MATERIALS AND METHODSMicroalga, oil

MATERIALS AND METHODS
Microalga, oil, lipases and chemicals
Wet paste biomass of the marine
microalga N. gaditana was used as an oil-rich substrate. This biomass was facilitated
by the Estación experimental de Las Palmerillas (Cajamar, El Ejido, Spain). Cells were
grown in an outdoor tubular photobioreactor, centrifuged at 7000 rpm for 10 min,
and then stored at 20C until use. This wet biomass contained 24.2% 0.7% w/w of
dry biomass and 29.1 0.0 wt% of total lipids on dry biomass. The total fatty acid
content (or saponifiable lipids as equivalent fatty acids) in the biomass was
12.1 0.2 wt% on dry biomass. Free fatty acids (FFAs) from used vegetable oil (UVO)
were also used. This oil was provides by the biodiesel manufacturer company
Albabío (Nijar, Spain). Table 1 shows the fatty acid composition of both oils. The
esterification reaction was catalysed by the lipase Novozym 435 from Candida
antarctica (Novozymes A/S, Bagsvaerd, Denmark). This lipase is immobilized on a
macroporous acrylic resin and it is positionally non-specific.
Ethanol (96%, analysis quality) and hexane (95% purity, synthesis quality), both
of Panreac (Barcelona, Spain), were used to extract FFAs from the microalga and to
saponify the UVO. HCl (37%, Panreac S.A., Barcelona, Spain), methanol (99.9% purity,
Carlo Erba Reagents, Rodano, Italy), NaOH and KOH (85% purity, J.T. Baker, Deventer,
Holland), all of analytical quality, were also used. All reagents used in the analytical
determinations were also of analytical grade.
Obtaining of FFAs from UVO and microalgal biomass FFAs fromUVO were
obtained by saponification of the oil. The reaction mixture contained 350 mL of oil
and 700 mL of a hydroalcoholic solution of NaOH, which was prepared dissolving
120 g of NaOH in 400 mL of water and 400 mL of ethanol (96% v/v). The saponification
was carried out shaking this mixture at 200 rpm, at 60C for 30 min. The
mixture was then cooled at room temperature, 140 mL of water were added and the
pH was adjusted to values between 1 and 2 using 37% HCl. FFAs were extracted with
300 mL of hexane, shaking at 200 rpm for 30 min. Finally the hydroalcoholic and
hexane phases were separated by decantation and the hexanic phase was washed
twice with water.
FFAs from the microalga N. gaditana were obtained following a modification of
the three-step procedure developed by Ibáñez González et al. (11) (Fig. 1). 0.50 kg of
wet biomass was treated with 3.63 L of ethanol (96% v/v) (30 mL ethanol (96%)/g dry
biomass), containing 24.2 g of KOH (85% purity) in a 10 L reactor, which was jacketed
for temperature control. Direct saponification was carried out at 60C for 1 h with
constant stirring at 200 rpm with a propeller stirrer (Eurostar digital, IKA Staufen,
Germany), in argon atmosphere and covered with aluminium foil to protect from
light. The biomass residue was then separated from the hydroalcoholic solution by
filtration using a porous glass plate (pore diameter 100 mm, Pobel, Madrid, Spain).
This biomass residue was washed with 1.4 L of ethanol (96% v/v) (14 mL ethanol
(96%)/g dry biomass), to increase the fatty acid recovery yield and this washing
solution was added to the hydroalcoholic fatty acid solution from the main extraction.
In the following step, water (674 mL) was added to the hydroalcoholic phase to
reach 30% wt in water, to increase the immiscibility of the hydroalcoholic solution
and hexane, and the unsaponifiable contents were extracted with 4.30 L hexane
(hexane/hydroalcoholic solution ratio 1:1 v/v). This extraction was carried out stirring
at 200 rpm for 10 min. Subsequently, the solutionwas decanted for 30 min. The
unsaponifiable hexanic solution was removed, leaving the lower hydroalcoholic
phase in the extractor. Next, concentrated HCl was added to the hydroalcoholic
phase to pH 5, to form the FFAs. These FFAs were extracted with hexane (4.3 L), and
the mixture was stirred at 200 rpm for 10 min. It was then allowed to decant for
30 min and two phases were obtained, a bottom one that was discarded and the
upper hexanic phase containing the FFAs. This FFA solution was evaporated in a
rotary evaporator (Buchi, R210, with vacuum pumpV-700 and controller V-850,
Switzerland) to remove and recover the solvent and the FFAs.

MATERIALS AND METHODS
Microalga, oil, lipases and chemicals 
Wet paste biomass of the marine
microalga N. gaditana was used as an oil-rich substrate. This biomass was facilitated
by the Estación experimental de Las Palmerillas (Cajamar, El Ejido, Spain). Cells were
grown in an outdoor tubular photobioreactor, centrifuged at 7000 rpm for 10 min,
and then stored at 20C until use. This wet biomass contained 24.2%  0.7% w/w of
dry biomass and 29.1  0.0 wt% of total lipids on dry biomass. The total fatty acid
content (or saponifiable lipids as equivalent fatty acids) in the biomass was
12.1 0.2 wt% on dry biomass. Free fatty acids (FFAs) from used vegetable oil (UVO)
were also used. This oil was provides by the biodiesel manufacturer company
Albabío (Nijar, Spain). Table 1 shows the fatty acid composition of both oils. The
esterification reaction was catalysed by the lipase Novozym 435 from Candida
antarctica (Novozymes A/S, Bagsvaerd, Denmark). This lipase is immobilized on a
macroporous acrylic resin and it is positionally non-specific.
Ethanol (96%, analysis quality) and hexane (95% purity, synthesis quality), both
of Panreac (Barcelona, Spain), were used to extract FFAs from the microalga and to
saponify the UVO. HCl (37%, Panreac S.A., Barcelona, Spain), methanol (99.9% purity,
Carlo Erba Reagents, Rodano, Italy), NaOH and KOH (85% purity, J.T. Baker, Deventer,
Holland), all of analytical quality, were also used. All reagents used in the analytical
determinations were also of analytical grade.
Obtaining of FFAs from UVO and microalgal biomass FFAs fromUVO were
obtained by saponification of the oil. The reaction mixture contained 350 mL of oil
and 700 mL of a hydroalcoholic solution of NaOH, which was prepared dissolving
120 g of NaOH in 400 mL of water and 400 mL of ethanol (96% v/v). The saponification
was carried out shaking this mixture at 200 rpm, at 60C for 30 min. The
mixture was then cooled at room temperature, 140 mL of water were added and the
pH was adjusted to values between 1 and 2 using 37% HCl. FFAs were extracted with
300 mL of hexane, shaking at 200 rpm for 30 min. Finally the hydroalcoholic and
hexane phases were separated by decantation and the hexanic phase was washed
twice with water.
FFAs from the microalga N. gaditana were obtained following a modification of
the three-step procedure developed by Ibáñez González et al. (11) (Fig. 1). 0.50 kg of
wet biomass was treated with 3.63 L of ethanol (96% v/v) (30 mL ethanol (96%)/g dry
biomass), containing 24.2 g of KOH (85% purity) in a 10 L reactor, which was jacketed
for temperature control. Direct saponification was carried out at 60C for 1 h with
constant stirring at 200 rpm with a propeller stirrer (Eurostar digital, IKA Staufen,
Germany), in argon atmosphere and covered with aluminium foil to protect from
light. The biomass residue was then separated from the hydroalcoholic solution by
filtration using a porous glass plate (pore diameter 100 mm, Pobel, Madrid, Spain).
This biomass residue was washed with 1.4 L of ethanol (96% v/v) (14 mL ethanol
(96%)/g dry biomass), to increase the fatty acid recovery yield and this washing
solution was added to the hydroalcoholic fatty acid solution from the main extraction.
In the following step, water (674 mL) was added to the hydroalcoholic phase to
reach 30% wt in water, to increase the immiscibility of the hydroalcoholic solution
and hexane, and the unsaponifiable contents were extracted with 4.30 L hexane
(hexane/hydroalcoholic solution ratio 1:1 v/v). This extraction was carried out stirring
at 200 rpm for 10 min. Subsequently, the solutionwas decanted for 30 min. The
unsaponifiable hexanic solution was removed, leaving the lower hydroalcoholic
phase in the extractor. Next, concentrated HCl was added to the hydroalcoholic
phase to pH 5, to form the FFAs. These FFAs were extracted with hexane (4.3 L), and
the mixture was stirred at 200 rpm for 10 min. It was then allowed to decant for
30 min and two phases were obtained, a bottom one that was discarded and the
upper hexanic phase containing the FFAs. This FFA solution was evaporated in a
rotary evaporator (Buchi, R210, with vacuum pumpV-700 and controller V-850,
Switzerland) to remove and recover the solvent and the FFAs.

0/5000

จาก: -

เป็น: -

ผลลัพธ์ (ไทย) 1: [สำเนา]

คัดลอก!

MATERIALS AND METHODSMicroalga, oil, lipases and chemicals Wet paste biomass of the marinemicroalga N. gaditana was used as an oil-rich substrate. This biomass was facilitatedby the Estación experimental de Las Palmerillas (Cajamar, El Ejido, Spain). Cells weregrown in an outdoor tubular photobioreactor, centrifuged at 7000 rpm for 10 min,and then stored at 20C until use. This wet biomass contained 24.2% 0.7% w/w ofdry biomass and 29.1 0.0 wt% of total lipids on dry biomass. The total fatty acidcontent (or saponifiable lipids as equivalent fatty acids) in the biomass was12.1 0.2 wt% on dry biomass. Free fatty acids (FFAs) from used vegetable oil (UVO)were also used. This oil was provides by the biodiesel manufacturer companyAlbabío (Nijar, Spain). Table 1 shows the fatty acid composition of both oils. Theesterification reaction was catalysed by the lipase Novozym 435 from Candidaantarctica (Novozymes A/S, Bagsvaerd, Denmark). This lipase is immobilized on amacroporous acrylic resin and it is positionally non-specific.Ethanol (96%, analysis quality) and hexane (95% purity, synthesis quality), bothof Panreac (Barcelona, Spain), were used to extract FFAs from the microalga and tosaponify the UVO. HCl (37%, Panreac S.A., Barcelona, Spain), methanol (99.9% purity,Carlo Erba Reagents, Rodano, Italy), NaOH and KOH (85% purity, J.T. Baker, Deventer,Holland), all of analytical quality, were also used. All reagents used in the analyticaldeterminations were also of analytical grade.Obtaining of FFAs from UVO and microalgal biomass FFAs fromUVO wereobtained by saponification of the oil. The reaction mixture contained 350 mL of oiland 700 mL of a hydroalcoholic solution of NaOH, which was prepared dissolving120 g of NaOH in 400 mL of water and 400 mL of ethanol (96% v/v). The saponificationwas carried out shaking this mixture at 200 rpm, at 60C for 30 min. Themixture was then cooled at room temperature, 140 mL of water were added and thepH was adjusted to values between 1 and 2 using 37% HCl. FFAs were extracted with300 mL of hexane, shaking at 200 rpm for 30 min. Finally the hydroalcoholic andhexane phases were separated by decantation and the hexanic phase was washedtwice with water.FFAs from the microalga N. gaditana were obtained following a modification ofthe three-step procedure developed by Ibáñez González et al. (11) (Fig. 1). 0.50 kg ofwet biomass was treated with 3.63 L of ethanol (96% v/v) (30 mL ethanol (96%)/g drybiomass), containing 24.2 g of KOH (85% purity) in a 10 L reactor, which was jacketedfor temperature control. Direct saponification was carried out at 60C for 1 h withconstant stirring at 200 rpm with a propeller stirrer (Eurostar digital, IKA Staufen,Germany), in argon atmosphere and covered with aluminium foil to protect fromlight. The biomass residue was then separated from the hydroalcoholic solution byfiltration using a porous glass plate (pore diameter 100 mm, Pobel, Madrid, Spain).This biomass residue was washed with 1.4 L of ethanol (96% v/v) (14 mL ethanol(96%)/g dry biomass), to increase the fatty acid recovery yield and this washingsolution was added to the hydroalcoholic fatty acid solution from the main extraction.In the following step, water (674 mL) was added to the hydroalcoholic phase toreach 30% wt in water, to increase the immiscibility of the hydroalcoholic solutionand hexane, and the unsaponifiable contents were extracted with 4.30 L hexane(hexane/hydroalcoholic solution ratio 1:1 v/v). This extraction was carried out stirringat 200 rpm for 10 min. Subsequently, the solutionwas decanted for 30 min. Theunsaponifiable hexanic solution was removed, leaving the lower hydroalcoholicphase in the extractor. Next, concentrated HCl was added to the hydroalcoholicphase to pH 5, to form the FFAs. These FFAs were extracted with hexane (4.3 L), andthe mixture was stirred at 200 rpm for 10 min. It was then allowed to decant for30 min and two phases were obtained, a bottom one that was discarded and theupper hexanic phase containing the FFAs. This FFA solution was evaporated in arotary evaporator (Buchi, R210, with vacuum pumpV-700 and controller V-850,Switzerland) to remove and recover the solvent and the FFAs.

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:[สำเนา]

คัดลอก!

วัสดุและวิธีการสาหร่ายน้ำมันไลเปสและสารเคมีชีวมวลเปียกวางของทะเลสาหร่ายเอ็นgaditana ถูกใช้เป็นสารตั้งต้นที่อุดมไปด้วยน้ำมัน ชีวมวลนี้ได้รับการอำนวยความสะดวกโดยการทดลองEstaciónเดอลา Palmerillas (Cajamar, El Ejido, สเปน) เซลล์ที่ถูกปลูกใน photobioreactor ท่อน้ำกลางแจ้ง, หมุนเหวี่ยงที่ 7000 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 10 นาทีแล้วเก็บไว้ที่20 องศาเซลเซียสจนการใช้งาน นี้เปียกชีวมวลที่มีอยู่ 24.2%? 0.7% w / w การของชีวมวลแห้งและ29.1? 0.0% โดยน้ำหนักของไขมันรวมชีวมวลแห้ง กรดไขมันทั้งหมดเนื้อหา (หรือไขมัน saponifiable เป็นกรดไขมันที่เทียบเท่า) ในชีวมวลเป็น 12.1? 0.2% โดยน้ำหนักแห้งชีวมวล กรดไขมันอิสระ (FFAs) จากน้ำมันพืชใช้แล้ว (UVO) นอกจากนี้ยังถูกนำมาใช้ น้ำมันนี้เป็นให้โดย บริษัท ผู้ผลิตไบโอดีเซลAlbabío (Nijar, สเปน) ตารางที่ 1 แสดงองค์ประกอบของกรดไขมันของน้ำมันทั้ง ปฏิกิริยา esterification ถูกตัวเร่งปฏิกิริยาโดยเอนไซม์ไลเปส Novozym 435 จาก Candida แอนตาร์กติกา (Novozymes A / S, Bagsvaerd, เดนมาร์ก) เอนไซม์ไลเปสนี้จะตรึงบนเรซินอะคริลิ macroporous และมันก็เป็น positionally ไม่เฉพาะเจาะจง. เอทานอล (96% คุณภาพการวิเคราะห์) และเฮกเซน (ความบริสุทธิ์ 95%, ที่มีคุณภาพสังเคราะห์) ทั้งของPanreac (บาร์เซโลน่า, สเปน) ถูกนำมาใช้ในการสกัด FFAs จากสาหร่ายและสบู่UVO HCl (37%, Panreac SA, บาร์เซโลนา, สเปน), เมทานอล (ความบริสุทธิ์ 99.9%, คาร์โลเออร์บารีเอเจนต์, Rodano, อิตาลี), NaOH และเกาะ (85% บริสุทธิ์ JT เบเกอร์เวนเตอร์, ฮอลแลนด์) ทั้งหมดที่มีคุณภาพในการวิเคราะห์เป็น นอกจากนี้ยังใช้ สารเคมีที่ใช้ในการวิเคราะห์หาความยังเป็นของเกรดวิเคราะห์. ขอรับใบ FFAs จาก UVO และ FFAs ชีวมวลสาหร่าย fromUVO ถูกที่ได้จากการสะพอน้ำมัน ผสมปฏิกิริยาที่มีอยู่ 350 มิลลิลิตรน้ำมันและ700 มิลลิลิตรของการแก้ปัญหาของ hydroalcoholic NaOH ซึ่งถูกจัดทำละลาย120 กรัม NaOH ใน 400 มิลลิลิตรของน้ำและ 400 มิลลิลิตรของเอทานอล (96% v / v) สะพอได้ดำเนินการเขย่าผสมนี้ที่ 200 รอบต่อนาทีที่ 60 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 30 นาที ส่วนผสมเย็นแล้วที่อุณหภูมิห้อง 140 มิลลิลิตรของน้ำมีการเพิ่มและค่าpH ปรับค่าระหว่าง 1 และ 2 โดยใช้ 37% HCl FFAs ถูกสกัดด้วย300 มลเฮกเซนเขย่าที่ 200 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 30 นาที ในที่สุด hydroalcoholic และขั้นตอนเฮกเซนที่ถูกแยกจากกันโดยdecantation และระยะ hexanic ถูกล้างสองครั้งด้วยน้ำ. FFAs จาก gaditana เอ็นสาหร่ายที่ได้รับการปรับเปลี่ยนต่อไปนี้ของขั้นตอนที่สามขั้นตอนการพัฒนาโดยIbáñezGonzález et al, (11) (รูปที่ 1). 0.50 กิโลกรัมของชีวมวลเปียกรับการรักษาด้วย3.63 L เอทานอล (96% v / v) (เอทานอล 30 มิลลิลิตร (96%) / กรัมแห้งชีวมวล) ที่มี 24.2 กรัมของ KOH (85% บริสุทธิ์) ในเครื่องปฏิกรณ์ L 10 ซึ่ง ได้รับเสื้อสำหรับการควบคุมอุณหภูมิ สะพอโดยตรงได้ดำเนินการที่ 60 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 1 ชั่วโมงกับกวนคงที่ที่200 รอบต่อนาทีกับใบพัดกวน (ยูโรสตาร์ดิจิตอล IKA Staufen, เยอรมนี) ในชั้นบรรยากาศอาร์กอนและปกคลุมด้วยอลูมิเนียมเพื่อป้องกันแสง ที่เหลือชีวมวลถูกแยกออกมาแล้วจากการแก้ปัญหา hydroalcoholic โดยการกรองโดยใช้แผ่นกระจกที่มีรูพรุน(เส้นผ่าศูนย์กลางรูขุมขน 100 มม Pobel, มาดริด, สเปน). ตกค้างชีวมวลนี้ถูกล้างด้วย 1.4 ลิตรเอทานอล (96% v / v) (14 มิลลิลิตร เอทานอล(96%) / g ชีวมวลแห้ง) เพื่อเพิ่มผลผลิตการกู้คืนกรดไขมันและซักผ้านี้แก้ปัญหาที่ถูกเพิ่มลงในสารละลายกรดไขมันhydroalcoholic จากการสกัดหลัก. ในขั้นตอนต่อไปนี้น้ำ (674 มิลลิลิตร) ถูกบันทึกอยู่ใน hydroalcoholic ขั้นตอนที่จะถึง30% โดยน้ำหนักในน้ำเพื่อเพิ่ม immiscibility ของการแก้ปัญหา hydroalcoholic และเฮกเซนและเนื้อหา unsaponifiable ถูกสกัดด้วยเฮกเซน 4.30 L (อัตราส่วนเฮกเซน / แก้ปัญหา hydroalcoholic 1: 1 v / v) สกัดนี้ได้รับการดำเนินการกวน200 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 10 นาที ต่อมา solutionwas decanted เป็นเวลา 30 นาที แก้ปัญหา hexanic unsaponifiable ถูกลบออกออกจาก hydroalcoholic ต่ำกว่าขั้นตอนในการระบาย ถัดไปเข้มข้น HCl ถูกเพิ่มลงใน hydroalcoholic เฟสค่าพีเอช 5 ในรูปแบบ FFAs FFAs เหล่านี้ถูกสกัดด้วยเฮกเซน (4.3 ลิตร) และส่วนผสมที่ถูกกวนที่200 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 10 นาที มันได้รับการอนุญาตแล้วจะค่อยๆรินสำหรับ30 นาทีและสองขั้นตอนที่ได้รับเป็นหนึ่งด้านล่างที่ถูกทิ้งและเฟสhexanic บนมี FFAs วิธีการแก้ปัญหานี้ได้รับการปรับปรุงคุณภาพระเหยในเครื่องระเหยแบบหมุน (Buchi, R210 มีสูญญากาศ pumpV-700 และควบคุม V-850, วิตเซอร์แลนด์) ในการลบและกู้คืนตัวทำละลายและ FFAs

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:[สำเนา]

คัดลอก!

วัสดุและวิธีการ
สาหร่าย , น้ำมัน , ไลเปสและสารเคมี
ชีวมวลหมักเปียกของทะเล
สาหร่าย . gaditana ถูกใช้เป็นริชพื้นผิว ระบบนี้สะดวก
โดย estaci เลอองทดลอง de las palmerillas ( Cajamar เอลจิโด้ , สเปน ) เซลล์มีการปลูกในท่อ
photobioreactor กลางแจ้งที่ระดับ 7 , 000 รอบต่อนาที เป็นเวลา 10 นาที แล้วเก็บรักษา
ที่ 20 C จนใช้ชีวมวลเปียกนี้ประกอบด้วย 40 % 0.7 % w / w ของ
ชีวมวลแห้งและไม่ 0.0 เปอร์เซ็นต์โดยน้ำหนักของไขมันทั้งหมดในมวลชีวภาพแห้ง เนื้อหาทั้งหมดกรด
ไขมัน ( หรือ saponifiable ไขมันเทียบเท่ากับกรดไขมันในชีวมวลเป็น 0.2 เปอร์เซ็นต์โดยน้ำหนักใน
12.1 มวลชีวภาพแห้ง กรดไขมันอิสระ ( ffas ) จากน้ำมันพืชใช้แล้ว ( uvo )
ยังใช้ น้ำมันนี้มีให้โดยผู้ผลิตไบโอดีเซล บริษัท albab í o
( ไนเจอร์ , สเปน )ตารางที่ 1 แสดงองค์ประกอบของกรดไขมันของน้ำมัน ปฏิกิริยาเอสเทอริฟิเคชัน
catalysed โดยไลเปสจาก Candida โนโวไซม์ 435
แอนตาร์กติกา ( กุ้ง / S , bagsvaerd , เดนมาร์ก ) เมื่อถูกตรึงบน
ยางอะคริลิก macroporous และเป็น positionally เฉพาะ .
เอทานอล ( การวิเคราะห์คุณภาพ 96% ) เฮกเซน ( คุณภาพและความบริสุทธิ์ 95% ) ทั้ง
ของ panreac ( บาร์เซโลนา ) ,ใช้สารสกัดจากสาหร่าย และ ffas

ทำให้เป็นสบู่ที่ uvo . กรดไฮโดรคลอริก ( 37% panreac S.A . , บาร์เซโลนา , สเปน ) , เมทานอล ( 99.9% บริสุทธิ์
คาร์โลมา rodano reagents , อิตาลี ) , NaOH และเกาะ ( 85% ความบริสุทธิ์ , J.T . Baker , Deventer
, ฮอลแลนด์ ) , คุณภาพวิเคราะห์ ยังใช้ ทั้งหมดเพื่อใช้ในการวิเคราะห์ข้างต้นยังวิเคราะห์

เกรดได้รับของ ffas จาก uvo สาหร่ายชีวมวลและ ffas fromuvo ถูก
ได้โดยการออกซิเดชันทางเคมีของน้ำมัน ปฏิกิริยาผสมที่มีอยู่ 350 มล. ของน้ำมัน
และ 700 มิลลิลิตรของสารละลาย hydroalcoholic NaOH ที่เตรียมละลาย
120 กรัม 400 มิลลิลิตร และมีน้ำ 400 มิลลิลิตรเอทานอล ( 96 % v / v ) การออกซิเดชันทางเคมี
ทำการเขย่าส่วนผสมนี้ที่ 200 รอบต่อนาทีที่อุณหภูมิ 60
C เป็นเวลา 30 นาที

การแปล กรุณารอสักครู่..

ภาษาอื่น ๆ

การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.