Apart from SSC, pH of all the honey

Apart from SSC, pH of all the honeydew samples was decreased
throughout the storage period (Fig. 1d). All of the treated samples
had slightly lower pH compared to control sample at day 1 and day
4 of storage. After day 4, no significant difference of pH was found
between control and treated samples. The difference of pH at day 1
and day 4 could be partially due to the pH difference of coating
solutions (deionized water: pH 7.00; 2% chitosan: pH 5.07; 1%
CaCl2: pH 6.06; 1% CaCl2 þ 2% chitosan: pH 4.32). According to
Hodges (2003), pH of postharvest produce can be affected by
oxidative stress, environmental stress and harvest stress (e.g.,
weight loss), which results in disruption of membrane integrity as
well as cellular activities. The significant decrease in pH observed in
control group could be largely due to these stresses which had less
effect on treated samples (Hodges, 2003). These stresses also
caused a reduction of ATPase pumping capacity, thus decreasing
the cellular pH. However, TA was significantly increased in control

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

จาก SSC, pH ของตัวอย่างฮันนีดิวถูกลดลงตลอดระยะเวลาเก็บกิน 1d) ตัวอย่างการบำบัดทั้งหมดมีค่า pH ต่ำกว่าเล็กน้อยเมื่อเปรียบเทียบกับควบคุมตัวอย่างในวันที่ 1 และวัน4 ของการจัดเก็บ หลังจากวันที่ 4 พบไม่แตกต่างอย่างมีนัยสำคัญของค่า pHระหว่างตัวควบคุมและตัวอย่างการบำบัด ความแตกต่างของค่า pH ในวันที่ 1และวันที่ 4 อาจจะบางส่วนต่าง pH เคลือบโซลูชั่น (deionized น้ำ: pH 7.00 น. 2% ไคโตซาน: pH 5.07; 1%CaCl2: pH 6.06 Þ 1% CaCl2 2% ไคโตซาน: pH 4.32) ตามที่Hodges (2003), pH ของผลิตผลหลังการเก็บเกี่ยวสามารถได้รับผลกระทบโดยoxidative ความเครียด ความเครียดสิ่งแวดล้อม และเก็บเกี่ยวความเครียด (เช่นน้ำหนัก), ซึ่งผลทรัพยเมมเบรนความเป็นกิจกรรมดีเป็นโทรศัพท์มือถือ ลดลงอย่างมีนัยสำคัญในค่า pH ในกลุ่มควบคุมอาจจะเนื่องจากความเครียดเหล่านี้ซึ่งมีน้อยมากผลต่อการบำบัดตัวอย่าง (Hodges, 2003) เหล่านี้เน้นยังเกิดจากการลดกำลังสูบ ATPase จึง ลดลงเซลลูลาร์ pH อย่างไรก็ตาม ตามากขึ้นในการควบคุม

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

นอกเหนือจากเอสเอสพีเอชของทุกตัวอย่างน้ำหวานลดลงตลอดระยะเวลาการจัดเก็บข้อมูล (รูป. 1 d)
ตัวอย่างทั้งหมดได้รับการรักษามีค่า pH ลดลงเล็กน้อยเมื่อเทียบกับการควบคุมตัวอย่างในวันที่ 1 และวันที่4 ของการจัดเก็บข้อมูล หลังจากวันที่ 4 ไม่มีความแตกต่างของค่า pH ถูกพบระหว่างการควบคุมและตัวอย่างได้รับการรักษา ความแตกต่างของค่า pH ในวันที่ 1 และวันที่ 4 อาจจะมีบางส่วนเนื่องจากความแตกต่างค่า pH ของสารเคลือบผิวโซลูชั่น(น้ำปราศจากไอออน: pH 7.00 2% ไคโตซาน: pH 5.07; 1% CaCl2: pH 6.06; 1% CaCl2 þ 2% ไคโตซาน: ค่า pH 4.32) ตามที่ฮอดจ์ส (2003), พีเอชของผลิตผลหลังการเก็บเกี่ยวได้รับผลกระทบจากความเครียดออกซิเดชันความเครียดสิ่งแวดล้อมและความเครียดเก็บเกี่ยว(เช่นการสูญเสียน้ำหนัก) ซึ่งส่งผลให้เกิดการหยุดชะงักของความสมบูรณ์ของเมมเบรนเป็นทั้งกิจกรรมโทรศัพท์มือถือ การลดลงอย่างมีนัยสำคัญในค่า pH สังเกตในกลุ่มควบคุมอาจจะเป็นส่วนใหญ่เนื่องจากความเครียดเหล่านี้ที่มีน้อยกว่าผลกระทบต่อกลุ่มตัวอย่างได้รับการรักษา(ฮอดจ์ส, 2003) ความเครียดเหล่านี้ยังก่อให้เกิดการลดลงของความสามารถในการสูบน้ำ ATPase จึงลดลงค่าpH โทรศัพท์มือถือ อย่างไรก็ตาม TA เพิ่มขึ้นอย่างมีนัยสำคัญในการควบคุม

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

นอกเหนือจาก SSC , pH ของตัวอย่างทั้งหมดใน Honeydew ลดลง
ตลอดระยะเวลาการจัดเก็บข้อมูล ( ภาพดี ) ทั้งหมดของการปฏิบัติตัวอย่าง
มี pH ลดลงเล็กน้อยเมื่อเปรียบเทียบกับตัวอย่างควบคุม ในวันที่ 1 และวันที่
4 ของการเก็บรักษา หลังจากวันที่ 4 ไม่มีความแตกต่างของพีเอช พบ
ระหว่างการควบคุมและรักษาคน ความแตกต่างของพีเอชในวันที่ 1 และวันที่ 4
ได้บางส่วน เนื่องจากความแตกต่างของพีเอชเคลือบ
โซลูชั่น ( คล้ายเนื้อเยื่อประสานน้ำพีเอช 7.00 2 % ไคโตซานพีเอช 5.07 %
; 1 ผลิตโดย : M ; 1 % ผลิตไคโตซานþ 2% พีเอช 4.32 ) ตาม
เจส ( 2003 ) , pH ของผลิตผลหลังการเก็บเกี่ยวสามารถได้รับผลกระทบโดย
ความเครียดออกซิเดชันความเครียดสิ่งแวดล้อมและเก็บเกี่ยวความเครียด ( เช่น
การสูญเสียน้ำหนัก ) , ซึ่งผลในการหยุดชะงักของเมมเบรนความซื่อสัตย์ที่
รวมทั้งกิจกรรมของเซลล์ ลดลงอย่างมีนัยสำคัญที่พบใน
อกลุ่มควบคุม อาจจะเนื่องมาจากความเครียด ซึ่งมีผลน้อยกว่านี้
บนตัวอย่างได้รับการรักษา ( ฮอดเจส , 2003 ) เหล่านี้ความเครียดยังทำให้การลดลงของผล

สูบความจุจึงลดเซลล์ปร . อย่างไรก็ตาม , TA เพิ่มขึ้นอย่างมีนัยสำคัญ ในการควบคุม