- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
Experimental designEx vitro P. dele
Experimental design
Ex vitro P. delenatii stem node elongation under different light conditions
The shoots with 1.5–2.0 cm length derived from ex vitro plants grown in the greenhouse were transferred into light chambers with different conditions including 100 % blue LED (100B, at a wavelength of 450 nm), 100 % red LED (100R, at a wavelength of 660 nm), 90 % red LED ? 10 % blue LED (90R:10B, 90 % red light at a wavelength of 660 nm and 10 % blue light at a wavelength of 450 nm), 50 % red LED ? 50 % blue LED (50R:50B, 50 % red light at a wavelength of 660 nm and 50 % blue light at a wavelength of 450 nm) or the darkness to investigate effect of light conditions on shoot elongation (Fig. 1b). Cultures with LED treatments were maintained at 16–25 C (day and night), with 30 lmol m-2 s-1 photosynthetic photon flux (PPF) under a 24-h photoperiod. After 4 months, in vitro young shoots with five leaves were used as explants in node cutting experiments (Fig. 1c, d). By this way, contamination of fungi and bacteria from substrates could be limited and the explants were harvested easily.
Regeneration ability of explants derived from young shoot under different light conditions
Ex vitro 4-month-old shoots under different light conditions in previous experiment were sterilized and cut into
nodes separately. These nodes then were cultured on SH medium supplemented with 1.0 mg l-1 TDZ, 0.3 mg l-1 NAA, 30 g l-1 sucrose, 9.0 g l-1 agar, and placed under fluorescent lights.
Effect of medium substrates on node stems regeneration
The best elongated ex vitro 4-month-old shoots derived from node cuttings under LED in previous treatment were sterilized and cut into nodes before cultured on SH medium supplemented with 1.0 mg l-1 TDZ, 0.3 mg l-1 NAA with different substrates including cotton, filter papers, gelrite or agar (Fig. 1e1,e 2). All explants were placed under fluorescent lights.
Effect of different nutrient media on in vitro P. delenatii shoots growth and development
The in vitro shoots harvested from previous treatments were cultured on different nutrient media such as MS (Murashige and Skoog 1962); MS; VW (Vacin and Went 1949); B5 (Gamborg et al. 1968) and SH supplemented with 0.5 mg l-1 BA, 0.5 mg l-1 NAA (Nhut et al. 2007), 9.0 g l-1 agar, 30 g l-1 sucrose, and 1.0 g l-1 AC, and then set under fluorescent lights (Fig. 1f).
In vitro P. delenatii shoot elongation in the darkness
To investigate effect of the darkness on shoot elongation, 5-leaf young shoots were cultured on SH medium
Fig. 1 Diagram of P. delenatii stem elongation and shoot regeneration via stem node culture, a1, a2 young ex vitro shoots with 1.5–2.0 cm length; b, c ex vitro elongated shoots under LED conditions after 4 months; d nodes separated from young elongation shoot; e1 stem nodes cultured in solid medium and e2 stem nodes cultured in liquid medium with cotton substrate for 1.5 months; f completely in vitro seedlings after 3 months; g1 elongated shoots in the darkness for 4 months; g2 elongated shoots were transferred to light for recovering chlorophyll content; h stem nodes were cut into orderly positions; i stem nodes development in greenhouse
Acta Physiol Plant (2015) 37:136 Page 3 of 11 136
123
supplemented with 0.5 mg l-1 NAA, 0.5 mg l-1 BA, 30 g l-1 sucrose, 9.0 g l-1 agar, and 1.0 g l-1 AC, and placed in the darkness without subculture (Fig. 1g1). The shoot length was measured after 1–4 months of culture.
Stem node survival in green house
The 4-month-old in vitro shoots placed in the darkness were transferred into fluorescent light condition at 15–20 lmol m-2 s-1 and regime of 16/8-h (light/dark) (Fig. 1g2). Temperature was maintained at 25 ± 3 C. After 2 months, these shoots were cut into single nodes and cultivated in fern fibers in the greenhouse (under the natural light with PPFD less than 200 lmol m-2 s-1 using sunshade nets, at 16–25 C, and 60–90 % relative humidity) for 12 months (Fig. 1h, i). SPAD values of the shoots and single nodes were determined by the Minolta Chlorophyll meter SPAD-502 (Minolta Co., Ltd, Osaka 541, Japan) after 4 months in the darkness, 2 months under fluorescent lamp and 12 months in the green house.
Ex vitro P. delenatii stem node elongation under different light conditions
The shoots with 1.5–2.0 cm length derived from ex vitro plants grown in the greenhouse were transferred into light chambers with different conditions including 100 % blue LED (100B, at a wavelength of 450 nm), 100 % red LED (100R, at a wavelength of 660 nm), 90 % red LED ? 10 % blue LED (90R:10B, 90 % red light at a wavelength of 660 nm and 10 % blue light at a wavelength of 450 nm), 50 % red LED ? 50 % blue LED (50R:50B, 50 % red light at a wavelength of 660 nm and 50 % blue light at a wavelength of 450 nm) or the darkness to investigate effect of light conditions on shoot elongation (Fig. 1b). Cultures with LED treatments were maintained at 16–25 C (day and night), with 30 lmol m-2 s-1 photosynthetic photon flux (PPF) under a 24-h photoperiod. After 4 months, in vitro young shoots with five leaves were used as explants in node cutting experiments (Fig. 1c, d). By this way, contamination of fungi and bacteria from substrates could be limited and the explants were harvested easily.
Regeneration ability of explants derived from young shoot under different light conditions
Ex vitro 4-month-old shoots under different light conditions in previous experiment were sterilized and cut into
nodes separately. These nodes then were cultured on SH medium supplemented with 1.0 mg l-1 TDZ, 0.3 mg l-1 NAA, 30 g l-1 sucrose, 9.0 g l-1 agar, and placed under fluorescent lights.
Effect of medium substrates on node stems regeneration
The best elongated ex vitro 4-month-old shoots derived from node cuttings under LED in previous treatment were sterilized and cut into nodes before cultured on SH medium supplemented with 1.0 mg l-1 TDZ, 0.3 mg l-1 NAA with different substrates including cotton, filter papers, gelrite or agar (Fig. 1e1,e 2). All explants were placed under fluorescent lights.
Effect of different nutrient media on in vitro P. delenatii shoots growth and development
The in vitro shoots harvested from previous treatments were cultured on different nutrient media such as MS (Murashige and Skoog 1962); MS; VW (Vacin and Went 1949); B5 (Gamborg et al. 1968) and SH supplemented with 0.5 mg l-1 BA, 0.5 mg l-1 NAA (Nhut et al. 2007), 9.0 g l-1 agar, 30 g l-1 sucrose, and 1.0 g l-1 AC, and then set under fluorescent lights (Fig. 1f).
In vitro P. delenatii shoot elongation in the darkness
To investigate effect of the darkness on shoot elongation, 5-leaf young shoots were cultured on SH medium
Fig. 1 Diagram of P. delenatii stem elongation and shoot regeneration via stem node culture, a1, a2 young ex vitro shoots with 1.5–2.0 cm length; b, c ex vitro elongated shoots under LED conditions after 4 months; d nodes separated from young elongation shoot; e1 stem nodes cultured in solid medium and e2 stem nodes cultured in liquid medium with cotton substrate for 1.5 months; f completely in vitro seedlings after 3 months; g1 elongated shoots in the darkness for 4 months; g2 elongated shoots were transferred to light for recovering chlorophyll content; h stem nodes were cut into orderly positions; i stem nodes development in greenhouse
Acta Physiol Plant (2015) 37:136 Page 3 of 11 136
123
supplemented with 0.5 mg l-1 NAA, 0.5 mg l-1 BA, 30 g l-1 sucrose, 9.0 g l-1 agar, and 1.0 g l-1 AC, and placed in the darkness without subculture (Fig. 1g1). The shoot length was measured after 1–4 months of culture.
Stem node survival in green house
The 4-month-old in vitro shoots placed in the darkness were transferred into fluorescent light condition at 15–20 lmol m-2 s-1 and regime of 16/8-h (light/dark) (Fig. 1g2). Temperature was maintained at 25 ± 3 C. After 2 months, these shoots were cut into single nodes and cultivated in fern fibers in the greenhouse (under the natural light with PPFD less than 200 lmol m-2 s-1 using sunshade nets, at 16–25 C, and 60–90 % relative humidity) for 12 months (Fig. 1h, i). SPAD values of the shoots and single nodes were determined by the Minolta Chlorophyll meter SPAD-502 (Minolta Co., Ltd, Osaka 541, Japan) after 4 months in the darkness, 2 months under fluorescent lamp and 12 months in the green house.
0/5000
Experimental designEx vitro P. delenatii stem node elongation under different light conditionsThe shoots with 1.5–2.0 cm length derived from ex vitro plants grown in the greenhouse were transferred into light chambers with different conditions including 100 % blue LED (100B, at a wavelength of 450 nm), 100 % red LED (100R, at a wavelength of 660 nm), 90 % red LED ? 10 % blue LED (90R:10B, 90 % red light at a wavelength of 660 nm and 10 % blue light at a wavelength of 450 nm), 50 % red LED ? 50 % blue LED (50R:50B, 50 % red light at a wavelength of 660 nm and 50 % blue light at a wavelength of 450 nm) or the darkness to investigate effect of light conditions on shoot elongation (Fig. 1b). Cultures with LED treatments were maintained at 16–25 C (day and night), with 30 lmol m-2 s-1 photosynthetic photon flux (PPF) under a 24-h photoperiod. After 4 months, in vitro young shoots with five leaves were used as explants in node cutting experiments (Fig. 1c, d). By this way, contamination of fungi and bacteria from substrates could be limited and the explants were harvested easily.Regeneration ability of explants derived from young shoot under different light conditionsEx vitro 4-month-old shoots under different light conditions in previous experiment were sterilized and cut intonodes separately. These nodes then were cultured on SH medium supplemented with 1.0 mg l-1 TDZ, 0.3 mg l-1 NAA, 30 g l-1 sucrose, 9.0 g l-1 agar, and placed under fluorescent lights.Effect of medium substrates on node stems regenerationThe best elongated ex vitro 4-month-old shoots derived from node cuttings under LED in previous treatment were sterilized and cut into nodes before cultured on SH medium supplemented with 1.0 mg l-1 TDZ, 0.3 mg l-1 NAA with different substrates including cotton, filter papers, gelrite or agar (Fig. 1e1,e 2). All explants were placed under fluorescent lights.Effect of different nutrient media on in vitro P. delenatii shoots growth and developmentThe in vitro shoots harvested from previous treatments were cultured on different nutrient media such as MS (Murashige and Skoog 1962); MS; VW (Vacin and Went 1949); B5 (Gamborg et al. 1968) and SH supplemented with 0.5 mg l-1 BA, 0.5 mg l-1 NAA (Nhut et al. 2007), 9.0 g l-1 agar, 30 g l-1 sucrose, and 1.0 g l-1 AC, and then set under fluorescent lights (Fig. 1f).In vitro P. delenatii shoot elongation in the darknessTo investigate effect of the darkness on shoot elongation, 5-leaf young shoots were cultured on SH mediumFig. 1 Diagram of P. delenatii stem elongation and shoot regeneration via stem node culture, a1, a2 young ex vitro shoots with 1.5–2.0 cm length; b, c ex vitro elongated shoots under LED conditions after 4 months; d nodes separated from young elongation shoot; e1 stem nodes cultured in solid medium and e2 stem nodes cultured in liquid medium with cotton substrate for 1.5 months; f completely in vitro seedlings after 3 months; g1 elongated shoots in the darkness for 4 months; g2 elongated shoots were transferred to light for recovering chlorophyll content; h stem nodes were cut into orderly positions; i stem nodes development in greenhouseActa Physiol Plant (2015) 37:136 Page 3 of 11 136123supplemented with 0.5 mg l-1 NAA, 0.5 mg l-1 BA, 30 g l-1 sucrose, 9.0 g l-1 agar, and 1.0 g l-1 AC, and placed in the darkness without subculture (Fig. 1g1). The shoot length was measured after 1–4 months of culture.Stem node survival in green houseThe 4-month-old in vitro shoots placed in the darkness were transferred into fluorescent light condition at 15–20 lmol m-2 s-1 and regime of 16/8-h (light/dark) (Fig. 1g2). Temperature was maintained at 25 ± 3 C. After 2 months, these shoots were cut into single nodes and cultivated in fern fibers in the greenhouse (under the natural light with PPFD less than 200 lmol m-2 s-1 using sunshade nets, at 16–25 C, and 60–90 % relative humidity) for 12 months (Fig. 1h, i). SPAD values of the shoots and single nodes were determined by the Minolta Chlorophyll meter SPAD-502 (Minolta Co., Ltd, Osaka 541, Japan) after 4 months in the darkness, 2 months under fluorescent lamp and 12 months in the green house.
การแปล กรุณารอสักครู่..
การออกแบบการทดลอง
Ex หลอดทดลองพี delenatii ลำต้นโหนยืดตัวภายใต้สภาวะแสงที่แตกต่าง
หน่อที่มีความยาว 1.5-2.0 ซม. มาจากพืชอดีตหลอดทดลองปลูกในเรือนกระจกที่ถูกโอนเข้ามาในห้องแสงที่มีเงื่อนไขที่แตกต่างกันรวมถึงไฟ LED สีฟ้า 100% (100B ที่ความยาวคลื่น 450 นาโนเมตร) 100% ไฟ LED สีแดง (100R, ที่ความยาวคลื่น 660 นาโนเมตร) 90% LED สีแดง? 10% ไฟ LED สีฟ้า (90R: 10B, แสงสีแดง 90% ที่ความยาวคลื่น 660 นาโนเมตรและแสงสีฟ้า 10% ที่ความยาวคลื่น 450 นาโนเมตร) จาก 50% LED สีแดง? 50% ไฟ LED สีฟ้า (50R: 50B, แสงสีแดง 50% ที่ความยาวคลื่น 660 นาโนเมตรและ 50% แสงสีฟ้าที่ความยาวคลื่น 450 นาโนเมตร) หรือความมืดเพื่อศึกษาผลของสภาพแสงในการถ่ายภาพการยืดตัว (Fig. 1B) วัฒนธรรมกับการรักษา LED ได้รับการเก็บรักษาไว้ที่ 16-25 องศาเซลเซียส (กลางวันและกลางคืน) กับ 30 lmol M-2 S-1 การสังเคราะห์แสงโฟตอน FL UX (PPF) ภายใต้ 24-H ช่วงแสง หลังจาก 4 เดือนในหลอดทดลองหน่ออ่อนที่มีใบ Fi ได้ถูกนำมาใช้เป็นชิ้นส่วนในการทดลองตัดโหนด (รูป. 1C, D) โดยวิธีการนี้ปนเปื้อนของเชื้อราและแบคทีเรียจากพื้นผิวอาจจะ จำกัด และชิ้นส่วนที่ถูกเก็บเกี่ยวได้อย่างง่ายดาย.
ฟื้นฟูความสามารถของชิ้นส่วนที่ได้มาจากการถ่ายทำหนุ่มภายใต้สภาพแสงที่แตกต่างกัน
Ex หน่อหลอดทดลอง 4 เดือนเก่าภายใต้สภาพแสงที่แตกต่างกันในการทดสอบก่อนหน้านี้ได้รับการฆ่าเชื้อ และตัดเป็น
โหนดแยกต่างหาก โหนดเหล่านั้นมาเลี้ยงบนอาหาร SH เสริมด้วย 1.0 มิลลิกรัม L-1 TDZ 0.3 มก. L-1 NAA, 30 กรัม L-1 ซูโครส 9.0 กรัม L-1 วุ้นและวางไว้ภายใต้แสงไฟฟลอริด้า uorescent.
ผลของพื้นผิวขนาดกลางบนโหนด เกิดการฟื้นฟู
ที่ยาวนานที่ดีที่สุดอดีตหลอดแก้วหน่อ 4 เดือนเก่าที่ได้มาจากการตัดโหนดภายใต้ LED ในการรักษาก่อนหน้านี้ได้รับการฆ่าเชื้อและตัดเป็นโหนดก่อนที่จะเลี้ยงบนอาหารสูตร SH เสริมด้วย L-1 TDZ 1.0 มก., 0.3 มก. L-1 NAA ที่มีแตกต่างกัน พื้นผิวรวมทั้งผ้าฝ้ายเอกสาร Fi กรอง, gelrite หรือวุ้น (รูป. 1E1, E 2) ชิ้นส่วนทั้งหมดถูกวางไว้ภายใต้แสงไฟฟลอริด้า uorescent.
ผลของการสื่อสารอาหารที่แตกต่างกันในในหลอดทดลองพี delenatii หน่อเจริญเติบโตและพัฒนาการ
หน่อในหลอดทดลองจากการเก็บเกี่ยวการรักษาก่อนหน้านี้ได้เพาะเลี้ยงบนสื่อสารอาหารที่แตกต่างกันเช่น MS (Murashige และ Skoog 1962); ?นางสาว; VW (Vacin and Went 1949); B5 (Gamborg et al. 1968) และ SH เสริมด้วย 0.5 มิลลิกรัม L-1 BA 0.5 มิลลิกรัม L-1 NAA (Nhut et al. 2007) 9.0 กรัม L-1 วุ้น 30 กรัม L-1 น้ำตาลซูโครสและ 1.0 กรัม L-1 AC และตั้งแล้วภายใต้แสงไฟฟลอริด้า uorescent (รูป. 1F).
ในหลอดทดลองพี delenatii ยิงยืดตัวในความมืด
เพื่อศึกษาผลของความมืดที่การถ่ายทำการยืดตัว 5 ใบยอดอ่อนมาเลี้ยงบน SH กลาง
รูป 1 แผนผังของพี delenatii ลำต้นยืดตัวและยิงผ่านการฟื้นฟูวัฒนธรรมต้นกำเนิดโหนด, A1, A2 หนุ่มอดีตหลอดทดลองยิงที่มีความยาว 1.5-2.0 ซม.; B, C อดีตหลอดแก้วหน่อยาวภายใต้เงื่อนไข LED หลังจาก 4 เดือน D แยกออกจากหนุ่มยิงยืดตัวโหนด; โหนด E1 ก้านเพาะเลี้ยงในขนาดกลางและต้นกำเนิด E2 โหนดของแข็งเพาะเลี้ยงในอาหารเหลวที่มีพื้นผิวผ้าฝ้าย 1.5 เดือน F อย่างสมบูรณ์ในต้นกล้าหลอดทดลองหลังจาก 3 เดือน; หน่อยาว G1 ในความมืดเป็นเวลา 4 เดือน; หน่อยาว G2 ถูกโอนไปยังแสงสำหรับการกู้คืนเนื้อหาคลอโรฟิล; โหนด H ก้านถูกตัดลงในตำแหน่งที่เป็นระเบียบ; ฉันลำต้นพัฒนาโหนในเรือนกระจก
Acta พืช Physiol (2015) 37: 136 หน้า 3 จาก 11 136
123
เสริมด้วย 0.5 มิลลิกรัม L-1 NAA 0.5 มิลลิกรัม L-1 ปริญญาตรี 30 กรัม L-1 ซูโครส 9.0 กรัม L-1 วุ้น และ 1.0 กรัม L-1 AC และวางไว้ในความมืดโดยไม่ต้องวัฒนธรรม (รูป. 1g1) ความยาวยิงวัดหลังจาก 1-4 เดือนของวัฒนธรรม.
Stem โหนดอยู่รอดในบ้านสีเขียว
ในหลอดทดลองหน่อ 4 เดือนเก่าวางอยู่ในความมืดที่ถูกโอนเข้ามาในฟลอริด้า uorescent สภาพแสงที่ 15-20 lmol M-2 s-1 ระบอบการปกครองของ 16/8-H (แสง / มืด) (รูป. 1g2) อุณหภูมิถูกเก็บรักษาไว้ที่อุณหภูมิ 25 ± 3 องศาเซลเซียส หลังจาก 2 เดือนหน่อเหล่านี้ถูกตัดเป็นโหนดเดียวและปลูกในเฟิร์น Bers Fi ในเรือนกระจก (ภายใต้แสงธรรมชาติกับ PPFD น้อยกว่า 200 lmol M-2 S-1 โดยใช้มุ้งม่านบังแดดที่ 16-25 องศาเซลเซียสและ 60 90% ความชื้นสัมพัทธ์) เป็นเวลา 12 เดือน (รูป. 1H, i) ค่า SPAD ของหน่อและโหนดเดียวได้รับการพิจารณาโดย Minolta คลอโรฟิลเมตร SPAD-502 (Minolta Co. , Ltd โอซาก้า 541, ญี่ปุ่น) หลังจาก 4 เดือนในความมืด 2 เดือนภายใต้ชั้น uorescent โคมไฟและ 12 เดือนในบ้านสีเขียว
Ex หลอดทดลองพี delenatii ลำต้นโหนยืดตัวภายใต้สภาวะแสงที่แตกต่าง
หน่อที่มีความยาว 1.5-2.0 ซม. มาจากพืชอดีตหลอดทดลองปลูกในเรือนกระจกที่ถูกโอนเข้ามาในห้องแสงที่มีเงื่อนไขที่แตกต่างกันรวมถึงไฟ LED สีฟ้า 100% (100B ที่ความยาวคลื่น 450 นาโนเมตร) 100% ไฟ LED สีแดง (100R, ที่ความยาวคลื่น 660 นาโนเมตร) 90% LED สีแดง? 10% ไฟ LED สีฟ้า (90R: 10B, แสงสีแดง 90% ที่ความยาวคลื่น 660 นาโนเมตรและแสงสีฟ้า 10% ที่ความยาวคลื่น 450 นาโนเมตร) จาก 50% LED สีแดง? 50% ไฟ LED สีฟ้า (50R: 50B, แสงสีแดง 50% ที่ความยาวคลื่น 660 นาโนเมตรและ 50% แสงสีฟ้าที่ความยาวคลื่น 450 นาโนเมตร) หรือความมืดเพื่อศึกษาผลของสภาพแสงในการถ่ายภาพการยืดตัว (Fig. 1B) วัฒนธรรมกับการรักษา LED ได้รับการเก็บรักษาไว้ที่ 16-25 องศาเซลเซียส (กลางวันและกลางคืน) กับ 30 lmol M-2 S-1 การสังเคราะห์แสงโฟตอน FL UX (PPF) ภายใต้ 24-H ช่วงแสง หลังจาก 4 เดือนในหลอดทดลองหน่ออ่อนที่มีใบ Fi ได้ถูกนำมาใช้เป็นชิ้นส่วนในการทดลองตัดโหนด (รูป. 1C, D) โดยวิธีการนี้ปนเปื้อนของเชื้อราและแบคทีเรียจากพื้นผิวอาจจะ จำกัด และชิ้นส่วนที่ถูกเก็บเกี่ยวได้อย่างง่ายดาย.
ฟื้นฟูความสามารถของชิ้นส่วนที่ได้มาจากการถ่ายทำหนุ่มภายใต้สภาพแสงที่แตกต่างกัน
Ex หน่อหลอดทดลอง 4 เดือนเก่าภายใต้สภาพแสงที่แตกต่างกันในการทดสอบก่อนหน้านี้ได้รับการฆ่าเชื้อ และตัดเป็น
โหนดแยกต่างหาก โหนดเหล่านั้นมาเลี้ยงบนอาหาร SH เสริมด้วย 1.0 มิลลิกรัม L-1 TDZ 0.3 มก. L-1 NAA, 30 กรัม L-1 ซูโครส 9.0 กรัม L-1 วุ้นและวางไว้ภายใต้แสงไฟฟลอริด้า uorescent.
ผลของพื้นผิวขนาดกลางบนโหนด เกิดการฟื้นฟู
ที่ยาวนานที่ดีที่สุดอดีตหลอดแก้วหน่อ 4 เดือนเก่าที่ได้มาจากการตัดโหนดภายใต้ LED ในการรักษาก่อนหน้านี้ได้รับการฆ่าเชื้อและตัดเป็นโหนดก่อนที่จะเลี้ยงบนอาหารสูตร SH เสริมด้วย L-1 TDZ 1.0 มก., 0.3 มก. L-1 NAA ที่มีแตกต่างกัน พื้นผิวรวมทั้งผ้าฝ้ายเอกสาร Fi กรอง, gelrite หรือวุ้น (รูป. 1E1, E 2) ชิ้นส่วนทั้งหมดถูกวางไว้ภายใต้แสงไฟฟลอริด้า uorescent.
ผลของการสื่อสารอาหารที่แตกต่างกันในในหลอดทดลองพี delenatii หน่อเจริญเติบโตและพัฒนาการ
หน่อในหลอดทดลองจากการเก็บเกี่ยวการรักษาก่อนหน้านี้ได้เพาะเลี้ยงบนสื่อสารอาหารที่แตกต่างกันเช่น MS (Murashige และ Skoog 1962); ?นางสาว; VW (Vacin and Went 1949); B5 (Gamborg et al. 1968) และ SH เสริมด้วย 0.5 มิลลิกรัม L-1 BA 0.5 มิลลิกรัม L-1 NAA (Nhut et al. 2007) 9.0 กรัม L-1 วุ้น 30 กรัม L-1 น้ำตาลซูโครสและ 1.0 กรัม L-1 AC และตั้งแล้วภายใต้แสงไฟฟลอริด้า uorescent (รูป. 1F).
ในหลอดทดลองพี delenatii ยิงยืดตัวในความมืด
เพื่อศึกษาผลของความมืดที่การถ่ายทำการยืดตัว 5 ใบยอดอ่อนมาเลี้ยงบน SH กลาง
รูป 1 แผนผังของพี delenatii ลำต้นยืดตัวและยิงผ่านการฟื้นฟูวัฒนธรรมต้นกำเนิดโหนด, A1, A2 หนุ่มอดีตหลอดทดลองยิงที่มีความยาว 1.5-2.0 ซม.; B, C อดีตหลอดแก้วหน่อยาวภายใต้เงื่อนไข LED หลังจาก 4 เดือน D แยกออกจากหนุ่มยิงยืดตัวโหนด; โหนด E1 ก้านเพาะเลี้ยงในขนาดกลางและต้นกำเนิด E2 โหนดของแข็งเพาะเลี้ยงในอาหารเหลวที่มีพื้นผิวผ้าฝ้าย 1.5 เดือน F อย่างสมบูรณ์ในต้นกล้าหลอดทดลองหลังจาก 3 เดือน; หน่อยาว G1 ในความมืดเป็นเวลา 4 เดือน; หน่อยาว G2 ถูกโอนไปยังแสงสำหรับการกู้คืนเนื้อหาคลอโรฟิล; โหนด H ก้านถูกตัดลงในตำแหน่งที่เป็นระเบียบ; ฉันลำต้นพัฒนาโหนในเรือนกระจก
Acta พืช Physiol (2015) 37: 136 หน้า 3 จาก 11 136
123
เสริมด้วย 0.5 มิลลิกรัม L-1 NAA 0.5 มิลลิกรัม L-1 ปริญญาตรี 30 กรัม L-1 ซูโครส 9.0 กรัม L-1 วุ้น และ 1.0 กรัม L-1 AC และวางไว้ในความมืดโดยไม่ต้องวัฒนธรรม (รูป. 1g1) ความยาวยิงวัดหลังจาก 1-4 เดือนของวัฒนธรรม.
Stem โหนดอยู่รอดในบ้านสีเขียว
ในหลอดทดลองหน่อ 4 เดือนเก่าวางอยู่ในความมืดที่ถูกโอนเข้ามาในฟลอริด้า uorescent สภาพแสงที่ 15-20 lmol M-2 s-1 ระบอบการปกครองของ 16/8-H (แสง / มืด) (รูป. 1g2) อุณหภูมิถูกเก็บรักษาไว้ที่อุณหภูมิ 25 ± 3 องศาเซลเซียส หลังจาก 2 เดือนหน่อเหล่านี้ถูกตัดเป็นโหนดเดียวและปลูกในเฟิร์น Bers Fi ในเรือนกระจก (ภายใต้แสงธรรมชาติกับ PPFD น้อยกว่า 200 lmol M-2 S-1 โดยใช้มุ้งม่านบังแดดที่ 16-25 องศาเซลเซียสและ 60 90% ความชื้นสัมพัทธ์) เป็นเวลา 12 เดือน (รูป. 1H, i) ค่า SPAD ของหน่อและโหนดเดียวได้รับการพิจารณาโดย Minolta คลอโรฟิลเมตร SPAD-502 (Minolta Co. , Ltd โอซาก้า 541, ญี่ปุ่น) หลังจาก 4 เดือนในความมืด 2 เดือนภายใต้ชั้น uorescent โคมไฟและ 12 เดือนในบ้านสีเขียว
การแปล กรุณารอสักครู่..
การออกแบบการทดลองอดีตเด็กหน้าเดเลนาติอี้ต้นโหนดการภายใต้สภาพแสงที่แตกต่างกันยอดกับ 1.5 – 2.0 ซม. ความยาวที่ได้มาจากอดีตการปลูกในเรือนกระจกที่ถูกย้ายเข้าห้องแสงกับเงื่อนไขที่แตกต่างกันรวมทั้ง 100% ไฟ LED สีฟ้า ( 100A ที่ความยาวคลื่น 450 nm ) 100% ( 100r LED สีแดงที่ความยาวคลื่น 660 nm ) 90% LED สีแดง ? 10% LED สีฟ้า ( 90r : 10b 90% สีแดงแสงที่ความยาวคลื่น 660 nm และ 10% ฟ้าแสงที่ความยาวคลื่น 450 nm ) 50% LED สีแดง ? 50% ไฟ LED สีฟ้า ( 50R : 50b 50% สีแดงแสงที่ความยาวคลื่น 660 nm และ 50% ฟ้าแสงที่ความยาวคลื่น 450 nm ) หรือความมืด เพื่อศึกษาอิทธิพลของเงื่อนไขในการยิงแสง ( รูปที่ 1A ) วัฒนธรรมนำการรักษาถูกเก็บรักษาไว้ที่ 16 – 25 C ( กลางวันและกลางคืน ) 30 lmol ที่สุดด้วยแสงโฟตอน fl ux ( PPF ) ภายใต้ 24-h แสง . หลังจากนั้น 4 เดือน ในการยิงหนุ่มจึงได้ใบใช้เป็นอาหารในโหนดตัดการทดลอง ( ภาพ c , d ) โดยวิธีนี้ การปนเปื้อนของเชื้อราและแบคทีเรียจากพื้นผิวอาจจะ จำกัด และเนื้อเยื่อที่ถูกเก็บเกี่ยวได้ง่ายความสามารถในการใช้ชิ้นส่วนที่ได้จากยอดอ่อนภายใต้สภาพแสงที่แตกต่างกันยิง 4-month-old หลอด EX ภายใต้สภาพแสงที่แตกต่างกันในการทดลองก่อนหน้านี้ได้ฆ่าเชื้อและตัดออกจุดแยก โหนดเหล่านี้ก็ถูกเพาะเลี้ยงบนอาหารที่เติม sh 1.0 mg L-1 TDZ 0.3 มก. L-1 NAA 30 กรัม L-1 ซูโครส , 9.0 กรัม L-1 วุ้น และอยู่ภายใต้ไฟ uorescent fl .ผลของพื้นผิวขนาดกลางลำต้นงอกบนปมดีที่สุดการยิงมาจากอดีตยาว 4-month-old โหนกิ่งภายใต้ LED ในการรักษาก่อนหน้านี้ฆ่าเชื้อและตัดเป็นโหนดก่อนเพาะเลี้ยงบนอาหารที่เติม sh 1.0 mg L-1 TDZ 0.3 มก. L-1 NAA ด้วยพื้นผิวที่แตกต่างกัน ได้แก่ ฝ้าย จึง lter เอกสาร gelrite หรือวุ้น ( รูปที่ 1e1 , E 2 ) อาหารถูกวางไว้ภายใต้ไฟ uorescent fl .ผลของสารอาหารที่แตกต่างกันในสื่อในหลอดทดลองหน้าเดเลนาติอี้ยอดเติบโตและการพัฒนาในหลอดทดลองยิงจากการเก็บเกี่ยวการรักษาก่อนหน้านี้โดยเลี้ยงบนสื่อต่าง ๆเช่น สารอาหาร อาหารสูตร MS ( Murashige and Skoog , 1962 ) ; MS ; VW ( Vacin and Went ( 1949 ) ; B5 Gamborg et al . 1968 ) และอาจเสริมด้วย BA 0.5 มก. L-1 , L-1 NAA 0.5 มิลลิกรัม ( nhut et al . 2007 ) , 9.0 กรัม L-1 วุ้น 30 กรัม L-1 ซูโครสและ 1.0 กรัม L-1 AC , และจากนั้นตั้งค่าภายใต้ไฟ uorescent fl ( รูปที่ชั้น 1 )ในหลอดทดลองหน้าเดเลนาติอี้ยิงยืดตัวอยู่ในความมืดเพื่อศึกษาผลของความมืดยิงบนยืด 5-leaf หน่อเล็กถูกเพาะเลี้ยงบนอาหารอังกฤษรูปที่ 1 แสดงหน้าเดเลนาติอี้ลำต้นยืดตัวและยิงโดยผ่านวัฒนธรรม ปมก้าน A1 , A2 หนุ่มอดีตการยิงที่มีความยาว 1.5 – 2.0 ซม. ; B , C ex หลอด LED ทำให้ยอดภายใต้เงื่อนไขหลังจาก 4 เดือน ; D ) แยกจากเด็กยืดตัวยิง ; E1 ต้นโหนดในการเพาะเลี้ยงและเพาะเลี้ยงก้านกลางแข็ง E2 โหนด ในอาหารเหลวด้วยผ้าฝ้ายผสม 1.5 เดือน ; F อย่างสมบูรณ์ในหลอดทดลองและหลัง 3 เดือน ; G1 ยาวยิงในที่มืดเป็นเวลา 4 เดือน ทำให้ยอดโอน G2 ไฟสำหรับการกู้คืนปริมาณคลอโรฟิลล์ ; H ต้นโหนดที่ถูกตัดลงในตำแหน่งเป็นระเบียบ ผมต้นโหนดในการพัฒนาพืชสรีรวิทยา มหาวิทยาลัยขอนแก่น ACTA ( 2015 ) 37:136 หน้า 11 แล้ว123เสริมด้วย NAA 0.5 มิลลิกรัม L-1 , L-1 BA 0.5 มก. 30 กรัม L-1 ซูโครส , 9.0 กรัม L-1 วุ้นและ 1.0 กรัม L-1 AC และวางไว้ในที่มืดโดยไม่วัฒนธรรมย่อย ( รูปที่ 1g1 ) ความยาวยอดวัดหลัง 1 – 4 เดือน ของวัฒนธรรมต้นโหนดการอยู่รอดในบ้านสีเขียวการ 4-month-old ในหลอดทดลองยิงอยู่ในความมืดถูกย้ายเข้าไปในfl uorescent แสงภาพที่ 15 – 20 lmol ด้วยที่สุดและระบอบการปกครองของประมาณ 16 / แสง / มืด ) ( รูปที่ 1g2 ) อุณหภูมิ ไว้ที่ 25 ± 3 C . หลังจาก 2 เดือน ยอดนี้ถูกตัดเป็นจุดเดียวและการปลูกเฟิร์นจึง bers ในเรือนกระจก ( ภายใต้แสงธรรมชาติกับ ppfd น้อยกว่า 200 lmol ด้วยที่สุดใช้ม่านบังแดดตาข่ายที่ 16 – 25 C และ 60 – 90 % ความชื้นสัมพัทธ์ ( รูป ) เป็นเวลา 12 เดือน 1 ชั่วโมง ผม ) ค่าสปาดของหน่อและโหนดเดียวถูกกำหนดโดย Minolta เครื่องวัดคลอโรฟิลล์ spad-502 ( Minolta Co . , Ltd , Osaka 541 , ญี่ปุ่น ) หลังจากนั้น 4 เดือน 2 เดือน ภายใต้ความมืด fl uorescent โคมไฟและ 12 เดือนในบ้านสีเขียว
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- RESULTS AND DISCUSSIONDevelopment of met
- This type included Operating Level (OL)
- I'm just wondering that why you made all
- Cho đúng hơn
- ยิ้มเก่ง
- เสียใจด้วย เขาพูดแรง
- To pay wages to workers, women
- สังเกตุได้ว่าสื่อต่างๆมักจะมีการโฆษณาอาห
- ฉันรักในการท่องเที่ยว โดยเฉพาะการท่องเที
- แต่ถึงยังไง เขาก็ยังจะอยู่ในใจคุณตลอดไป
- ソーセージ
- I'm just wondering that why you made all
- The True Merlion Tower ซึ่งตั้งอยู่ที่เก
- ธรรมดา
- Shape
- please indicate your current and expecte
- เลือกคำที่กำหนดให้เติมในช่องว่าง
- do you wanna see something
- Dissolution profiling and its comparison
- คงทำได้แค่ดูหน้าคุณ
- She looked absolutely terrible.
- During the past decade many simulation m
- งานไม่หนัก มีแต่เรื่องคนที่เยอะ
- the quality or level of performance that
