2.3.2. Myoglobin redox determinatio

2.3.2. Myoglobin redox determination
Myoglobin oxidation was estimated using a modified method of pigment extraction as described by Warris (1979) and the equations as described by Tang, Faustman, and Hoagland (2004).
On each of the sampling days a core sample made up of three cubic (1.0 × 1.0 × 1.0 cm) samples, from three different positions in the steak, collectively weighing 10 g, were homogenised (P-8, Kinematica AG Littau, Switzerland) with 50 ml ice-cold 40 mM potassium phosphate buffer (pH 6.8). The homogenate was then stored at 4 °C for 60 min to allow for pigment extraction. The samples were centrifuged at 8603g for 25 min (4 °C) to remove all debris. The supernatant was carefully decanted into a cuvette and the absorbance of the solution was measured on a spectrophotometer (CE 2021, Cecil, Cambridge, England) at 503, 525, 557 and 582 nm, with the potassium buffer as the blank (proof bar). These absorbance values were entered into the following equations ( Tang et al., 2004) to obtain the relative concentrations of each of the redox forms:

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.3.2 การไมโยโกลบิน redox กำหนดไมโยโกลบินออกซิเดชันถูกประเมินโดยใช้วิธีปรับเปลี่ยนการสกัดผงตามที่อธิบายไว้ โดย Warris (1979) และสมการตามที่อธิบายไว้ โดยถัง Faustman และ Hoagland (2004)ในแต่ละวันสุ่มตัวอย่างหลักขึ้นอย่าง 3 ลูกบาศก์ (1.0 × 1.0 × 1.0 ซม.) จากตำแหน่งที่ต่างกันสามในสเต็ก ถูกเรียกชั่ง 10 กรัม homogenised (P-8, Kinematica AG Littau สวิตเซอร์แลนด์) กับ 50 ml 40 มม.ฉ่ำโพแทสเซียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์ (pH 6.8) Homogenate แล้วได้ถูกเก็บไว้ที่ 4 ° C สำหรับ 60 นาทีเพื่อให้ผงสกัด ตัวอย่างถูก centrifuged ที่ 8603g สำหรับ 25 นาที (4 ° C) การเอาเศษทั้งหมด Supernatant ถูก decanted อย่างระมัดระวังลงใน cuvette และมีวัด absorbance ของโซลูชันบนตัวเครื่องทดสอบกรดด่าง (CE 2021 เซซิล เคมบริดจ์ อังกฤษ) ที่ 503, 525, 557 และ 582 nm กับบัฟเฟอร์โพแทสเซียมเป็นว่าง (แถบหลักฐาน) ค่า absorbance เหล่านี้ถูกป้อนเข้าไปในสมการต่อไปนี้ (Tang et al., 2004) เพื่อให้ได้ความเข้มข้นที่สัมพันธ์กันของแต่ละฟอร์ม redox:

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.3.2 ความมุ่งมั่นอกซ์ myoglobin
ออกซิเดชัน Myoglobin เป็นที่คาดกันโดยใช้วิธีการแก้ไขของการสกัดเม็ดสีตามที่อธิบายไว้โดย Warris (1979) และสมการตามที่อธิบายไว้โดยรส Faustman และ Hoagland (2004).
ในแต่ละวันการสุ่มตัวอย่างตัวอย่างแกนสร้างขึ้นจากสาม ลูกบาศก์ (1.0 × 1.0 × 1.0 ซม.) ตัวอย่างจากสามตำแหน่งที่แตกต่างกันในสเต็กเรียกชั่งน้ำหนัก 10 กรัมถูกปั่น (P-8, Kinematica AG Littau วิตเซอร์แลนด์) 50 มลเย็น 40 มิลลิเมตรโพแทสเซียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์ (pH 6.8) homogenate ถูกเก็บไว้ที่อุณหภูมิ 4 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 60 นาทีเพื่อให้การสกัดเม็ดสี ตัวอย่างที่ถูกหมุนเหวี่ยงที่ 8603g เป็นเวลา 25 นาที (4 ° C) เพื่อเอาเศษทั้งหมด ใสถูก decanted ระมัดระวังเป็น cuvette และการดูดกลืนแสงของการแก้ปัญหาที่ถูกวัด Spectrophotometer (CE 2021, เซซิล, เคมบริดจ์ประเทศอังกฤษ) ที่ 503, 525, 557 และ 582 นาโนเมตรที่มีบัฟเฟอร์โพแทสเซียมเป็นว่างเปล่า (แถบหลักฐาน) . ค่าการดูดกลืนแสงเหล่านี้จะถูกป้อนเข้าสู่สมการดังต่อไปนี้ (Tang et al, 2004.) เพื่อให้ได้ความเข้มข้นของญาติของแต่ละรูปแบบรีดอกซ์:

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2.3.2 . myoglobin อกซ์
ไมโอโกลบินเกิดการหาวิธีแก้ไขวิธีการสกัดรงควัตถุตามที่อธิบายไว้โดย warris ( 1979 ) และสมการที่อธิบายไว้โดยตั้ง faustman และโฮกเลิน ( 2547 ) .
ในแต่ละตัวอย่างวันหลักตัวอย่างที่สร้างขึ้นจากสามลูกบาศก์ ( 1.0 ×× 1.0 ซม ) ตัวอย่างจาก สามตำแหน่งที่แตกต่างกันในสเต็ก รวมน้ำหนัก 10 กรัมเป็น homogenised ( p-8 kinematica AG , ลิททาว สวิตเซอร์แลนด์ ) กับเย็น 40 มม. 50 ml ( โพแทสเซียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์พีเอช 6.8 ) การแยกและเก็บรักษาที่อุณหภูมิ 4 องศา C นาน 60 นาที เพื่อให้สารสี จำนวนระดับที่ 8603g 25 นาที ( 4 ° C ) เพื่อเอาเศษและน่านรอบคอบรินลงในคิวเวตต์ และค่าการดูดกลืนแสงของสารละลายวัดบนเครื่อง ( CE 2021 , เซซิล เคมบริดจ์ ประเทศอังกฤษ ) ที่ 503 524 557 แล้ว 582 nm ด้วยบัฟเฟอร์โพแทสเซียมเป็นช่องว่าง ( หลักฐานบาร์ ) ค่าการดูดกลืนแสงเหล่านี้เข้าไปในสมการต่อไปนี้ ( Tang et al . , 2004 ) เพื่อให้ได้ความเข้มข้นสัมพัทธ์ของแต่ละ 1 :
แบบฟอร์ม