Breeding, embryonic development and salinity tolerance of Skunk clownf การแปล - Breeding, embryonic development and salinity tolerance of Skunk clownf ไทย วิธีการพูด

Breeding, embryonic development and

Breeding, embryonic development and salinity tolerance of Skunk clownfish Amphiprion akallopisos
K.V. Dhaneesha, , , K. Nanthini Devia, T.T. Ajith Kumara, T. Balasubramaniana, Kapila Tisserab
Show more
DOI: 10.1016/j.jksus.2011.03.005
Open Access funded by King Saud University
Abstract
Breeding and rearing some of the clownfishes most commonly used in the aquarium trade actually represent an economical and ecological tool for broadening development. Culture of clownfish species in low-saline water is still in its infancy. Salinity of the culture environment is one of the more relevant parameters affecting fish physiology, modifying food intake and growth performance in many fish species. The objective of this study was to breed skunk clownfish (Amphiprion akallopisos) in aquarium condition, document the embryonic development, determine the upper and lower lethal salinities of juveniles, tolerance of five different salinities (20, 25, 30, 35, and 40 ppt) and their effect on the survival rate of larvae. Higher (53–55 ppt) and lower (3–6 ppt) salinities produced loss of appetite and movement, finally leading to mortality in juveniles. In a ninety six hour experiment, larvae showed 100% survival at the salinities of 30 (control) and 35 ppt and 88% survival in 40 ppt salinity and 76% survivals in 20 and 25 ppt. In conclusion juveniles of A. akallopisos exhibit satisfactory rates of survival and no signs of stress in high (up to 53 ppt) and low saline (up to 6 ppt) waters. These results demonstrate that using such salinities, which can reduce the incidence of diseases and mortality, does not produce significant physiological alterations in this species. In addition, descriptive studies on embryonic development and mass scale larval rearing were also carried out during the present study.

Keywords
Amphiprion akallopisos; Breeding; Embryonic development; Juvenile; Larva; Salinity tolerance; Survival
1. Introduction
Global ornamental fish trade has increased from US$ 50–US$ 250 million over the past two decades. It has been estimated that 1.5–2 billion aquariums are being kept in households worldwide with more than 600,000 in the US alone (Lewbart et al., 1999 and Green, 2003). Global imports on ‘Marine, fresh water fish and invertebrates’ in 2007 have been valued at US$ 327 million. The value of the fish and invertebrates of marine origin in this trade has increased from 9 million US$ in 2003 to reach almost 29 million US$ in 2007 (Tissera, 2010).

The rapid increase in the demand for fish and invertebrates of marine origin within the pet and hobbyist trade poses the threat of increased harvesting effort on natural resources. The increasing demand for marine ornamental fish due to the recent developments in aquarium keeping has resulted in an over exploitation of the natural stock and consequent destruction of reef areas. Captive reproduction of the fish in demand in the aquarium trade stands as the only sustainable means in meeting the increasing demand as well as in replenishing the already depleted natural resources.

Development of early life stage, from fertilization to embryo formation among Teleost fish, generally follows the same pattern (Falk-Petersen, 2005). Spawning and behavioural aspects of many tropical and sub-tropical Pomocentrid species have been well documented. However, description of ova, development of the embryo, and methodology of larval rearing and production of juveniles are available only for a few Pomocentrids and are scarce in the case of species dwelling in Indian waters. Hatching and chronological flow of embryonic development stages differ depending on the species and the specific environmental conditions in which they take place. The free embryo phase begins when the embryo is free of egg membranes. The beginning of the larval period is indicated when the larvae are able to capture feed objects (Chen, 2005).

Salinity of the culture environment is an important abiotic factor that influences marine fish eggs and larval physiology and has a direct effect on their development, growth and survival (Alderdice and Forrester, 1968 and Holliday, 1969). By influencing the energy requirement for osmoregulation, salinity directly affects the efficiency of yolk utilization, larval growth and survival (Howell et al., 1998). Therefore, salinity tolerance of a species is an important consideration in the culture of marine and freshwater organisms as it provides information on basic environmental requirements essential for the species to thrive in captivity.

McCormick and Bradshaw (2006) investigated the osmoregulatory functionality of fish that migrate between freshwater and seawater during their life cycle or living in estuaries. Economic considerations on the culture of marine or brackish water species show that low-saline culture could be an attractive alternative to that of freshwater. Studies on captive production and salinity tolerance are not abundant in the clownfish Amphiprion akallopisos. Therefore, the tropical reef dwelling skunk clownfish, belonging to the family Pomacentridae, has been selected for conducting this study. It is expected to provide important information on the development of different life stages of the skunk clownfish that will enhance the captive production technology leading to a sustainable production of this species for the aquarium fish trade.

2. Materials and methods
2.1. Broodstock maintenance and spawning
Skunk clownfish A. akallopisos (TL = 5 ± 0.5 cm, n = 6) and host sea anemones Stichodactyla mertensii (n = 3) were procured from ornamental fish traders in Chennai. These were transported to the hatchery facilities located in the Centre of Advanced Study in Marine Biology of Annamalai University, Tamil Nadu (India). Along with the sea anemones, these fish were acclimated to captive conditions in a cement tank (capacity, 3 ton) for one month. Pair formation took place during this period and pairs were transferred into individual 400 L fibre glass tanks (1.2 × 0.6 × 0.6 M). Interior of these tanks were grey in colour and were initially filled with UV treated estuarine water. A locally made underwater filter was fixed in each of these tanks.

Shrimp, boiled oyster and clam meat were used to feed the fish and sea anemones three times a day at 08:00, 12:00 and 16:00 h. Excretory material and remnant food particles were siphoned out an hour after the feeding. The tanks were illuminated with a 40 W fluorescent tube suspended 45 cm above the water surface. Water quality parameters in the tanks were maintained as temperature 27 ± 1 °C, salinity 25 ± 1 ppt, pH 8 ± 0.2 and dissolved oxygen 6.5 ± 0.3 mg l−1. Light intensity of 800 lux was maintained for 12 h (07:00–19:00 h). Once a week the tanks were given 50% water change. Ceramic tiles and live rocks were provided as spawning substrates. Fish started spawning after 3 months of rearing in the spawning tank. At the time of the first spawning, the male and the female had an average total length of 5.5 and 6.2 cm, respectively. The batch fecundity was estimated by counting the eggs in 1 cm2 and then multiplying with the total area of deposition (Satheesh, 2002).

2.2. Embryonic development
Random samples of 5 eggs were taken at a time with the aid of an ink-filler. Initially egg was taken immediately after fertilization and subsequently, embryonic development stages were observed under a light microscope (Novex, Holland). These were then sequenced based on morphological features and photographed using a digital camera (Cannon, China). The length and width of ova were measured using an ocular micrometer (Erma, Tokyo). The main morphological and functional features of each developmental stage were recorded. The eggs were further monitored in order to study the progress of embryonic development. The onset of cleavage, blastulation, gastrulation, organogenesis, embryo, pre-hatching and larval stage were taken as definitive precincts of development. The time lapsed for 50% of the sampled embryos to attain the above stages were recorded. Milky white eggs, which were considered dead, were removed. These developmental stages were compared with previous studies conducted with other species (Gorshkova et al., 2002, Tachihara and Kawaguchi, 2003, Arezo et al., 2005, Chen, 2005 and Dhaneesh et al., 2009).

2.3. Larval rearing
The hatched out larvae were gently collected with the use of a beaker and transferred to white inner coloured oval shaped fibre glass tanks (capacity, 100 L). The stocking density was 3 larvae l−1 of water. Rotifers (Brachionus plicatilis) enriched with algae (Nannochloropsis salina) were added to the larval tank at a density of 6–8 rotifers ml−1 as the initial feed. This was carried out 3 times a day (10:00, 13:00 and 16:00 h) for the first 10 days of initial feeding. The rotifers were substituted with freshly hatched Artemia nauplii at a density of 3–5 nauplii ml−1 starting from the 11th day of feeding. Gentle aeration of the water was provided in order to maintain a satisfactory level of dissolved oxygen and to achieve a homogeneous distribution of the added live feed. The tank bottoms were cleaned and 10% of the tank water was replaced on a daily basis without disturbing the fry needlessly.

Boiled and finely chopped oyster meat was used to feed the growing fry from the 25th day of feeding. Water quality parameters were monitored daily (temperature 27 ± 1 °C, salinity 25 ± 1 ppt, pH 8 ± 0.2 and the dissolved oxygen 6.2 ± 0.2 mg l−1). A twelve hour photoperiod was provided at an intensity of 600 lux (12L–12D).

2.4. Salinity tolerance of larvae
The current study tested the effect of five different levels of salinities on tolerance of the larvae. Two sets of larval rearing tanks were filled with water having salinities of 20, 25, 30, 35, and 40 ppt in each set. Twenty five larvae at the age of 10 days after hatching were introduced into each tank. The set of tanks with a salinity of 30 ppt were
0/5000
จาก: -
เป็น: -
ผลลัพธ์ (ไทย) 1: [สำเนา]
คัดลอก!
สกั๊งค์พันธุ์ การพัฒนาตัวอ่อน และค่าเผื่อเค็มของปลาการ์ตูน Amphiprion akallopisos
K.V. Dhaneesha,,, คุณ Nanthini Devia, T.T. Ajith Kumara, Balasubramaniana ต. Kapila Tisserab
แสดงเพิ่มเติม
ดอย: 10.1016/j.jksus.2011.03.005
Open ได้รับการสนับสนุน โดยมหาวิทยาลัยกษัตริย์สะอูดเข้า
นามธรรม
พันธุ์ และการเพาะเลี้ยงของ clownfishes ที่มักใช้ในการค้าขายสัตว์จริงหมายถึงเครื่องมือประหยัด และระบบนิเวศใน broadening พัฒนา วัฒนธรรมปลาการ์ตูนพันธุ์ในน้ำเกลือต่ำน้ำจะยังอยู่ในวัยเด็กของ เค็มของสิ่งแวดล้อมวัฒนธรรมเป็นหนึ่งในพารามิเตอร์เกี่ยวข้องมีผลต่อสรีรวิทยาของปลา ปรับเปลี่ยนอาหารและการเจริญเติบโตประสิทธิภาพในปลาหลายชนิด วัตถุประสงค์ของการศึกษานี้เป็นการ แพร่พันธุ์ปลาการ์ตูนอินเดียนแดง (Amphiprion akallopisos) ในสภาพที่พิพิธภัณฑ์สัตว์น้ำ เอกสารการพัฒนาตัวอ่อน กำหนดบน และล่างยุทธภัณฑ์ salinities juveniles ค่าเผื่อของ salinities แตกต่างกัน 5 (20, 25, 30, 35 และ 40 ppt) และผลกระทบของอัตราการอยู่รอดของตัวอ่อน สูง (ppt 53 – 55) และ salinities (3-6 ppt) ล่างผลิตสูญเสียความอยากอาหารและเคลื่อนไหว และสุดท้าย นำไปสู่การตายใน juveniles ในการทดลอง 6 90 ชั่วโมง ตัวอ่อนพบรอด 100% ที่ salinities (ควบคุม) 30 และ 35 ppt และ 88% อยู่รอดใน 40 ppt survivals เค็มและ 76% ใน 20 และ 25 ppt ในบทสรุป juveniles ของอ. akallopisos แสดงราคาพออยู่รอดและไม่มีร่องรอยของความเครียดในสูง (ถึง 53 ppt) และน้ำเกลือต่ำ (ถึง 6 ppt) น้ำ ผลเหล่านี้แสดงให้เห็นว่า ใช้เช่น salinities ซึ่งสามารถช่วยลดอุบัติการณ์ของโรคและการตาย ไม่ก่อให้เกิดเปลี่ยนแปลงทางสรีรวิทยาที่สำคัญในชนิดนี้ นอกจากนี้ ศึกษาอธิบายการพัฒนาตัวอ่อนและแม่ larval ขนาดโดยรวมยังดำเนินการในระหว่างมีการศึกษาการ

คำ
Amphiprion akallopisos พันธุ์ การพัฒนาตัวอ่อน เยาวชน หนอน ค่าเผื่อเค็ม รอด
1 แนะนำ
ค้าปลาสวยงามทั่วโลกได้เพิ่มขึ้นจากสหรัฐอเมริกา $ 50 – สหรัฐอเมริกา $ 250 ล้านผ่านมาสองทศวรรษ มีการประมาณว่า 1aquariums 5 – 2 พันล้านกำลังอยู่ในครัวเรือนทั่วโลก มีกว่า 600000 ในสหรัฐอเมริกาเพียงอย่างเดียว (Lewbart et al., 1999 และกรีน 2003) นำเข้าส่วนกลาง 'ปลาน้ำทะเล สดและ invertebrates' ในปี 2007 มีบริษัทที่สหรัฐอเมริกา $ 327 ล้านบาท ค่าปลาและ invertebrates ของทะเลในการค้านี้ได้เพิ่มขึ้นจาก 9 ล้านเรา$ใน 2003 ถึงเกือบ 29 ล้านเหรียญสหรัฐฯ ในปี 2550 (Tissera, 2010) .

เพิ่มขึ้นอย่างรวดเร็วในความต้องการปลาและ invertebrates กำเนิดทะเลภายในการค้าขายสัตว์เลี้ยงและ hobbyist ส่อเค้าคุกคามของเพิ่มเก็บเกี่ยวความพยายามในการใช้ทรัพยากรธรรมชาติ เพิ่มขึ้นความต้องการสำหรับทะเลประดับปลาเนื่องจากการพัฒนาล่าสุดในการรักษาสัตว์มีให้มากกว่าการเอารัดเอาเปรียบธรรมชาติหุ้นและตามมาทำลายพื้นที่แนวปะการัง ยืนภายในกิจการและการสืบพันธุ์ของปลาในความต้องการในการค้าขายสัตว์เป็นพาหนะอย่างยั่งยืนเท่านั้นในการประชุมเพิ่มขึ้นความต้องการเช่นในตู้ในพิกแล้วทรัพยากรธรรมชาติ

พัฒนาชีวิตระยะแรก ๆ จากการปฏิสนธิตัวอ่อนก่อตัวระหว่างปลา Teleost โดยทั่วไปตามรูปแบบเดียว (เซฟ-Petersen, 2005) มีการจัดวางไข่ และพฤติกรรมด้านพันธุ์ในเขตร้อน และเขตร้อนย่อย Pomocentrid ดี อย่างไรก็ตาม คำอธิบายของ ova พัฒนาของตัวอ่อน และกฎเกณฑ์ larval การเพาะเลี้ยงและผลิต juveniles จะมีเฉพาะสำหรับ Pomocentrids กี่ และหายากในกรณีของสายพันธุ์ที่อาศัยอยู่ในน่านน้ำของอินเดีย ฟัก และการเรียงลำดับของการพัฒนาตัวอ่อนระยะที่แตกต่างกันขึ้นอยู่กับสายพันธุ์และสภาพแวดล้อมเฉพาะซึ่งจะทำ ระยะตัวอ่อนฟรีเริ่มต้นเมื่อตัวอ่อนมีเยื่อหุ้มไข่ฟรี ระบุจุดเริ่มต้นของระยะ larval เมื่อตัวอ่อนสามารถจับภาพวัตถุอาหารสัตว์ (Chen, 2005)

เค็มของสิ่งแวดล้อมวัฒนธรรมเป็นปัจจัย abiotic สำคัญที่มีผลต่อสรีรวิทยา larval และไข่ปลาทะเล และมีผลโดยตรงกับการพัฒนา เจริญเติบโต และอยู่รอด (Alderdice และ Forrester, 1968 และ Holliday, 1969) โดยมีอิทธิพลต่อความต้องการพลังงานสำหรับ osmoregulation เค็มโดยตรงมีผลต่อประสิทธิภาพของการใช้ประโยชน์ แดง larval เจริญเติบโตและอยู่รอด (Howell และ al., 1998) ดังนั้น เผื่อเค็มชนิดเป็นการพิจารณาความสำคัญในวัฒนธรรมของสิ่งมีชีวิตทางทะเล และน้ำจืดจะให้ข้อมูลพื้นฐานด้านสิ่งแวดล้อมความต้องการจำเป็นสำหรับสายพันธุ์เจริญเติบโตในเชลย

แมคคอร์มิคและ Bradshaw (2006) ตรวจสอบฟังก์ชัน osmoregulatory ปลาที่โยกย้ายระหว่างน้ำจืด และน้ำทะเลในช่วงที่อาศัยอยู่ในบริเวณปากแม่น้ำหรือวงจรชีวิตของพวกเขา พิจารณาเศรษฐกิจวัฒนธรรมพันธุ์น้ำกร่อย หรือทะเลแสดงว่า วัฒนธรรมน้ำเกลือต่ำอาจเป็นทางเลือกน่าสนใจของปลา การศึกษาการยอมรับผลิตและเค็มภายในกิจการและไม่อุดมสมบูรณ์ในปลาการ์ตูน Amphiprion akallopisos ดังนั้น ปะการังเขตร้อนอาศัยอยู่ปลาการ์ตูนอินเดียนแดง เป็นของตระกูล Pomacentridae มีการเลือกสำหรับการทำการศึกษานี้ คาดว่าการให้ข้อมูลที่สำคัญในการพัฒนาขั้นตอนชีวิตของปลาการ์ตูนอินเดียนแดงที่จะปรับปรุงเทคโนโลยีการผลิตภายในกิจการและนำไปสู่การผลิตที่ยั่งยืนพันธุ์นี้สำหรับในพิพิธภัณฑ์สัตว์น้ำปลาค้า

2 วัสดุและวิธีการ
2.1 สูตรการบำรุงรักษาและวางไข่
สกั๊งค์ปลาการ์ตูน A. akallopisos (TL = 5 ± 0.5 ซม. n = 6) และโฮสต์ซีแอนนีโมนี Stichodactyla mertensii (n = 3) มีการค้นหาจากผู้ค้าปลาสวยงามในเจนไน เหล่านี้ถูกขนส่งสิ่งอำนวยความสะดวกโรงเพาะที่อยู่ในศูนย์ของขั้นสูงศึกษาในทะเลชีววิทยานามามหาวิทยาลัย ทมิฬ Nadu (อินเดีย) พร้อมกับซีแอนนีโมนี ปลาเหล่านี้ถูกจัด acclimated เงื่อนไขภายในกิจการและในถังซีเมนต์ (กำลัง 3 ตัน) สำหรับหนึ่งเดือน คู่ก่อเกิดในช่วงเวลานี้ และคู่ถูกโอนย้ายไปยังแต่ละ 400 L ใยแก้วถัง (1.2 × 0.6 × 0.6 M) ภายในของถังเหล่านี้มีสีเทาสี และเริ่มเต็มไป ด้วยน้ำ UV รับปากแม่น้ำ กำหนด A ทำกรองใต้น้ำภายในถังเหล่านี้

กุ้ง ใช้หอยนางรมต้มและเนื้อหอยให้อาหารปลาและซีแอนนีโมนีวันที่ 08:00, 12:00 และ 16:00 h. ขับถ่ายวัสดุและสติอาหารอนุภาคถูก siphoned ออกหนึ่งชั่วโมงหลังจากให้อาหาร รถถังถูกอร่ามกับ 40 W เรืองแสงหลอดชั่วคราว 45 ซม.เหนือผิวน้ำ พารามิเตอร์คุณภาพน้ำในถังถูกเก็บรักษาเป็นอุณหภูมิ 27 ± 1 ° C เค็ม 25 ± 1 ppt ค่า pH 8 ± 0.2 และละลายออกซิเจน 6.5 ± 0.3 mg l−1 ความเข้มแสงของ 800 ลักซ์ถูกรักษาไว้สำหรับ 12 h (h 07:00 – 19:00) สัปดาห์ละหนึ่งครั้งถังได้รับเปลี่ยนน้ำ 50% กระเบื้องเซรามิคและหินอยู่ได้เป็นพื้นผิวที่วางไข่ ปลาเริ่มวางไข่หลังจาก 3 เดือนของการเพาะเลี้ยงในถัง spawning ในขณะแรกวางไข่ ชายและหญิงที่มีความยาวรวมเฉลี่ยของ 5.5 และ 6.2 ซม. ตามลำดับ Fecundity ชุดถูกประเมิน โดยตรวจนับไข่ใน 1 cm2 แล้ว คูณกับพื้นที่ของสะสม (Satheesh, 2002) .

2.2 การพัฒนาตัวอ่อน
สุ่มตัวอย่างไข่ 5 ที่ถ่ายในแต่ละครั้งด้วยความช่วยเหลือของที่หมึกเติมเพราะ การพัฒนาตัวอ่อนระยะเริ่มไข่ได้ใช้ทันทีหลัง จากการปฏิสนธิ และในเวลาต่อมา ถูกสังเกตภายใต้กล้องจุลทรรศน์แสง (Novex ฮอลแลนด์) เหล่านี้ได้แล้วเรียงลำดับตามลักษณะสัณฐาน และถ่ายภาพโดยใช้กล้องดิจิตอล (ปืนใหญ่ จีน) ความยาวและความกว้างของ ova ถูกวัดโดยใช้ไมโครมิเตอร์เป็นแนว (Erma โตเกียว) สัณฐาน และการทำงานลักษณะของแต่ละขั้นตอนพัฒนาถูกบันทึก ไข่ได้รับการตรวจสอบเพิ่มเติมเพื่อศึกษาความก้าวหน้าของการพัฒนาตัวอ่อน ของปริ blastulation, gastrulation เกิดของอวัยวะ ตัว อ่อน ฟักก่อน และระยะ larval ที่ถ่ายเป็นมณฑลทั่วไปของการพัฒนา เวลาโธดอกสำหรับ 50% ของโคลนตัวอย่างบรรลุขั้นตอนข้างต้นถูกบันทึกไว้ น้ำนมสีขาวไข่ ซึ่งถูกถือว่าตาย ถูกเอาออก ขั้นพัฒนาเหล่านี้ถูกเปรียบเทียบกับการศึกษาก่อนหน้านี้ดำเนินการ ด้วยชนิดอื่น ๆ (Gorshkova et al., 2002, Tachihara และคาวางุจิ 2003, Arezo et al. ปี 2005 เฉิน 2005 และ Dhaneesh et al., 2009)

2.3 แม่ larval
ตัวอ่อนขีดออกถูกรวบรวมไว้ มีการใช้บีกเกอร์เบา ๆ และโอนย้ายไปสีขาวภายในสีรูปไข่รูปใยแก้วถัง (ความจุ 100 L) ความหนาแน่นของมิติ 3 ตัวอ่อน l−1 น้ำ Rotifers (Brachionus plicatilis) อุดมไป ด้วยสาหร่าย (โรงแรมสลี Nannochloropsis) มีเพิ่มถัง larval ที่มีความหนาแน่นของ ml−1 rotifers 6-8 เป็นตัวดึงข้อมูลเริ่มต้น นี้ได้ดำเนินการ 3 วัน (10:00, 13:00 และ 16:00 h) สำหรับ 10 วันแรกของการเริ่มให้อาหาร Rotifers ถูกทดแทน ด้วยขีดสด nauplii Artemia ที่ความหนาแน่นของ ml−1 nauplii 3-5 ตั้งแต่วัน 11 อาหาร Aeration อ่อนโยนน้ำให้รักษาระดับความพึงพอใจของออกซิเจนละลาย และให้มีการกระจายเหมือนอาหารสดเพิ่ม บางถังได้ถูกล้างไวรัส และถูกแทน 10% ของน้ำถังประจำวันโดยไม่รบกวนการทอดโดยไม่จำเป็น

ต้มและหอยนางรมประณีตสับเนื้อสัตว์ใช้อาหารทอดเพิ่มขึ้นจาก 25 วันให้อาหาร มีการตรวจสอบพารามิเตอร์คุณภาพน้ำทุกวัน (อุณหภูมิ 27 ± 1 ° C ±เค็ม 25 1 ppt ค่า pH 8 ± 0.2 และออกซิเจนละลาย 6.2 ± 0.2 มิลลิกรัม l−1) ให้ช่วงแสง 12 ชั่วโมงแบบที่มีความเข้มของ 600 ลักซ์ (12L – 12D)

2.4 เผื่อเค็มของตัวอ่อน
การศึกษาปัจจุบันผ่านทดสอบผลของ salinities 5 ระดับค่าเผื่อของตัวอ่อน ชุดสองของถังเพาะเลี้ยง larval เต็มไป ด้วยน้ำที่มี salinities 20, 25, 30, 35 และ 40 ppt ในแต่ละชุด ยี่สิบห้าตัวอ่อนอายุ 10 วันหลังจากฟักไข่ได้แนะนำในแต่ละถัง มีชุดของถังกับความเค็ม 30 ppt
การแปล กรุณารอสักครู่..
ผลลัพธ์ (ไทย) 2:[สำเนา]
คัดลอก!
Breeding, embryonic development and salinity tolerance of Skunk clownfish Amphiprion akallopisos
K.V. Dhaneesha, , , K. Nanthini Devia, T.T. Ajith Kumara, T. Balasubramaniana, Kapila Tisserab
Show more
DOI: 10.1016/j.jksus.2011.03.005
Open Access funded by King Saud University
Abstract
Breeding and rearing some of the clownfishes most commonly used in the aquarium trade actually represent an economical and ecological tool for broadening development. Culture of clownfish species in low-saline water is still in its infancy. Salinity of the culture environment is one of the more relevant parameters affecting fish physiology, modifying food intake and growth performance in many fish species. The objective of this study was to breed skunk clownfish (Amphiprion akallopisos) in aquarium condition, document the embryonic development, determine the upper and lower lethal salinities of juveniles, tolerance of five different salinities (20, 25, 30, 35, and 40 ppt) and their effect on the survival rate of larvae. Higher (53–55 ppt) and lower (3–6 ppt) salinities produced loss of appetite and movement, finally leading to mortality in juveniles. In a ninety six hour experiment, larvae showed 100% survival at the salinities of 30 (control) and 35 ppt and 88% survival in 40 ppt salinity and 76% survivals in 20 and 25 ppt. In conclusion juveniles of A. akallopisos exhibit satisfactory rates of survival and no signs of stress in high (up to 53 ppt) and low saline (up to 6 ppt) waters. These results demonstrate that using such salinities, which can reduce the incidence of diseases and mortality, does not produce significant physiological alterations in this species. In addition, descriptive studies on embryonic development and mass scale larval rearing were also carried out during the present study.

Keywords
Amphiprion akallopisos; Breeding; Embryonic development; Juvenile; Larva; Salinity tolerance; Survival
1. Introduction
Global ornamental fish trade has increased from US$ 50–US$ 250 million over the past two decades. It has been estimated that 1.5–2 billion aquariums are being kept in households worldwide with more than 600,000 in the US alone (Lewbart et al., 1999 and Green, 2003). Global imports on ‘Marine, fresh water fish and invertebrates’ in 2007 have been valued at US$ 327 million. The value of the fish and invertebrates of marine origin in this trade has increased from 9 million US$ in 2003 to reach almost 29 million US$ in 2007 (Tissera, 2010).

The rapid increase in the demand for fish and invertebrates of marine origin within the pet and hobbyist trade poses the threat of increased harvesting effort on natural resources. The increasing demand for marine ornamental fish due to the recent developments in aquarium keeping has resulted in an over exploitation of the natural stock and consequent destruction of reef areas. Captive reproduction of the fish in demand in the aquarium trade stands as the only sustainable means in meeting the increasing demand as well as in replenishing the already depleted natural resources.

Development of early life stage, from fertilization to embryo formation among Teleost fish, generally follows the same pattern (Falk-Petersen, 2005). Spawning and behavioural aspects of many tropical and sub-tropical Pomocentrid species have been well documented. However, description of ova, development of the embryo, and methodology of larval rearing and production of juveniles are available only for a few Pomocentrids and are scarce in the case of species dwelling in Indian waters. Hatching and chronological flow of embryonic development stages differ depending on the species and the specific environmental conditions in which they take place. The free embryo phase begins when the embryo is free of egg membranes. The beginning of the larval period is indicated when the larvae are able to capture feed objects (Chen, 2005).

Salinity of the culture environment is an important abiotic factor that influences marine fish eggs and larval physiology and has a direct effect on their development, growth and survival (Alderdice and Forrester, 1968 and Holliday, 1969). By influencing the energy requirement for osmoregulation, salinity directly affects the efficiency of yolk utilization, larval growth and survival (Howell et al., 1998). Therefore, salinity tolerance of a species is an important consideration in the culture of marine and freshwater organisms as it provides information on basic environmental requirements essential for the species to thrive in captivity.

McCormick and Bradshaw (2006) investigated the osmoregulatory functionality of fish that migrate between freshwater and seawater during their life cycle or living in estuaries. Economic considerations on the culture of marine or brackish water species show that low-saline culture could be an attractive alternative to that of freshwater. Studies on captive production and salinity tolerance are not abundant in the clownfish Amphiprion akallopisos. Therefore, the tropical reef dwelling skunk clownfish, belonging to the family Pomacentridae, has been selected for conducting this study. It is expected to provide important information on the development of different life stages of the skunk clownfish that will enhance the captive production technology leading to a sustainable production of this species for the aquarium fish trade.

2. Materials and methods
2.1. Broodstock maintenance and spawning
Skunk clownfish A. akallopisos (TL = 5 ± 0.5 cm, n = 6) and host sea anemones Stichodactyla mertensii (n = 3) were procured from ornamental fish traders in Chennai. These were transported to the hatchery facilities located in the Centre of Advanced Study in Marine Biology of Annamalai University, Tamil Nadu (India). Along with the sea anemones, these fish were acclimated to captive conditions in a cement tank (capacity, 3 ton) for one month. Pair formation took place during this period and pairs were transferred into individual 400 L fibre glass tanks (1.2 × 0.6 × 0.6 M). Interior of these tanks were grey in colour and were initially filled with UV treated estuarine water. A locally made underwater filter was fixed in each of these tanks.

Shrimp, boiled oyster and clam meat were used to feed the fish and sea anemones three times a day at 08:00, 12:00 and 16:00 h. Excretory material and remnant food particles were siphoned out an hour after the feeding. The tanks were illuminated with a 40 W fluorescent tube suspended 45 cm above the water surface. Water quality parameters in the tanks were maintained as temperature 27 ± 1 °C, salinity 25 ± 1 ppt, pH 8 ± 0.2 and dissolved oxygen 6.5 ± 0.3 mg l−1. Light intensity of 800 lux was maintained for 12 h (07:00–19:00 h). Once a week the tanks were given 50% water change. Ceramic tiles and live rocks were provided as spawning substrates. Fish started spawning after 3 months of rearing in the spawning tank. At the time of the first spawning, the male and the female had an average total length of 5.5 and 6.2 cm, respectively. The batch fecundity was estimated by counting the eggs in 1 cm2 and then multiplying with the total area of deposition (Satheesh, 2002).

2.2. Embryonic development
Random samples of 5 eggs were taken at a time with the aid of an ink-filler. Initially egg was taken immediately after fertilization and subsequently, embryonic development stages were observed under a light microscope (Novex, Holland). These were then sequenced based on morphological features and photographed using a digital camera (Cannon, China). The length and width of ova were measured using an ocular micrometer (Erma, Tokyo). The main morphological and functional features of each developmental stage were recorded. The eggs were further monitored in order to study the progress of embryonic development. The onset of cleavage, blastulation, gastrulation, organogenesis, embryo, pre-hatching and larval stage were taken as definitive precincts of development. The time lapsed for 50% of the sampled embryos to attain the above stages were recorded. Milky white eggs, which were considered dead, were removed. These developmental stages were compared with previous studies conducted with other species (Gorshkova et al., 2002, Tachihara and Kawaguchi, 2003, Arezo et al., 2005, Chen, 2005 and Dhaneesh et al., 2009).

2.3. Larval rearing
The hatched out larvae were gently collected with the use of a beaker and transferred to white inner coloured oval shaped fibre glass tanks (capacity, 100 L). The stocking density was 3 larvae l−1 of water. Rotifers (Brachionus plicatilis) enriched with algae (Nannochloropsis salina) were added to the larval tank at a density of 6–8 rotifers ml−1 as the initial feed. This was carried out 3 times a day (10:00, 13:00 and 16:00 h) for the first 10 days of initial feeding. The rotifers were substituted with freshly hatched Artemia nauplii at a density of 3–5 nauplii ml−1 starting from the 11th day of feeding. Gentle aeration of the water was provided in order to maintain a satisfactory level of dissolved oxygen and to achieve a homogeneous distribution of the added live feed. The tank bottoms were cleaned and 10% of the tank water was replaced on a daily basis without disturbing the fry needlessly.

Boiled and finely chopped oyster meat was used to feed the growing fry from the 25th day of feeding. Water quality parameters were monitored daily (temperature 27 ± 1 °C, salinity 25 ± 1 ppt, pH 8 ± 0.2 and the dissolved oxygen 6.2 ± 0.2 mg l−1). A twelve hour photoperiod was provided at an intensity of 600 lux (12L–12D).

2.4. Salinity tolerance of larvae
The current study tested the effect of five different levels of salinities on tolerance of the larvae. Two sets of larval rearing tanks were filled with water having salinities of 20, 25, 30, 35, and 40 ppt in each set. Twenty five larvae at the age of 10 days after hatching were introduced into each tank. The set of tanks with a salinity of 30 ppt were
การแปล กรุณารอสักครู่..
ผลลัพธ์ (ไทย) 3:[สำเนา]
คัดลอก!
การปรับปรุงพันธุ์และพัฒนาตัวอ่อนความเค็มของเหม็นปลาการ์ตูนปลาการ์ตูนอินเดียนแดง
k.v. dhaneesha , K nanthini เดเวียร์ทีที , ajith kumara ต. balasubramaniana กปิละ

แสดงเพิ่มเติม tisserab , ดอย : 10.1016 / j.jksus . 2011.03.005
เปิดจากกษัตริย์ซาอุดมหาวิทยาลัย

บทคัดย่อการผสมพันธุ์และการเลี้ยงดูของ clownfishes นิยมใช้ในการค้าพิพิธภัณฑ์สัตว์น้ำจริงเป็นตัวแทนของระบบนิเวศและประหยัดเครื่องมือขยายการพัฒนา วัฒนธรรมของปลาการ์ตูนชนิดในน้ำเกลือต่ำยังอยู่ในวัยทารก ความเค็มของวัฒนธรรมสิ่งแวดล้อม เป็นหนึ่งใน ที่เกี่ยวข้องเพิ่มเติมพารามิเตอร์ที่มีผลต่อสรีรวิทยาของปลาการปรับเปลี่ยนการบริโภคอาหาร และการเจริญเติบโตของปลามาก วัตถุประสงค์ของการศึกษานี้คือ พันธุ์สกั๊งค์ปลาการ์ตูน ( ธนาคารแห่งประเทศไทย ) ในตู้ปลาสภาพเอกสารการพัฒนาของตัวอ่อน การตรวจสอบ บนและล่างทำให้ความเค็มของเยาวชน ความอดทนของห้าระดับความเค็มที่แตกต่างกัน ( 20 , 25 , 30 , 35 และ 40 ส่วนในพัน ) และผลกระทบที่มีต่ออัตราการอยู่รอดของตัวอ่อนสูงกว่า ( 53 - 55 ppt ) และล่าง ( 3 – 6 ppt ) ที่ความเค็มลดความอยากอาหารและการเคลื่อนไหว ในที่สุดนำไปสู่อัตราการตายในเด็กและเยาวชน . ในเก้าสิบหกชั่วโมงทดลองตัวอ่อนรอด 100% ที่ระดับความเค็ม 30 ( ควบคุม ) และ 35 ppt และการอยู่รอด 88% ใน 40 ppt ความเค็มและ 76 % รอด 20 และ 25 ppt . สรุปเยาวชนของอ.akallopisos แสดงอัตราที่น่าพอใจของการอยู่รอดและไม่มีสัญญาณของความเครียดสูง ( ถึง 53 ppt ) และเกลือต่ำ ( ถึง 6 ppt ) น้ำ ผลลัพธ์เหล่านี้แสดงให้เห็นว่า การใช้ เช่น ความเค็ม ซึ่งสามารถช่วยลดอัตราการเกิดโรคและอัตราการตายไม่ผลิตการเปลี่ยนแปลงทางสรีรวิทยาที่สำคัญในสายพันธุ์นี้ นอกจากนี้การศึกษาเชิงพรรณนาในการพัฒนาตัวอ่อน ดักแด้ และมวลขนาดเลี้ยงยังดำเนินการในระหว่างการศึกษา .

คำสำคัญ
ปลาการ์ตูนอินเดียนแดง ; พันธุ์ ; การพัฒนาเอ็มบริโอ ; เด็ก ; ตัวอ่อน ; ทนเค็ม ; การอยู่รอด
1 บทนำ
ทั่วโลกการค้าปลาสวยงามได้เพิ่มขึ้นจาก $ 50 และ $ 250 ล้านบาท ในช่วงสองทศวรรษที่ผ่านมา มีการประมาณการว่า 15 – 2 ล้านตู้ ถูกเก็บไว้ในครัวเรือนทั่วโลกที่มีมากกว่า 600000 ในสหรัฐอเมริกาเพียงอย่างเดียว ( lewbart et al . , 1999 และสีเขียว , 2003 ) นำเข้าทั่วโลกบนทะเล ปลาน้ำจืด และสัตว์ไม่มีกระดูกสันหลังในปี 2550 มีมูลค่าที่สหรัฐอเมริกา $ 327 ล้านบาทคุณค่าของปลาและสัตว์ไม่มีกระดูกสันหลังในทะเลของประเทศ ในการนี้ได้เพิ่มขึ้นจาก 9 ล้านบาทในปี 2003 ถึงเกือบ 29 ล้านเหรียญสหรัฐ ในปี 2007 ( tissera , 2010 ) .

เพิ่มขึ้นอย่างรวดเร็วในความต้องการสำหรับปลาและสัตว์ไม่มีกระดูกสันหลังในทะเลที่มาในสัตว์เลี้ยงและ hobbyist poses ภัยคุกคามที่เพิ่มขึ้นของการเก็บเกี่ยวการค้า ความพยายามในทรัพยากรธรรมชาติความต้องการเพิ่มขึ้นสำหรับปลาสวยงามทะเลเนื่องจากการพัฒนาล่าสุดในการรักษาตู้ปลามีผลในการไปแสวงหาผลประโยชน์ของหุ้นและการทำลายธรรมชาติ เนื่องจากพื้นที่แนวปะการังการเป็นเชลยของปลาในความต้องการในการค้าพิพิธภัณฑ์สัตว์น้ำยืนเป็นวิธีการที่ยั่งยืนในการประชุมความต้องการที่เพิ่มขึ้นเช่นเดียวกับใน replenishing แล้วหมด ทรัพยากรธรรมชาติ

พัฒนาชีวิตขั้นตอนการพัฒนาตัวอ่อนจากการปฏิสนธิระหว่าง teleost ปลาโดยทั่วไปจะใช้ในรูปแบบเดียวกัน ( ฟอล์ค Petersen , 2005 )และด้านพฤติกรรมการวางไข่ของเขตร้อนและเขตร้อนย่อยหลายชนิด pomocentrid ได้รับเอกสารดี อย่างไรก็ตาม รายละเอียดของ OVA , การพัฒนาของเอ็มบริโอ และวิธีการเลี้ยงดูตัวอ่อนและการผลิตของเยาวชนมีอยู่เพียงไม่กี่ pomocentrids และหายากในกรณีของสายพันธุ์ที่อาศัยอยู่ในน่านน้ำอินเดียการฟักไข่และการไหลของลำดับของขั้นตอนการพัฒนาตัวอ่อนที่แตกต่างกันขึ้นอยู่กับชนิดและเฉพาะสภาพแวดล้อมที่พวกเขาเกิดขึ้น ระยะตัวอ่อนฟรีเริ่มต้นเมื่อตัวอ่อนเป็นฟรีของเยื่อหุ้มไข่ . จุดเริ่มต้นของระยะตัวอ่อนจะแสดงเมื่อตัวอ่อนจะสามารถจับภาพวัตถุอาหาร ( Chen , 2005 ) .

ความเค็มของวัฒนธรรมสิ่งแวดล้อมเป็นสำคัญ ปัจจัยที่มีอิทธิพลต่อสิ่งมีชีวิตไข่และตัวอ่อนของสัตว์น้ำ และมีผลโดยตรงต่อการพัฒนาการเจริญเติบโตและการอยู่รอด ( alderdice และ Forrester , 2511 และ ฮอลิเดย์ , 1969 ) โดยมีอิทธิพลต่อความต้องการพลังงานต่างๆ ความเค็มมีผลโดยตรงต่อประสิทธิภาพของการใช้ไข่แดงการเจริญเติบโตและการอยู่รอดของตัวอ่อน ( Howell et al . , 1998 ) ดังนั้น ความเค็มของสปีชีส์ที่เป็นข้อพิจารณาที่สำคัญในวัฒนธรรมของสิ่งมีชีวิตในทะเล และน้ำจืด โดยมีข้อมูลพื้นฐานด้านสิ่งแวดล้อม ความต้องการที่จำเป็นสำหรับพันธุ์เจริญ

ในการเป็นเชลยMcCormick และแบรดชอว์ ( 2549 ) ได้ศึกษาการทำงาน osmoregulatory ของปลาที่อพยพระหว่างน้ำจืดและน้ำทะเลในช่วงวัฏจักรชีวิต หรืออาศัยอยู่ในบริเวณของพวกเขา การพิจารณาทางเศรษฐกิจในวัฒนธรรมของทะเล หรือน้ำกร่อยชนิดแสดงให้เห็นว่าวัฒนธรรมน้ำเกลือต่ำอาจเป็นทางเลือกที่น่าสนใจของปลาน้ำจืดการศึกษาการผลิตเป็นเชลย และทนเค็มไม่ชุกชุมใน akallopisos ปลาการ์ตูนปลาการ์ตูน ดังนั้น แนวปะการังเขตร้อนที่อยู่อาศัยเสนียดปลาการ์ตูนที่เป็นของครอบครัว Pomacentridae , ได้รับเลือกสำหรับการดำเนินการศึกษานี้คาดว่าจะให้ข้อมูลสำคัญในการพัฒนาที่แตกต่างกันชีวิตขั้นตอนของปลาการ์ตูนอินเดียนแดงจะเพิ่มเป็นเทคโนโลยีการผลิตที่นำไปสู่การผลิตอย่างยั่งยืนของสายพันธุ์นี้สำหรับปลาค้า

2 วัสดุและวิธีการ
2.1 . เลี้ยงปลาการ์ตูน . akallopisos เหม็นรักษาและวางไข่
3 = 5 ± 0.5 เซนติเมตรn = 6 ) และโฮสต์ทะเลดอกไม้ทะเล stichodactyla mertensii ( n = 3 ) จัดหาจากผู้ค้าปลาสวยงามในเจนไน เหล่านี้ถูกส่งไปยังฟาร์มเครื่องที่ตั้งอยู่ในศูนย์การศึกษาขั้นสูงในชีววิทยาทางทะเลของ annamalai มหาวิทยาลัยทมิฬนาฑู ( อินเดีย ) พร้อมกับทะเลดอกไม้ทะเล ปลาเหล่านี้ถูก acclimated เป็นเงื่อนไขในบ่อซีเมนต์ ( ความจุ 3 ตัน ) เป็นเวลาหนึ่งเดือนการสร้างคู่เกิดขึ้นในช่วงเวลานี้และคู่ถูกย้ายในแต่ละ 400 ลิตรถังไฟเบอร์กลาส ( 0.6 × 1.2 × 0.6 เมตร ) ภายในของถังเหล่านี้เป็นสีเทาในสีและเริ่มเต็มไปด้วย UV รักษาน้ำเค็มน้ำ . พื้นที่ทำใต้น้ำกรองคงที่ในแต่ละถังเหล่านี้

กุ้งต้มหอยนางรมและเนื้อหอยที่ใช้เลี้ยงปลาและทะเลดอกไม้ทะเล ครั้งที่ 3 วันที่ 08 : 00 - 16 : 00 ชั่วโมง , และระบบขับถ่ายวัสดุและเศษอาหารที่เหลือถูกนำออกหนึ่งชั่วโมงหลังการให้อาหาร รถถังที่ถูกส่องสว่างด้วยหลอด 40 วัตต์หลอดแขวน 45 ซม. เหนือผิวน้ำ คุณภาพน้ำพารามิเตอร์ในถังยังคงอุณหภูมิ 27 ± 1 ° Cความเค็ม 25 ± 1 ppt pH 8 ± 0.2 และ 0.3 มิลลิกรัมออกซิเจนละลาย 6.5 ± L − 1 ความเข้มแสง 800 ลักซ์ ไว้เป็นเวลา 12 ชั่วโมง ( 07 : 00 – 19 : 00 h ) อาทิตย์ละครั้งรถถังได้รับ 50% น้ำเปลี่ยน กระเบื้องเซรามิกและหินสดถูกจัดเป็นบริเวณท ปลาเริ่มวางไข่ หลังจากวางไข่ 3 เดือนที่เลี้ยงในถัง ในเวลาก่อนวางไข่ ,ตัวผู้และตัวเมียมีความยาวเฉลี่ย 5.5 6.2 เซนติเมตร ตามลำดับ ชุดการประมาณโดยนับไข่ใน 1 ตร. ซม. แล้วคูณกับพื้นที่ทั้งหมดของการสะสม ( SATHEESH , 2002 ) .

. . ตัวอ่อนพัฒนา
จำนวนไข่ 5 ฟอง ถ่ายในเวลาด้วยความช่วยเหลือของหมึกเติม .ตอนแรกไข่ถ่ายทันทีหลังจากการปฏิสนธิ และในภายหลัง ขั้นตอนการพัฒนาตัวอ่อนที่พบภายใต้กล้องจุลทรรศน์แสง ( novex , ฮอลแลนด์ ) เหล่านี้เป็นลำดับตามลักษณะทางสัณฐานวิทยาและถ่ายภาพโดยใช้กล้องดิจิตอล ( ปืนจีน ) ความยาวและความกว้างของ OVA คือการวัดไมโครมิเตอร์จักษุ ( Erma , โตเกียว )การศึกษาลักษณะสัณฐานวิทยาและการทำงานคุณสมบัติหลักของพัฒนาการแต่ละขั้นมีการบันทึก ไข่ได้รับการตรวจสอบต่อไปเพื่อศึกษาความก้าวหน้าของการพัฒนาตัวอ่อน . เริ่มแตกแยก , บลาสทูเลชันแกสตรูเลชันแกนโนเจเนซิส , , , ก่อนการฟักตัวอ่อน ระยะตัวอ่อนและนำมาเป็นข้อสรุปเขตพัฒนาเวลาล่วงเลยไป 50% ของกลุ่มตัวอย่าง เมื่อบรรลุขั้นตอนข้างต้นถูกบันทึกไว้ ไข่สีขาวน้ำนม ซึ่งถือว่า ตาย ออก พัฒนาการขั้นเปรียบเทียบกับการศึกษาก่อนหน้านี้ดำเนินการกับสายพันธุ์อื่น ๆ ( gorshkova et al . , 2002 และ 2003 , ทาจิ ระ คาวากุจิ arezo et al . , 2005 , เฉิน , 2005 และ dhaneesh et al . , 2009 ) .

2.3 การเลี้ยงหนอน
ที่ฟักตัวอ่อนถูกเบา ๆเก็บได้ด้วยการใช้บีกเกอร์และโอนไปยังสีขาวภายในสีรูปวงรี ไฟเบอร์กลาสถัง ( ความจุ 100 ลิตร ) ที่ความหนาแน่น 3 ตัวอ่อน L − 1 น้ำ โรติเฟอร์ ( น้ํา plicatilis ) อุดมด้วยสาหร่าย ( nannochloropsis salina ) ถูกเพิ่มไปยังถังหนอนที่ความหนาแน่นของ 6 – 8 ml − 1 เป็นเลี้ยงโรติเฟอร์ครั้งแรกนี้ ทำวันละ 3 ครั้ง ( เวลา 13.00 16.00 น. , และ H ) สำหรับ 10 วันแรกของการให้อาหารเบื้องต้น ที่ถูกทดแทนด้วยโรติเฟอร์ อาร์ทีเมียเพิ่งฟัก nauplii ที่ความหนาแน่น 3 – 5 nauplii ml − 1 ตั้งแต่วันที่ 11 ของการให้อาหารอากาศที่อ่อนโยนของน้ำไว้เพื่อรักษาระดับของออกซิเจน และเพื่อให้เกิดการกระจายเป็นเนื้อเดียวกันของการเสริมอาหารสด ถังพื้นสะอาด 10 % ของถังน้ำที่ถูกแทนที่ในแต่ละวันโดยไม่ต้องรบกวนทอดโดยไม่จำเป็น

ต้มและสับเนื้อหอยนางรมที่ใช้เลี้ยงโตทอดตั้งแต่วันที่ 25 ของอาหารพารามิเตอร์คุณภาพน้ำตรวจสอบทุกวัน ( อุณหภูมิ 27 ± 1 ° C ความเค็ม 25 ± 1 ppt pH 8 ± 0.2 และค่าออกซิเจนละลายน้ำในทุก± 0.2 mg L − 1 ) สิบสองชั่วโมงให้ความเข้มแสงที่ 600 ลักซ์ ( 12L – 12D ) .

2.4 . ความเค็มของตัวอ่อน
การศึกษาปัจจุบันการทดสอบผลของห้าระดับที่แตกต่างกันของระดับความเค็มต่อความอดทนของตัวอ่อนสองชุดของถังเลี้ยงดูตัวอ่อนที่เต็มไป ด้วยน้ำมีความเค็มของ 20 , 25 , 30 , 35 และ 40 ส่วนในพัน ในแต่ละชุด ยี่สิบห้าตัวอ่อนอายุ 10 วัน หลังจากฟักมีแนะนำในแต่ละถัง ชุดรถถังที่มีความเค็ม 30 ppt )
การแปล กรุณารอสักครู่..
 
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.

Copyright ©2024 I Love Translation. All reserved.

E-mail: