- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
2.3.2. Laboratory measurements of M
2.3.2. Laboratory measurements of Mineral-N
NH4 + -N and NO3 - -N forms. Mineral N in the initial and final soil samples
was extracted with 1 MKCl (1:5 ratio) by shaking for 1 h on an
end-to-end shaker. The soil KCl extracts were allowed stand for
30 min and filtered through pre-washed filter paper (Whatman
#42). During the extraction utmost care was taken to complete
the extraction within a short time period to avoid contamination
from the atmospheric NH4 + -N. NH4 + -N was determined by
salicylate-hypochlorite and NO3
-N content by reducing with copper-
cadmium column by using a segmented flow auto analyser
(Technicon-II, Technicon Corporation, Oakland, CA, USA). Mineral
N concentrations in the soil were corrected for initial moisture
content of soil samples and expressed on an oven-dry weight basis.
Net N mineralized during the incubation period was taken as the
difference in mineral N between the initial and final samples, and
expressed on an oven-dry soil weight basis (Mendham et al., 2004).
2.3.3. Leaching (aerobic) experiment
This experiment aimed to explore the long-term mineralization
potential of soils and the effect of incorporation of Eucalyptus plant
residues in a laboratory lysimeter leaching experiment maintained
for 400 days. The incubators were constructed by removing the
bottom from a 120-mL screw-top plastic sample container
(approximately 45 mm diameter). About 30–45 holes (1/160
diameter) were drilled in the lid of the container, which was
inverted, so that the lid acted as the base of the incubator. The
lid was fitted with pre-filter (Millipore pre-filter, catalogue No.
AP15 046 00) as the support pad for a polycarbonate membrane,
then another pre-filter was placed on top to prevent the clogging
of the pores in the membrane. An O-ring above the pre-filter sealed
the unit when the lid was screwed on firmly. Another pre-filter
(Millipore, catalogue No. AP25 04200) prevented silt from clogging
the finer pre-filter below. Soil (50 cm3) was packed into the incubators
at field bulk density. In the treatments with plant residues, leaf
material was cut into small pieces and spread uniformly on top
(equivalent to 4 Mg dry material ha1 on a surface-area basis).
Another pre-filter (Millipore, AP25 042 00) was then placed on
top of the soil/plant residues, to prevent the entry of leaching solution
from the top displacing soil from the surface. A size 38 rubber
bung sealed the top of the incubator. The rubber bung was fitted
with tap (Baxter-Pharmaseal three-way stopcock, Cat No. K75)
through which leaching solution and compressed air was admitted.
Compressed air was distributed from a pressure regulator (set at
25 kPa) to the valve on each chamber via a network of hoses. This
valve was closed when pressurized for leaching and opened when
not leaching. To seal the incubator, the bung was firmly pressed in
and taped down to withstand the pressure of a leaching cycle and
stay in place during the incubation period. The entire experimental
set-up was mounted on a stand with leachate collecting in a bottle
below each incubator. Leachate solution, comprising 240-mL of
0.01 M CaCl2/0.01 M KCl, was slowly passed through the soil in
the incubator by adding it to the top of the soil in the incubator (in several aliquots) and applying 25 kPa positive air pressure to
the chamber. Leachate was suctioned into receiving container by
applying a vacuum of 4–5 kPa for 1 to 2 s at 45 min intervals
during the 8 h cycle to ensure uniform leaching of the soil column.
After a complete leaching cycle, the volume of leachate was
measured and a sub-sample was taken for the determination of
NH4 + -N and NO3
-N. Leachate sub-samples were analyzed immediately
or frozen until the analysis was completed. More details on
laboratory scale micro-lysimeter leaching experiments are
provided in Mendham et al., 2009. Mineral nitrogen in leachate
was determined as described above.
2.3.4. Potentially available nitrogen (anaerobic-N)
Portions of moist soil (ca. 10–20 g dry soil) were weighed into
125 ml plastic vial and 30 ml of distilled water added, and incubated
in a hot water bath at 40 C for 7 days. After the incubation
time, 30 ml of 2 M KCl was added to the soil samples, and they
were shaken end-over-end for 1 h. All the KCl extracts were
extracted and analyzed using a Technicon II auto analyzer.
2.3.5. Soil microbial biomass C
Soil microbial biomass C was estimated at 2 years after plantation
establishment through the chloroform fumigation-extraction
method (Brookes et al., 1985; Jenkinson and Powlson 1976). Four
replicate soil samples (field fresh, as collected for the N mineralization
above) were fumigated with ethanol-free chloroform for
15 min. In brief, 2 sub-samples of moist soil (10–15 g, approximating
around 10 g on dry weight basis) were weighed into a
glass vial, one set was fumigated with ethanol-free chloroform in
a desiccator by warming the chloroform and applying a vacuum
to vaporize it. The wall of the desiccator was lined with wet tissue
paper to maintain a humid soil atmosphere during repeat vacuum
application. The vacuum was applied for 5 min, after which the
desiccators with soil samples were kept in dark conditions at
25 C for 24 h. A second, non-fumigated set was treated the same
way, but without the fumigation step. After 24 h, the samples were
extracted with 0.5 M K2SO4 for 30 min. by shaking on an endto-
end shaker. Microbial C and N was estimated as the difference
in C and N concentrations between the fumigated and unfumigated
samples, multiplied by a Kec of 0.4 and Ken of 0.45 (Sparling 1992).
2.3.6. Total C, N and P
Organic carbon was determined by the wet digestion method
(Walkley and Black, 1934). Total N and P in soil was assessed by
Micro-kjeldahl digestion of soil and chemical analysis of the
extracts on an auto analyser (Rayment and Higginson, 1992). All
the values were expressed on an oven-dry-weight basis.
2.4. Statistical analysis
The influence of slash management on soil C, N, P, N mineralization
and microbial biomass was tested by one-way analysis of
variance (ANOVA) at each sampling time, and when treatment
effects were significant, the least significant difference test was
used to assess which treatment means were different from each
other (a = 0.05). To increase the power of the analysis further, site
was included as a replicate factor, with replicates within-sites as a
nested replicate effect. The Genstat statistical package (Lawes
Agricultural Trust, Rothamsted, United Kingdom) was used to
conduct all statistical analysis.
NH4 + -N and NO3 - -N forms. Mineral N in the initial and final soil samples
was extracted with 1 MKCl (1:5 ratio) by shaking for 1 h on an
end-to-end shaker. The soil KCl extracts were allowed stand for
30 min and filtered through pre-washed filter paper (Whatman
#42). During the extraction utmost care was taken to complete
the extraction within a short time period to avoid contamination
from the atmospheric NH4 + -N. NH4 + -N was determined by
salicylate-hypochlorite and NO3
-N content by reducing with copper-
cadmium column by using a segmented flow auto analyser
(Technicon-II, Technicon Corporation, Oakland, CA, USA). Mineral
N concentrations in the soil were corrected for initial moisture
content of soil samples and expressed on an oven-dry weight basis.
Net N mineralized during the incubation period was taken as the
difference in mineral N between the initial and final samples, and
expressed on an oven-dry soil weight basis (Mendham et al., 2004).
2.3.3. Leaching (aerobic) experiment
This experiment aimed to explore the long-term mineralization
potential of soils and the effect of incorporation of Eucalyptus plant
residues in a laboratory lysimeter leaching experiment maintained
for 400 days. The incubators were constructed by removing the
bottom from a 120-mL screw-top plastic sample container
(approximately 45 mm diameter). About 30–45 holes (1/160
diameter) were drilled in the lid of the container, which was
inverted, so that the lid acted as the base of the incubator. The
lid was fitted with pre-filter (Millipore pre-filter, catalogue No.
AP15 046 00) as the support pad for a polycarbonate membrane,
then another pre-filter was placed on top to prevent the clogging
of the pores in the membrane. An O-ring above the pre-filter sealed
the unit when the lid was screwed on firmly. Another pre-filter
(Millipore, catalogue No. AP25 04200) prevented silt from clogging
the finer pre-filter below. Soil (50 cm3) was packed into the incubators
at field bulk density. In the treatments with plant residues, leaf
material was cut into small pieces and spread uniformly on top
(equivalent to 4 Mg dry material ha1 on a surface-area basis).
Another pre-filter (Millipore, AP25 042 00) was then placed on
top of the soil/plant residues, to prevent the entry of leaching solution
from the top displacing soil from the surface. A size 38 rubber
bung sealed the top of the incubator. The rubber bung was fitted
with tap (Baxter-Pharmaseal three-way stopcock, Cat No. K75)
through which leaching solution and compressed air was admitted.
Compressed air was distributed from a pressure regulator (set at
25 kPa) to the valve on each chamber via a network of hoses. This
valve was closed when pressurized for leaching and opened when
not leaching. To seal the incubator, the bung was firmly pressed in
and taped down to withstand the pressure of a leaching cycle and
stay in place during the incubation period. The entire experimental
set-up was mounted on a stand with leachate collecting in a bottle
below each incubator. Leachate solution, comprising 240-mL of
0.01 M CaCl2/0.01 M KCl, was slowly passed through the soil in
the incubator by adding it to the top of the soil in the incubator (in several aliquots) and applying 25 kPa positive air pressure to
the chamber. Leachate was suctioned into receiving container by
applying a vacuum of 4–5 kPa for 1 to 2 s at 45 min intervals
during the 8 h cycle to ensure uniform leaching of the soil column.
After a complete leaching cycle, the volume of leachate was
measured and a sub-sample was taken for the determination of
NH4 + -N and NO3
-N. Leachate sub-samples were analyzed immediately
or frozen until the analysis was completed. More details on
laboratory scale micro-lysimeter leaching experiments are
provided in Mendham et al., 2009. Mineral nitrogen in leachate
was determined as described above.
2.3.4. Potentially available nitrogen (anaerobic-N)
Portions of moist soil (ca. 10–20 g dry soil) were weighed into
125 ml plastic vial and 30 ml of distilled water added, and incubated
in a hot water bath at 40 C for 7 days. After the incubation
time, 30 ml of 2 M KCl was added to the soil samples, and they
were shaken end-over-end for 1 h. All the KCl extracts were
extracted and analyzed using a Technicon II auto analyzer.
2.3.5. Soil microbial biomass C
Soil microbial biomass C was estimated at 2 years after plantation
establishment through the chloroform fumigation-extraction
method (Brookes et al., 1985; Jenkinson and Powlson 1976). Four
replicate soil samples (field fresh, as collected for the N mineralization
above) were fumigated with ethanol-free chloroform for
15 min. In brief, 2 sub-samples of moist soil (10–15 g, approximating
around 10 g on dry weight basis) were weighed into a
glass vial, one set was fumigated with ethanol-free chloroform in
a desiccator by warming the chloroform and applying a vacuum
to vaporize it. The wall of the desiccator was lined with wet tissue
paper to maintain a humid soil atmosphere during repeat vacuum
application. The vacuum was applied for 5 min, after which the
desiccators with soil samples were kept in dark conditions at
25 C for 24 h. A second, non-fumigated set was treated the same
way, but without the fumigation step. After 24 h, the samples were
extracted with 0.5 M K2SO4 for 30 min. by shaking on an endto-
end shaker. Microbial C and N was estimated as the difference
in C and N concentrations between the fumigated and unfumigated
samples, multiplied by a Kec of 0.4 and Ken of 0.45 (Sparling 1992).
2.3.6. Total C, N and P
Organic carbon was determined by the wet digestion method
(Walkley and Black, 1934). Total N and P in soil was assessed by
Micro-kjeldahl digestion of soil and chemical analysis of the
extracts on an auto analyser (Rayment and Higginson, 1992). All
the values were expressed on an oven-dry-weight basis.
2.4. Statistical analysis
The influence of slash management on soil C, N, P, N mineralization
and microbial biomass was tested by one-way analysis of
variance (ANOVA) at each sampling time, and when treatment
effects were significant, the least significant difference test was
used to assess which treatment means were different from each
other (a = 0.05). To increase the power of the analysis further, site
was included as a replicate factor, with replicates within-sites as a
nested replicate effect. The Genstat statistical package (Lawes
Agricultural Trust, Rothamsted, United Kingdom) was used to
conduct all statistical analysis.
0/5000
2.3.2. Laboratory measurements of Mineral-NNH4 + -N and NO3 - -N forms. Mineral N in the initial and final soil sampleswas extracted with 1 MKCl (1:5 ratio) by shaking for 1 h on anend-to-end shaker. The soil KCl extracts were allowed stand for30 min and filtered through pre-washed filter paper (Whatman#42). During the extraction utmost care was taken to completethe extraction within a short time period to avoid contaminationfrom the atmospheric NH4 + -N. NH4 + -N was determined bysalicylate-hypochlorite and NO3-N content by reducing with copper-cadmium column by using a segmented flow auto analyser(Technicon-II, Technicon Corporation, Oakland, CA, USA). MineralN concentrations in the soil were corrected for initial moisturecontent of soil samples and expressed on an oven-dry weight basis.Net N mineralized during the incubation period was taken as thedifference in mineral N between the initial and final samples, andexpressed on an oven-dry soil weight basis (Mendham et al., 2004).2.3.3. Leaching (aerobic) experimentThis experiment aimed to explore the long-term mineralizationpotential of soils and the effect of incorporation of Eucalyptus plantresidues in a laboratory lysimeter leaching experiment maintainedfor 400 days. The incubators were constructed by removing thebottom from a 120-mL screw-top plastic sample container(approximately 45 mm diameter). About 30–45 holes (1/160diameter) were drilled in the lid of the container, which wasinverted, so that the lid acted as the base of the incubator. Thelid was fitted with pre-filter (Millipore pre-filter, catalogue No.AP15 046 00) as the support pad for a polycarbonate membrane,then another pre-filter was placed on top to prevent the cloggingof the pores in the membrane. An O-ring above the pre-filter sealedthe unit when the lid was screwed on firmly. Another pre-filter(Millipore, catalogue No. AP25 04200) prevented silt from cloggingthe finer pre-filter below. Soil (50 cm3) was packed into the incubatorsat field bulk density. In the treatments with plant residues, leafmaterial was cut into small pieces and spread uniformly on top(equivalent to 4 Mg dry material ha1 on a surface-area basis).Another pre-filter (Millipore, AP25 042 00) was then placed ontop of the soil/plant residues, to prevent the entry of leaching solutionfrom the top displacing soil from the surface. A size 38 rubberbung sealed the top of the incubator. The rubber bung was fittedwith tap (Baxter-Pharmaseal three-way stopcock, Cat No. K75)through which leaching solution and compressed air was admitted.Compressed air was distributed from a pressure regulator (set at25 kPa) to the valve on each chamber via a network of hoses. Thisvalve was closed when pressurized for leaching and opened whennot leaching. To seal the incubator, the bung was firmly pressed inand taped down to withstand the pressure of a leaching cycle andstay in place during the incubation period. The entire experimentalset-up was mounted on a stand with leachate collecting in a bottlebelow each incubator. Leachate solution, comprising 240-mL of0.01 M CaCl2/0.01 M KCl, was slowly passed through the soil inthe incubator by adding it to the top of the soil in the incubator (in several aliquots) and applying 25 kPa positive air pressure tothe chamber. Leachate was suctioned into receiving container byapplying a vacuum of 4–5 kPa for 1 to 2 s at 45 min intervalsduring the 8 h cycle to ensure uniform leaching of the soil column.After a complete leaching cycle, the volume of leachate wasmeasured and a sub-sample was taken for the determination ofNH4 + -N and NO3-N. Leachate sub-samples were analyzed immediatelyor frozen until the analysis was completed. More details onlaboratory scale micro-lysimeter leaching experiments areprovided in Mendham et al., 2009. Mineral nitrogen in leachatewas determined as described above.2.3.4. Potentially available nitrogen (anaerobic-N)Portions of moist soil (ca. 10–20 g dry soil) were weighed into125 ml plastic vial and 30 ml of distilled water added, and incubatedin a hot water bath at 40 C for 7 days. After the incubationtime, 30 ml of 2 M KCl was added to the soil samples, and theywere shaken end-over-end for 1 h. All the KCl extracts wereextracted and analyzed using a Technicon II auto analyzer.2.3.5. Soil microbial biomass CSoil microbial biomass C was estimated at 2 years after plantationestablishment through the chloroform fumigation-extractionmethod (Brookes et al., 1985; Jenkinson and Powlson 1976). Fourreplicate soil samples (field fresh, as collected for the N mineralizationabove) were fumigated with ethanol-free chloroform for15 min. In brief, 2 sub-samples of moist soil (10–15 g, approximatingaround 10 g on dry weight basis) were weighed into aglass vial, one set was fumigated with ethanol-free chloroform ina desiccator by warming the chloroform and applying a vacuumto vaporize it. The wall of the desiccator was lined with wet tissuepaper to maintain a humid soil atmosphere during repeat vacuumapplication. The vacuum was applied for 5 min, after which thedesiccators with soil samples were kept in dark conditions at25 C for 24 h. A second, non-fumigated set was treated the sameway, but without the fumigation step. After 24 h, the samples wereextracted with 0.5 M K2SO4 for 30 min. by shaking on an endto-end shaker. Microbial C and N was estimated as the differencein C and N concentrations between the fumigated and unfumigatedsamples, multiplied by a Kec of 0.4 and Ken of 0.45 (Sparling 1992).2.3.6. Total C, N and POrganic carbon was determined by the wet digestion method(Walkley and Black, 1934). Total N and P in soil was assessed byMicro-kjeldahl digestion of soil and chemical analysis of theextracts on an auto analyser (Rayment and Higginson, 1992). Allthe values were expressed on an oven-dry-weight basis.2.4. Statistical analysisThe influence of slash management on soil C, N, P, N mineralizationand microbial biomass was tested by one-way analysis ofvariance (ANOVA) at each sampling time, and when treatmenteffects were significant, the least significant difference test wasused to assess which treatment means were different from eachother (a = 0.05). To increase the power of the analysis further, sitewas included as a replicate factor, with replicates within-sites as anested replicate effect. The Genstat statistical package (LawesAgricultural Trust, Rothamsted, United Kingdom) was used toconduct all statistical analysis.
การแปล กรุณารอสักครู่..
2.3.2 วัดในห้องปฏิบัติการของแร่-N
NH4 + -N และ NO3 - รูปแบบ -N แร่ไม่มีในตัวอย่างดินครั้งแรกและครั้งสุดท้ายที่
ถูกสกัดด้วย 1 MKCl (1: 5 อัตราส่วน) โดยการเขย่าเป็นเวลา 1 ชั่วโมงในการ
ปั่นแบบ end-to-end สารสกัดจากดิน KCl ได้รับอนุญาตให้ยืนสำหรับ
30 นาทีและกรองผ่านกระดาษกรองก่อนล้าง (Whatman
# 42) ในระหว่างการสกัดความระมัดระวังสูงสุดถูกนำตัวไปดำเนินการ
สกัดภายในระยะเวลาสั้น ๆ เพื่อหลีกเลี่ยงการปนเปื้อน
จากบรรยากาศ NH4 + -N NH4 + -N ถูกกำหนดโดย
ซาลิไซ-ไฮโปคลอไรต์และ NO3
? เนื้อหา -N โดยการลดกับทองแดง
คอลัมน์แคดเมียมโดยการใช้การไหลแบ่งการวิเคราะห์อัตโนมัติ
(Technicon-II, Technicon คอร์ปอเรชั่น Oakland, CA, USA) แร่
เข้มข้นของไนโตรเจนในดินได้รับการแก้ไขสำหรับความชื้นเริ่มต้น
เนื้อหาของตัวอย่างดินและแสดงบนพื้นฐานน้ำหนักอบแห้ง.
สุทธิไม่มี mineralized ในช่วงระยะฟักตัวถูกนำมาเป็น
ความแตกต่างในแร่ธาตุที่ไม่มีข้อความระหว่างกลุ่มตัวอย่างครั้งแรกและครั้งสุดท้ายและ
แสดงใน ดินเตาอบแห้งโดยน้ำหนัก (เม็นดัม et al., 2004).
2.3.3 การรั่วไหล (แอโรบิก) ทดลอง
การทดลองนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อสำรวจแร่ในระยะยาว
ที่มีศักยภาพของดินและผลกระทบจากการรวมตัวกันของยูคาลิปพืช
ตกค้างในห้องปฏิบัติการทดลอง Lysimeter ชะล้างเก็บรักษาไว้
400 วัน ตู้อบถูกสร้างขึ้นโดยการลบ
ด้านล่างจาก 120 มิลลิลิตรพลาสติกสกรูบนภาชนะตัวอย่าง
(ประมาณ 45 มิลลิเมตรเส้นผ่าศูนย์กลาง) ประมาณ 30-45 หลุม (1/160
เส้นผ่าศูนย์กลาง) ถูกเจาะฝาของภาชนะซึ่งถูก
คว่ำเพื่อให้ฝาปิดทำหน้าที่เป็นฐานของการบ่มเพาะ
ฝาก็พอดีกับกรองก่อน (คกรองก่อน, แคตตาล็อกฉบับที่
046 AP15 00) เป็นแผ่นการสนับสนุนสำหรับเมมเบรนโพลีคาร์บอเนต,
แล้วอีกกรองก่อนถูกวางไว้ด้านบนเพื่อป้องกันการอุดตัน
ของรูขุมขนในเมมเบรน โอริงข้างต้นกรองก่อนปิดผนึก
หน่วยเมื่อฝาถูกเมาแน่น อีกกรองก่อน
(คแคตตาล็อกฉบับที่ AP25 04200) ป้องกันไม่ให้เกิดตะกอนจากการอุดตัน
ปลีกย่อยกรองก่อนด้านล่าง ดิน (50 cm3) ได้รับการบรรจุลงในตู้อบ
ที่ความหนาแน่นฟิลด์ ในการรักษาด้วยสารตกค้างพืชใบ
วัสดุที่ถูกตัดเป็นชิ้นเล็ก ๆ และกระจายสม่ำเสมอด้านบน
(เทียบเท่า 4 Mg วัสดุแห้งฮ่า 1 บนพื้นฐานผิวพื้นที่).
อีกกรองก่อน (ค AP25 042 00) ตอนนั้น วางอยู่บน
ด้านบนของสารตกค้างในดิน / พืชเพื่อป้องกันการเข้ามาของการแก้ปัญหาการชะล้าง
จากด้านบนแทนที่ดินจากพื้นผิว ยางขนาด 38
จุกปิดผนึกด้านบนของศูนย์บ่มเพาะ ยางจุกก็พอดี
กับประปา (แบ็กซ์เตอร์-Pharmaseal ก๊อกปิดเปิดน้ำสามทางแมวที่ K75)
ที่ผ่านการแก้ปัญหาการชะล้างและการบีบอัดอากาศเข้ารับการรักษา.
อัดอากาศถูกกระจายออกมาจากตัวควบคุมแรงดัน (ชุดที่
25 ปาสคาล) เพื่อวาล์วในแต่ละ ห้องผ่านเครือข่ายของท่อ นี้
วาล์วถูกปิดเมื่อแรงดันสำหรับการชะล้างและเปิดเมื่อ
ไม่ชะล้าง ในการปิดผนึกตู้อบ, จุกถูกกดมั่นในการ
บันทึกเทปและลงไปที่ทนต่อแรงดันของวงจรการชะล้างและ
อยู่ในสถานที่ในช่วงระยะฟักตัว ทดลองทั้ง
การตั้งค่าที่ถูกติดตั้งอยู่บนขาตั้งที่มีการจัดเก็บภาษีน้ำชะขยะในขวด
ด้านล่างแต่ละศูนย์บ่มเพาะ การแก้ปัญหาน้ำชะขยะประกอบด้วย 240 มิลลิลิตร
0.01 M CaCl2 / 0.01 M KCl ก็ผ่านไปอย่างช้า ๆ ผ่านดินใน
ศูนย์บ่มเพาะโดยการเพิ่มมันไปด้านบนของดินในการเพาะบ่ม (ในหลายส่วนลงตัว) และการประยุกต์ใช้ 25 kPa ความดันอากาศบวกกับ
ห้อง น้ำชะขยะถูกดูดลงไปในภาชนะที่ได้รับจาก
การใช้เครื่องดูดฝุ่น 4-5 กิโลปาสคาลสำหรับ 1 ถึง 2 วินาทีที่ 45 ช่วงเวลานาที
ในระหว่างรอบ 8 ชั่วโมงเพื่อให้แน่ใจว่าการชะล้างเครื่องแบบของคอลัมน์ดิน.
หลังจากรอบชะล้างสมบูรณ์ปริมาณของน้ำชะขยะที่ถูก
วัด และย่อยกลุ่มตัวอย่างถูกนำสำหรับการกำหนด
NH4 + -N และ NO3
? -N น้ำชะขยะตัวอย่างย่อยที่ได้มาวิเคราะห์ได้ทันที
หรือแช่แข็งจนการวิเคราะห์เสร็จสมบูรณ์ รายละเอียดเพิ่มเติมเกี่ยวกับ
การทดลองในห้องทดลองชะล้างไมโคร Lysimeter มีการ
ระบุไว้ในเม็นดัม et al., 2009 ไนโตรเจนแร่ในน้ำชะขยะ
ที่ถูกกำหนดตามที่อธิบายไว้ข้างต้น.
2.3.4 ที่อาจเกิดไนโตรเจนที่มีอยู่ (แบบไม่ใช้ออกซิเจน-N)
บางส่วนของดินที่ชื้น (แคลิฟอร์เนีย 10-20 กรัมดินแห้ง) ได้รับการชั่งน้ำหนักเป็น
125 มล. ขวดพลาสติกและ 30 ml ของน้ำกลั่นเพิ่มและบ่ม
ในอ่างน้ำร้อนที่อุณหภูมิ 40 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 7 วัน หลังจากการบ่ม
เวลา 30 มิลลิลิตร 2 M KCl ถูกบันทึกอยู่ในตัวอย่างดินและพวกเขา
ถูกเขย่าปลาย-over-ปลายเป็นเวลา 1 ชั่วโมง สารสกัดจากทั้งหมด KCl ถูก
สกัดและวิเคราะห์โดยใช้ Technicon II วิเคราะห์อัตโนมัติ.
2.3.5 ดินจุลินทรีย์ C
ดินชีวมวล C จุลินทรีย์ที่ประมาณ 2 ปีหลังจากที่สวน
สถานประกอบการที่ผ่านการรมควันคลอโรฟอร์มสกัด
วิธี (บรูกและคณะ, 1985;. เจนกินสันและ Powlson 1976) สี่
ตัวอย่างดินซ้ำ (ข้อมูลสดใหม่เป็นที่เก็บไว้สำหรับธาตุไนโตรเจน
ด้านบน) ถูกรมยาที่มีเอทานอลคลอโรฟอร์มฟรีสำหรับ
15 นาที ในช่วงสั้น ๆ 2 ย่อยตัวอย่างของดินที่ชื้น (10-15 กรัมใกล้เคียง
ประมาณ 10 กรัมโดยน้ำหนักแห้ง) ได้รับการชั่งน้ำหนักเป็น
ขวดแก้วหนึ่งชุดได้รับการรมยาที่มีเอทานอลคลอโรฟอร์มฟรีใน
เดซิโดยร้อนคลอโรฟอร์มและการประยุกต์ใช้ สูญญากาศ
มันกลายเป็นไอ ผนังของเดซิถูกเรียงรายไปด้วยเนื้อเยื่อเปียก
กระดาษที่จะรักษาบรรยากาศของดินชื้นในช่วงสูญญากาศทำซ้ำ
การประยุกต์ใช้ สูญญากาศถูกนำมาใช้เป็นเวลา 5 นาทีหลังจากที่
ดูดความชื้นที่มีตัวอย่างดินที่ถูกเก็บไว้ในที่มืดที่
25 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 24 ชั่วโมง สองชุดที่ไม่รมยาได้รับการรักษาเดียวกัน
วิธี แต่ไม่มีขั้นตอนการรมควัน หลังจาก 24 ชั่วโมงตัวอย่างถูก
สกัดด้วย 0.5 M K2SO4 เวลา 30 นาที โดยการเขย่าใน endto-
ปั่นปลาย จุลินทรีย์ C และ n เป็นที่คาดกันเป็นความแตกต่าง
ใน C และความเข้มข้นยังไม่มีข้อความระหว่างรมยาและ unfumigated
ตัวอย่างคูณด้วย Kec 0.4 และเคน 0.45 (Sparling 1992).
2.3.6 รวม C ไนโตรเจนและฟอสฟอรัส
อินทรีย์คาร์บอนถูกกำหนดโดยวิธีการย่อยอาหารเปียก
(Walkley และดำ, 1934) รวมไนโตรเจนและฟอสฟอรัสในดินได้รับการประเมินโดย
การย่อย Micro-Kjeldahl ของดินและการวิเคราะห์ทางเคมีของ
สารสกัดในการวิเคราะห์อัตโนมัติ (Rayment และ Higginson, 1992) ทั้งหมด
ค่ามีการแสดงออกบนพื้นฐานเตาอบแห้งน้ำหนัก.
2.4 การวิเคราะห์ทางสถิติ
อิทธิพลของการจัดการเฉือนบนพื้นดิน C, N, P, ธาตุไนโตรเจน
และชีวมวลจุลินทรีย์ได้รับการทดสอบโดยการวิเคราะห์ทางเดียวของ
ความแปรปรวน (ANOVA) ในแต่ละช่วงเวลาการสุ่มตัวอย่างและเมื่อการรักษา
ผลกระทบอย่างมีนัยสำคัญ, การทดสอบความแตกต่างอย่างมีนัยสำคัญน้อยเป็น
ใช้ในการประเมินซึ่งวิธีการรักษาที่แตกต่างกันจากแต่ละ
อื่น ๆ (= 0.05) เพื่อเพิ่มพลังของการวิเคราะห์เพิ่มเติม, เว็บไซต์
ถูกรวมเป็นปัจจัยซ้ำด้วยซ้ำภายในเว็บไซต์เป็น
ผลกระทบซ้ำซ้อนกัน แพคเกจทางสถิติ Genstat (Lawes
การเกษตรไว้ใจ Rothamsted, สหราชอาณาจักร) ถูกใช้ในการ
ดำเนินการวิเคราะห์ทางสถิติทั้งหมด
NH4 + -N และ NO3 - รูปแบบ -N แร่ไม่มีในตัวอย่างดินครั้งแรกและครั้งสุดท้ายที่
ถูกสกัดด้วย 1 MKCl (1: 5 อัตราส่วน) โดยการเขย่าเป็นเวลา 1 ชั่วโมงในการ
ปั่นแบบ end-to-end สารสกัดจากดิน KCl ได้รับอนุญาตให้ยืนสำหรับ
30 นาทีและกรองผ่านกระดาษกรองก่อนล้าง (Whatman
# 42) ในระหว่างการสกัดความระมัดระวังสูงสุดถูกนำตัวไปดำเนินการ
สกัดภายในระยะเวลาสั้น ๆ เพื่อหลีกเลี่ยงการปนเปื้อน
จากบรรยากาศ NH4 + -N NH4 + -N ถูกกำหนดโดย
ซาลิไซ-ไฮโปคลอไรต์และ NO3
? เนื้อหา -N โดยการลดกับทองแดง
คอลัมน์แคดเมียมโดยการใช้การไหลแบ่งการวิเคราะห์อัตโนมัติ
(Technicon-II, Technicon คอร์ปอเรชั่น Oakland, CA, USA) แร่
เข้มข้นของไนโตรเจนในดินได้รับการแก้ไขสำหรับความชื้นเริ่มต้น
เนื้อหาของตัวอย่างดินและแสดงบนพื้นฐานน้ำหนักอบแห้ง.
สุทธิไม่มี mineralized ในช่วงระยะฟักตัวถูกนำมาเป็น
ความแตกต่างในแร่ธาตุที่ไม่มีข้อความระหว่างกลุ่มตัวอย่างครั้งแรกและครั้งสุดท้ายและ
แสดงใน ดินเตาอบแห้งโดยน้ำหนัก (เม็นดัม et al., 2004).
2.3.3 การรั่วไหล (แอโรบิก) ทดลอง
การทดลองนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อสำรวจแร่ในระยะยาว
ที่มีศักยภาพของดินและผลกระทบจากการรวมตัวกันของยูคาลิปพืช
ตกค้างในห้องปฏิบัติการทดลอง Lysimeter ชะล้างเก็บรักษาไว้
400 วัน ตู้อบถูกสร้างขึ้นโดยการลบ
ด้านล่างจาก 120 มิลลิลิตรพลาสติกสกรูบนภาชนะตัวอย่าง
(ประมาณ 45 มิลลิเมตรเส้นผ่าศูนย์กลาง) ประมาณ 30-45 หลุม (1/160
เส้นผ่าศูนย์กลาง) ถูกเจาะฝาของภาชนะซึ่งถูก
คว่ำเพื่อให้ฝาปิดทำหน้าที่เป็นฐานของการบ่มเพาะ
ฝาก็พอดีกับกรองก่อน (คกรองก่อน, แคตตาล็อกฉบับที่
046 AP15 00) เป็นแผ่นการสนับสนุนสำหรับเมมเบรนโพลีคาร์บอเนต,
แล้วอีกกรองก่อนถูกวางไว้ด้านบนเพื่อป้องกันการอุดตัน
ของรูขุมขนในเมมเบรน โอริงข้างต้นกรองก่อนปิดผนึก
หน่วยเมื่อฝาถูกเมาแน่น อีกกรองก่อน
(คแคตตาล็อกฉบับที่ AP25 04200) ป้องกันไม่ให้เกิดตะกอนจากการอุดตัน
ปลีกย่อยกรองก่อนด้านล่าง ดิน (50 cm3) ได้รับการบรรจุลงในตู้อบ
ที่ความหนาแน่นฟิลด์ ในการรักษาด้วยสารตกค้างพืชใบ
วัสดุที่ถูกตัดเป็นชิ้นเล็ก ๆ และกระจายสม่ำเสมอด้านบน
(เทียบเท่า 4 Mg วัสดุแห้งฮ่า 1 บนพื้นฐานผิวพื้นที่).
อีกกรองก่อน (ค AP25 042 00) ตอนนั้น วางอยู่บน
ด้านบนของสารตกค้างในดิน / พืชเพื่อป้องกันการเข้ามาของการแก้ปัญหาการชะล้าง
จากด้านบนแทนที่ดินจากพื้นผิว ยางขนาด 38
จุกปิดผนึกด้านบนของศูนย์บ่มเพาะ ยางจุกก็พอดี
กับประปา (แบ็กซ์เตอร์-Pharmaseal ก๊อกปิดเปิดน้ำสามทางแมวที่ K75)
ที่ผ่านการแก้ปัญหาการชะล้างและการบีบอัดอากาศเข้ารับการรักษา.
อัดอากาศถูกกระจายออกมาจากตัวควบคุมแรงดัน (ชุดที่
25 ปาสคาล) เพื่อวาล์วในแต่ละ ห้องผ่านเครือข่ายของท่อ นี้
วาล์วถูกปิดเมื่อแรงดันสำหรับการชะล้างและเปิดเมื่อ
ไม่ชะล้าง ในการปิดผนึกตู้อบ, จุกถูกกดมั่นในการ
บันทึกเทปและลงไปที่ทนต่อแรงดันของวงจรการชะล้างและ
อยู่ในสถานที่ในช่วงระยะฟักตัว ทดลองทั้ง
การตั้งค่าที่ถูกติดตั้งอยู่บนขาตั้งที่มีการจัดเก็บภาษีน้ำชะขยะในขวด
ด้านล่างแต่ละศูนย์บ่มเพาะ การแก้ปัญหาน้ำชะขยะประกอบด้วย 240 มิลลิลิตร
0.01 M CaCl2 / 0.01 M KCl ก็ผ่านไปอย่างช้า ๆ ผ่านดินใน
ศูนย์บ่มเพาะโดยการเพิ่มมันไปด้านบนของดินในการเพาะบ่ม (ในหลายส่วนลงตัว) และการประยุกต์ใช้ 25 kPa ความดันอากาศบวกกับ
ห้อง น้ำชะขยะถูกดูดลงไปในภาชนะที่ได้รับจาก
การใช้เครื่องดูดฝุ่น 4-5 กิโลปาสคาลสำหรับ 1 ถึง 2 วินาทีที่ 45 ช่วงเวลานาที
ในระหว่างรอบ 8 ชั่วโมงเพื่อให้แน่ใจว่าการชะล้างเครื่องแบบของคอลัมน์ดิน.
หลังจากรอบชะล้างสมบูรณ์ปริมาณของน้ำชะขยะที่ถูก
วัด และย่อยกลุ่มตัวอย่างถูกนำสำหรับการกำหนด
NH4 + -N และ NO3
? -N น้ำชะขยะตัวอย่างย่อยที่ได้มาวิเคราะห์ได้ทันที
หรือแช่แข็งจนการวิเคราะห์เสร็จสมบูรณ์ รายละเอียดเพิ่มเติมเกี่ยวกับ
การทดลองในห้องทดลองชะล้างไมโคร Lysimeter มีการ
ระบุไว้ในเม็นดัม et al., 2009 ไนโตรเจนแร่ในน้ำชะขยะ
ที่ถูกกำหนดตามที่อธิบายไว้ข้างต้น.
2.3.4 ที่อาจเกิดไนโตรเจนที่มีอยู่ (แบบไม่ใช้ออกซิเจน-N)
บางส่วนของดินที่ชื้น (แคลิฟอร์เนีย 10-20 กรัมดินแห้ง) ได้รับการชั่งน้ำหนักเป็น
125 มล. ขวดพลาสติกและ 30 ml ของน้ำกลั่นเพิ่มและบ่ม
ในอ่างน้ำร้อนที่อุณหภูมิ 40 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 7 วัน หลังจากการบ่ม
เวลา 30 มิลลิลิตร 2 M KCl ถูกบันทึกอยู่ในตัวอย่างดินและพวกเขา
ถูกเขย่าปลาย-over-ปลายเป็นเวลา 1 ชั่วโมง สารสกัดจากทั้งหมด KCl ถูก
สกัดและวิเคราะห์โดยใช้ Technicon II วิเคราะห์อัตโนมัติ.
2.3.5 ดินจุลินทรีย์ C
ดินชีวมวล C จุลินทรีย์ที่ประมาณ 2 ปีหลังจากที่สวน
สถานประกอบการที่ผ่านการรมควันคลอโรฟอร์มสกัด
วิธี (บรูกและคณะ, 1985;. เจนกินสันและ Powlson 1976) สี่
ตัวอย่างดินซ้ำ (ข้อมูลสดใหม่เป็นที่เก็บไว้สำหรับธาตุไนโตรเจน
ด้านบน) ถูกรมยาที่มีเอทานอลคลอโรฟอร์มฟรีสำหรับ
15 นาที ในช่วงสั้น ๆ 2 ย่อยตัวอย่างของดินที่ชื้น (10-15 กรัมใกล้เคียง
ประมาณ 10 กรัมโดยน้ำหนักแห้ง) ได้รับการชั่งน้ำหนักเป็น
ขวดแก้วหนึ่งชุดได้รับการรมยาที่มีเอทานอลคลอโรฟอร์มฟรีใน
เดซิโดยร้อนคลอโรฟอร์มและการประยุกต์ใช้ สูญญากาศ
มันกลายเป็นไอ ผนังของเดซิถูกเรียงรายไปด้วยเนื้อเยื่อเปียก
กระดาษที่จะรักษาบรรยากาศของดินชื้นในช่วงสูญญากาศทำซ้ำ
การประยุกต์ใช้ สูญญากาศถูกนำมาใช้เป็นเวลา 5 นาทีหลังจากที่
ดูดความชื้นที่มีตัวอย่างดินที่ถูกเก็บไว้ในที่มืดที่
25 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 24 ชั่วโมง สองชุดที่ไม่รมยาได้รับการรักษาเดียวกัน
วิธี แต่ไม่มีขั้นตอนการรมควัน หลังจาก 24 ชั่วโมงตัวอย่างถูก
สกัดด้วย 0.5 M K2SO4 เวลา 30 นาที โดยการเขย่าใน endto-
ปั่นปลาย จุลินทรีย์ C และ n เป็นที่คาดกันเป็นความแตกต่าง
ใน C และความเข้มข้นยังไม่มีข้อความระหว่างรมยาและ unfumigated
ตัวอย่างคูณด้วย Kec 0.4 และเคน 0.45 (Sparling 1992).
2.3.6 รวม C ไนโตรเจนและฟอสฟอรัส
อินทรีย์คาร์บอนถูกกำหนดโดยวิธีการย่อยอาหารเปียก
(Walkley และดำ, 1934) รวมไนโตรเจนและฟอสฟอรัสในดินได้รับการประเมินโดย
การย่อย Micro-Kjeldahl ของดินและการวิเคราะห์ทางเคมีของ
สารสกัดในการวิเคราะห์อัตโนมัติ (Rayment และ Higginson, 1992) ทั้งหมด
ค่ามีการแสดงออกบนพื้นฐานเตาอบแห้งน้ำหนัก.
2.4 การวิเคราะห์ทางสถิติ
อิทธิพลของการจัดการเฉือนบนพื้นดิน C, N, P, ธาตุไนโตรเจน
และชีวมวลจุลินทรีย์ได้รับการทดสอบโดยการวิเคราะห์ทางเดียวของ
ความแปรปรวน (ANOVA) ในแต่ละช่วงเวลาการสุ่มตัวอย่างและเมื่อการรักษา
ผลกระทบอย่างมีนัยสำคัญ, การทดสอบความแตกต่างอย่างมีนัยสำคัญน้อยเป็น
ใช้ในการประเมินซึ่งวิธีการรักษาที่แตกต่างกันจากแต่ละ
อื่น ๆ (= 0.05) เพื่อเพิ่มพลังของการวิเคราะห์เพิ่มเติม, เว็บไซต์
ถูกรวมเป็นปัจจัยซ้ำด้วยซ้ำภายในเว็บไซต์เป็น
ผลกระทบซ้ำซ้อนกัน แพคเกจทางสถิติ Genstat (Lawes
การเกษตรไว้ใจ Rothamsted, สหราชอาณาจักร) ถูกใช้ในการ
ดำเนินการวิเคราะห์ทางสถิติทั้งหมด
การแปล กรุณารอสักครู่..
2.3.2. Laboratory measurements of Mineral-N
NH4 -N and NO3 - -N forms. Mineral N in the initial and final soil samples
was extracted with 1 MKCl (1:5 ratio) by shaking for 1 h on an
end-to-end shaker. The soil KCl extracts were allowed stand for
30 min and filtered through pre-washed filter paper (Whatman
#42). During the extraction utmost care was taken to complete
the extraction within a short time period to avoid contamination
from the atmospheric NH4 -N. NH4 -N was determined by
salicylate-hypochlorite and NO3
-N content by reducing with copper-
cadmium column by using a segmented flow auto analyser
(Technicon-II, Technicon Corporation, Oakland, CA, USA). Mineral
N concentrations in the soil were corrected for initial moisture
content of soil samples and expressed on an oven-dry weight basis.
Net N mineralized during the incubation period was taken as the
difference in mineral N between the initial and final samples, and
expressed on an oven-dry soil weight basis (Mendham et al., 2004).
2.3.3. Leaching (aerobic) experiment
This experiment aimed to explore the long-term mineralization
ศักยภาพของดินและผลกระทบของการปลูกยูคาลิปตัส
ตกค้างในปฏิบัติการไลซิมิเตอร์ละลายการทดลองรักษา
400 วัน ที่ผลิตขึ้นโดยเอา
ด้านล่างจาก 120 ฝาเกลียวพลาสติกตัวอย่างภาชนะ
มิลลิลิตร ( ประมาณ 45 มม. เส้นผ่าศูนย์กลาง ) ประมาณ 30 – 45 หลุม ( 1 / 160
เส้นผ่าศูนย์กลาง ) ถูกเจาะในฝาของภาชนะบรรจุที่
ฤๅษี , so that the lid acted as the base of the incubator. The
lid was fitted with pre-filter (Millipore pre-filter, catalogue No.
AP15 046 00) as the support pad for a polycarbonate membrane,
then another pre-filter was placed on top to prevent the clogging
of the pores in the membrane. An O-ring above the pre-filter sealed
the unit when the lid was screwed on firmly. Another pre-filter
(Millipore,แคตตาล็อกไม่ ap25 04200 ) ป้องกันตะกอนจากการอุดตัน
ตขึ้นก่อนกรองด้านล่าง ดิน ( 50 cm3 ) ถูกบรรจุเข้าไปในตู้
ที่ความหนาแน่นสนาม ในการรักษาด้วยเศษซากพืช วัสดุใบไม้
ถูกหั่นเป็นชิ้นเล็ก ๆ กระจายอย่างสม่ำเสมอบน
( เท่ากับ 4 มิลลิกรัม ฮา วัสดุ บริการ 1 บนพื้นที่ผิวพื้นฐาน ) .
อีกก่อนกรอง ( มิลลิ , ap25 042 00 ) ถูกวางไว้แล้วใน
ด้านบนของดิน / พืชตกค้าง เพื่อป้องกันการเข้าของน้ำชะละลาย
จากด้านบนแทนที่ดินจากพื้นผิว ขนาด 38 ยาง
บึงปิดด้านบนของตู้ฟักไข่ บึงยางติดตั้ง
กับแตะ ( แบ็กซ์เตอร์ pharmaseal สาม stopcock แมวไม่ k75 )
ที่ชะละลายและอัดอากาศรักษา .
อากาศอัดกระจายจากควบคุมความดัน ( ตั้งไว้ที่
25 kPa ) วาล์วในแต่ละห้องผ่านทางเครือข่ายของท่อ วาล์วนี้
ถูกปิดเมื่อแรงดันสำหรับการชะละลายและเปิดออกเมื่อ
ไม่ละลาย . การปิดผนึกตู้ฟักไข่ , บึงก็โดนกดใน
และบันทึกเทปลงเพื่อทนต่อแรงดันของน้ำและวงจร
อยู่ในสถานที่ในระหว่างรอบระยะเวลาการบ่ม การตั้งค่าการทดลอง
ทั้งหมดถูกติดตั้งบนขาตั้ง มีน้ำสะสมในขวด
NH4 -N and NO3 - -N forms. Mineral N in the initial and final soil samples
was extracted with 1 MKCl (1:5 ratio) by shaking for 1 h on an
end-to-end shaker. The soil KCl extracts were allowed stand for
30 min and filtered through pre-washed filter paper (Whatman
#42). During the extraction utmost care was taken to complete
the extraction within a short time period to avoid contamination
from the atmospheric NH4 -N. NH4 -N was determined by
salicylate-hypochlorite and NO3
-N content by reducing with copper-
cadmium column by using a segmented flow auto analyser
(Technicon-II, Technicon Corporation, Oakland, CA, USA). Mineral
N concentrations in the soil were corrected for initial moisture
content of soil samples and expressed on an oven-dry weight basis.
Net N mineralized during the incubation period was taken as the
difference in mineral N between the initial and final samples, and
expressed on an oven-dry soil weight basis (Mendham et al., 2004).
2.3.3. Leaching (aerobic) experiment
This experiment aimed to explore the long-term mineralization
ศักยภาพของดินและผลกระทบของการปลูกยูคาลิปตัส
ตกค้างในปฏิบัติการไลซิมิเตอร์ละลายการทดลองรักษา
400 วัน ที่ผลิตขึ้นโดยเอา
ด้านล่างจาก 120 ฝาเกลียวพลาสติกตัวอย่างภาชนะ
มิลลิลิตร ( ประมาณ 45 มม. เส้นผ่าศูนย์กลาง ) ประมาณ 30 – 45 หลุม ( 1 / 160
เส้นผ่าศูนย์กลาง ) ถูกเจาะในฝาของภาชนะบรรจุที่
ฤๅษี , so that the lid acted as the base of the incubator. The
lid was fitted with pre-filter (Millipore pre-filter, catalogue No.
AP15 046 00) as the support pad for a polycarbonate membrane,
then another pre-filter was placed on top to prevent the clogging
of the pores in the membrane. An O-ring above the pre-filter sealed
the unit when the lid was screwed on firmly. Another pre-filter
(Millipore,แคตตาล็อกไม่ ap25 04200 ) ป้องกันตะกอนจากการอุดตัน
ตขึ้นก่อนกรองด้านล่าง ดิน ( 50 cm3 ) ถูกบรรจุเข้าไปในตู้
ที่ความหนาแน่นสนาม ในการรักษาด้วยเศษซากพืช วัสดุใบไม้
ถูกหั่นเป็นชิ้นเล็ก ๆ กระจายอย่างสม่ำเสมอบน
( เท่ากับ 4 มิลลิกรัม ฮา วัสดุ บริการ 1 บนพื้นที่ผิวพื้นฐาน ) .
อีกก่อนกรอง ( มิลลิ , ap25 042 00 ) ถูกวางไว้แล้วใน
ด้านบนของดิน / พืชตกค้าง เพื่อป้องกันการเข้าของน้ำชะละลาย
จากด้านบนแทนที่ดินจากพื้นผิว ขนาด 38 ยาง
บึงปิดด้านบนของตู้ฟักไข่ บึงยางติดตั้ง
กับแตะ ( แบ็กซ์เตอร์ pharmaseal สาม stopcock แมวไม่ k75 )
ที่ชะละลายและอัดอากาศรักษา .
อากาศอัดกระจายจากควบคุมความดัน ( ตั้งไว้ที่
25 kPa ) วาล์วในแต่ละห้องผ่านทางเครือข่ายของท่อ วาล์วนี้
ถูกปิดเมื่อแรงดันสำหรับการชะละลายและเปิดออกเมื่อ
ไม่ละลาย . การปิดผนึกตู้ฟักไข่ , บึงก็โดนกดใน
และบันทึกเทปลงเพื่อทนต่อแรงดันของน้ำและวงจร
อยู่ในสถานที่ในระหว่างรอบระยะเวลาการบ่ม การตั้งค่าการทดลอง
ทั้งหมดถูกติดตั้งบนขาตั้ง มีน้ำสะสมในขวด
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- รูปภาพทั้งหมดจะถูกส่งไปยังโย
- kecil
- โปรดดูรายละเอียด ตามใบเสนอราคาที่แนบให้
- Dropping rates, combined with heightened
- ไม่ว่าเวลาจะผ่านไปนานแค่ไหน ฉันก็จะคอยดู
- Native Language
- แล้วขับมอเตอร์ไซค์เคิลหนีโดยเร็วที่สุด
- สินค้าหมด
- Displayed team work to serve customers f
- play bar
- ขาดลายเซ็น ประเภท
- ฉันคิดอย่างไรกับคุณ
- Janevanishchakun
- By the way
- ATTEND QUEST
- I go to school kids study even ram Raj.
- เวลาว่างฉันชอบนอน
- what will be the voucher achieved by him
- วันสงกรานต์เป้นวันที่13-15 เมษายน ในช่วง
- legal statutes
- ติดตามข่าวสารเกี่ยวกับสึนามิและแผ่นดินไห
- จากนี้ เราจะพูดกะนแค่ความจริง
- 2500 baht ticket cancellation fee will b
- จำเป็น
