The incidence of alder blight disea

The incidence of alder blight disease has increased steadily since it was first described in
1993 (Gibbs et al. 1994), and very high losses have occurred in some areas, such as southeast
England, northeastern France, Bavaria and northern Spain (Gibbs 1995; Gibbs et al. 1999; Streito
et al. 2002; Jung and Blaschke 2004; Tuset et al. 2006). Heavy loss of alders as a result of P. alni infection may have serious effects on forest and soil composition, wildlife food and habitats, and soil erosion (Cree 2006).
Conservation of valuable genotypes of black alder is therefore imperative. In this regard,
efforts should focus on ex situ conservation, with germplasm collections of the most important
populations of alders in different zones, as in situ conservation is very difficult given the advanced state of the disease. Although conservation of the alder germplasm is possible by cold stratification and cryopreservation of seeds (Pawel 2010), storage of this material is of little interest, because seeds are genetically heterogeneous. Vegetative propagation of A. glutinosa through cuttings is possible by use of standard horticultural techniques (Périnet and Lalonde 1983); however, micropropagation methods would be beneficial for the large-scale multiplication, improvement, and conservation of this species.
Axillary shoot proliferation from cultured meristems is the most frequently used method for
micropropagation as this provides genetic stability and is easily attained in many plant species (George et al. 2008). In black alder, this in vitro culture technique would provide short-to-medium term ex situ storage of valuable genotypes and massive production of the clonal plant stock to restore areas devastated by the disease. In addition, micropropagation protocols are a prerequisite for cryopreservation and genetic transformation methods, which can complement conventional breeding programs.
Efficient methods are required for the clonal propagation of A. glutinosa that have been selected at a mature stage, because it is difficult to predict the characteristics of a mature tree from plants still in the juvenile phase and moreover, most individuals that require protection from the disease are already adult trees. Micropropagation by axillary shoot multiplication has been achieved in several species of genus Alnus although most of these reports refer to material of juvenile origin, such as seedlings or young trees (Garton et al. 1981; Périnet and Lalonde 1983; Tremblay and Lalonde 1984; Tremblay et al. 1986; Périnet and Tremblay 1987; Barghchi 1988). Despite technological advances that have
been made over the years, there have been few reports regarding of the propagation of mature Alnus trees (Périnet et al. 1988; Lall et al. 2005; Gailite and Auzenbaha 2010).
In view of the limited success of previous approaches to the in vitro culture of mature material
from A. glutinosa, and the interest in defining the optimal conditions for clonal micropropagation
and conservation, the main objectives of this research were: 1) to study the initiation and stabilization stages of shoot cultures derived from adult trees of A. glutinosa; 2) to optimize the shoot proliferation stage by evaluating the effect of different cytokinins and carbon source treatments; 3) to define the rooting ability of micropropagated shoots for plantlet regeneration and subsequent acclimatization of this species.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

อุบัติการณ์ของโรคโรค alder ได้เพิ่มขึ้นอย่างต่อเนื่องเนื่องจากมันถูกอธิบายไว้ใน1993 (Gibbs et al. ปี 1994), และขาดทุนสูงมากเกิดขึ้นในพื้นที่บางอย่าง เช่นตะวันออกเฉียงใต้อังกฤษ ฝรั่งเศสอีสาน บาวาเรีย และเหนือสเปน (Gibbs 1995 Al. ร้อยเอ็ด Gibbs 1999 Streitoร้อยเอ็ด al. 2002 จุงและ Blaschke 2004 Tuset et al. 2006) หนักสูญเสียจากการติดเชื้อ P. alni alders อาจมีผลร้ายแรงในป่า และองค์ประกอบของดิน อาหารสัตว์ป่า และอยู่อาศัย และพังทลายของดิน (ครี 2006)การอนุรักษ์คุณค่าของ alder สีดำจึงเป็นความจำเป็น ในเรื่องนี้ความพยายามควรเน้นอดีตซิอนุรักษ์ กับคอลเลกชัน germplasm ของสำคัญสุดประชากรของ alders ในโซนต่าง ๆ ในซิอนุรักษ์ได้มากยากให้รัฐขั้นสูงของการเกิดโรค แม้ว่าการอนุรักษ์ alder germplasm เป็นสาระเย็นและ cryopreservation ของเมล็ด (Pawel 2010), เก็บของวัสดุนี้ได้น่าสนใจน้อย เนื่องจากเมล็ดพันธุ์แปลงพันธุกรรมที่แตกต่างกัน เผยแพร่ glutinosa อ.ผ่าน cuttings ผักเรื้อรังได้ โดยใช้มาตรฐานผลผลิตทางเทคนิค (Périnet และ Lalonde 1983); อย่างไรก็ตาม วิธี micropropagation จะเป็นประโยชน์ต่อการคูณขนาดใหญ่ ปรับปรุง และอนุรักษ์พันธุ์นี้ขยายยิงรักแร้จาก meristems อ่างเป็นวิธีที่ใช้บ่อยสำหรับmicropropagation เช่นนี้ช่วยให้ความมั่นคงทางพันธุกรรม และจะบรรลุได้ในพืชหลายชนิด (จอร์จเอ็ด al. 2008) ในดำ alder เทคนิคนี้เพาะจะให้ระยะสั้นขนาดกลางอดีตซิเก็บของมีค่าและการผลิตขนาดใหญ่ของหุ้นโรงงาน clonal คืนพื้นที่ทำลาย โดยโรค , Micropropagation โพรโทคอลคือ ข้อกำหนดเบื้องต้นสำหรับ cryopreservation และวิธีการการเปลี่ยนแปลงทางพันธุกรรม ซึ่งสามารถเติมเต็มโปรแกรมการปรับปรุงพันธุ์แบบดั้งเดิมวิธีที่มีประสิทธิภาพจะต้องเผยแพร่ clonal ของ glutinosa อ.ที่ได้เลือกไว้ในขั้นตอนผู้ใหญ่ เนื่องจากยากต่อการทำนายลักษณะของต้นไม้ที่เติบโตจากพืชยังอยู่ในระยะเด็ก และนอกจากนี้ บุคคลส่วนใหญ่ที่ต้องการป้องกันโรคอยู่แล้วต้นผู้ใหญ่ โดยคูณยิงรักแร้ Micropropagation ได้รับความในหลายชนิดของพืชสกุล Alnus แม้ว่าส่วนใหญ่ของรายงานเหล่านี้หมายถึงวัสดุของเยาวชน เช่นกล้าไม้หรือไม้หนุ่ม (Garton et al. 1981 Périnet และ Lalonde 1983 Tremblay และ Lalonde 1984 Al. ร้อยเอ็ด Tremblay 1986 Périnet และ Tremblay 1987 Barghchi 1988) แม้ มีความก้าวหน้าทางเทคโนโลยีที่มีการทำปี มีรายงานเพียงเล็กน้อยเกี่ยวกับของการเผยแพร่ของผู้ใหญ่ Alnus (Périnet et al. 1988 ลอร์ et al. 2005 Gailite ก Auzenbaha 2010)มุมมองความสำเร็จก่อนหน้านี้วิธีการเพาะของผู้ใหญ่วัสดุจำกัดจากอ. glutinosa และสนใจในการกำหนดเงื่อนไขที่เหมาะสมสำหรับ clonal micropropagationและมีวัตถุประสงค์หลักของงานวิจัยนี้อนุรักษ์ : 1) เพื่อศึกษาขั้นตอนเริ่มต้นและเสถียรภาพของวัฒนธรรมการยิงมาจากต้นไม้สำหรับผู้ใหญ่ของ A. glutinosa 2) การปรับปรุงขั้นตอนการงอกยิง โดยการประเมินผลแตกต่างกัน cytokinins และคาร์บอนแหล่งรักษา 3) เพื่อกำหนดความสามารถของ micropropagated การถ่ายภาพสำหรับฟื้นฟู plantlet rooting และ acclimatization ต่อ ๆ มาพันธุ์นี้

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

อุบัติการณ์ของโรคทำลายต้นไม้ชนิดหนึ่งที่ได้เพิ่มขึ้นเรื่อย ๆ
เพราะมันเป็นครั้งแรกในปี1993 และการสูญเสียสูงมากที่เกิดขึ้นในบางพื้นที่เช่นทางตะวันออกเฉียงใต้ (กิ๊บส์ et al, 1994).
ประเทศอังกฤษ, ภาคตะวันออกเฉียงเหนือฝรั่งเศสบาวาเรียทางตอนเหนือของสเปน (กิ๊บส์ 1995; กิ๊บส์ et al, 1999;. Streito
et al, 2002;. จุงและ Blaschke 2004; Tuset et al, 2006). สูญเสียฤๅเป็นผลมาจากการติดเชื้อพี Alni อาจมีผลกระทบอย่างรุนแรงต่อป่าและองค์ประกอบดินอาหารสัตว์ป่าและที่อยู่อาศัยและการพังทลายของดิน (เหยียบ 2006).
การอนุรักษ์สายพันธุ์ที่มีคุณค่าของต้นไม้ชนิดหนึ่งสีดำดังนั้นจึงมีความจำเป็น ในเรื่องนี้พยายามที่ควรมุ่งเน้นไปที่การอนุรักษ์แหล่งกำเนิดอดีตกับคอลเลกชันของเชื้อพันธุกรรมที่สำคัญที่สุดของประชากรในเขตฤๅที่แตกต่างกันในการอนุรักษ์แหล่งกำเนิดเป็นเรื่องยากมากที่กำหนดขั้นของการเกิดโรค แม้ว่าการอนุรักษ์พันธุ์ต้นไม้ชนิดหนึ่งที่เป็นไปได้โดยการแบ่งชั้นที่หนาวเย็นและการเก็บรักษาเมล็ดพันธุ์ (Pawel 2010) การจัดเก็บของวัสดุนี้เป็นที่สนใจของเล็ก ๆ น้อย ๆ เพราะเมล็ดที่แตกต่างกันทางพันธุกรรม การขยายพันธุ์พืชของ glutinosa เอผ่านการตัดเป็นไปได้โดยการใช้เทคนิคการทำสวนมาตรฐาน (Périnetและ Lalonde 1983); แต่วิธีการขยายจะเป็นประโยชน์สำหรับการคูณขนาดใหญ่ในการปรับปรุงและการอนุรักษ์สายพันธุ์นี้. รักแร้งอกยิงจาก meristems เลี้ยงเป็นวิธีที่ใช้บ่อยที่สุดสำหรับการขยายเช่นนี้ให้เสถียรภาพทางพันธุกรรมและจะบรรลุได้อย่างง่ายดายในพืชหลายชนิด( จอร์จ et al. 2008) ในมะเกลือสีดำในเทคนิคการเพาะเลี้ยงในหลอดทดลองจะให้สั้นไปจนถึงขนาดกลางอดีตจัดเก็บข้อมูลแหล่งกำเนิดของสายพันธุ์ที่มีคุณค่าและการผลิตขนาดใหญ่ของสต็อกโรงงาน clonal ที่จะเรียกคืนพื้นที่ความเสียหายจากการเกิดโรค นอกจากนี้การขยายโปรโตคอลที่มีความจำเป็นสำหรับการเก็บรักษาและวิธีการเปลี่ยนแปลงทางพันธุกรรมซึ่งสามารถเติมเต็มโปรแกรมการปรับปรุงพันธุ์ธรรมดา. วิธีการที่มีประสิทธิภาพจำเป็นสำหรับการขยายพันธุ์ของ clonal glutinosa เอที่ได้รับการคัดเลือกในขั้นตอนเป็นผู้ใหญ่เพราะมันเป็นเรื่องยากที่จะคาดการณ์ ลักษณะของต้นไม้ผู้ใหญ่จากพืชยังคงอยู่ในระยะที่เด็กและเยาวชนและนอกจากนี้ประชาชนส่วนใหญ่ที่จำเป็นต้องมีการป้องกันจากโรคที่มีต้นไม้ที่เป็นผู้ใหญ่แล้ว การขยายโดยรักแร้คูณยิงได้รับความสำเร็จในหลายเผ่าพันธุ์ Alnus สกุลถึงแม้ว่าส่วนใหญ่ของรายงานเหล่านี้หมายถึงวัสดุที่เป็นแหล่งกำเนิดของเด็กและเยาวชนเช่นต้นกล้าหรือต้นไม้เล็ก (Garton et al, 1981;. Périnetและ Lalonde 1983; Tremblay และ Lalonde 1984; Tremblay et al, 1986;. Périnetและ Tremblay 1987; Barghchi 1988) แม้จะมีความก้าวหน้าทางเทคโนโลยีที่ได้รับการทำมากกว่าปีที่ผ่านมามีการรายงานไม่กี่เกี่ยวกับการขยายพันธุ์ของต้นไม้ Alnus ผู้ใหญ่. (Périnet et al, 1988;. Lall et al, 2005;. Gailite และ Auzenbaha 2010) ในมุมมองของความสำเร็จจำนวน จำกัด วิธีการก่อนหน้านี้ในการเพาะเลี้ยงในหลอดทดลองของวัสดุที่เป็นผู้ใหญ่จากglutinosa เอและความสนใจในการกำหนดเงื่อนไขที่เหมาะสมสำหรับการขยาย clonal และการอนุรักษ์ในวัตถุประสงค์หลักของงานวิจัยนี้คือ 1) เพื่อศึกษาขั้นตอนการเริ่มต้นและการรักษาเสถียรภาพของวัฒนธรรมที่ยิงมา จากต้นไม้ที่เป็นผู้ใหญ่ของเอ glutinosa; 2) เพื่อเพิ่มประสิทธิภาพขั้นตอนการขยายการถ่ายทำโดยการประเมินผลของไซโตไคนิที่แตกต่างกันและการรักษาแหล่งคาร์บอน; 3) การกำหนดความสามารถในการขจัดของหน่อสำหรับการฟื้นฟูเนื้อเยื่อของต้นและเคยชินกับสภาพที่ตามมาของสายพันธุ์นี้

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

อุบัติการณ์ของโรคอัลเดอร์ไหม้ได้เพิ่มขึ้นอย่างต่อเนื่องตั้งแต่มันได้รับการอธิบายครั้งแรกใน
1993 ( กิ๊ป et al . 1994 ) และขาดทุนสูงมาก เกิดขึ้นในบางพื้นที่ เช่น ตะวัน
อังกฤษ ภาคตะวันออกเฉียงเหนือ และภาคเหนือ สเปน ฝรั่งเศส บาวาเรีย ( กิ๊ป 1995 ; กิ๊ป et al . 2542 ; streito
et al . 2002 ; จอง blaschke 2004 ; tuset et al . 2006 ) ขาดทุนหนักของออลเดิร์สเป็นผลของพีการติดเชื้อ alni อาจมีผลร้ายแรงในป่าและองค์ประกอบของดิน แหล่งอาหาร และสัตว์ป่า และการพังทลายของดิน ( ครี 2006 ) .
การอนุรักษ์คุณค่าพันธุ์ Alder สีดำจึงจำเป็น ในการนี้
ควรมุ่งเน้นการอนุรักษ์พันธุกรรม EX กับคอลเลกชันของประชากรที่สำคัญที่สุดของออลเดิร์ส
ในโซนต่าง ๆในการอนุรักษ์มากยากให้รัฐขั้นสูงของโรค แม้ว่าการอนุรักษ์ Alder พันธุกรรมเป็นไปได้โดยการเย็นและการเก็บรักษาเมล็ดพันธุ์ ( พาเวล 2010 ) , กระเป๋าของวัสดุนี้เป็นประโยชน์น้อย เพราะเมล็ดมีพันธุกรรมที่แตกต่างกัน การขยายพันธุ์พืช .glutinosa ผ่านตัด อาจเป็นไปได้ โดยการใช้เทคนิคทางมาตรฐาน ( P é rinet และ lalonde 1983 ) อย่างไรก็ตาม วิธีการขยายพันธุ์จะเป็นประโยชน์สำหรับการคูณขนาดใหญ่ , การปรับปรุงและอนุรักษ์สายพันธุ์นี้ จำนวนการยิงจากการเพาะ meristems

เป็นวิธีที่ใช้บ่อยที่สุดการขยายพันธุ์นี้ให้เสถียรภาพทางพันธุกรรมและสามารถบรรลุในพืชหลายชนิด ( จอร์จ et al . 2008 ) ใน Alder สีดำ เทคนิคการเพาะเลี้ยงในหลอดทดลองนี้จะให้สั้นถึงกลางกระเป๋าแหล่งกำเนิดอดีตของพันธุ์ที่มีคุณค่าและระยะเวลาการผลิตขนาดใหญ่ของรูปแบบพืชหุ้นเพื่อเรียกคืนพื้นที่ทำลายโดยโรค นอกจากนี้การขยายพันธุ์ : เป็นเบื้องต้นสำหรับผู้ป่วยและวิธีการแปลงพันธุกรรมที่สามารถเสริมโปรแกรมการปรับปรุงพันธุ์แบบดั้งเดิม
วิธีที่มีประสิทธิภาพจะต้องสำหรับงานขยายพันธุ์ . glutinosa ที่ได้รับเลือกที่ใหญ่เพราะมันเป็นเรื่องยากที่จะทำนายลักษณะของผู้ใหญ่จากต้นพืชที่ยังอยู่ในขั้นตอนของเด็กและเยาวชน และนอกจากนี้บุคคลส่วนใหญ่ที่ต้องมีการป้องกันจากโรคแล้ว ต้นไม้โต การขยายพันธุ์โดยแร้ยิงคูณได้ประสบในหลายสายพันธุ์ของพืช alnus แม้ว่าส่วนใหญ่ของรายงานเหล่านี้หมายถึงวัสดุของเยาวชนที่มา เช่น ต้นกล้าต้นเล็ก ( การ์ตัน et al . 1981 ; P é rinet และ lalonde 1983 ; เทรมเบลย์ และ lalonde 1984 ; เทรมเบลย์ et al . 1986 ;P é rinet เทรมเบลย์ 1987 และ 1988 ; barghchi ) แม้จะมีความก้าวหน้าทางเทคโนโลยีที่มี
เกิดขึ้นมากกว่าปีที่ผ่านมา , มีไม่กี่ รายงานเรื่องของการเผยแพร่ของผู้ใหญ่ต้นไม้ alnus ( P é rinet et al . 1988 ; lall et al . 2005 ; และ gailite auzenbaha 2010 ) .
ในมุมมองของความสำเร็จ จำกัด ของวิธีการดังกล่าวไปในเนื้อเยื่อของผู้ใหญ่จาก glutinosa วัสดุ
,และความสนใจในการกำหนดสภาวะที่เหมาะสมสำหรับงาน
การขยายพันธุ์และการอนุรักษ์ วัตถุประสงค์หลักของการวิจัยครั้งนี้คือ 1 ) เพื่อศึกษาการเริ่มต้นและระยะการยิง วัฒนธรรมที่มาจากต้นไม้ผู้ใหญ่ของ glutinosa ; 2 ) เพื่อเพิ่มประสิทธิภาพการยิงเวทีโดยการประเมินผลของไซโตไคนินที่แตกต่างกันและการรักษาแหล่งคาร์บอน ;3 ) การกำหนดความสามารถในการขจัด micropropagated ฟื้นฟูการปลูกหน่อและตามมาของสายพันธุ์นี้