Results and Discussion
The present study reports rapid, reliable and reproducible protocols for efficient micropropagation of two accessions of J. curcas. Although plant regeneration was reported previously (Sujatha and Mukta 1996, Jyothi et al. 2000, Wei et al. 2004,
Rajore and Batra 2005, Sujatha et al. 2005, Nannapat et al. 2006, Datta et al. 2007),
an attempt was made to achieve a higher frequency of regeneration to enhance micropropagation. As selection of explants is an important criterion, different explants were used presently and encouraging results obtained with CN, AN and ST explants through direct regeneration, and through callus and via somatic embryos.
Adventitious shoot‐buds developed from all three explants of RSAD and KM accessions by the fourth week on medium‐A (Fig. 1a, b). The most efficient shoot‐ bud induction was recorded from CN explants viz. 95 ± 0.3 and 86 ± 0.6 in “RSAD” and “KM” accessions respectively followed by AN explants viz. 81 ± 0.3 and 76 ± 0.2 in “RSAD” and “KM” accessions, respectively and ST explants viz.
60 ± 0.4 and 64 ± 0.8 in “RSAD” and “KM” accessions, respectively (Table 2). The
cultured shoots proliferated to about 5 cm in length with fully expanded leaves by the end of the fourth week after transfer to medium‐D. Shoots could be regenerated with a higher efficiency from CN explants (94 ± 0.3 in “RSAD” and
92 ± 0.3 in “KM” accessions than those from AN and ST explants and were also induced to develop roots on medium‐G with a higher efficiency. Although direct shoot regeneration was earlier reported from AN explants (Sujatha et al. 2005, Nannapat et al. 2006, Datta et al. 2007), ST explants (Rajore and Batra 2005) and leaf segments (Sujatha et al. 2005), the present efficiency achieved is considerably higher.
Green nodular callus developed from CN and ST explants on medium‐B (Fig. 1d) with callusing frequency of 38 ± 0.5 to 69 ± 0.4 (Table 2). Shoot‐buds regenerated from these calluses (confirmed by histological studies) by the end of the second week on medium‐E proliferated into 3 ‐ 4 cm long shoots with fully expanded leaves by the end of the fourth week and developed roots on medium‐ G (Fig. 1d, e). A higher frequency of shoot regeneration was recorded from CN explants (30 ± 0.3 and 38 ± 0.4 in “RSAD” and “KM” accessions respectively), than those of ST explants (24 ± 0.3 and 28 ± 0.5 in “RSAD” and “KM” accessions, respectively) (Table 2). There are no reports of shoot regeneration via callus from the CN or ST explants. However, it was reported from leaf, hypocotyl, and petiole explants (Sujatha and Mukta 1996) and epicotyl explants (Wei et al. 2004).
Green and globular proembryos developed from embryogenic callus from CN explants on medium‐C further differentiated into heart‐shaped somatic embryos by the end of the third week (Fig. 1e, f). After the conversion of these
Results and DiscussionThe present study reports rapid, reliable and reproducible protocols for efficient micropropagation of two accessions of J. curcas. Although plant regeneration was reported previously (Sujatha and Mukta 1996, Jyothi et al. 2000, Wei et al. 2004,Rajore and Batra 2005, Sujatha et al. 2005, Nannapat et al. 2006, Datta et al. 2007),an attempt was made to achieve a higher frequency of regeneration to enhance micropropagation. As selection of explants is an important criterion, different explants were used presently and encouraging results obtained with CN, AN and ST explants through direct regeneration, and through callus and via somatic embryos.Adventitious shoot‐buds developed from all three explants of RSAD and KM accessions by the fourth week on medium‐A (Fig. 1a, b). The most efficient shoot‐ bud induction was recorded from CN explants viz. 95 ± 0.3 and 86 ± 0.6 in “RSAD” and “KM” accessions respectively followed by AN explants viz. 81 ± 0.3 and 76 ± 0.2 in “RSAD” and “KM” accessions, respectively and ST explants viz.60 ± 0.4 and 64 ± 0.8 in “RSAD” and “KM” accessions, respectively (Table 2). Thecultured shoots proliferated to about 5 cm in length with fully expanded leaves by the end of the fourth week after transfer to medium‐D. Shoots could be regenerated with a higher efficiency from CN explants (94 ± 0.3 in “RSAD” and92 ± 0.3 in “KM” accessions than those from AN and ST explants and were also induced to develop roots on medium‐G with a higher efficiency. Although direct shoot regeneration was earlier reported from AN explants (Sujatha et al. 2005, Nannapat et al. 2006, Datta et al. 2007), ST explants (Rajore and Batra 2005) and leaf segments (Sujatha et al. 2005), the present efficiency achieved is considerably higher.Green nodular callus developed from CN and ST explants on medium‐B (Fig. 1d) with callusing frequency of 38 ± 0.5 to 69 ± 0.4 (Table 2). Shoot‐buds regenerated from these calluses (confirmed by histological studies) by the end of the second week on medium‐E proliferated into 3 ‐ 4 cm long shoots with fully expanded leaves by the end of the fourth week and developed roots on medium‐ G (Fig. 1d, e). A higher frequency of shoot regeneration was recorded from CN explants (30 ± 0.3 and 38 ± 0.4 in “RSAD” and “KM” accessions respectively), than those of ST explants (24 ± 0.3 and 28 ± 0.5 in “RSAD” and “KM” accessions, respectively) (Table 2). There are no reports of shoot regeneration via callus from the CN or ST explants. However, it was reported from leaf, hypocotyl, and petiole explants (Sujatha and Mukta 1996) and epicotyl explants (Wei et al. 2004).Green and globular proembryos developed from embryogenic callus from CN explants on medium‐C further differentiated into heart‐shaped somatic embryos by the end of the third week (Fig. 1e, f). After the conversion of these
การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลและการอภิปราย
ปัจจุบันศึกษารายงานอย่างรวดเร็วและเชื่อถือได้และมีประสิทธิภาพ ซึ่งโปรโตคอลสำหรับการขยายพันธุ์ของทั้งสองสายพันธุ์ของ curcas . แม้การฟื้นฟูโรงงานและรายงานก่อนหน้านี้ ( sujatha mukta 1996 jyothi et al . 2000 , Wei et al .
rajore batra 2004 และ 2005 sujatha et al . 2005 nannapat et al . 2006 ตตา et al . 2007 ) ,
มีความพยายามเพื่อให้บรรลุความถี่สูงของการส่งเสริมการขยายพันธุ์ . เมื่อเลือกอาหารเป็นเกณฑ์สำคัญ อาหารต่าง ๆในปัจจุบัน และนิมิตผลกับ CN , และเซนต์ผ่านการเพาะเลี้ยงแคลลัสและโดยตรง และผ่านทางโซมาติกเอ็มบริโอ .
ปากดียิง‐ลิ้มพัฒนาจากทั้งหมดสามชิ้นส่วนของ rsad และ accessions กม. โดยในสัปดาห์ที่สี่ใน‐ขนาดกลาง ( รูปที่ 1A , B ) มีประสิทธิภาพมากที่สุดยิง‐บั๊ดเหนี่ยวบันทึกจาก CN อาหาร ได้แก่ 95 ± 0.3 และ 0.6 ใน 86 ± " rsad " และ " km " ตัวอย่างตามลำดับตามด้วย ได้แก่ เลี้ยง . " rsad " และ " km " รวม 81 ±± 0.2 0.3 และ 76 ตามลำดับ และเซนต์
อาหาร ได้แก่" rsad " และ " km " รวม 60 ± 64 ± 0.4 และ 0.8 ตามลำดับ ( ตารางที่ 2 )
ยอดเพาะเลี้ยง proliferated ไปประมาณ 5 เซนติเมตร ) พร้อมขยายใบโดยการสิ้นสุดของสัปดาห์ที่สี่หลังจากโอนกลาง‐ D . ยอดอาจจะสร้างใหม่ที่มีประสิทธิภาพสูงกว่า จาก CN เลี้ยง ( 94 ± 0.3 " rsad " และ 92 ±
03 ใน " km " รวมกว่าจากและเซนต์ เลี้ยงและยังชักนำรากบนอาหารเพื่อพัฒนา‐ G ที่มีประสิทธิภาพสูงกว่า แม้ว่าการยิงโดยตรงคือการรายงานก่อนหน้านี้จากชิ้นส่วนพืช ( sujatha et al . 2005 nannapat et al . 2006 ตตา et al . 2007 ) , เซนต์ เลี้ยง ( และ rajore batra 2005 ) และกลุ่มใบ ( sujatha et al . 2005 )ปัจจุบันได้มีประสิทธิภาพสูงมาก เป็นสีเขียว
แคลลัสพัฒนาจาก CN และเซนต์ เลี้ยงบนอาหาร‐ B ( รูป callusing 1D ) กับความถี่ของ 38 ± 0.5 ถึง 69 ± 0.4 ( ตารางที่ 2 )ยิง‐ตาได้จากแคลลัสเหล่านี้ ( ยืนยันโดยผลการศึกษา ) โดยปลายสัปดาห์ที่สองในกลาง‐ E proliferated ใน 3 ‐ 4 ซม. ยาวยิงพร้อมขยายใบโดยการสิ้นสุดของสัปดาห์ที่สี่ และพัฒนารากบนอาหาร‐กรัม ( ภาพ 1D , E ) ความถี่สูงของการยิงบันทึกจาก CN อาหาร ( 30 ± 0.3 และ 38 ± 04 ใน " rsad " และ " km " ตัวอย่างตามลำดับ ) สูงกว่าเซนต์อาหาร ( 24 ± 0.3 และ 0.5 ใน 28 ± " rsad " และ " km " สายพันธุ์ ตามลำดับ ( ตารางที่ 2 ) ไม่มีรายงานของการยิงผ่านแคลลัสจาก CN เนื้อเยื่อหรือ ST . อย่างไรก็ตาม มีรายงานจากระบบ และใบ ก้านใบ ( sujatha เนื้อเยื่อและเนื้อเยื่อ mukta 1996 ) และ Agrobacterium ( Wei et al .
2004 )สีเขียวและทรงกลม proembryos พัฒนาจากแคลลัสบนอาหารเลี้ยงเนื้อเยื่อจาก CN ‐ C เพิ่มเติมแตกต่างออกเป็นรูปหัวใจ‐โซมาติกเอ็มบริโอ โดยจุดสิ้นสุดของสัปดาห์ที่สาม ( ภาพที่ 1e , F ) หลังจากการแปลงเหล่านี้
การแปล กรุณารอสักครู่..
