Abstract178 bacterial strains were

Abstract
178 bacterial strains were isolated from the soil samples collected from different regions of India out of which, 20 bacterial isolates were selected for alkaline protease production. The alkaline protease production efficiency of organisms was monitored at regular intervals (24 h) upto 7 days at 37 °C, pH 10. The 16S rDNA sequencing and RAPD-PCR based technique were used to identify the genetic variability among the 20 isolates of alkaline protease producing bacteria. The phylogenetic analysis indicated that the isolates can be separated into two clusters which could be further subdivided into five groups. Group 1 and 5 represented the family Bacillaceae, Groups 2 represented the Micrococcaceae family while Group 3 included the Arthrobacter bacterial group (family Micrococcaceae) from different geographical locations, respectively. Group 4 was identified as Pseudomonadaceae which was gram (−) bacteria. 21 different oligonucleotide primers were used to amplify approximately 261 fragments from each DNA sample. The bands were scored on the basis of their presence and absence and similarity between DNA samples was checked using Jaccard’s coefficient. Isolates were distinguished into distinct groups based on RAPD profiles from different geographical locations, morphological features and enzyme production efficiency. For cluster analysis the dendrogram was constructed using the unweighted pair group method with arithmetic averages (UPGMA). The results indicated that 16S rDNA and RAPD-PCR are suitable methods for rapid identification and differentiation of alkaline protease producing bacteria.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

บทคัดย่อ178 bacterial strains were isolated from the soil samples collected from different regions of India out of which, 20 bacterial isolates were selected for alkaline protease production. The alkaline protease production efficiency of organisms was monitored at regular intervals (24 h) upto 7 days at 37 °C, pH 10. The 16S rDNA sequencing and RAPD-PCR based technique were used to identify the genetic variability among the 20 isolates of alkaline protease producing bacteria. The phylogenetic analysis indicated that the isolates can be separated into two clusters which could be further subdivided into five groups. Group 1 and 5 represented the family Bacillaceae, Groups 2 represented the Micrococcaceae family while Group 3 included the Arthrobacter bacterial group (family Micrococcaceae) from different geographical locations, respectively. Group 4 was identified as Pseudomonadaceae which was gram (−) bacteria. 21 different oligonucleotide primers were used to amplify approximately 261 fragments from each DNA sample. The bands were scored on the basis of their presence and absence and similarity between DNA samples was checked using Jaccard’s coefficient. Isolates were distinguished into distinct groups based on RAPD profiles from different geographical locations, morphological features and enzyme production efficiency. For cluster analysis the dendrogram was constructed using the unweighted pair group method with arithmetic averages (UPGMA). The results indicated that 16S rDNA and RAPD-PCR are suitable methods for rapid identification and differentiation of alkaline protease producing bacteria.

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

บทคัดย่อ
178 สายพันธุ์แบคทีเรียที่แยกได้จากตัวอย่างดินที่เก็บรวบรวมจากภูมิภาคต่าง ๆ ของอินเดียออกจากที่ 20 แบคทีเรียได้รับการคัดเลือกในการผลิตโปรติเอสอัลคาไลน์ อัลคาไลน์โปรติเอสประสิทธิภาพการผลิตของสิ่งมีชีวิตได้รับการตรวจสอบในช่วงเวลาปกติ (24 ชั่วโมง) ได้ไม่เกิน 7 วันที่ 37 องศาเซลเซียสพีเอช 10 ลำดับ 16S rDNA และ RAPD-PCR เทคนิคตามถูกนำมาใช้ในการระบุความแปรปรวนทางพันธุกรรมในหมู่ 20 สายพันธุ์ของอัลคาไลน์ แบคทีเรียที่ผลิตเอนไซม์โปรติเอ การวิเคราะห์สายวิวัฒนาการชี้ให้เห็นว่าไอโซเลทที่สามารถแยกออกเป็นสองกลุ่มซึ่งสามารถแบ่งออกเป็นห้ากลุ่ม กลุ่มที่ 1 และ 5 เป็นตัวแทนของครอบครัว Bacillaceae ที่กลุ่มที่ 2 เป็นตัวแทนของครอบครัว Micrococcaceae ในขณะที่กลุ่มที่ 3 รวมกลุ่มแบคทีเรีย Arthrobacter (ครอบครัว Micrococcaceae) จากสถานที่ทางภูมิศาสตร์ที่แตกต่างกันตามลำดับ กลุ่มที่ 4 ถูกระบุว่าเป็น Pseudomonadaceae ซึ่งเป็นกรัม (-) แบคทีเรีย ไพรเมอร์ 21 oligonucleotide ที่แตกต่างกันถูกนำมาใช้เพื่อขยายประมาณ 261 ชิ้นจากแต่ละตัวอย่างดีเอ็นเอ วงถูกยิงบนพื้นฐานของการแสดงตนของพวกเขาและการขาดและความคล้ายคลึงกันระหว่างตัวอย่างดีเอ็นเอได้รับการตรวจสอบโดยใช้ค่าสัมประสิทธิ์ของ Jaccard โดดเด่นที่แยกออกเป็นกลุ่มที่แตกต่างกันขึ้นอยู่กับรูปแบบดีเอ็นเอจากสถานที่ทางภูมิศาสตร์ที่แตกต่างกันลักษณะทางสัณฐานและประสิทธิภาพในการผลิตเอนไซม์ สำหรับการวิเคราะห์กลุ่ม dendrogram ถูกสร้างขึ้นโดยใช้วิธีการชั่งคู่กลุ่มที่มีค่าเฉลี่ยเลขคณิต (UPGMA) ผลการวิจัยพบว่า 16S rDNA และ RAPD-PCR เป็นวิธีการที่เหมาะสมสำหรับการระบุอย่างรวดเร็วและความแตกต่างของอัลคาไลน์โปรติเอสแบคทีเรียที่ผลิต

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

นามธรรม
178 แบคทีเรียที่แยกได้จากตัวอย่างดินที่เก็บจากภูมิภาคต่าง ๆของอินเดียออกมาที่ 20 แบคทีเรียที่คัดเลือกได้คัดเลือกการผลิตอัลคาไลน์โปรติเอส ที่ประสิทธิภาพการผลิตอัลคาไลน์โปรติเอสของสิ่งมีชีวิตถูกตรวจสอบในช่วงเวลาปกติ ( 24 ชั่วโมง ) ไม่เกิน 7 วัน ที่อุณหภูมิ 37 องศา C , pH 10ช่วง 16S rDNA และลำดับชื่อเรื่องตามเทคนิคที่ใช้เพื่อระบุการผันแปรทางพันธุกรรมระหว่าง 20 สายพันธุ์แบคทีเรียที่ผลิตอัลคาไลน์โปรติเอส . การวิเคราะห์ phylogenetic พบว่าไอโซเลตที่สามารถแยกออกเป็นสองกลุ่มซึ่งสามารถเพิ่มเติมแบ่งออกเป็นห้ากลุ่ม กลุ่มที่ 1 และ 5 แสดง bacillaceae ครอบครัวกลุ่มที่ 2 กลุ่มที่ 3 แทนครอบครัวไมโครค เคซีอียา ( รวมกลุ่มแบคทีเรียตระกูลไมโครค เคซีอี ) จากสถานที่ทางภูมิศาสตร์ที่แตกต่างกันตามลำดับ กลุ่มที่ 4 กลุ่มที่ถูกระบุว่าเป็น pseudomonadaceae ซึ่งเป็นกรัม ( − ) แบคทีเรีย 21 ชนิด ซึ่งแตกต่างกันถูกใช้เพื่อขยายประมาณ 261 ชิ้นดีเอ็นเอจากแต่ละตัวอย่างวงดนตรีที่ถูกยิงบนพื้นฐานของการแสดงตนและการขาดและความคล้ายคลึงระหว่างตัวอย่างดีเอ็นเอของตรวจสอบโดยใช้ Jaccard coefficient ไอโซเลทที่โดดเด่นในกลุ่มที่แตกต่างกันขึ้นอยู่กับที่ตั้งทางภูมิศาสตร์จาก RAPD โปรไฟล์ที่แตกต่างกัน ลักษณะทางสัณฐานวิทยาและประสิทธิภาพในการผลิตเอนไซม์สำหรับการวิเคราะห์กลุ่มพันธุกรรมที่ถูกสร้างขึ้นโดยใช้วิธีเฉลี่ยถ่วงน้ำหนักคู่กับคณิตศาสตร์ ( UPGMA ) ผลการศึกษาพบว่า 16S rDNA และชื่อเรื่องเป็นวิธีการที่เหมาะสมสำหรับการอย่างรวดเร็วและความแตกต่างของ ด่าง แบคทีเรียที่ผลิตเอนไซม์โปรติเอส .