Fumaric acid is primarily an intermediate of the citrate cycle, but is also involved in other metabolic pathways. In 1939, it was suggested that fumarate biosynthesis involved a C-2 plus C-2 condensation in Rhizopus species (Foster et al. 1949). The reactions in this pathway seemed to be similar to those of the glyoxylate bypass (Foster et al. 1949). Years after, the glyoxylate bypass mechanism was ruled out because the theoretical molar yield for this pathway of 100% was not in agreement with the experimental yield of 140% (Rhodes et al. 1959; Romano et al. 1967). However, the main evidence for rejecting the glyoxylate bypass mechanism is that the key enzyme of the glyoxylate pathway, isocitrate-glyoxylate lyase, was repressed when high glucose concentrations were present like in the experiments used for fumaric acid production (Romano et al. 1967).
It was discovered that a C3 plus C1 mechanism involving CO2 fixation catalyzed by pyruvate carboxylase under aerobic conditions explained the high molar yields in fumarate production (Overman and Romano 1969). This CO2 fixation leads to oxaloacetic acid formation (Osmani and Scrutton 1985), so that C4 citrate cycle intermediates can be withdrawn for biosynthesis during the growth phase under aerobic conditions. When nitrogen becomes limiting and the growth phase stops, the metabolism of glucose and CO2 fixation could continue and lead to an accumulation of C4 acids (Romano et al. 1967). The maximal theoretical yield in a nongrowth situation is 2 mol of fumaric acid per mole of glucose consumed, upon fixation of 2 mol of CO2 via reductive pyruvate carboxylation. However, if the reductive pyruvate carboxylation would be the sole pathway, no ATP would be produced for maintenance or transport purposes. Therefore, the citrate cycle is also active during fumaric acid production (Rhodes et al. 1959; Kenealy et al. 1986).
The CO2 carboxylation enzyme, pyruvate carboxylase, is known to be localized exclusively in the cytosol, together with NAD-malate dehydrogenase and fumarase (that are present in the cytosol and in the mitochondria), leading to fumaric acid synthesis in this cell compartment (Osmani and Scrutton 1985). Studies performed by Peleg et al. (1989) indicated higher activities of these enzymes (especially the cytosolic isoenzymes) during fumaric acid production. Kenealy et al. (1986) used mitochondrial inhibitors to investigate their role in fumarate accumulation and found no direct involvement of such inhibitors of the citrate cycle in fumarate production. However, carbon-labeling studies have demonstrated the simultaneous utilization of both the citrate cycle and the reductive pyruvate carboxylation pathways under aerobic conditions (Fig. 3). Besides the localization of fumarase isoenzymes, it was also found that addition of cycloheximide virtually eliminated the cytosolic isoenzyme and therefore caused a large decrease in the amount of fumaric acid produced by R. oryzae (Peleg et al. 1989)..
กรด Fumaric เป็นหลักเป็นสื่อกลางของวงจรซิเตรต แต่ยังมีส่วนเกี่ยวข้องในการเผาผลาญเซลล์อื่น ๆ ในปี 1939 มันก็ชี้ให้เห็นว่าการสังเคราะห์ fumarate เกี่ยวข้องกับ C-2 รวมทั้งการรวมตัว C-2 สายพันธุ์ Rhizopus (ฟอสเตอร์ et al. 1949) ปฏิกิริยาในทางเดินนี้ดูเหมือนจะคล้ายกับที่ของบายพาส glyoxylate (ฟอสเตอร์ et al. 1949) ปีหลังจากกลไกบายพาส glyoxylate ที่ถูกตัดออกเพราะผลผลิตกรามทฤษฎีทางเดินนี้ 100% ไม่ได้อยู่ในข้อตกลงกับอัตราผลตอบแทนจากการทดลอง 140% (โรดส์ et al, 1959;.. โรมาโน et al, 1967) อย่างไรก็ตามหลักฐานที่หลักสำหรับการปฏิเสธกลไกบายพาส glyoxylate คือเอนไซม์ที่สำคัญของทางเดิน glyoxylate, isocitrate-glyoxylate ไอเลสถูกปราบปรามเมื่อความเข้มข้นของน้ำตาลสูงอยู่ในปัจจุบันเช่นในการทดลองที่ใช้สำหรับการผลิตกรดฟูมาริก (Romano et al. 1967) . มันถูกค้นพบว่า C3 บวกกลไกที่เกี่ยวข้องกับการตรึง C1 CO2 เร่งปฏิกิริยาด้วยคาร์บอกซิไพรูภายใต้เงื่อนไขแอโรบิกอธิบายอัตราผลตอบแทนกรามสูงในการผลิต fumarate (Overman และโรมาโน 1969) การตรึง CO2 นี้นำไปสู่การก่อตัว oxaloacetic กรด (Osmani และ Scrutton 1985) เพื่อให้ตัวกลางวงจรซิเตรต C4 สามารถถอนได้สำหรับการสังเคราะห์ในช่วงระยะการเจริญเติบโตภายใต้เงื่อนไขแอโรบิก เมื่อกลายเป็นไนโตรเจน จำกัด และหยุดระยะการเจริญเติบโต, การเผาผลาญกลูโคสและการตรึง CO2 ได้อย่างต่อเนื่องและนำไปสู่การสะสมของกรด C4 (การ Romano et al. 1967) ผลผลิตทางทฤษฎีสูงสุดในสถานการณ์ nongrowth 2 โมลของกรด fumaric ต่อโมลของกลูโคสบริโภคเมื่อตรึง 2 โมลของ CO2 ผ่าน carboxylation ไพรูลดลง แต่ถ้า carboxylation ไพรูลดลงจะเป็นทางเดิน แต่เพียงผู้เดียวไม่มีเอทีพีจะผลิตเพื่อวัตถุประสงค์ในการบำรุงรักษาหรือการขนส่ง ดังนั้นวงจรซิเตรตยังทำงานอยู่ในระหว่างการผลิตกรดฟูมาริก (โรดส์ et al, 1959;.. Kenealy et al, 1986). CO2 เอนไซม์ carboxylation, คาร์บอกซิไพรูเป็นที่รู้จักกันจะได้รับการแปลเป็นภาษาท้องถิ่นเฉพาะในเซลล์ร่วมกับ dehydrogenase NAD-malate และ fumarase (ที่มีอยู่ในเซลล์และใน mitochondria) ที่นำไปสู่การสังเคราะห์กรดฟูมาริกในช่องเซลล์นี้ (Osmani และ Scrutton 1985) การศึกษาดำเนินการโดยเปเลก et al, (1989) ระบุกิจกรรมที่สูงขึ้นของเอนไซม์เหล่านี้ (โดยเฉพาะ isoenzymes cytosolic) ในระหว่างการผลิตกรด fumaric Kenealy et al, (1986) ที่ใช้สารยับยั้งยลที่จะตรวจสอบบทบาทของพวกเขาในการสะสม fumarate และพบว่าไม่มีส่วนร่วมโดยตรงของสารยับยั้งการดังกล่าวของวงจรซิเตรตในการผลิต fumarate อย่างไรก็ตามการศึกษาการติดฉลากคาร์บอนได้แสดงให้เห็นการใช้พร้อมกันของทั้งวงจรซิเตรตและไพรูลดลงอย่างทุลักทุเล carboxylation ภายใต้เงื่อนไขแอโรบิก (รูปที่. 3) นอกจากนี้การแปลของ isoenzymes fumarase มันก็ยังพบว่าการเพิ่มขึ้นของ cycloheximide แทบตัด isoenzyme cytosolic และดังนั้นจึงก่อให้เกิดการลดลงของขนาดใหญ่ในปริมาณกรด fumaric ผลิตโดยอาร์ oryzae (เปเลก et al. 1989) ..
การแปล กรุณารอสักครู่..
