3.2. Microstructural study
The microstructural study by Cryo-SEM was performed on
persimmon flesh samples that had been treated with CO2 after
storage at 15 ◦C, when a loss of effectiveness had been observed.
Fig. 3. Structure of the persimmon cv. ‘Rojo Brillante’ flesh analysed by Cryo-SEM from samples stored at 15 ◦C for 10, 20, 30 and 40 d ((A) and (B) 10 d, (C) and
(D) 20 d, (E) and (F) 30 d and (G) and (H) 40 d) and after being submitted to astringency removal treatment (RA) with CO2. tc: tannic cell, sm: soluble material,
cwd: cell wall degraded.
344 A. Salvador et al. / Postharvest Biology and Technology 49 (2008) 340–347
Fig. 4. Structure of the persimmon cv. ‘Rojo Brillante’ flesh analysed by Cryo-SEM from samples stored at 15 ◦C for 10, 20, 30 and 40 d ((A) and (B) 10 d, (C) and
(D) 20 d, (E) and (F) 30 d and (G) and (H) 40 d) followed by the astringency removal treatment (RA) with CO2 and after a shelf-life period of 5 d at 20 ◦C. tc: tannic
cell, sm: soluble material, im: insoluble material.
Fig. 3 shows the flesh after different storage periods (10, 20, 30
and 40 d) and after the CO2 treatment. Fig. 4 shows the samples
after a shelf-life period of 5 d at 20 ◦C. When the storage
time before the treatment increased (10, 20, 30 and 40 d), a progressive
degradation of the parenchymatic tissue was observed,
and the membranes and cell walls were especially affected at 30
and 40 d (Fig. 3A, C, E and G). This phenomenon was particularly
noticeable from 30 d of storage onwards, when it could be
observed that the intercellular spaces that were formerly occupied
by air were now full of soluble material from inside the cells
(Fig. 3F and H). After 30 d of storage (Fig. 3F), some of the cell
walls can be seen to be highly degraded. The loss of adhesive
material that acts by cementing the cell walls could explain the
observed structural breakdown, with larger intercellular spaces
now invaded by soluble material especially after 40 d of storage
(Fig. 3G and H). These results would be related to the progressive
softening of the fruit when the storage time increased (Fig. 2b).
In all the samples examined after storage at 15 ◦C (Fig. 3), some
tannin cells can be seen which have insoluble material inside the
vacuoles (Fig. 3A, B, E and G); as previous studies have shown,
this is related to the stage of ripening (Salvador et al., 2007).
Fig. 4 shows the flesh microstructure when stored at 15 ◦C,
treated with CO2 and finally transferred to 20 ◦C to simulate
a shelf-life period of 5 d. When the fruit was stored at 15 ◦C
A. Salvador et al. / Postharvest Biology and Technology 49 (2008) 340–347 345
for longer, the most significant change was that the membranes
and cell walls appear to be considerably degraded, especially
if compared with the flesh with no shelf-life period simulation
(Fig. 3). Samples stored at 15 ◦C had higher firmness values than
those with the shelf-life period simulation (Fig. 2b).
Some tannin cells were observed to have insoluble material
which is probably due to the effect that CO2 has on the tannins
(Fig. 4A–C). In Fig. 4A, a cluster of tannin cells can be discerned
with insoluble material inside their vacuoles. In Fig. 4B it is
possible to see the degradation of the tonoplast in these cells in
more detail.
After 10 and 20 d storage at 15 ◦C followed by CO2 treatment
and 5 d at 20 ◦C (Fig. 4C), the cell structure was observed to have
intercellular spaces filled mainly with air, just as was seen in the
flesh without a shelf-life period (Fig. 3A and C). It should be
emphasised that in the case of 30 and 40 d at 15 ◦C followed by
CO2 treatment and a shelf-life period, fewer tannin cells were
observed and the intercellular spaces were invaded by both soluble
and insoluble material (Fig. 4E–H). The cell structure was
more strongly affected, probably because the soluble material
invading the intercellular spaces limited the penetration of CO2
during the treatment.
These microstructural results would explain the loss of effectiveness
after 30 and 40 d of storage at 15 ◦C. It could be due to
the difficulty of diffusing the CO2 through a more degraded cellular
structure where the intercellular spaces have been invaded
by soluble material. Schotsmans et al. (2004) observed that
changes in the diffusivity of CO2 and O2 during storage coincided
with changes in the amount of intercellular spaces and
in the shape of the cells. Hence, the diffusion of CO2 produced
a lower rate of anaerobic respiration, and consequently
less acetaldehyde was produced (Fig. 2a) and the astringency
removal treatment was rendered less effective.
In the present investigation, the analysis carried out by SEM
confirms and adds to the results obtained by Cryo-SEM. This
technique was used to study the effect of the CO2 treatment
before or after the storage, during periods of 20 and 30 d at 15 ◦C.
These storage times were selected because the major microstructural
changes were observed by Cryo-SEM in these samples.
Fig. 5 shows micrographs of persimmon flesh stored at 15 ◦C
for 20 and 30 d followed by the CO2 treatment and shelf-life
period of 5 d at 20 ◦C. SEM makes it possible to examine the
cell walls free of other cell materials because the water has been
eliminated during sample preparation. The presence of tannin
cells can be clearly seen, with insoluble material in their interior
(Fig. 5A). In Fig. 5B, the loss of adhesive material between
cells is already noticeable; this is related to the degradation of the
material forming the cell walls. When the treatment is applied
after 30 d of storage (Fig. 5C and D), the cell tissue appeared
more degraded and impregnated with insoluble material. This
material could be an artifact originating from the glutaraldehyde
used during the preparation of these samples by SEM.
These results might explain the reduced effectiveness observed
in samples treated with CO2 after 30 d storage at 15 ◦C, since
in them we did not observe the insolubilisation effect on the
material inside the tannin cells typical of CO2 treatment.
Fig. 6 shows the persimmon flesh studied by SEM when the
CO2 treatment was applied before storage for 20 and 30 d at
15 ◦C. When Fig. 6 is compared with Fig. 5, it can be seen for
both storage periods (20 and 30 d) that the samples previously
treated with CO2 (Fig. 6) showed a larger amount of tannin cells
with insolubilised material inside their vacuoles, and numerFig.
5. Structure of the persimmon cv. ‘Rojo Brillante’ flesh analysed by SEM from samples stored at 15 ◦C for 20 and 30 d ((A) and (B) 20 d, (C) and (D) 30 d)
followed the removing astringency treatment (RA) with CO2 and after a shelf-life period of 5 d at 20 ◦C. tc: tannic cell, im: insoluble material.
346 A. Salvador et al. / Postharvest Biology and Technology 49 (2008) 340–347
Fig. 6. Structure of the persimmon cv. ‘Rojo Brillante’ flesh analysed by SEM from samples submitted to astringency removal treatment (RA) with CO2, stored at
15 ◦C for 20 and 30 d ((A) and (B) 20 d, (C) and (D) 30 d) and after a shelf-life period of 5 d at 20 ◦C. tc: tannic cell.
ous clusters of tannin cells with insolubilised material can be
discerned.
This would agree with the results of the TS (Fig. 1b), where
a stable level of soluble tannins was observed in this sample
preparation after shelf-life simulation; however, in the samples
that had received treatment of CO2 after storage at 15 ◦C, the
drop in soluble tannins due to the treatment was gradually less
from 20 d onwards.
It would seem that the CO2 diffuses more easily if it is applied
before storage at 15 ◦C, presumably because the CO2 passes
through the intercelullar spaces, which are mostly full of air.
If CO2 penetrates easily inside the tissue, more acetaldehyde is
generated and the microstructure is affected by the accumulation
of insoluble material inside the cells which is related to a lower
ST.
4
3.2. microstructural ศึกษาการศึกษา microstructural โดย Cryo SEM ทำตามตัวอย่างเนื้อพลับที่ได้รับการรักษา ด้วย CO2 หลังเก็บที่ 15 ◦C เมื่อมีการสังเกตการสูญเสียประสิทธิภาพFig. 3 โครงสร้างของพันธุ์พลับเนื้อ 'อย่างไร Rojo Brillante' analysed โดย Cryo SEM จากตัวอย่างที่เก็บไว้ที่ 15 ◦C 10, 20, 30 และ 40 d ((A) และ (ข) 10 d, (C) และD (D) 20, (E) และ (F) 30 d และ (G) และ (H) 40 d) และถูกส่งให้ astringency เอารักษา (RA) ด้วย CO2 tc: เซลล์ tannic, sm: ละลายวัสดุcwd: ผนังเซลล์ที่เสื่อมโทรม344 อ.ซัลวาดอร์ et al. / หลังการเก็บเกี่ยววิชาชีววิทยาและเทคโนโลยี 49 (2008) 340-347Fig. 4 โครงสร้างของพันธุ์พลับเนื้อ 'อย่างไร Rojo Brillante' analysed โดย Cryo SEM จากตัวอย่างที่เก็บไว้ที่ 15 ◦C 10, 20, 30 และ 40 d ((A) และ (ข) 10 d, (C) และD (D) 20, (E) และ (F) 30 d และ (G) และ (H) 40 d) ตาม ด้วยการรักษากำจัด astringency (RA) ด้วย CO2 และ หลังรอบระยะเวลาอายุการเก็บของ 5 d ที่ 20 ◦C tc: tannicเซลล์ sm: ละลายวัสดุ im: วัสดุละลายFig. 3 แสดงเนื้อหลังจากรอบระยะเวลาการเก็บที่แตกต่างกัน (10, 20, 30และ 40 d) และ หลังการบำบัด CO2 Fig. 4 แสดงตัวอย่างหลังจากรอบระยะเวลาการเก็บของ 5 d ที่ 20 ◦C เมื่อจัดเก็บข้อมูลเวลาก่อนการรักษาเพิ่มขึ้น (10, 20, 30 และ 40 d), การก้าวหน้าของเนื้อเยื่อ parenchymatic ถูกสังเกตและเยื่อหุ้มและผนังเซลล์ได้โดยเฉพาะอย่างยิ่งผลกระทบที่ 30และ 40 d (Fig. 3A, C, E และ G) ปรากฏการณ์นี้เป็นอย่างยิ่งเห็นได้ชัดจาก 30 d เก็บไป เมื่อเป็นสังเกตว่า ที่ intercellular ห่างที่เดิมได้ครอบครองโดยเครื่องบินได้ตอนนี้เต็มไปด้วยวัสดุละลายจากภายในเซลล์(Fig. 3F และ H) หลังจาก 30 d เก็บ (Fig. 3F), บางส่วนของเซลล์สามารถมองเห็นกำแพงไปจะเสื่อมโทรมมาก การสูญเสียของกาววัสดุที่ทำหน้าที่ โดย cementing ผนังเซลล์สามารถอธิบายการสังเกตการแบ่งโครงสร้าง มีช่องใหญ่ intercellularตอนนี้ รุกราน โดยละลายวัสดุโดยเฉพาะหลังจาก 40 d เก็บ(ทรีจี fig. และ H) ผลลัพธ์เหล่านี้จะเกี่ยวข้องกับธินุ่มนวลของผลไม้เมื่อเวลาจัดเก็บเพิ่มขึ้น (Fig. 2b)ในตัวอย่างตรวจสอบหลังจากเก็บที่ 15 ◦C กิน 3), บางสามารถเห็นเซลล์แทนนินซึ่งมีวัสดุละลายได้ภายในการvacuoles (Fig. 3A, B, E และ G); เป็นการศึกษาก่อนหน้านี้แสดงให้เห็นนี้จะเกี่ยวข้องกับระยะของ ripening (ซัลวาดอร์ et al., 2007)Fig. 4 แสดงต่อโครงสร้างจุลภาคในเนื้อถูกเก็บไว้ที่ 15 ◦Cรักษา ด้วย CO2 และสุดท้าย การโอนย้ายไป 20 ◦C เพื่อจำลองรอบระยะเวลาการเก็บของ 5 d เมื่อผลไม้ถูกเก็บไว้ที่ 15 ◦Cอ.ซัลวาดอร์ et al. / หลังการเก็บเกี่ยววิชาชีววิทยาและเทคโนโลยี 49 (2008) 340-347 345สำหรับอีกต่อไป การเปลี่ยนแปลงที่สำคัญที่สุดคือการที่สารและผนังเซลล์จะถูกมากเสื่อมโทรม โดยเฉพาะอย่างยิ่งถ้าเปรียบเทียบกับเนื้อด้วยการจำลองไม่มีรอบระยะเวลาอายุการเก็บรักษา(Fig. 3) ตัวอย่างที่เก็บไว้ที่ 15 ◦C มีค่าไอซ์สูงกว่าที่ มีอายุการเก็บรักษารอบระยะเวลาจำลอง (Fig. 2b)สุภัคบางเซลล์แทนนินจะมีวัสดุที่ไม่ละลายน้ำซึ่งได้จากผลที่ CO2 มี tannins ใน(Fig. 4A – C) ใน Fig. 4A คลัสเตอร์แทนนินจากเซลล์สามารถเข้าใจด้วยวัสดุที่ไม่ละลายน้ำภายในของ vacuoles ใน Fig. 4Bสามารถย่อยสลายของ tonoplast ในเซลล์เหล่านี้ในการดูรายละเอียดเพิ่มเติมหลังจากเก็บ d 10 และ 20 ที่ 15 ◦C ตาม ด้วย CO2 รักษาและ 5d ที่ 20 ◦C (Fig. 4C), โครงสร้างของเซลล์ถูกตรวจสอบได้ช่องว่างที่ intercellular เต็มไป ด้วยอากาศ ส่วนใหญ่เหมือนกับที่เห็นในการเนื้อไม่ มีรอบระยะเวลาอายุการเก็บรักษา (Fig. 3A และ C) ควรมีemphasised ที่กำหนด 30 และ 40 d ที่ 15 ◦C ตามด้วยCO2 รักษาและระยะเวลาเก็บ แทนนินจากเซลล์ให้น้อยลงได้สังเกต และช่อง intercellular ถูกบุกทั้งละลายน้ำได้และวัสดุที่ไม่ละลายน้ำ (Fig. 4e-fe กลไก – H) โครงสร้างของเซลล์ได้อย่างรุนแรงรับผลกระทบ อาจเพราะวัสดุละลายบุกรุกพื้นที่ intercellular จำกัดเจาะของ CO2ในระหว่างการรักษาผลลัพธ์เหล่านี้ microstructural จะอธิบายการสูญเสียประสิทธิภาพหลังจาก 30 และ 40 d เก็บที่ 15 ◦C อาจเนื่องความยากของ diffusing CO2 ผ่านมือถือเสื่อมโทรมมากขึ้นโครงสร้างที่ได้รับการรุกรานพื้นที่ intercellularโดยวัสดุที่ละลายน้ำได้ สังเกต Schotsmans et al. (2004) ที่การเปลี่ยนแปลงใน diffusivity ของ CO2 และ O2 ระหว่างการเก็บรักษาร่วมมีการเปลี่ยนแปลงจำนวนช่องว่างที่ intercellular และในรูปร่างของเซลล์ ดังนั้น ผลิตการแพร่ของ CO2อัตราที่ลดลงของการหายใจที่ไม่ใช้ออกซิเจน และจากนั้นacetaldehyde น้อยถูกผลิต (Fig. 2a) และ astringency ที่รักษาเอาถูกแสดงผลน้อยกว่าในปัจจุบัน การวิเคราะห์การดำเนินการ โดย SEMเพิ่มผลได้รับ โดย Cryo SEM. นี้ และยืนยันใช้เทคนิคในการศึกษาผลของการรักษา CO2ก่อน หรือ หลัง เก็บ ช่วง 20 และ 30 d ที่ 15 ◦Cเลือกเวลาเก็บข้อมูลเหล่านี้เนื่องจากวิชา microstructuralเปลี่ยนแปลงที่สังเกต โดย Cryo SEM ในตัวอย่างเหล่านี้Fig. 5 แสดง micrographs ของพลับเนื้อเก็บไว้ที่ 15 ◦C20 และ 30 d ตาม ด้วย CO2 รักษาและอายุการเก็บรักษารอบระยะเวลาใหม่ที่ 20 ◦C SEM ทำให้สามารถตรวจสอบการผนังเซลล์ฟรีวัสดุและส่วนประกอบอื่น ๆ เซลล์ได้เนื่องจากน้ำได้ตัดออกในระหว่างการเตรียมตัวอย่าง ของแทนนินเซลล์สามารถชัดเจนเห็นได้ กับวัสดุขึ้นในภายในของพวกเขา(Fig. ของ 5A) ใน Fig. 5B การสูญเสียวัสดุกาวระหว่างเซลล์แล้วเห็นได้ชัด นี้เกี่ยวข้องกับการลดประสิทธิภาพของการวัสดุที่เป็นผนังเซลล์ เมื่อมีใช้การรักษาเนื้อเยื่อเซลล์ปรากฏหลัง d 30 เก็บ (Fig. 5C และ D),อื่น ๆ เสื่อมโทรม และ impregnated กับวัสดุที่ไม่ละลายน้ำ นี้วัสดุอาจเป็นสิ่งประดิษฐ์ที่เกิดจาก glutaraldehyde ในใช้ในระหว่างการเตรียมตัวอย่างเหล่านี้โดย SEM.ผลลัพธ์เหล่านี้อาจอธิบายสังเกตประสิทธิภาพลดลงในตัวอย่างรับ CO2 หลัง 30 d เก็บที่ 15 ◦C ตั้งแต่ใน เราก็ไม่สังเกตผล insolubilisation ในการวัสดุภายในเซลล์แทนนินจากของ CO2 รักษาFig. 6 แสดงเนื้อพลับศึกษา ด้วย SEM เมื่อการใช้ CO2 รักษาก่อนเก็บสำหรับ 20 และ 30 d ที่15 ◦C เมื่อ Fig. 6 เปรียบเทียบกับ Fig. 5 มันมีให้เห็นรอบระยะเวลาที่เก็บทั้งสอง (20 และ 30 d) ที่ตัวอย่างก่อนหน้านี้รักษา ด้วย CO2 (Fig. 6) พบว่าจำนวนเซลล์แทนนินเป็นใหญ่ด้วยวัสดุ insolubilised ภายในของ vacuoles และ numerFig5. โครงสร้างของพันธุ์พลับเนื้อ 'อย่างไร Rojo Brillante' analysed โดย SEM จากตัวอย่างที่เก็บไว้ที่ 15 ◦C 20 30 d ((A) และ (ข) 20 d, (ค) และ d (D) 30)ตามรักษา astringency เอา (RA) ด้วย CO2 และ หลังรอบระยะเวลาอายุการเก็บของ 5 d ที่ 20 ◦C tc: เซลล์ tannic, im: วัสดุละลายAl. เอ็ดซัลวาดอร์ A. 346 / หลังการเก็บเกี่ยววิชาชีววิทยาและเทคโนโลยี 49 (2008) 340-347Fig. 6 โครงสร้างของพันธุ์พลับ 'Rojo อย่างไร Brillante' analysed เนื้อ โดย SEM จากตัวอย่างส่งให้ astringency เอารักษา (RA) ด้วย CO2 จัดเก็บที่◦C 15 20 30 d ((A) และ (ข) 20 d, (ค) และ d (D) 30) และหลัง จากรอบระยะเวลาอายุการเก็บของ 5 d ที่ 20 ◦C tc: tannic เซลล์คลัสเตอร์ ous แทนนินจากเซลล์ด้วยวัสดุ insolubilised สามารถเข้าใจนี้จะตรงกับผลลัพธ์ของ TS (Fig. 1b), ที่ระดับความมั่นคงของ tannins ละลายถูกสังเกตในตัวอย่างนี้เตรียมสอบหลังจากการจำลองชีวิตชั้น อย่างไรก็ตาม ในตัวอย่างที่ได้รับการรักษาของ CO2 หลังจากเก็บที่ 15 ◦C การหล่นใน tannins ละลายเนื่องจากการรักษามีน้อยค่อย ๆจาก d 20 เป็นต้นไปดูเหมือนว่า CO2 ที่ diffuses ได้ง่ายขึ้นถ้ามีใช้ก่อนที่จะเก็บที่ 15 ◦C สันนิษฐานว่าเนื่องจาก CO2 ผ่านผ่านช่อง intercelullar ซึ่งเป็นส่วนใหญ่ของอากาศถ้า CO2 แทรกซึมได้อย่างง่ายดายภายในเนื้อเยื่อ acetaldehyde ที่เพิ่มเติมคือสร้าง และต่อโครงสร้างจุลภาคได้รับผลกระทบ โดยการสะสมวัสดุละลายภายในเซลล์ซึ่งเกี่ยวข้องกับตัวล่างเซนต์4
การแปล กรุณารอสักครู่..

3.2 การศึกษาโครงสร้างจุลภาคการศึกษาจุลภาคโดย Cryo-SEM ได้ดำเนินการในตัวอย่างเนื้อลูกพลับที่ได้รับการรักษาด้วยCO2 หลังจากการเก็บรักษาที่15 ◦Cเมื่อการสูญเสียประสิทธิภาพได้รับการปฏิบัติ. รูป 3. โครงสร้างของพันธุ์ลูกพลับ เนื้อ 'โนโร Brillante' วิเคราะห์โดย Cryo-SEM จากตัวอย่างที่เก็บไว้ที่ 15 ◦C 10, 20, 30 และ 40 d ((A) และ (B) 10 d (C) (D) 20 d (E) และ (F) และ 30 d (G) และ (H) 40 ง) และหลังจากที่ถูกส่งไปยัง astringency กำจัด (RA) กับ CO2 TC: แทนนิคมือถือเอสเอ็ม: วัสดุที่ละลายน้ำได้CWD. ผนังเซลล์สลายตัว344 เอลซัลวาด et al, / หลังการเก็บเกี่ยวชีววิทยาและเทคโนโลยี 49 (2008) 340-347 รูป 4. โครงสร้างของพันธุ์ลูกพลับ เนื้อ 'โนโร Brillante' วิเคราะห์โดย Cryo-SEM จากตัวอย่างที่เก็บไว้ที่ 15 ◦C 10, 20, 30 และ 40 d ((A) และ (B) 10 d (C) (D) 20 d (E) และ (F) และ 30 d (G) และ (H) 40 ง) ตามด้วยกำจัดฝาด (RA) กับ CO2 และหลังจากระยะเวลาอายุการเก็บรักษา 5 d ที่ 20 ◦C TC: แทนนิคมือถือเอสเอ็ม: วัสดุที่ละลายน้ำได้, IM:. วัสดุที่ไม่ละลายน้ำรูป 3 แสดงให้เห็นถึงเนื้อหลังจากระยะเวลาการจัดเก็บข้อมูลที่แตกต่างกัน (10, 20, 30 และ 40 ง) และหลังการรักษาก๊าซ CO2 รูป 4 แสดงตัวอย่างหลังจากระยะเวลาอายุการเก็บรักษา5 d ที่ 20 ◦C เมื่อการจัดเก็บเวลาก่อนที่การรักษาที่เพิ่มขึ้น (10, 20, 30 และ 40 ง) ซึ่งเป็นความก้าวหน้าการย่อยสลายของเนื้อเยื่อparenchymatic ถูกสังเกตและเยื่อและผนังเซลล์ได้รับผลกระทบโดยเฉพาะอย่างยิ่งวันที่30 และ 40 d (รูป. 3A, C, E และ G) ปรากฏการณ์นี้เป็นเรื่องที่เห็นได้ชัดตั้งแต่วันที่ 30 ของการจัดเก็บ d เป็นต้นไปเมื่อมันอาจจะมีการตั้งข้อสังเกตว่าระหว่างเซลล์ช่องว่างที่มีอยู่เดิมโดยทางอากาศตอนนี้เต็มไปด้วยวัสดุที่ละลายน้ำได้จากภายในเซลล์(รูป. 3F และ H) หลังจาก 30 วันของการจัดเก็บ (รูป. 3F) บางของเซลล์ผนังสามารถเห็นจะสลายตัวสูง การสูญเสียของกาววัสดุที่ทำหน้าที่โดยการประสานผนังเซลล์สามารถอธิบายรายละเอียดโครงสร้างสังเกตเห็นช่องว่างระหว่างเซลล์ที่มีขนาดใหญ่บุกเข้ามาในขณะนี้โดยวัสดุที่ละลายน้ำได้โดยเฉพาะอย่างยิ่งหลังจาก40 วันของการจัดเก็บ(รูป. 3G และ H) ผลลัพธ์เหล่านี้จะได้รับการที่เกี่ยวข้องกับความก้าวหน้าอ่อนของผลไม้เมื่อเวลาการเก็บรักษาเพิ่มขึ้น (รูป. 2b). ในทุกตัวอย่างตรวจสอบหลังการเก็บรักษาที่อุณหภูมิ 15 ◦C (รูปที่. 3) บางเซลล์แทนนินที่สามารถมองเห็นได้ซึ่งมีวัสดุที่ไม่ละลายน้ำภายในแวคิวโอล (รูปที่ 3A, B, E และ G.); การศึกษาก่อนหน้านี้ได้แสดงให้เห็นว่านี้จะเกี่ยวข้องกับขั้นตอนของการสุก (Salvador et al., 2007). รูป 4 แสดงจุลภาคเนื้อเมื่อเก็บไว้ที่ 15 ◦C, การรักษาด้วย CO2 และโอนไปในที่สุด 20 ◦Cเพื่อจำลองเป็นระยะเวลาอายุการเก็บรักษา5 d เมื่อผลไม้ที่ถูกเก็บไว้ที่ 15 ◦Cเอ ซัลวาดอ et al, / หลังการเก็บเกี่ยวชีววิทยาและเทคโนโลยี 49 (2008) 340-347 345 อีกต่อไปการเปลี่ยนแปลงที่สำคัญที่สุดคือการที่เยื่อและผนังเซลล์ดูเหมือนจะเสื่อมโทรมอย่างมากโดยเฉพาะอย่างยิ่งถ้าเทียบกับเนื้อไม่มีการจำลองระยะเวลาอายุการเก็บรักษา(รูปที่ 3. ) ตัวอย่างเก็บไว้ที่ 15 ◦Cมีค่าความแน่นสูงกว่าผู้ที่มีการจำลองระยะเวลาอายุการเก็บรักษา(รูป. 2b). บางเซลล์แทนนินที่ถูกตั้งข้อสังเกตว่าจะมีวัสดุที่ไม่ละลายน้ำซึ่งอาจเป็นเพราะผลกระทบที่มีต่อ CO2 แทนนิน (รูปที่ 4A-C) ในรูป 4A, กลุ่มของเซลล์แทนนินที่สามารถมองเห็นด้วยวัสดุที่ไม่ละลายน้ำภายในแวคิวโอลของพวกเขา ในรูป 4B มันเป็นไปได้ที่จะเห็นการเสื่อมสภาพของtonoplast ในเซลล์เหล่านี้ในรายละเอียดเพิ่มเติม. หลังจากที่ 10 และ 20 การจัดเก็บงวันที่ 15 ◦Cตามด้วยการรักษา CO2 และ 5 d ที่ 20 ◦C (รูป. 4C) โครงสร้างของเซลล์ที่ถูกตั้งข้อสังเกต จะมีช่องว่างระหว่างเซลล์ส่วนใหญ่เต็มไปด้วยอากาศเช่นเดียวกับที่เห็นในเนื้อโดยไม่ต้องมีระยะเวลาอายุการเก็บรักษา(รูป. 3A และ C) มันควรจะเน้นย้ำว่าในกรณีของ 30 และ 40 งวันที่ 15 ◦Cตามด้วยการรักษาCO2 และระยะเวลาอายุการเก็บรักษาเซลล์น้อยลงแทนนินที่ถูกตั้งข้อสังเกตและระหว่างเซลล์ช่องว่างที่ถูกรุกรานโดยทั้งที่ละลายน้ำได้วัสดุและไม่ละลายน้ำ(รูป. 4E- H) โครงสร้างเซลล์ได้รับผลกระทบมากขึ้นอย่างมากอาจจะเป็นเพราะวัสดุที่ละลายน้ำได้บุกรุกพื้นที่ระหว่างเซลล์จำกัด การซึมผ่านของก๊าซ CO2 ในระหว่างการรักษา. เหล่านี้ส่งผลจุลภาคจะอธิบายการสูญเสียประสิทธิภาพหลังจาก 30 และ 40 d ของการเก็บรักษาที่อุณหภูมิ 15 ◦C มันอาจจะเป็นเพราะความยากลำบากในการกระจาย CO2 ผ่านโทรศัพท์มือถือที่เสื่อมโทรมมากขึ้นโครงสร้างที่ช่องว่างระหว่างเซลล์ได้รับการรุกรานโดยวัสดุที่ละลายน้ำได้ Schotsmans et al, (2004) พบว่าการเปลี่ยนแปลงในการแพร่ของก๊าซCO2 และ O2 ระหว่างการเก็บรักษาในเวลาใกล้เคียงกับการเปลี่ยนแปลงในปริมาณของช่องว่างระหว่างเซลล์และในรูปร่างของเซลล์ ดังนั้นการแพร่กระจายของ CO2 ที่ผลิตในอัตราที่ต่ำของการหายใจแบบไม่ใช้ออกซิเจนและจึงacetaldehyde น้อยถูกผลิต (รูป. 2a) และฝาดกำจัดการแสดงผลที่มีประสิทธิภาพน้อย. ในการตรวจสอบในปัจจุบันการวิเคราะห์การดำเนินการโดย SEM ยืนยันและจะเพิ่ม ผลที่ได้จากการ Cryo-SEM ซึ่งเทคนิคที่ถูกใช้ในการศึกษาผลของการรักษา CO2 ที่ก่อนหรือหลังการจัดเก็บในช่วงระยะเวลา20 และ 30 งวันที่ 15 ◦C. เวลาการจัดเก็บข้อมูลเหล่านี้ได้รับการคัดเลือกเพราะจุลภาคที่สำคัญการเปลี่ยนแปลงที่ถูกตั้งข้อสังเกตโดย Cryo-SEM ในตัวอย่างเหล่านี้ รูป 5 แสดงของไมโครเนื้อลูกพลับเก็บไว้ที่ 15 ◦C 20 และ 30 D ตามด้วยการรักษา CO2 และอายุการเก็บรักษาเป็นระยะเวลา5 วันที่ 20 ◦C SEM ทำให้มันเป็นไปได้ในการตรวจสอบผนังเซลล์อิสระจากวัสดุที่มือถืออื่นๆ เพราะน้ำที่ได้รับการตัดออกในระหว่างการเตรียมตัวอย่าง การปรากฏตัวของแทนนินเซลล์สามารถมองเห็นได้อย่างชัดเจนด้วยวัสดุที่ไม่ละลายน้ำในการตกแต่งภายในของพวกเขา(รูป. 5A) ในรูป 5B, การสูญเสียของวัสดุกาวระหว่างเซลล์จะเห็นได้ชัดอยู่แล้ว นี้จะเกี่ยวข้องกับการย่อยสลายของวัสดุสร้างผนังเซลล์ เมื่อรักษาถูกนำไปใช้หลังจาก 30 วันของการจัดเก็บ (รูป. 5C และ D) เนื้อเยื่อเซลล์ที่ปรากฏมากขึ้นเสื่อมโทรมและชุบด้วยวัสดุที่ไม่ละลายน้ำ นี้วัสดุที่อาจจะเป็นสิ่งประดิษฐ์ที่เกิดจาก glutaraldehyde ใช้ในระหว่างการเตรียมความพร้อมของตัวอย่างเหล่านี้โดย SEM. ผลลัพธ์เหล่านี้อาจอธิบายประสิทธิภาพลดลงสังเกตได้ในตัวอย่างรับการรักษาด้วย CO2 หลังการเก็บรักษาที่ 30 งวันที่ 15 ◦Cตั้งแต่ในพวกเขาเราไม่ได้สังเกตinsolubilisation ผลกระทบต่อวัสดุที่อยู่ภายในเซลล์แทนนินโดยทั่วไปของการรักษาCO2. รูป 6 แสดงให้เห็นถึงเนื้อลูกพลับศึกษาโดย SEM เมื่อรักษาCO2 ก่อนที่จะถูกนำมาใช้สำหรับการจัดเก็บ 20 และ 30 d ที่15 ◦C เมื่อรูป 6 เมื่อเทียบกับรูป 5 ก็สามารถมองเห็นได้ทั้งงวดการจัดเก็บ(20 และ 30 ง) ว่ากลุ่มตัวอย่างก่อนหน้านี้ได้รับการรักษาด้วยCO2 (รูปที่. 6) แสดงให้เห็นจำนวนมากของเซลล์แทนนินด้วยวัสดุinsolubilised ภายในแวคิวโอลของพวกเขาและ numerFig. 5 โครงสร้างของพันธุ์ลูกพลับ เนื้อ 'โนโร Brillante' วิเคราะห์โดย SEM จากตัวอย่างที่เก็บไว้ที่ 15 ◦C 20 และ 30 d ((A) และ (B) 20 d (C) (D) 30 ง) ตามการลบการรักษาฝาด (RA) ด้วย CO2 และหลังจากระยะเวลาอายุการเก็บรักษา 5 d ที่ 20 ◦C TC: เซลล์แทนนิค, IM:. วัสดุที่ไม่ละลายน้ำ346 เอลซัลวาด et al, / หลังการเก็บเกี่ยวชีววิทยาและเทคโนโลยี 49 (2008) 340-347 รูป 6. โครงสร้างพันธุ์ลูกพลับ เนื้อ 'โนโร Brillante' วิเคราะห์โดย SEM จากตัวอย่างส่งไปกำจัดฝาด (RA) กับ CO2, เก็บไว้ที่15 ◦C 20 และ 30 d ((A) และ (B) 20 d (C) (D) 30 ง) และหลังจากระยะเวลาอายุการเก็บรักษา 5 d ที่ 20 ◦C TC:. มือถือแทนนิคกลุ่มภายใต้กฎระเบียบของเซลล์แทนนินด้วยวัสดุinsolubilised สามารถมองเห็น. นี้จะเห็นด้วยกับผลการ TS (รูปที่ 1 ข.) ที่ระดับมีเสถียรภาพของแทนนินที่ละลายน้ำได้พบว่าในตัวอย่างนี้การเตรียมความพร้อมหลังจากที่จำลองอายุการเก็บรักษา; อย่างไรก็ตามในกลุ่มตัวอย่างที่ได้รับการรักษา CO2 หลังการเก็บรักษาที่อุณหภูมิ 15 ◦Cที่ลดลงของแทนนินที่ละลายน้ำได้เนื่องจากการรักษาเป็นค่อยๆน้อยลงตั้งแต่วันที่20 เป็นต้นไป d. ก็ดูเหมือนว่าก๊าซ CO2 กระจายได้ง่ายขึ้นถ้ามันถูกนำไปใช้ก่อนที่จะจัดเก็บวันที่ 15 ◦Cคงเพราะ CO2 ผ่านผ่านช่องว่างintercelullar ซึ่งส่วนใหญ่เต็มรูปแบบของอากาศ. ถ้า CO2 แทรกซึมได้อย่างง่ายดายภายในเนื้อเยื่อ acetaldehyde มากขึ้นจะสร้างขึ้นและจุลภาคเป็นผลมาจากการสะสมของวัสดุที่ไม่ละลายน้ำภายในเซลล์ซึ่งเป็นที่เกี่ยวข้องกับการลดลงST. 4
การแปล กรุณารอสักครู่..

3.2 . การศึกษาโครงสร้างจุลภาคศึกษาโครงสร้างจุลภาคโดยแช่แข็ง
ลูกพลับเนื้อ SEM คือใช้ตัวอย่างที่ได้รับการรักษาด้วย CO2 หลังจาก
กระเป๋า 15 ◦ C เมื่อสูญเสียประสิทธิผล ได้สังเกต
รูปที่ 3 โครงสร้างของพลับพันธุ์ สีแดงสดใส ' ' เนื้อแช่แข็ง ซึ่งจากการวิเคราะห์ตัวอย่างที่เก็บไว้ที่ 15 ◦นาน 10 , 20 , 30 และ 40 D ( a ) และ ( b ) 10 D ( , c )
( D ) D( e ) และ ( F ) และ 30 D ( G ) และ ( H ) 40 D ) และหลังจากถูกส่งไปรักษา กำจัด ตาล ( RA ) กับ CO2 TC : แทนนิค เซลล์ , SM : วัสดุแยกผนังเซลล์สลายละลาย :
.
344 . Salvador et al . ชีววิทยาและเทคโนโลยีหลังการเก็บเกี่ยว / 49 ( 2008 ) 340 – 347
รูปที่ 4 โครงสร้างของพลับพันธุ์ สีแดงสดใส ' ' เนื้อแช่แข็ง ซึ่งจากการวิเคราะห์ตัวอย่างที่เก็บไว้ที่ 15 ◦นาน 10 , 20 ,30 และ 40 D ( a ) และ ( b ) 10 D ( , c )
( D ) D ( , e ) และ ( F ) และ 30 D ( G ) และ ( H ) 40 D ) ตามด้วยตาลรักษาเอา ( RA ) กับ CO2 และหลังจากระยะเวลา 5 วัน D ที่ 20 ◦ TC : ํ C
เซลล์ , SM : วัสดุ : วัสดุที่ไม่ละลายน้ำละลาย , im .
รูปที่ 3 แสดงเนื้อหลังจากระยะเวลาการจัดเก็บข้อมูลที่แตกต่างกัน ( 10 , 20 , 30 และ 40 D
) และหลังจากการรักษาด้วย CO2 รูปที่ 4 แสดงตัวอย่าง
หลังการเก็บรักษาระยะเวลา 5 D ที่ 20 ◦ C เมื่อกระเป๋า
เวลาก่อนการรักษาเพิ่มขึ้น ( 10 , 20 , 30 และ 40 D ) , การสลายของเนื้อเยื่อ parenchymatic
2
, และเยื่อหุ้มและผนังเซลล์ โดยเฉพาะอย่างยิ่งผลกระทบที่ 30 และ 40 D
( รูปที่ 3A , C E และ G ) ปรากฏการณ์นี้คือโดยเฉพาะอย่างยิ่ง
เห็นได้ชัดจาก 30 D กระเป๋าเป็นต้นไป เมื่อมันอาจจะ
สังเกตว่าเป็น intercellular ที่เคยครอบครอง
โดยอากาศตอนนี้เต็มรูปแบบของปริมาณวัสดุจากภายในเซลล์
( รูปที่ขาและ H ) หลังจาก 30 D ของกระเป๋า ( รูปที่ขา ) , บางส่วนของผนังเซลล์
สามารถมองเห็นเป็นอย่างสูงที่คุณภาพต่ำ การสูญเสียวัสดุกาว
ที่ทำหน้าที่โดยประสานผนังเซลล์อาจอธิบาย
สังเกตการทำลายโครงสร้างที่มีขนาดใหญ่ intercellular เป็น
ตอนนี้รุกรานโดยปริมาณวัสดุโดยเฉพาะหลังจาก 40 D กระเป๋า
( รูปที่ 3 G และ H ) ผลลัพธ์เหล่านี้จะเกี่ยวข้องกับการอาศัยความก้าวหน้า
ผลเมื่อระยะเวลาในการเก็บรักษาที่เพิ่มขึ้น ( รูปที่ 2B ) .
ในตัวอย่างทั้งหมดตรวจสอบหลังกระเป๋าที่ 15 ◦ C ( รูปที่ 3 ) , เซลล์แทนนินบาง
สามารถมองเห็นซึ่งมีวัสดุที่ไม่ละลายภายในแวคิวโอล ( รูปที่ 3A
, B , E และ G ) ; ในขณะที่การศึกษาก่อนหน้านี้ได้แสดง
นี้เกี่ยวข้องกับขั้นตอนของการสุก ( Salvador et al . , 2007 ) .
รูปที่ 4 แสดงให้เห็นเนื้อหนังโครงสร้างจุลภาคเมื่อเก็บรักษาไว้ที่ 15 ◦ C
รักษาด้วย CO2 และในที่สุดก็ย้ายไป 20 ◦ C เพื่อจำลอง
นาน 5 d เมื่อผลไม้ถูกเก็บไว้ที่ 15 ◦ C
. ดอร์และ อัล ชีววิทยาและเทคโนโลยีหลังการเก็บเกี่ยว / 49 ( 2008 ) 340 – 347 345
อีกต่อไป การเปลี่ยนแปลงที่สำคัญที่สุดคือการที่เยื่อ
และผนังเซลล์อยู่มาก ซึ่งโดยเฉพาะ
ถ้าเทียบกับเนื้อไม่มีการเก็บรักษาระยะเวลาการจำลอง
( รูปที่ 3 ) ตัวอย่างที่อุณหภูมิ 15 องศาเซลเซียส มีความ◦ที่สูงกว่าผู้ที่มีการเก็บค่า
ระยะเวลาจำลอง ( รูปที่ 2B ) .
เซลล์แทนนินบางพบว่ามีวัสดุที่ไม่ละลาย
ซึ่งอาจเนื่องจากผลของคาร์บอนไดออกไซด์ต่อแทนนิน
( รูปที่ 4 ) C ) ในรูปที่ 4A ,กลุ่มของแทนนินเซลล์สามารถเข้าใจการสลาย
กับวัสดุภายในของพวกเขา ในรูปที่ 4B เป็น
เป็นไปได้ที่จะเห็นการลดลงของโทโนพลาสต์เซลล์เหล่านี้ในรายละเอียดเพิ่มเติม
.
หลังจาก 10 และ 20 D กระเป๋า 15 ◦ C ตามด้วย
รักษา CO2 และ 5 D C ( รูปที่ 20 ◦ 4C ) , โครงสร้างเซลล์ซึ่งมี
intercellular เป็นเต็มส่วนใหญ่กับอากาศ เช่นเดียวกับที่เห็นใน
การแปล กรุณารอสักครู่..
