The experimental system consisted o

The experimental system consisted of 10 glass aquaria (17 l) in
an open, filtered (10 μm) and UV-treated seawater system where
temperature and salinity were computer controlled. Each aquarium
was stocked with 1800 taurine or non-taurine electroporated control
eggs (ca 100 eggs l−1
). This allowed the testing of the taurine treatment
and control in replicates of 5 aquaria treatment−1
. The NCM (National
Center for Mariculture) gilthead sea bream larval rearing protocol was
implemented (Tandler et al., 1989) which briefly included a 16 h/8 h
day/night photoperiod regime where 2 dph larvae were offered rotifers
(Brachionus rotundiformis) twice daily maintaining a prey concentration
of 10 rotifers ml−1
. The “greening” of the tanks was carried out by
adding the microalgae Nannochloropsis sp. twice daily to maintain a
tank concentration of 0.5 × 106 cells ml−1 until 10 dph. In parallel,
samples of treated and untreated eggs were incubated (as described
previously) to determine the rates of hatching and survival after 24 h.
In order to determine taurine content after electroporation, 8 l mesh
covered (275 μm) cages floating in 1500 l tanks were stocked with
electroporated or unelectroporated eggs (100 eggs l−1
) and sampled
for taurine determination. Larvae were also sampled at 2, 4, 6, 8 and
10 dph, 1.5 h after rotifer feeding. During sampling 10 larvae from
each experimental aquarium (5 larvae at 8 dph, due to small biomass
remaining in the aquaria) were measured using light microscopy
(OPTIKA B-350) for total body length (±0.1 mm), mastax number in
gut, (mastax is an indigestible part of the rotifer mouth apparatus that
can be used as a measure of rotifer feeding rate) and for the presence
of calculi in the urinary bladder which were recorded as small
(≤50 μm) or large (N50 μm). At the end of the experiment at 10 dph,
the remaining larvae in the experimental aquaria were counted to
determine survival rates and collected for taurine content analysis.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

การทดลองประกอบด้วยอควาเรีย 10 แก้ว (17 l) ในเปิด กรอง (10 ไมครอน) และระบบ UV ถือว่าน้ำทะเลที่คอมพิวเตอร์ควบคุมอุณหภูมิและความเค็มได้ พิพิธภัณฑ์สัตว์น้ำแต่ละรับฟรี 1800 taurine หรือควบคุม-taurine electroporatedไข่ (ca 100 ไข่ l−1). นี้อนุญาตให้มีการทดสอบการรักษา taurineและควบคุมเหมือนกับของอควาเรีย 5 treatment−1. NCM (ชาติศูนย์ Mariculture) gilthead ไทอ่อนเลี้ยงรโทคอดำเนินการ (Tandler et al. 1989) ซึ่งสั้น ๆ รวมเป็น 16 ชม. 8 ชั่วโมงระบอบการปกครองช่วงแสงของวันคืนที่อ่อนดีพีเอช 2 เลือก rotifers(Brachionus rotundiformis) วันละสองครั้งรักษาความเข้มข้นของเหยื่อของ ml−1 10 rotifers. "Greening" ของรถถังถูกดำเนินการโดยเพิ่มเอสพี Nannochloropsis สาหร่ายวันละสองครั้งเพื่อรักษาตัวถังความเข้มข้น 0.5 × 106 เซลล์ ml−1 จนถึง 10 ดีพีเอช ขนานตัวอย่างของไข่ที่รับการรักษา และบำบัดได้รับการกกตามก่อนหน้านี้) เพื่อตรวจสอบอัตราการฟักไข่และการอยู่รอดหลังจาก 24 ชมเพื่อกำหนดเนื้อหา taurine หลัง electroporation ตาข่าย 8 lกรง (275 ไมครอน) ครอบคลุมลอยในถัง 1500 l ได้ฟรีelectroporated หรือ unelectroporated ไข่ (ไข่ 100 l−1) และตัวอย่างสำหรับการกำหนด taurine ตัวอ่อนยังตัวอย่างที่ 2, 4, 6, 8 และดีพีเอช 10, 1.5 ชม.หลังกินโรติเฟอร์ ในระหว่างการสุ่มตัวอย่าง 10 ตัวอ่อนจากพิพิธภัณฑ์สัตว์น้ำแต่ละทดลอง (ตัวอ่อน 5 ที่ดีพีเอช 8 เนื่องจากชีวมวลขนาดเล็กที่เหลืออยู่ในอควาเรียการ) ถูกวัดโดยใช้ไมโครสโคแสง(OPTIKA B-350) สำหรับความยาวรวม (มม.) ถึง หมายเลข mastaxลำไส้, (mastax เป็นส่วนย่อยของเครื่องปากโรติเฟอร์ที่สามารถใช้ได้เป็นวัดของโรติเฟอร์ที่กินอัตรา) และ การมีอยู่ของ calculi ในกระเพาะปัสสาวะซึ่งมีบันทึกขนาดเล็ก(≤50 ไมครอน) หรือใหญ่ (N50 ไมครอน) เมื่อสิ้นสุดการทดลองที่ดีพีเอช 10ตัวอ่อนที่เหลือในอควาเรียทดลองนับไปกำหนดอัตราอยู่รอด และเก็บรวบรวมวิเคราะห์เนื้อหา taurine

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ทดลองระบบประกอบด้วยตู้กระจก 10 (17 ลิตร) ใน
เปิดกรอง (10 ไมครอน) และรังสียูวีได้รับการรักษาระบบน้ำทะเลที่
อุณหภูมิและความเค็มถูกควบคุมคอมพิวเตอร์ พิพิธภัณฑ์สัตว์น้ำแต่ละคน
ได้รับการเก็บรักษา 1800 ทอรีนหรือไม่ทอรีน electroporated ควบคุม
ไข่ (CA 100 ไข่ L-1
) นี้ได้รับอนุญาตการทดสอบของการรักษาทอรีน
และการควบคุมในการทำซ้ำ 5
ตู้รักษา-1 NCM (แห่งชาติ
ศูนย์ Mariculture) gilthead ทรายแดงทะเลโปรโตคอลอนุบาลได้รับการ
ดำเนินการ (Tandler et al., 1989) ซึ่งในเวลาสั้น ๆ รวม 16 ชั่วโมง / 8 ชั่วโมง
ระบอบการปกครอง Day / Night ช่วงแสงที่ 2 DPH ตัวอ่อนถูกนำเสนอโรติเฟอร์
(rotundiformis Brachionus) สองครั้ง ในชีวิตประจำวันการรักษาความเข้มข้นของเหยื่อ
10 โรติเฟอร์
mL-1 "การบ่น" ของรถถังได้ดำเนินการโดย
การเพิ่มสาหร่าย Nannochloropsis SP วันละสองครั้งเพื่อรักษา
ความเข้มข้นถัง 0.5 × 106 เซลล์ ML-1 จนถึงวันที่ 10 DPH ในแบบคู่ขนาน
ตัวอย่างของไข่ได้รับการรักษาและได้รับการรักษาถูกบ่ม (ตามที่อธิบายไว้
ก่อนหน้านี้) เพื่อตรวจสอบอัตราการฟักไข่และการอยู่รอดหลังจากผ่านไป 24 ชม.
เพื่อตรวจสอบเนื้อหาทอรีนหลังจาก electroporation, 8 L ตาข่าย
ครอบคลุม (275 ไมครอน) กระชัง 1500 L ถังเก็บรักษา
ไข่ electroporated หรือ unelectroporated (100 ไข่ L-1
) และตัวอย่าง
สำหรับการกำหนดทอรีน ตัวอ่อนยังเป็นตัวอย่างที่ 2, 4, 6, 8 และ
10 DPH 1.5 ชั่วโมงหลังจากให้อาหารโรติเฟอร์ ในระหว่างการสุ่มตัวอย่าง 10 ตัวอ่อนจาก
แต่ละตู้ปลาทดลอง (5 ตัวอ่อนที่ 8 DPH เนื่องจากชีวมวลขนาดเล็ก
ที่เหลืออยู่ในตู้) มีวัดโดยใช้กล้องจุลทรรศน์
(OPTIKA B-350) สำหรับความยาวลำตัวรวม (± 0.1 มิลลิเมตร) จำนวน mastax ใน
ลำไส้ (mastax เป็นส่วนย่อยของอุปกรณ์ปากโรติเฟอร์ที่
สามารถใช้เป็นตัวชี้วัดของโรติเฟอร์อัตราการเลี้ยงลูกด้วยนม) และสำหรับการปรากฏตัว
ของนิ่วในกระเพาะปัสสาวะซึ่งได้รับการบันทึกเป็นขนาดเล็ก
(≤50ไมครอน) หรือขนาดใหญ่ (N50 ไมครอน) ในตอนท้ายของการทดลองที่ 10 DPH ที่
ตัวอ่อนที่เหลืออยู่ในตู้ทดลองนับ
เป็นตัวกำหนดอัตราการรอดตายและเก็บไว้สำหรับการวิเคราะห์เนื้อหาทอรีน