Experiment 2One hundred forty-four

Experiment 2
One hundred forty-four weanling, castrated male
pigs (Duroc × Landrace × Yorkshire; 6.18 ± 1.31 kg of
BW) were allotted by weight to 4 dietary treatments
for 8 wk. Each treatment had 3 replicates with 12 pigs
per pen. The 4 treatment diets contained: no β-glucan or
antibiotics (control, T1); 0.02% β-glucan (T2); antibiotic
(T3); and 0.02% β-glucan and antibiotics (T4). The antibiotics
fed during phase I (0 to 2 wk) were 0.15% apramycin
(Apralan; KBNP Inc., Gunpo-city, Kyungki-Do,
Korea) and 0.10% Carbadox (Mecadox, Seoul Vet.
Pharm., Umsong, Chungcheongbuk-Do, Korea). The
antibiotics fed during phase II (3 to 8 wk) were 0.10%
chlortetracycline (CTC, Yuhan Corporation, Anyang-
City, Kyungki-Do, Korea) and 0.10% Carbadox. The
performance study was conducted for 5 wk, but the
immune response was studied until 8 wk. The composition
of the control diet (T1) during phases I and II was
the same as in Exp. 1, but the treatment diets (T2 to
T4) were adjusted by replacing corn on an equal percent
basis (Table 1). The source of β-glucan and the facilities
and management were the same as in Exp.1. The BW
and ADFI were recorded at the end of phase I and at
5 wk during phase II. A digestibility trial was also
conducted on 28 d using chromic oxide (0.25%), as an
indicator as in Exp. 1.
An additional 3 pens of 2 pigs each per treatment
were assigned and penned separately for antibody titer
studies. They were vaccinated (i.m.) after weaning with
atrophic rhinitis vaccine (Pfizer Co., Seoul, Korea) at 9
d with 1 mL and 14 d with 2 mL. For antibody quantification
by using an ELISA (Kit No. JBPA1, Jeil-Bio Co.,Seoul, Korea), blood was then drawn from the jugular
vein at 15, 24, and 46 d postvaccination using a 22-
gauge sterile needle into a 10 mL syringe and then
transferred to a BD Vacutainer (Becton Dickinson,
Franklin Lakes, NJ) without anticoagulant. The blood
was centrifuged at 1,500 × g for 10 min, and serum was
collected and stored for further analysis.
During the study, the effects of β-glucan on porcine
lymphocyte populations were measured using flow cytometry,
with fluorescence-activated cell sorter Calibur
and CellQuest programs (Becton Dickinson, Franklin
Lakes, NJ) and monoclonal antibodies specifically reactive
with porcine major histocompatibility complex
(MHC) class II, cluster of differentiation antigens 2, 4,
and 8 (CD2, CD4, and CD8, respectively), B-cells,
NonT/NonB cells (N), and granulocytes (G). The blood
was drawn from 6 randomly selected pigs per group (2
per replicate) at 4 and 8 wk after weaning, and the
leukocyte population was measured using flow cytometry.
Blood was drawn from the jugular vein by using a
22-gauge needle into a 10-mL syringe and then transferred
to a BD Vacutainer (Becton Dickinson) containing
sodium heparin as an anticoagulant and stored
at 4°C until analysis.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ทดลอง 2Weanling เพศชายตอนหนึ่งร้อยสี่สิบสี่สุกร (Duroc ××แม่ยอร์คเชียร์ 6.18 ± 1.31 กิโลกรัมของBW) ถูกจัดสรรตามน้ำหนักการรักษาอาหาร 4สำหรับ 8 wk ทรีตเมนท์ได้เหมือนกับ 3 กับหมู 12ต่อปากกา อาหารบำบัด 4 ที่อยู่: ไม่β-glucan หรือยาปฏิชีวนะ (ควบคุม T1); 0.02% β-glucan (T2); ยาปฏิชีวนะ(T3); และβ-glucan 0.02% และยาปฏิชีวนะ (T4) ยาปฏิชีวนะเลี้ยงระยะฉัน (0-2 wk) เป็น 0.15% apramycin(Apralan KBNP Inc. กันโปเมือง, จักษุ Kyungki-โดเกาหลี และ 0.10% Carbadox (Mecadox เรื่องน่ารู้ของโซลPharm., Umsong, Chungcheongbuk-โด เกาหลี) ที่ยาปฏิชีวนะเลี้ยงระหว่างขั้นตอน II (3-8 wk) ขึ้น 0.10%คลอร์เตตราไซคลีน (CTC, Yuhan คอร์ปอเรชั่น อัน-เมือง, จักษุ Kyungki จูโด เกาหลี) และ 0.10% Carbadox ที่วิธีการศึกษาประสิทธิภาพสำหรับ 5 wk แต่การตอบสนองภูมิคุ้มกันถูกศึกษาจน 8 wk องค์ประกอบการควบคุมอาหาร (T1) ในช่วงระยะที่ดาวถูกอาหารเดียวกับ exp. 1 แต่การรักษา (T2 เพื่อT4) ถูกปรับปรุง โดยแทนข้าวโพดในเปอร์เซ็นต์เท่ากันพื้นฐาน (ตาราง 1) แหล่งที่มาของβ-glucan และอำนวยความสะดวก และมีการจัดการเดียวกันกับ Exp.1 BWและ ADFI ได้บันทึกไว้เมื่อสิ้นสุดระยะของฉัน และที่wk 5 ระหว่างขั้นตอน II Digestibility ที่ทดลองได้ยังดำเนินการใน 28 d ใช้ chromic ออกไซด์ (0.25%), เป็นการตัวบ่งชี้ใน exp. 1มีปากกา 3 เพิ่มเติม 2 สุกรต่อการรักษาแต่ละมี titer แอนติบอดีที่กำหนด และเขียนแยกต่างหากสำหรับการศึกษา พวกฉีด (i.m.) หลังจาก weaning ด้วยวัคซีน atrophic rhinitis (บริษัทไฟเซอร์ โซล เกาหลี) ที่ 9d 1 mL และ d 14 มี 2 mL สำหรับนับแอนติบอดีโดยใช้การ ELISA (ชุดหมายเลข JBPA1, Jeil ชีวภาพ Co. โซล เกาหลี), เลือดแล้วออกจาก jugularเส้นเลือดที่ 15, 24 และ postvaccination 46 d ใช้ 22 แบบวัดกอซเข็มเป็นเข็ม 10 mL แล้วโอนไป Vacutainer BD (Becton สันแฟรงคลินทะเลสาบ NJ) โดย anticoagulant เลือดมี centrifuged ที่ 1500 × g สำหรับ 10 นาที และซีรั่มรวบรวม และจัดเก็บไว้สำหรับการวิเคราะห์เพิ่มเติมในระหว่างการศึกษา ผลกระทบของβ-glucan ในช่วงประชากร lymphocyte ถูกวัดโดยใช้เซลล์กระแสมีการคัดแยกเซลล์เรียกใช้ fluorescence Caliburและโปรแกรม CellQuest (สัน Becton แฟรงคลินทะเลสาบ NJ) และแอนตี้ monoclonal ปฏิกิริยาโดยเฉพาะมี histocompatibility ที่สำคัญช่วงซับซ้อน(เอ็มเอชซี) คลาส II คลัสเตอร์ของ antigens สร้างความแตกต่าง 2, 4และ 8 (CD2, CD4 และ CD8 ตามลำดับ), บีเซลล์เซลล์ NonT/NonB (N), และ granulocytes (G) เลือดออกจากสุกร 6 สุ่มเลือกสำหรับแต่ละกลุ่ม (2ต่อจำลอง) ที่ 4 และ 8 wk หลังจาก weaning และleukocyte ประชากรถูกวัดโดยใช้เซลล์กระแสเลือดออกจากหลอดเลือดดำ jugular โดยการ22 วัดเข็มเป็นเข็ม 10 mL และโอนย้ายแล้วการ Vacutainer BD (Becton สัน) ที่ประกอบด้วยเฮพารินโซเดียมเป็น anticoagulant มี และเก็บไว้ที่ 4° C จนถึงการวิเคราะห์

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

การทดลองที่ 2
หนึ่งร้อยสี่สิบสี่หลังหย่านม,
ตอนชายหมู(Duroc ××ยอร์คแลนด์เรซ; 6.18 ± 1.31 กิโลกรัม
BW) ได้รับการจัดสรรโดยน้ำหนัก 4
การรักษาอาหารเป็นเวลา8 สัปดาห์ การรักษาแต่ละคนมี 3 ซ้ำกับ 12
หมูต่อปากกา 4 อาหารที่มีการรักษา:
ไม่มีβกลูแคนหรือยาปฏิชีวนะ(ควบคุม T1); 0.02% βกลูแคน (T2); ยาปฏิชีวนะ
(T3); และ 0.02% βกลูแคนและยาปฏิชีวนะ (T4) ยาปฏิชีวนะที่เลี้ยงในช่วงที่ผม (0-2 สัปดาห์) เป็น 0.15% apramycin (Apralan; Kbnp อิงค์ Gunpo เมือง Kyungki-Do, Korea) และ 0.10% Carbadox (Mecadox โซล Vet. Pharm, Umsong, Chungcheongbuk-. Do, Korea) ยาปฏิชีวนะที่เลี้ยงในช่วงระยะที่สอง (3-8 สัปดาห์) เป็น 0.10% คลอร์เตตราไซคลีน (CTC, Yuhan คอร์ปอเรชั่น Anyang- เมือง Kyungki-Do เกาหลี) และ 0.10% Carbadox การศึกษาผลการดำเนินงานได้ดำเนินการเป็นเวลา 5 สัปดาห์ แต่การตอบสนองของระบบภูมิคุ้มกันได้ศึกษาจนถึงวันที่8 สัปดาห์ องค์ประกอบของอาหารควบคุม (T1) ในระหว่างขั้นตอนที่ I และ II เป็นเช่นเดียวกับในประสบการณ์ 1 แต่อาหารที่รักษา (T2 เพื่อT4) มีการปรับเปลี่ยนโดยข้าวโพดร้อยละเท่ากับพื้นฐาน(ตารางที่ 1) แหล่งที่มาของβกลูแคนและสิ่งอำนวยความสะดวกและการจัดการเป็นเช่นเดียวกับใน Exp.1 BW และ ADFI ถูกบันทึกไว้ในตอนท้ายของระยะที่ I และที่5 สัปดาห์ในระหว่างขั้นตอนที่สอง การทดลองย่อยก็ยังดำเนินการเมื่อวันที่ 28 d โดยใช้โครออกไซด์ (0.25%) ในฐานะที่เป็นตัวบ่งชี้ในขณะที่ประสบการณ์ 1. เพิ่มเติม 3 ปากกา 2 สุกรแต่ละต่อการรักษาที่ได้รับมอบหมายและเขียนแยกต่างหากสำหรับtiter แอนติบอดีศึกษา พวกเขาได้รับการฉีดวัคซีน (im) หลังจากหย่านมด้วยการฉีดวัคซีนป้องกันโรคจมูกอักเสบตีบ(ไฟเซอร์ จำกัด กรุงโซลประเทศเกาหลี) วันที่ 9 ง 1 มิลลิลิตรและ 14 d 2 มิลลิลิตร สำหรับปริมาณแอนติบอดีโดยใช้วิธี ELISA (Kit ฉบับ JBPA1, Jeil ไบโอ จำกัด กรุงโซลประเทศเกาหลี) เลือดถูกดึงออกมาแล้วจากคอเส้นเลือดที่15, 24 และ 46 d postvaccination ใช้ 22- เข็มวัดเป็นหมัน เข็มฉีดยา 10 มิลลิลิตรและจากนั้นย้ายไปที่Vacutainer BD (Becton ดิกคินสัน, แฟรงคลินเลคส์, นิวเจอร์ซีย์) โดยไม่ต้องสารกันเลือดแข็ง เลือดถูกหมุนเหวี่ยงที่ 1500 ×กรัมเป็นเวลา 10 นาทีและซีรั่มที่ถูกเก็บรวบรวมและเก็บไว้สำหรับการวิเคราะห์ต่อไป. ในระหว่างการศึกษาผลกระทบของการβกลูแคนในสุกรประชากรเม็ดเลือดขาวถูกวัดโดยใช้ cytometry ไหลเซลล์เรืองแสงที่ทำงานโดยใช้ตัวเรียงลำดับคาลิเบอร์และโปรแกรม CellQuest (Becton ดิกคินสัน, แฟรงคลินเลคส์, นิวเจอร์ซีย์) และโคลนอลแอนติบอดีโดยเฉพาะปฏิกิริยากับhistocompatibility ที่สำคัญหมูที่ซับซ้อน(MHC) ชั้นที่สองกลุ่มของแอนติเจนความแตกต่างของ 2, 4, และ 8 (CD2, CD4 และ CD8 ตามลำดับ) B- เซลล์นนท์/ เซลล์ NonB (N) และ granulocytes (G) เลือดถูกดึงออกมาจาก 6 หมูสุ่มเลือกต่อกลุ่ม (2 ต่อซ้ำ) ที่ 4 และ 8 สัปดาห์หลังจากหย่านมและประชากรของเม็ดเลือดขาวที่ถูกวัดโดยใช้cytometry ไหล. เลือดถูกดึงออกมาจากเส้นเลือดใหญ่เส้นโดยใช้เข็ม 22 วัดเป็น เข็มฉีดยา 10 มิลลิลิตรและจากนั้นก็ย้ายไปVacutainer BD (Becton ดิกคินสัน) ที่มีเฮโซเดียมเป็นสารกันเลือดแข็งและเก็บไว้ที่อุณหภูมิ4 องศาเซลเซียสจนการวิเคราะห์

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

การทดลองที่ 2
หนึ่งร้อยสี่สิบสี่ลูกสุกรเพศผู้ตอน
( ดูร็อค××ยอร์คเชอร์เรซ ; 6.60 ± 1.31 กิโลกรัม
BW ) ถูกจัดสรรโดยน้ำหนักถึง 4 สูตรอาหารทดลอง
8 wk . การรักษาแต่ละครั้งมี 3 ซ้ำกับ 12 หมู
/ ปากกา 4 การรักษาอาหารที่มีอยู่ : บีตา - กลูแคนหรือ
ไม่มียาปฏิชีวนะ ( การควบคุม , T1 ) ; 0.02 % บีตา - กลูแคน ( T2 ) ; ยาปฏิชีวนะ ;
( T3 ) และบีตา - กลูแคน 0.02% และยาปฏิชีวนะ ( T4 )ยาปฏิชีวนะ
เลี้ยงในช่วงระยะที่ 1 ( 0 - 2 สัปดาห์ ) 0.15 % apramycin
( apralan ; kbnp อิงค์��เมือง , ยูงทำ
เกาหลี ) และ 0.10 % คาร์บาดอกซ์ ( mecadox โซลสัตวแพทย์
Pharm . umsong ชุงชองบก , ทำ , เกาหลี )
ยาปฏิชีวนะเลี้ยงในช่วงระยะที่ 3 ถึง 8 สัปดาห์ ) 0.10 %
วิลท์เชอร์ ( CTC yuhan Corporation , Anyang เมือง -
, ยูง , เกาหลี ) และ 0.10 % คาร์บาดอกซ์ .
การศึกษาสมรรถนะ ได้ศึกษาเป็นเวลา 5 สัปดาห์ แต่การตอบสนองของภูมิคุ้มกันได้ศึกษาจนถึง
8 wk . องค์ประกอบ
ของอาหารควบคุม ( T1 ) ในช่วงระยะที่ I และ II คือ
เหมือนกับการทดลองที่ 1 แต่การรักษาอาหาร ( T2 T4

) ปรับโดยแทนข้าวโพดในพื้นฐานร้อยละ
เท่ากัน ( ตารางที่ 1 ) แหล่งที่มาของบีตา - กลูแคนและเครื่อง
และการจัดการเป็นเหมือนใน exp.1 . bw
adfi และถูกบันทึกไว้ในตอนท้ายของช่วงที่
5 สัปดาห์และในระหว่างขั้นตอนที่ 2 มีการย่อยได้ทดลองยัง
ขึ้นอยู่กับ 28 D ใช้โครมิกออกไซด์ ( 0.25% ) เป็นตัวบ่งชี้ใน EXP 1
.
เพิ่มเติม 3 ปากกา 2 หมูแต่ละต่อรักษา
ได้รับมอบหมาย และเขียนแยกต่างหากสำหรับแอนติบอดี
ศึกษา โดยให้วัคซีน ( I.M . ) หลังจากการหย่ากับวัคซีนโรคจมูกอักเสบฝ่อ
( ไฟเซอร์ จำกัด , โซลเกาหลี ) 9
D 1 มิลลิลิตร และ 14 D 2 มล. สำหรับ
ปริมาณแอนติบอดีโดยใช้ ELISA ( ชุดไม่ jbpa1 Jeil จำกัด , ไบโอ , โซล , เกาหลี ) แล้ววาดเลือดจากเส้นเลือดดำใหญ่
ที่ 15 , 24 , และ 46 D postvaccination ใช้ 22 -
วัดฆ่าเชื้อเข็ม 10 มิลลิลิตรฉีดยาแล้ว
ย้ายไป BD vacutainer ( เบคตอนดิกคินสัน
Franklin Lakes , NJ ) โดยปราศจากเลือด เลือด
อยู่ที่ระดับ 1 , 500 กรัม× 10 นาที และซีรั่มถูกรวบรวมและเก็บไว้สำหรับการวิเคราะห์ต่อไป
.
ในระหว่างการศึกษาผลกระทบของบีตา - กลูแคนในประชากรสุกร
โดยวัดการไหลด้วยการใช้เซลล์ , โปรแกรมมือถือ , เหรียญ

cellquest ( คาลิเบอร์และเบคตอนดิกคินสัน แฟรงคลิน
ทะเลสาบ , NJ ) โมโนโคลนอลแอนติบอดีเฉพาะปฏิกิริยา
และกับสุกรรายใหญ่ฮิสโตคอมแพทิบิลิตีซับซ้อน
( MHC ) ชั้น 2 กลุ่มความแตกต่างของแอนติเจน 2 4
8 ( CD2 , CD4 , CD8 ตามลำดับ ) , บี -
/ nonb ดร , เซลล์ ( n ) และกรานูโลไซต์ ( G ) เลือด
วาดจากการสุ่มเลือกกลุ่มละ 6 ตัว ( 2
/ ทำซ้ำ ) ที่ 4 และ 8 สัปดาห์หลังหย่านม และทำให้ประชากรการวัด

( ไหลเลือดจากหลอดเลือดดำที่ลำคอ โดยใช้เข็มเป็นเข็ม
22 วัดเป็น 10 ml และโอน
กับ BD vacutainer ( เบคตอน Dickinson ) ประกอบด้วยโซเดียมเฮปารินเป็นเลือด

ที่ 4 ° C และเก็บไว้จนถึงการวิเคราะห์