 ของรอบระยะเวลาการทดลอง หมูหนึ่งถูกสุ่มเลือกจากปากกาแต่ละ และฆ่า โดยการฉีดทางหลอดเลือดดำ pentobarbital โซเดียม รามิดระบบถูกเอาออกอย่างรวดเร็ว และประมาณ 2 ซม.ส่วน duodenum, jejunum และ ileum ได้มาจากตรงกลางของแต่ละส่วน ตัด transversely ล้าง ด้วยน้ำเกลือ physiological และปกคลุม ด้วยเนื้อเยื่อ-tek O.C.T (ซากุระ finetek Co., Ltd. ประเทศญี่ปุ่น โตเกียว ญี่ปุ่น) เซ็กเมนต์ถูกตัดประมาณ 7 μm หนากับ microtome ตรึง (ไล Microsystems Co., Ltd. เซี่ยงไฮ้ จีน), และสี haematoxylin และ eosin (Nabuurs et al., 1993) จำนวน 10 หน่วยเหมือนเดิม ห้องพักแนว crypt villus ถูกเลือกสำหรับแต่ละระหว่างส่วนลำไส้ Villus ความสูงและความลึก crypt ถูกวัดโดยใช้การประมวลผลภาพและระบบวิเคราะห์ (รุ่น 1 ไลภาพระบบ Co., ltd เคมบริดจ์ สหราชอาณาจักร), และจากนั้น มีคำนวณอัตราส่วนความสูง villus ไปลึก crypt (VH/CD) Villus สูงที่วัดจากปลาย villus ที่เพื่อเชื่อมต่อ villus crypt และลึก crypt ถูกกำหนดเป็นความลึกของ invagination ระหว่างติด villi (Hou และ al., 2006)

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

การเก็บตัวอย่างและการวัดประสิทธิภาพการเจริญเติบโต. สุกรได้รับการชั่งน้ำหนักเป็นรายบุคคลที่เริ่มต้นและในวันที่ 14 และ 28 ของการทดลองและน้ำหนักตัวเฉลี่ย (BWG) ที่คำนวณได้ตัวอย่างเลือด: ใน d 14 และ 28 ในเลือดที่ได้รับผ่าน เจาะของ vena ลาคาวาจากหมูต่อปากกาและเก็บใน 5 มิลลิลิตรอพยพหลอด (Becton Dickinson Vacutainer ระบบแฟรงคลินเลคส์, นิวเจอร์ซีย์) ทันทีหลังจากที่เก็บเลือดหลอดที่ถูกโยกเบา ๆ หลายครั้งและหมุนเหวี่ยง (1,200gเวลา 15 นาที) หลังจากการหมุนเหวี่ยงตัวอย่างซีรั่มมีป้ายและเก็บไว้ที่-80Cในท่อแช่แข็งจนความเข้มข้นของ GH และ IGF-I วิเคราะห์ ความเข้มข้นของ GH และ IGF-I ได้รับการวิเคราะห์โดยใช้ในเชิงพาณิชย์ RIA ชุด (ปักกิ่ง Huaying สถาบันเทคโนโลยีชีวภาพ, ปักกิ่ง, จีน) ทุกขั้นตอนของ RIA สำหรับเซรั่ม GH และ IGF-I ได้ดำเนินการตามโปรโตคอลชุด. ขนาดเล็กโครงสร้างทางสัณฐานวิทยาของลำไส้: ในวันที่ 14 และ 28 ของระยะเวลาการทดลองหนึ่งหมูได้รับการสุ่มเลือกจากแต่ละปากกาและถูกฆ่าตายโดยการฉีดเข้าเส้นเลือดดำของ Pentobarbital โซเดียม ผืนถูกถอดออกในทางเดินอาหารได้อย่างรวดเร็วและประมาณ 2 ซม. ส่วนของลำไส้เล็กส่วนต้น jejunum และ ileum ถูกนำมาจากตรงกลางของแต่ละส่วนที่ตัดตามขวางล้างด้วยน้ำเกลือทางสรีรวิทยาและปกคลุมด้วยเนื้อเยื่อ tek ตุลาคม (ซากุระญี่ปุ่น FineTek จำกัด . กรุงโตเกียวประเทศญี่ปุ่น) ส่วนที่ถูกตัดประมาณ 7 ไมครอนหนากับการแช่แข็ง microtome (Leica Microsystems จำกัด , เซี่ยงไฮ้, ประเทศจีน) และย้อมด้วยสี haematoxylin และ Eosin (Nabuurs et al., 1993) รวมเป็นสิบเหมือนเดิมดีที่มุ่งเน้นหน่วยฝังศพใต้ถุนโบสถ์ villus ได้รับการคัดเลือกในแต่ละลำไส้ cross-section ความสูง villus และความลึกใต้ดินถูกวัดโดยใช้ระบบประมวลผลภาพและการวิเคราะห์ (ฉบับที่ 1, Leica Imaging Systems Co. , Ltd. เคมบริดจ์, สหราชอาณาจักร) แล้วอัตราส่วนของความสูงที่จะฝังศพใต้ถุนโบสถ์ villus ลึก (VH / CD) ได้ คำนวณ ความสูง villus วัดจากปลายของ villus จะมีทางแยก villus-ห้องใต้ดินและความลึกใต้ดินที่ถูกกำหนดให้เป็นความลึกของ invagination ระหว่าง villi ที่อยู่ติดกัน (Hou et al., 2006)

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

การสุ่มตัวอย่างและการเจริญเติบโตการวัด
: สุกร จากน้ำหนักที่เริ่มต้นและ D 14 และ 28 คดี และน้ำหนักตัวเฉลี่ยได้ ( ใช้ ) คือค่า
ตัวอย่างเลือด : D 14 และ 28 , กระแสเลือดผ่านเจาะของเวนาคาวา จากหมูต่อ ปากกาและเก็บ เป็น 5-ml ท่อสุญญากาศ ( เบคตอนดิกคินสัน vacutainer ระบบ Franklin Lakes , NJ )ทันทีหลังจากเก็บเลือด หลอดถูกเขย่าเบาๆ หลายๆ ครั้ง และระดับ ( 1 , 200  G 15 นาที ) หลังการปั่นเหวี่ยงตัวอย่างซีรั่มถูกติดป้ายชื่อ และเก็บไว้ที่ - 80 องศาเซลเซียส ในท่อแช่แข็งจนความเข้มข้นของ GH กระตุ้นและวิเคราะห์ ความเข้มข้นของ GH กระตุ้นใช้ได้ในเชิงพาณิชย์และวิเคราะห์ข้อมูลโดยใช้วิธีอิสระ ( ปักกิ่ง huaying สถาบันเทคโนโลยีทางชีวภาพปักกิ่ง , จีน ) ทุกขั้นตอนของวิธี สำหรับเซรั่มและ GH กระตุ้นได้ตามชุดโปรโตคอล โครงสร้างขนาดเล็กในลักษณะ
: D 14 และ 28 ของระยะเวลาทดลอง , หมูถูกสุ่มจากแต่ละปากกาและฆ่าโดยการฉีดทางหลอดเลือดดำของโซเดียม เพน . ที่มีจำนวนมากได้อย่างรวดเร็วกำจัดและประมาณ 2 เซนติเมตร ส่วนของลำไส้เล็ก ลำไส้เล็ก , ลำไส้และถ่ายจากตรงกลางของแต่ละส่วนที่ตัดตามขวาง , ล้างด้วยน้ำเกลือทางสรีรวิทยาและปกคลุมด้วยเนื้อเยื่อ o.c.t เต็ก ( ซากุระ finetek ญี่ปุ่น จำกัด , โตเกียว , ญี่ปุ่น ) ส่วนที่ถูกตัดประมาณ 7 μม. หนาด้วยการแช่แข็งเครื่องตัดชิ้นเนื้อ ( Leica Microsystems จำกัด , เซี่ยงไฮ้ , จีน )และย้อมสีด้วยฮีมาท๊อกซีลินและ eosin ( nabuurs et al . , 1993 ) รวมสิบเหมือนเดิม คือเน้นคัดเลือกหน่วยใต้ดินวิลลัสแต่ละไส้ ตัด . ความสูงและความลึกของวิลลัสฝังศพใต้ถุนโบสถ์วัดการใช้ระบบประมวลผลภาพและการวิเคราะห์ ( รุ่น 1 , Leica Imaging Systems Co . , Ltd . , Cambridge , UK )และอัตราส่วนของความสูงของวิลลัสเพื่อความลึกของหลุม ( ออสเตรเลีย / ซีดี ) คือการคำนวณ วิลลัส คือ ความสูงวัดจากปลายของวิลลัสกับวิลลัสห้องใต้ดิน Junction และห้องใต้ดินลึกกำหนดความลึกของินเวจิเนชันระหว่างวิไลที่อยู่ติดกัน ( Hou et al . , 2006 )