and the dry weights and the ไลปิด c

and the dry weights and the ไลปิด contents were measured over time.

25 The ไลปิด content of P. ellipsoidea increases after the nitrogen source is depleted. Thus, the cells which were pre-cultured in the MAS medium or the A6 medium were transferred to MAS medium or A6 medium with no nitrogen source. Samples were taken 0, 3, 6, 9, 12, 15 and 18 days after the transfer, and the dry weights and the ไลปิด contents were measured.
30 1-2. Measurement of ไลปิด Contents

The ไลปิด contents were measured by two methods. In the first method, ไลปิด were extracted, methyl-esterified and then quantified by GC-FID. After drying a• cell culture liquid at 105°C, the dry culture was



collected on a GF/F glass filter, which had been weighed, and washed with distilled water. Then, the dry weight was measured. Also, cells were collected from the same amount of the culture liquid by centrifugation, suspended in 0.1 N HCI and subjected to heat treatment at .100°C for five
5 minutes, and the ไลปิด were extracted by the Bligh-Dyer method (Bligh EG

and Dyer WJ. (1959) A rapid method for total ไลปิด extraction and purification. Can J Biochem Physiol. 37:911-917). A certain amount of n-pentadecane was added to the ไลปิด as an internal control.
[0054]

1 O The extracted sample was dried and solidified using a centrifugal concentration apparatus, and fatty acid methyl esters were collected using a fatty acid methylation kit (manufactured by Nacalai Tesque, Inc.) and a methyl ester purification kit (manufactured by Nacalai Tesque, Inc.) and then dried and solidified again. The dry sample was dissolved in 5 ml of
15 n-hexane to obtain a fatty acid methyl ester sample, and the sample was quantified by GC-FID under the following conditions.
[0055]

Apparatus: Shimadzu GC-2010 Plus

Column: factor FOUR VF-5 ms, 0.20 nm (inside diameter), 30 m

20 (length), 0.33 µm (thickness)

Temperature: 100°C (2 min)- 20°C/min - 310°C (10 min) Vaporizing chamber: 240°C Splitless
Detector: FID 320°C Carrier Gas: He
25 The components quantified were methyl ester สารประกอบs of C16:0, C16:1, C16:2, C18:0, C18:1, C18:2, C20:0 and C20:1, which were the main components. The amount of the triglycerides accumulated in the cells was estimated from the concentrations.
[0056]

30 In addition, as the second method, the oil content was also measured by NMR. Cells were harvested by centrifugation at 8,000 rpm for five minutes or longer and freeze-dried. Then, about 40 mg of the cells was taken and weighed, and the oil content per unit dry weight was measured



using the MQC-type oil content analyzer manufactured by Oxford Instruments. The calibration curve was drawn using olive oil according to the Japanese Pharmacopoeia as the standard substance.
[0057]
5 The ผลิตภาพไลปิด (mg d" L"1) in 1 L of culture medium was defined as the value derived by multiplying the ไลปิด content(%) per dry weight and the dry weight (mg L"1) of 1 L of the culture liquid and dividing the resultant by the cultivation days.
[0058]
1 O From the above experiment, three สายพันธุ์ with excellent ผลิตภาพไลปิด in 1 L of culture medium were selected and named JH1O11, JH1012 and JH1013.
[0059]
The changes in the intracellular ไลปิด contents of สายพันธุ์ JH1011,
15 JH1012 and JH1013 are shown in รูป 3A and รูป 3B. It can be recognized that, in สายพันธุ์ JH1011, JH1012 and JH1013, the ไลปิด contents increased remarkably compared to those of the สายพันธุ์ไวด์ไทป์, สายพันธุ์ Obi (WT), and สายพันธุ์ SP, which is the direct parental สายพันธุ์ of these variant สายพันธุ์ (สายพันธุ์ JH1011, JH1012 and JH1013). In other words, while the maximum
20 ไลปิด contents of the wild-type and สายพันธุ์ SP were around 30%, the maximum ไลปิด contents of สายพันธุ์ JH1011, JH1012 and JH1013 exceeded 50% (รูป
38). The สายพันธุ์ were cultured using the A6 medium, and the ผลิตภาพไลปิด was evaluated after 14 days.
[0060]
25 The ผลิตภาพไลปิด in 1 L of culture medium of each of สายพันธุ์ JH1011, JH1012 and JH1013 is also shown in รูป 3B. It can be seen that, in สายพันธุ์ JH1011, JH1012 and JH1013, the ผลิตภาพไลปิด in 1 L of culture medium increased remarkably compared to those of the สายพันธุ์ไวด์ไทป์, สายพันธุ์ Obi (WT), and สายพันธุ์ 5P, which is the direct parental สายพันธุ์ of these
30 variants.
1-3. Evaluation of Cultivation Using Raceway
Using a raceway system installed indoors (รูป 4), a test for evaluating the ผลิตภาพไลปิด of สายพันธุ์ JH1011, JH1012 and JH1013 was



conducted. The installation area of the raceway was 3.8 m2, and the set volume was 490 L. The cultivation was conducted under the conditions of a radiation •intensity of 200-300 µmol m•2 sec", a light-dark cycle of 12 h/12 h and a C02 concentration of 1 %.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

และมีวัดน้ำหนักแห้งและเนื้อหาไลปิดเวลา25 ไลปิดเนื้อหาของ P. ellipsoidea เพิ่มขึ้นหลังจากหมดแหล่งไนโตรเจน ดังนั้น เซลล์ซึ่งถูกก่อนเพาะเลี้ยงในกลางมาสหรือกลาง A6 ถูกโอน MAS ปานกลางหรือปานกลาง A6 กับไม่มีแหล่งไนโตรเจน ตัวอย่างที่ถ่าย 0, 3, 6, 9, 12, 15 และ 18 วันหลังจากที่ โอน และน้ำหนักแห้ง และเนื้อหาไลปิดที่วัด30 1-2 วัดของเนื้อหาไลปิดเนื้อหาไลปิดถูกวัด โดยวิธีการสองวิธี ในวิธีการแรก ไลปิดสกัด esterified เมทิลแล้ว วัด โดย GC-FID หลังจากแห้งของเหลววัฒนธรรมเซลล์ a• ที่ 105° C วัฒนธรรมแห้งได้ เก็บรวบรวมบนกรองแก้ว GF/F ซึ่งได้รับการชั่งน้ำหนัก และล้าง ด้วยน้ำกลั่น แล้ว ถูกวัดน้ำหนักแห้ง นอกจากนี้ เซลล์รวบรวมจากจำนวนเดียวกันของวัฒนธรรมของเหลว โดยการหมุนเหวี่ยง ในของ HCI 0.1 N และผ่านความร้อน.100° c สำหรับห้า5 นาที และไลปิดที่สกัด โดยวิธี Bligh ดายเออร์ (Bligh เช่นและทัน WJ วิธีการอย่างรวดเร็ว (1959) A ไลปิดรวมสกัดและทำให้บริสุทธิ์ สามารถ J 37:911 Biochem Physiol.-917) จำนวน n pentadecane ถูกเพิ่มไปไลปิดเป็นตัวควบคุมภายใน[0054]1 O ตัวอย่างแยกเป็นแห้ง และแข็งโดยใช้เครื่องเหวี่ยงความเข้มข้น และกรดไขมันเมทิล esters ถูกรวบรวมโดยใช้ชุดปรับกรดไขมัน (ผลิต โดย Nacalai Tesque, Inc.) และเมทิลเอสเตอร์บริสุทธิ์ชุด (ผลิต โดย Nacalai Tesque, Inc.) และแห้งแล้ว และมั่นคงอีกครั้ง ละลายใน 5 มล.ของตัวอย่างแห้ง15 n-ลีขอรับตัวอย่างกรดไขมันเมทิลเอสเทอร์ และตัวอย่างถูกวัด โดย GC-FID ภายใต้เงื่อนไขต่อไปนี้[0055]อุปกรณ์: Shimadzu GC-2010 บวกคอลัมน์: ปัจจัยสี่ VF-5 ms, nm (ภายในเส้นผ่าศูนย์กลาง) 0.20, 30 เมตร20 (ความยาว), 0.33 ไมครอน (ความหนา)อุณหภูมิ: 100° C (2 นาที) - 20° C/นาที - 310° C (10 นาที) ห้อง Vaporizing: 240° C Splitlessการตรวจจับ: FID 320° C ผู้ขนส่งก๊าซ: เขา25 ส่วนการวัดเป็นเมทิลเอสเทอร์ สารประกอบs ของ C16:0, C16:1, C16:2, C18:0, C18:1, C18:2, C20:0 และ C20:1 ซึ่งเป็นส่วนประกอบหลัก ปริมาณของไตรกลีเซอไรด์ที่สะสมในเซลล์ประมาณจากความเข้มข้นนี้[0056]30 นอกจากนี้ เป็นวิธีการที่สอง ปริมาณน้ำมันถูกยังวัด โดย NMR เซลล์เก็บเกี่ยว โดยการหมุนเหวี่ยงที่ 8,000 rpm 5 นาที หรือนานกว่า และแห้ง จากนั้น นำ และชั่งน้ำหนักประมาณ 40 มิลลิกรัมของเซลล์ และมีวัดปริมาณน้ำมันต่อน้ำหนักแห้ง ใช้ตัว MQC ชนิดน้ำมันเนื้อหาวิเคราะห์โดยเครื่องมือ Oxford กราฟเทียบถูกวาดโดยใช้น้ำมันมะกอกตาม Pharmacopoeia ญี่ปุ่นเป็นสารมาตรฐาน[0057]5 ผลิตภาพไลปิดตัว (มก. d" L "1) ใน 1 L ของกลางวัฒนธรรมถูกกำหนดเป็นค่าการคูณ content(%) ไลปิดต่อน้ำหนักรถและน้ำหนักแห้ง (mg L "1) ของเหลววัฒนธรรม 1 L และหารเอาวันเพาะปลูก[0058]1 O จากการทดลองข้างต้น สามสายพันธุ์กับผลิตภาพไลปิดเยี่ยมใน 1 L ของวัฒนธรรมสื่อที่เลือก และชื่อ JH1O11, JH1012 และ JH1013[0059]การเปลี่ยนแปลงในเนื้อหาการสกัด intracellular ไลปิดของสายพันธุ์ JH101115 JH1012 และ JH1013 จะแสดงในรูป 3A และรูป 3B สามารถรับรู้การ สายพันธุ์ JH1011, JH1012 และ JH1013 ไลปิดเนื้อหาที่เพิ่มขึ้นอย่างน่าทึ่งเมื่อเทียบกับปีสายพันธุ์ไวด์ไทป์ สายพันธุ์โอบิ (WT), และสายพันธุ์ SP ซึ่งเป็นสายพันธุ์ผู้ปกครองโดยตรงของสายพันธุ์ตัวแปรเหล่านี้ (สายพันธุ์ JH1011, JH1012 และ JH1013) ในคำอื่น ๆ ในขณะที่สูงสุด20 ไลปิดเนื้อหาของชนิดป่าและสายพันธุ์ SP ได้ประมาณ 30% เนื้อหาสูงสุดไลปิดของสายพันธุ์ JH1011, JH1012 และ JH1013 เกิน 50% (รูป38) . สายพันธุ์ถูกเพาะเลี้ยงโดยใช้กลาง A6 และผลิตภาพไลปิดรับการประเมินภายใน 14 วัน[0060]25 ผลิตภาพไลปิดใน 1 L ของกลางวัฒนธรรมของแต่ละสายพันธุ์ JH1011, JH1012 และ JH1013 แสดงอยู่ในรูป 3B จะเห็นได้ว่า สายพันธุ์ JH1011, JH1012 และ JH1013 ผลิตภาพไลปิดใน 1 L ของวัฒนธรรมกลางเพิ่มขึ้นอย่างน่าทึ่งเมื่อเทียบกับสายพันธุ์ไวด์ไทป์ สายพันธุ์โอบิ (WT), และสายพันธุ์ 5P ซึ่งเป็นสายพันธุ์ผู้ปกครองโดยตรงเหล่านี้ตัวแปรที่ 301-3 การประเมินผลของการเพาะปลูกที่ใช้สนามแข่งโดยใช้สนามแข่งระบบติดตั้งร่ม (รูป 4), การทดสอบการประเมินผลิตภาพไลปิดของสายพันธุ์ JH1011, JH1012 และ JH1013 ได้ ดำเนินการ พื้นที่ติดตั้งของสนามแข่ง 3.8 m2 และระดับเสียงชุด 490 ลิตร การเพาะปลูกถูกดำเนินการภายใต้เงื่อนไขของ •intensity รังสี 200-300 µmol m•2 วินาที" วงจรไฟมืด 12 ชม. 12 ชั่วโมงและความเข้มข้น C02 1%

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

และน้ำหนักแห้งและไลปิดเนื้อหาถูกวัดในช่วงเวลา. 25 ไลปิดเนื้อหาของพี ellipsoidea เพิ่มขึ้นหลังจากที่แหล่งไนโตรเจนจะหมด ดังนั้นเซลล์ที่อยู่ก่อนการเพาะเลี้ยงในสื่อ MAS หรือสื่อ A6 ถูกย้ายไปขนาดกลางหรือขนาดกลาง MAS A6 กับแหล่งไนโตรเจนไม่มี นำตัวอย่างที่ 0, 3, 6, 9, 12, 15 และ 18 วันหลังจากการโอนและน้ำหนักแห้งและไลปิดเนื้อหาถูกวัด. 30 1-2 การวัดไลปิดสารบัญไลปิดเนื้อหาถูกวัดโดยสองวิธี ในวิธีแรกไลปิดสกัด, methyl-esterified แล้ววัดโดย GC-FID หลังจากการอบแห้ง•การเพาะเลี้ยงเซลล์ของเหลวที่ 105 ° C, วัฒนธรรมแห้งที่เก็บจาก A / กรองแก้ว F GF ซึ่งได้รับการชั่งน้ำหนักและล้างด้วยน้ำกลั่น จากนั้นน้ำหนักแห้งวัด นอกจากนี้เซลล์ที่ถูกเก็บรวบรวมจากจำนวนเดียวกันของของเหลววัฒนธรรมโดยการหมุนเหวี่ยงการระงับใน 0.1 N HCI และอยู่ภายใต้การรักษาความร้อนที่ 0.100 ° C เป็นเวลาห้า5 นาทีและไลปิดถูกสกัดโดยวิธีไบลห์-Dyer (ไบลห์ EG และย้อม WJ (1959) วิธีการที่รวดเร็วรวมทั้งสิ้นไลปิดการสกัดและการทำให้บริสุทธิ์ Can J Biochem Physiol 37:... 911-917) จำนวนหนึ่งของ N-pentadecane ถูกบันทึกอยู่ในไลปิดเป็นระบบการควบคุมภายใน. [0054] 1 โอกลุ่มตัวอย่างที่สกัดได้เมื่อแห้งและผลึกโดยใช้อุปกรณ์ที่มีความเข้มข้นแรงเหวี่ยงและเอสเทอกรดไขมันโอเมธิลที่ถูกเก็บรวบรวมโดยใช้ชุดกรดไขมัน methylation ( ผลิตโดย Nacalai Tesque, Inc) และชุดเมทิลเอสเตอร์บริสุทธิ์ (ผลิตโดย Nacalai Tesque, Inc) และจากนั้นแห้งและเสริมความมั่นคงอีกครั้ง ตัวอย่างแห้งถูกละลายใน 5 มิลลิลิตร15 N-เฮกเซนที่จะได้รับกรดไขมันตัวอย่างเมทิลเอสเตอร์และตัวอย่างที่ถูกวัดโดย GC-FID ภายใต้เงื่อนไขดังต่อไปนี้. [0055] เครื่องมือ: Shimadzu GC-2010 พลัสคอลัมน์: ปัจจัยสี่ VF-5 ms 0.20 นาโนเมตร (เส้นผ่าศูนย์กลางภายใน) 30 เมตร20 (ความยาว) 0.33 ไมครอน (หนา) อุณหภูมิ: 100 ° C (2 นาที) - 20 ° C / นาที - 310 ° C (10 นาที) vaporizing ห้อง: 240 องศาเซลเซียส Splitless ตรวจวัด: FID 320 ° C Carrier แก๊ส: เขา25 ส่วนประกอบวัดเป็นเมทิลเอสเตอร์สารประกอบของ C16: 0, C16: 1, C16: 2, C18: 0, C18: 1, C18: 2, C20: 0 และ C20: 1 ซึ่งเป็นส่วนประกอบหลัก ปริมาณของไตรกลีเซอไรด์ที่สะสมในเซลล์ที่ได้รับการประเมินจากความเข้มข้น. [0056] 30 นอกจากนี้ยังเป็นวิธีที่สองเนื้อหาน้ำมันก็ยังวัดจาก NMR เซลล์ที่ถูกเก็บเกี่ยวโดยการหมุนเหวี่ยงที่ 8,000 รอบต่อนาทีเป็นเวลาห้านาทีหรือนานและแห้ง จากนั้นประมาณ 40 มิลลิกรัมของเซลล์ถูกนำและชั่งน้ำหนักและปริมาณน้ำมันต่อหน่วยน้ำหนักแห้งวัดโดยใช้ MQC ชนิดวิเคราะห์ปริมาณน้ำมันที่ผลิตโดยฟอร์ดเครื่องดนตรี เส้นโค้งการสอบเทียบที่ถูกวาดโดยใช้น้ำมันมะกอกตามญี่ปุ่นตำรับยาเป็นสารมาตรฐาน. [0057] 5 ผลิตภาพไลปิด (MG D "L" 1) ใน 1 ลิตรของกลางวัฒนธรรมถูกกำหนดเป็นค่าที่ได้จากการคูณ ไลเนื้อหาปิด (%) ต่อน้ำหนักแห้งและน้ำหนักแห้ง (mG L "1) ของ 1 ลิตรของของเหลววัฒนธรรมและการหารผลโดยวันที่เพาะปลูกได้. [0058] 1 O จากการทดลองดังกล่าวข้างต้นทั้งสามสายพันธุ์กับที่ยอดเยี่ยม ผลิตภาพไลปิดใน 1 ลิตรของกลางวัฒนธรรมได้รับการคัดเลือกและตั้งชื่อ JH1O11, JH1012 และ JH1013. [0059] การเปลี่ยนแปลงในภายในเซลล์ไลปิดเนื้อหาของสายพันธุ์ JH1011, 15 JH1012 และ JH1013 จะแสดงใน 3A รูปและรูป 3B. มัน ได้รับการยอมรับว่าในสายพันธุ์ JH1011, JH1012 และ JH1013, ไลปิดเนื้อหาเพิ่มขึ้นอย่างน่าทึ่งเมื่อเทียบกับของสายพันธุ์ไวด์ไทป์, สายพันธุ์โอบี (WT) และสายพันธุ์ SP ซึ่งเป็นผู้ปกครองโดยตรงสาย พันธุ์ของตัวแปรเหล่านี้สายพันธุ์ (สายพันธุ์ JH1011, JH1012 และ JH1013). ในคำอื่น ๆ ในขณะที่สูงสุด20 ไลปิดเนื้อหาของป่าชนิดและสายพันธุ์ SP ประมาณ 30% สูงสุดไลปิดเนื้อหาของสายพันธุ์ JH1011 , JH1012 และ JH1013 เกิน 50% (รูปที่ 38) สายพันธุ์โดยการเพาะโดยใช้สื่อ A6 และผลิตภาพไลปิดรับการประเมิน 14 วันหลังจาก. [0060] 25 ผลิตภาพไลปิดใน 1 ลิตรของกลางวัฒนธรรมของแต่ละสายพันธุ์ JH1011, JH1012 และ JH1013 ยังแสดงให้เห็น ในรูป 3B จะเห็นได้ว่าในสายพันธุ์ JH1011, JH1012 และ JH1013 ที่ผลิตภาพไลปิดใน 1 ลิตรของกลางวัฒนธรรมเพิ่มขึ้นอย่างน่าทึ่งเมื่อเทียบกับของสายพันธุ์ไวด์ไทป์, สายพันธุ์โอบี (WT) และสายพันธุ์ 5P ซึ่งเป็นสายพันธุ์ของผู้ปกครองโดยตรงของทั้ง30 สายพันธุ์. 1-3 การประเมินผลของการเพาะปลูกการใช้ร่องน้ำใช้ระบบรางอาคารที่ติดตั้ง (รูปที่ 4) การทดสอบสำหรับการประเมินผลิตภาพไลปิดของสายพันธุ์ JH1011, JH1012 และ JH1013 ได้รับการดำเนินการ พื้นที่การติดตั้งราง 3.8 M2, และปริมาณที่กำหนดไว้คือ 490 ลิตรการเพาะปลูกได้ดำเนินการภายใต้เงื่อนไขของรังสี•ความเข้มของไมโครโมล 200-300 เมตร• 2 วินาที "วงจรแสงมืดของ 12 ชั่วโมง / 12 ชั่วโมงและมีความเข้มข้น C02 1%

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

และน้ำหนักแห้ง และเนื้อหาไลปิดได้ตลอดเวลา25 ไลปิดเนื้อหาของหน้า ellipsoidea เพิ่มขึ้นหลังจากแหล่งไนโตรเจนเป็นหมด ดังนั้น เซลล์ที่เพาะเลี้ยงใน Mas ก่อนกลางหรือ A6 ขนาดกลางถูกย้ายมาสขนาดกลางหรือขนาดกลาง A6 ไม่มีแหล่งไนโตรเจน ตัวอย่างถูก 0 , 3 , 6 , 9 , 12 , 15 และ 18 วัน หลังจากการโอนเงิน และน้ำหนักแห้ง และเนื้อหาไลปิดถูกวัด30 1-2 . การวัดไลปิดเนื้อหาเนื้อหาไลปิดถูกวัดโดยสองวิธี ในวิธีแรก ไลปิดสกัดเมทิล esterified และ quantified โดย gc-fid . หลังการอบแห้งเป็นแต่ละเซลล์ของเหลวที่ 105 ° C , วัฒนธรรมแห้งเก็บใน GF / F กรองแก้ว ซึ่งมีน้ำหนัก และล้างด้วยน้ำกลั่น งั้น น้ำหนักแห้ง วัด นอกจากนี้ เซลล์ที่ถูกเก็บจากจำนวนเงินเดียวกันของของเหลววัฒนธรรมโดยการเหวี่ยงแยก สารแขวนลอยใน 0.1 N HCI และภายใต้การรักษาความร้อนที่ 100 องศา C นี้5 นาที และไลปิดถูกสกัดโดยวิธีไบล Dyer ( ไบลท์เช่นและ Dyer wj . ( 1959 ) เป็นวิธีที่รวดเร็วเพื่อสกัดไลปิดทั้งหมดและบริสุทธิ์ สามารถ J ชีวเคมีสรีรวิทยา มหาวิทยาลัยขอนแก่น . 37:911-917 ) จํานวนหนึ่งของ n-pentadecane ถูกเพิ่มเข้าไปไลปิดเป็นการควบคุมภายใน[ ที่ ]1 o สกัดตัวอย่างแห้งและแข็งโดยใช้เครื่องมือของแรงเหวี่ยง และกรดไขมันเมทิลเอสเทอร์ของกรดไขมันในการเก็บรวบรวมข้อมูลจากอุปกรณ์ที่ผลิตโดย nacalai tesque , Inc ) และเมทิลเอสเทอร์ ฟอก Kit ( ผลิตโดย nacalai tesque , Inc ) และแห้งและแข็งอีก ตัวอย่างแห้ง ละลายได้ใน 5 มิลลิลิตร15 บีบเพื่อให้ได้กรดไขมันเมทิลเอสเทอร์ ตัวอย่าง และตัวอย่างถูกวัดโดย gc-fid ภายใต้เงื่อนไขต่อไปนี้[ 0055 ]อุปกรณ์ : Shimadzu gc-2010 พลัสคอลัมน์ : ปัจจัย 4 นางสาว vf-5 0.20 nm ( เส้นผ่าศูนย์กลางภายใน ) , 30 ม.20 ( ความยาว ) , 0.33 µ M ( หนา )อุณหภูมิ : 100 ° C ( 2 นาที ) - 20 ° C / มิน - 310 ° C ( 10 นาที ) vaporizing ห้อง : 240 ° C splitlessเครื่องตรวจจับ : FID 320 ต่อเรือบรรทุกก๊าซ : เขา25 ส่วนวัดเป็นเมทิลเอสเทอร์ สารประกอบของ c16:0 c16:1 c16:2 , , , c18:0 ที่ทำการ C18 , , , และ c20:0 c20:1 ซึ่งเป็นองค์ประกอบหลัก ปริมาณของไตรกลีเซอไรด์ที่สะสมในเซลล์ได้ถูกคำนวณจากความเข้มข้น[ 0056 ]30 นอกจากนี้เป็นวิธีที่สอง ปริมาณน้ำมันก็วัดด้วยค่ะ เซลล์ที่ถูกเก็บเกี่ยวโดยการเหวี่ยงแยกที่ 8 , 000 รอบต่อนาที เป็นเวลา 5 นาที หรือนานกว่านั้น และทำให้แห้งด้วยความเย็น จากนั้น ประมาณ 40 มิลลิกรัมเซลล์ถูกถ่ายน้ำหนัก และปริมาณน้ำมันต่อหน่วยน้ำหนักแห้งคือวัดการใช้น้ำมัน mqc ประเภทวิเคราะห์เนื้อหาที่ผลิตโดยฟอร์ดเครื่องมือ ปรับแต่งเส้นโค้งวาดโดยใช้น้ำมันมะกอกตามเภสัชตำรับญี่ปุ่นเป็นสารมาตรฐาน[ 0057 ]5 ผลิตภาพไลปิด ( มก. D " L " 1 ) ใน 1 ลิตรของอาหารเลี้ยงเชื้อเป็นกำหนดเป็นค่าที่ได้จากการคูณไลปิดเนื้อหา ( % ) ต่อน้ำหนักแห้ง และน้ำหนักแห้ง ( mg L " 1 ) 1 ลิตรของอาหารเหลวและหารเป็นผลจากการวัน[ 0058 ]1 . จากผลการทดลองข้างต้นสามสายพันธุ์กับผลิตภาพไลปิดยอดเยี่ยมใน 1 ลิตรของอาหารเลี้ยงเชื้อที่ชื่อ jh1o11 jh1012 jh1013 , และ .[ 0059 ]การเปลี่ยนแปลงในเนื้อหาของการไลปิด jh1011 สายพันธุ์ ,15 jh1012 และ jh1013 แสดงในรูปรูป 3A 3B และ มันสามารถได้รับการยอมรับในสายพันธุ์ jh1011 jh1012 jh1013 , และ เนื้อหาไลปิดเพิ่มขึ้นมากเมื่อเทียบกับของสายพันธุ์ไวด์ไทป์สายพันธุ์ , โอบิ ( WT ) และสายพันธุ์ SP ซึ่งเป็นสายพันธุ์ผู้ปกครองโดยตรงเหล่านี้แตกต่างสายพันธุ์ ( สายพันธุ์ jh1011 jh1012 , และ jh1013 ) ในคำอื่น ๆในขณะที่สูงสุด20 เนื้อหาไลปิดของความเหมือนกับสายพันธุ์ SP อยู่ 30 เปอร์เซ็นต์ , สูงสุดไลปิดเนื้อหาของ jh1011 สายพันธุ์ , และ jh1012 jh1013 เกิน 50% ( รูป38 ) การเพาะเลี้ยงสายพันธุ์ใช้ A6 ขนาดกลาง และผลิตภาพไลปิดประเมินหลังจาก 14 วัน[ 0060 ]25 ผลิตภาพไลปิดใน 1 ลิตรของอาหารเลี้ยงเชื้อของแต่ละสายพันธุ์ jh1011 jh1012 jh1013 , และยังแสดงในรูป 3B มันสามารถเห็นได้ว่า ในสายพันธุ์ jh1011 jh1012 jh1013 , และ , ผลิตภาพไลปิดใน 1 ลิตรของอาหารเลี้ยงเชื้อลดลงมากเมื่อเทียบกับของสายพันธุ์ไวด์ไทป์สายพันธุ์ , โอบิ ( WT ) และสายพันธุ์สายพันธุ์ 5P ซึ่งเป็นผู้ปกครองโดยตรงของเหล่านี้30 ตัวแปร1-3 การประเมินการใช้ร่องน้ำใช้ระบบติดตั้งรางน้ำ