- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
2. Materials and methods2.1. Plant
2. Materials and methods
2.1. Plant materials
Pre-climacteric banana (Musa spp. cv. ‘Brazil’) fruit at 75–80%
maturity were harvested from a local commercial plantation near
Guangzhou, South East China and transported immediately to the
laboratory. Each banana hand was cut into individual
fingers. Intact
fingers of the same weight were dipped in 2 g L1 sodium
hypochlorite solution for 10 min, soaked in 500 mg L1 Iprodione
solution (Kuaida, Jiangsu, China) and 500 mg L1 prochloraz
solution (Huifeng, Jiangsu, China) for 1 min to eliminate potential
microbes, and air dried at ambient temperature.
2.2. Treatments and sampling
Treatments were divided into three steps. Firstly, the concentra-
tion of 1-MCP treatment was optimized. Selected banana fruit were
randomly divided into four groups of 150
fingers each for the
following treatments. Each group were treated with 0, 200, 400,
600 nL L11-MCP (EthylBloc, LYTONE, Taiwan) for 16 h, respectively,
and then stored at 25
1 C (1-MCP powder was calculated from
percent active ingredient according to the manual and dissolved in
deionized water). Fruit were monitored by periodic measurement of
ripening rate,
firmness and peel color on a minimum of
fifteen
fingers. The best 1-MCP concentrationwas determined as 400 nL L1.
Secondly, three groups of fruit were treated with 0, 50, 100 mL L1
ethephon respectively for 1 min, followed by the optimized 1-MCP
treatment, and then stored at 25
1 C. Fruit was monitored by
periodical measures of ripening rate,
firmness and peel color for a
minimum of
fifteen
fingers. All treatments were conducted with
three biological replicates and every experiment was conducted
twiceindependently. Thirdly, anotherexperimentwasconductedfor
the effect of the selected treatment. The selected banana fruit were
randomly divided into three groups of 150
fingers each for the
following treatments. Fruit of group 1 (control, non-treated for
natural ripening) were stored directly at 25
1 C. Fruit of group
2 were treated with 400 nL L1 1-MCP for 16 h and then stored at
25
1 C. Fruit of group 3 were treated with 50 mL L1 ethephon for
1 min, air dried at ambient temperature, followed by 400 nL L1 1-
MCP for 16 h, and then stored at 25
1 C. The relative humidity was
set as 90%. All fruit were subsequently placed into 10 individual
unsealed polyethylene plastic bags (0.03 mm thick) and stored at
25
1 C. After storage of 14 d, all fruit were treated by 800 mL L1
ethephon for 3 min and then stored at the same condition until the
20th day. Fruit were monitored by periodic measurement of
respiration, ethylene,
firmness and peel color for a minimum of
fifteen
fingers. Samples were taken at 0, 5, 8,10,12,14,16,18,20 d, and
pulp tissues were collected.
All of the samples were frozen in liquid nitrogen immediately
after sampling, and stored at
80 C for further use. All treatments
were conducted in three biological replicates.
2.3. Evaluation of fruit ripening
To determine the extent of fruit ripening,
fifteen fruit were
selected per replicate and fruit color was rated on a scale from 1 to
7 as by Zhu et al. (2010), where, 1 = entirely green, 2 = break green,
3 = more green than yellow, 4 = more yellow than green, 5 = yellow
with green tips, 6 = entirely yellow, and 7 = entirely yellow with
brown freckles. The ripening index (RI) was defined and calculated
as: RI =P (number of fruit in given scale
scale value)/total
number of fruit evaluated.
2.4. Determination of peel color and fruit firmness
Ten individual fruit were selected for the determination of
peel color, which was measured around the equatorial region of
the middle part of the fruit at three points using a Chromameter-
2 reflectance colorimeter (Minolta, Osaka, Japan) equipped
with a CR-300 measuring head. Color was recorded using the
CIE a*, b* and L* scale, where a* indicates green-red color, b*
indicates blue-yellow color and L* indicates the light (scaled 1–100,
1 indicates the black and 100 indicates white). The instrument was
calibrated with a standard white tile before measurements were
taken. The values of a* and b* were converted into hue angle:
h = tan1 (b*/a*).
Fruit
firmness was determined as described by Yan et al. (2011).
Fruit
firmness (N) was expressed as the mean of three measure-
ments.
2.5. Ethylene production and respiration rate
For ethylene production and respiration rate,
five fruit per
treatment were weighed and individually placed in an airtight
container equipped with a rubber stopper for 2 h at 25 C. A triplicate
sample of 1 mL of headspace gas was taken for ethylene and
respirationratedetermination. Ethyleneproductionwasdetermined
as described by Yan et al. (2011). An additional triplicate sample of
1 mL of headspace gas was withdrawn and injected into a gas
chromatograph (G3900, Hitach, Ltd., Japan) for the determination of
CO2 production. Both ethylene production and respiration rate were
expressed as microgram per kilogram per second.
2.6. Assay of cell
2.1. Plant materials
Pre-climacteric banana (Musa spp. cv. ‘Brazil’) fruit at 75–80%
maturity were harvested from a local commercial plantation near
Guangzhou, South East China and transported immediately to the
laboratory. Each banana hand was cut into individual
fingers. Intact
fingers of the same weight were dipped in 2 g L1 sodium
hypochlorite solution for 10 min, soaked in 500 mg L1 Iprodione
solution (Kuaida, Jiangsu, China) and 500 mg L1 prochloraz
solution (Huifeng, Jiangsu, China) for 1 min to eliminate potential
microbes, and air dried at ambient temperature.
2.2. Treatments and sampling
Treatments were divided into three steps. Firstly, the concentra-
tion of 1-MCP treatment was optimized. Selected banana fruit were
randomly divided into four groups of 150
fingers each for the
following treatments. Each group were treated with 0, 200, 400,
600 nL L11-MCP (EthylBloc, LYTONE, Taiwan) for 16 h, respectively,
and then stored at 25
1 C (1-MCP powder was calculated from
percent active ingredient according to the manual and dissolved in
deionized water). Fruit were monitored by periodic measurement of
ripening rate,
firmness and peel color on a minimum of
fifteen
fingers. The best 1-MCP concentrationwas determined as 400 nL L1.
Secondly, three groups of fruit were treated with 0, 50, 100 mL L1
ethephon respectively for 1 min, followed by the optimized 1-MCP
treatment, and then stored at 25
1 C. Fruit was monitored by
periodical measures of ripening rate,
firmness and peel color for a
minimum of
fifteen
fingers. All treatments were conducted with
three biological replicates and every experiment was conducted
twiceindependently. Thirdly, anotherexperimentwasconductedfor
the effect of the selected treatment. The selected banana fruit were
randomly divided into three groups of 150
fingers each for the
following treatments. Fruit of group 1 (control, non-treated for
natural ripening) were stored directly at 25
1 C. Fruit of group
2 were treated with 400 nL L1 1-MCP for 16 h and then stored at
25
1 C. Fruit of group 3 were treated with 50 mL L1 ethephon for
1 min, air dried at ambient temperature, followed by 400 nL L1 1-
MCP for 16 h, and then stored at 25
1 C. The relative humidity was
set as 90%. All fruit were subsequently placed into 10 individual
unsealed polyethylene plastic bags (0.03 mm thick) and stored at
25
1 C. After storage of 14 d, all fruit were treated by 800 mL L1
ethephon for 3 min and then stored at the same condition until the
20th day. Fruit were monitored by periodic measurement of
respiration, ethylene,
firmness and peel color for a minimum of
fifteen
fingers. Samples were taken at 0, 5, 8,10,12,14,16,18,20 d, and
pulp tissues were collected.
All of the samples were frozen in liquid nitrogen immediately
after sampling, and stored at
80 C for further use. All treatments
were conducted in three biological replicates.
2.3. Evaluation of fruit ripening
To determine the extent of fruit ripening,
fifteen fruit were
selected per replicate and fruit color was rated on a scale from 1 to
7 as by Zhu et al. (2010), where, 1 = entirely green, 2 = break green,
3 = more green than yellow, 4 = more yellow than green, 5 = yellow
with green tips, 6 = entirely yellow, and 7 = entirely yellow with
brown freckles. The ripening index (RI) was defined and calculated
as: RI =P (number of fruit in given scale
scale value)/total
number of fruit evaluated.
2.4. Determination of peel color and fruit firmness
Ten individual fruit were selected for the determination of
peel color, which was measured around the equatorial region of
the middle part of the fruit at three points using a Chromameter-
2 reflectance colorimeter (Minolta, Osaka, Japan) equipped
with a CR-300 measuring head. Color was recorded using the
CIE a*, b* and L* scale, where a* indicates green-red color, b*
indicates blue-yellow color and L* indicates the light (scaled 1–100,
1 indicates the black and 100 indicates white). The instrument was
calibrated with a standard white tile before measurements were
taken. The values of a* and b* were converted into hue angle:
h = tan1 (b*/a*).
Fruit
firmness was determined as described by Yan et al. (2011).
Fruit
firmness (N) was expressed as the mean of three measure-
ments.
2.5. Ethylene production and respiration rate
For ethylene production and respiration rate,
five fruit per
treatment were weighed and individually placed in an airtight
container equipped with a rubber stopper for 2 h at 25 C. A triplicate
sample of 1 mL of headspace gas was taken for ethylene and
respirationratedetermination. Ethyleneproductionwasdetermined
as described by Yan et al. (2011). An additional triplicate sample of
1 mL of headspace gas was withdrawn and injected into a gas
chromatograph (G3900, Hitach, Ltd., Japan) for the determination of
CO2 production. Both ethylene production and respiration rate were
expressed as microgram per kilogram per second.
2.6. Assay of cell
0/5000
2. Materials and methods2.1. Plant materialsPre-climacteric banana (Musa spp. cv. ‘Brazil’) fruit at 75–80%maturity were harvested from a local commercial plantation nearGuangzhou, South East China and transported immediately to thelaboratory. Each banana hand was cut into individualfingers. Intactfingers of the same weight were dipped in 2 g L1 sodiumhypochlorite solution for 10 min, soaked in 500 mg L1 Iprodionesolution (Kuaida, Jiangsu, China) and 500 mg L1 prochlorazsolution (Huifeng, Jiangsu, China) for 1 min to eliminate potentialmicrobes, and air dried at ambient temperature.2.2. Treatments and samplingTreatments were divided into three steps. Firstly, the concentra-tion of 1-MCP treatment was optimized. Selected banana fruit wererandomly divided into four groups of 150fingers each for thefollowing treatments. Each group were treated with 0, 200, 400,600 nL L11-MCP (EthylBloc, LYTONE, Taiwan) for 16 h, respectively,and then stored at 251 C (1-MCP powder was calculated frompercent active ingredient according to the manual and dissolved indeionized water). Fruit were monitored by periodic measurement ofripening rate,firmness and peel color on a minimum offifteenfingers. The best 1-MCP concentrationwas determined as 400 nL L1.Secondly, three groups of fruit were treated with 0, 50, 100 mL L1ethephon respectively for 1 min, followed by the optimized 1-MCPtreatment, and then stored at 251 C. Fruit was monitored byperiodical measures of ripening rate,firmness and peel color for aminimum offifteenfingers. All treatments were conducted withthree biological replicates and every experiment was conductedtwiceindependently. Thirdly, anotherexperimentwasconductedforthe effect of the selected treatment. The selected banana fruit wererandomly divided into three groups of 150fingers each for thefollowing treatments. Fruit of group 1 (control, non-treated fornatural ripening) were stored directly at 251 C. Fruit of group2 were treated with 400 nL L1 1-MCP for 16 h and then stored at251 C. Fruit of group 3 were treated with 50 mL L1 ethephon for1 min, air dried at ambient temperature, followed by 400 nL L1 1-MCP for 16 h, and then stored at 251 C. The relative humidity wasset as 90%. All fruit were subsequently placed into 10 individualunsealed polyethylene plastic bags (0.03 mm thick) and stored at251 C. After storage of 14 d, all fruit were treated by 800 mL L1ethephon for 3 min and then stored at the same condition until the20th day. Fruit were monitored by periodic measurement ofrespiration, ethylene,firmness and peel color for a minimum offifteenfingers. Samples were taken at 0, 5, 8,10,12,14,16,18,20 d, andpulp tissues were collected.All of the samples were frozen in liquid nitrogen immediatelyafter sampling, and stored at80 C for further use. All treatmentswere conducted in three biological replicates.2.3. Evaluation of fruit ripeningTo determine the extent of fruit ripening,fifteen fruit wereselected per replicate and fruit color was rated on a scale from 1 to7 as by Zhu et al. (2010), where, 1 = entirely green, 2 = break green,3 = more green than yellow, 4 = more yellow than green, 5 = yellowwith green tips, 6 = entirely yellow, and 7 = entirely yellow withbrown freckles. The ripening index (RI) was defined and calculatedas: RI =P (number of fruit in given scalescale value)/totalnumber of fruit evaluated.2.4. Determination of peel color and fruit firmnessTen individual fruit were selected for the determination ofpeel color, which was measured around the equatorial region ofthe middle part of the fruit at three points using a Chromameter-2 reflectance colorimeter (Minolta, Osaka, Japan) equippedwith a CR-300 measuring head. Color was recorded using theCIE a*, b* and L* scale, where a* indicates green-red color, b*indicates blue-yellow color and L* indicates the light (scaled 1–100,1 indicates the black and 100 indicates white). The instrument wascalibrated with a standard white tile before measurements weretaken. The values of a* and b* were converted into hue angle:h = tan1 (b*/a*).Fruitfirmness was determined as described by Yan et al. (2011).Fruitfirmness (N) was expressed as the mean of three measure-ments.2.5. Ethylene production and respiration rateFor ethylene production and respiration rate,five fruit pertreatment were weighed and individually placed in an airtightcontainer equipped with a rubber stopper for 2 h at 25 C. A triplicatesample of 1 mL of headspace gas was taken for ethylene andrespirationratedetermination. Ethyleneproductionwasdeterminedas described by Yan et al. (2011). An additional triplicate sample of1 mL of headspace gas was withdrawn and injected into a gaschromatograph (G3900, Hitach, Ltd., Japan) for the determination ofCO2 production. Both ethylene production and respiration rate wereexpressed as microgram per kilogram per second.2.6. Assay of cell
การแปล กรุณารอสักครู่..
2. วัสดุและวิธีการ
2.1 วัสดุพืช
กล้วยก่อนวัย (Musa spp. CV. 'บราซิล') ผลไม้ที่ 75-80%
ครบกำหนดเก็บเกี่ยวจากไร่ท้องถิ่นเชิงพาณิชย์ที่อยู่ใกล้
กว่างโจวตะวันออกเฉียงใต้ของประเทศจีนและการขนส่งทันทีที่
ห้องปฏิบัติการ มือกล้วยแต่ละคนถูกตัดออกเป็นแต่ละ
นิ้วมือ เหมือนเดิม
นิ้วน้ำหนักเดียวกันถูกจุ่มลงใน 2 กรัม L? 1 โซเดียม
แก้ปัญหาไฮโปคลอไรต์ 10 นาทีแช่ใน 500 mg L? 1 Iprodione
วิธีการแก้ปัญหา (Kuaida มณฑลเจียงซูประเทศจีน) และ 500 มิลลิกรัม L? 1 prochloraz
วิธีการแก้ปัญหา (Huifeng มณฑลเจียงซู จีน) เป็นเวลา 1 นาทีเพื่อขจัดศักยภาพ
จุลินทรีย์และอากาศแห้งที่อุณหภูมิห้อง.
2.2 การรักษาและการสุ่มตัวอย่าง
การรักษาที่ถูกแบ่งออกเป็นสามขั้นตอน ประการแรกความเข้มข้น
การของการรักษา 1-MCP ถูกปรับให้เหมาะสม กล้วยผลไม้ที่เลือกถูก
แบ่งออกเป็นสี่กลุ่ม 150
นิ้วมือแต่ละสำหรับ
การรักษาต่อไป แต่ละกลุ่มจะได้รับการรักษาด้วย 0, 200, 400,
600 nL L? 11-MCP (EthylBloc, LYTONE ไต้หวัน) สำหรับ 16 ชั่วโมงตามลำดับ
และเก็บไว้แล้ว ณ วันที่ 25
? 1? C (1-MCP ผงที่คำนวณได้จาก
เปอร์เซ็นต์การใช้งาน ส่วนผสมตามคู่มือและละลายใน
น้ำปราศจากไอออน) ผลไม้ที่ได้รับการตรวจสอบโดยการวัดระยะ
สุกอัตรา
ความแน่นและสีเปลือกในขั้นต่ำของ
สิบห้า
นิ้ว ที่ดีที่สุดของ 1-MCP concentrationwas กำหนดเป็น 400 nL L? 1.
ประการที่สองสามกลุ่มของผลไม้ได้รับการรักษาด้วย 0, 50, 100 มล L? 1
Ethephon ตามลำดับเวลา 1 นาทีตามด้วยการเพิ่มประสิทธิภาพ 1-MCP
รักษาและเก็บไว้แล้ว ณ วันที่ 25
? 1? C ผลไม้ได้รับการตรวจสอบโดย
มาตรการระยะสุกของอัตรา
ความแน่นและสีเปลือกสำหรับ
อย่างน้อย
สิบห้า
นิ้ว การรักษาทั้งหมดถูกดำเนินการกับ
สามซ้ำทางชีวภาพและทุกทดลอง
twiceindependently ประการที่สาม anotherexperimentwasconductedfor
ผลของการรักษาที่เลือก ผลไม้กล้วยเลือกถูก
แบ่งออกเป็นสามกลุ่ม 150
นิ้วมือแต่ละสำหรับ
การรักษาต่อไป ผลไม้ของกลุ่มที่ 1 (การควบคุมที่ไม่ได้รับการรักษา
สุกธรรมชาติ) ที่ถูกเก็บไว้โดยตรงที่ 25
? 1? C ผลไม้ของกลุ่ม
ที่ 2 ได้รับการรักษาด้วย 400 nL L? 1-MCP ที่ 1 เป็นเวลา 16 ชั่วโมงแล้วเก็บไว้ที่
25
? 1? C ผลของกลุ่มที่ 3 ได้รับการรักษาด้วย 50 มล L? 1 Ethephon สำหรับ
1 นาที, อากาศแห้งที่อุณหภูมิห้องตามด้วย 400 nL L? 1 1-
MCP สำหรับ 16 ชั่วโมงและเก็บไว้แล้ว ณ วันที่ 25
? 1? C ความชื้นสัมพัทธ์ได้รับการ
ตั้งค่าให้เป็น 90% ผลไม้ทั้งหมดถูกวางไว้ต่อมาเป็น 10 บุคคล
เปิดผนึกเอทิลีนถุงพลาสติก (0.03 มมหนา) และเก็บไว้ที่
25
? 1? C หลังจากการจัดเก็บ 14 D, ผลไม้ทั้งหมดได้รับการรักษาโดย 800 มล L? 1
Ethephon เป็นเวลา 3 นาทีแล้วเก็บไว้ที่สภาพเดิมจนถึง
วันที่ 20 ผลไม้ที่ได้รับการตรวจสอบโดยการวัดระยะของ
การหายใจ, เอทิลีน
ความแน่นและสีเปลือกสำหรับขั้นต่ำของ
สิบห้า
นิ้ว ถูกนำตัวอย่างที่ 0, 5, 8,10,12,14,16,18,20 D และ
เนื้อเยื่อเยื่อกระดาษที่ถูกเก็บรวบรวม.
ตัวอย่างทั้งหมดถูกแช่แข็งในไนโตรเจนเหลวทันที
หลังจากการสุ่มตัวอย่างและเก็บไว้ที่
? 80? C เป็นเวลา ใช้งานต่อไป การรักษาทั้งหมด
ได้ดำเนินการในสามซ้ำทางชีวภาพ.
2.3 การประเมินผลของผลไม้สุก
เพื่อกำหนดขอบเขตของผลไม้สุกที่
สิบห้าผลไม้ที่ถูก
เลือกต่อการทำซ้ำและผลไม้สีถูกจัดอันดับในระดับที่จะ 1 จาก
7 โดย Zhu, et al (2010) ที่ 1 = สีเขียวทั้งหมด 2 = ทำลายสีเขียว
3 = มากขึ้นสีเขียวมากกว่าสีเหลือง 4 = อื่น ๆ สีเหลืองกว่าสีเขียว 5 = สีเหลือง
พร้อมด้วยเคล็ดลับสีเขียว, 6 = สีเหลืองทั้งหมดและ 7 = สีเหลืองอย่างสิ้นเชิงกับ
ฝ้ากระสีน้ำตาล . ดัชนีสุก (RI) ถูกกำหนดและนำมาคำนวณ
เป็น: RI = P (จำนวนของผลไม้ในระดับที่กำหนด
?
ค่ามาตราส่วน) / รวม
. จำนวนผลการประเมิน
2.4 การกำหนดสีผิวเปลือกและผลไม้ความแน่น
สิบผลไม้ของแต่ละบุคคลได้รับการคัดเลือกในการกำหนด
สีเปลือกซึ่งได้รับการวัดรอบภูมิภาคแถบเส้นศูนย์สูตรของ
ส่วนตรงกลางของผลไม้ที่สามจุดใช้ Chromameter-
สะท้อน colorimeter 2 (Minolta โอซาก้าประเทศญี่ปุ่น) การติดตั้ง
กับหัว CR-300 วัด สีที่ถูกบันทึกไว้โดยใช้
CIE a * b * และ L * ขนาดที่ * หมายถึงสีเขียวสีแดง, b *
บ่งชี้สีฟ้าสีเหลืองและสี L * หมายถึงแสง (ปรับขนาด 1-100,
1 แสดงสีดำและ 100 แสดงให้เห็นสีขาว) เครื่องมือที่ได้รับการ
สอบเทียบกับกระเบื้องสีขาวมาตรฐานก่อนที่จะวัดได้รับการ
ดำเนินการ ค่าของ a * และ b * ถูกแปลงเป็นมุมเว้:
H? = Tan 1 (b * / A *).
ผลไม้
ความแน่นถูกกำหนดตามที่อธิบาย Yan, et al (2011).
ผลไม้
ความแน่น (N) ถูกแสดงเป็นค่าเฉลี่ยของสามวัด
ments.
2.5 การผลิตเอทิลีนและอัตราการหายใจ
สำหรับการผลิตเอทิลีนและอัตราการหายใจ,
ห้าผลไม้ต่อ
การรักษาได้รับการชั่งน้ำหนักและวางไว้ในสุญญากาศเป็นรายบุคคล
ภาชนะพร้อมกับอุดยางเป็นเวลา 2 ชั่วโมงที่อุณหภูมิ 25 องศาเซลเซียส เพิ่มขึ้นสามเท่า
ตัวอย่าง 1 มิลลิลิตรของก๊าซ headspace ถูกนำสำหรับเอทิลีนและ
respirationratedetermination Ethyleneproductionwasdetermined
ตามที่อธิบาย Yan, et al (2011) ตัวอย่างเพิ่มขึ้นสามเท่าเพิ่มเติม
1 มิลลิลิตรของก๊าซ headspace ถูกถอนออกและฉีดเข้าไปในก๊าซ
chromatograph (G3900, Hitach, Ltd. ประเทศญี่ปุ่น) สำหรับการกำหนดของ
การผลิตก๊าซ CO2 ทั้งการผลิตเอทิลีนและอัตราการหายใจถูก
แสดงเป็นไมโครกรัมต่อกิโลกรัมต่อวินาที.
2.6 การทดสอบของเซลล์
2.1 วัสดุพืช
กล้วยก่อนวัย (Musa spp. CV. 'บราซิล') ผลไม้ที่ 75-80%
ครบกำหนดเก็บเกี่ยวจากไร่ท้องถิ่นเชิงพาณิชย์ที่อยู่ใกล้
กว่างโจวตะวันออกเฉียงใต้ของประเทศจีนและการขนส่งทันทีที่
ห้องปฏิบัติการ มือกล้วยแต่ละคนถูกตัดออกเป็นแต่ละ
นิ้วมือ เหมือนเดิม
นิ้วน้ำหนักเดียวกันถูกจุ่มลงใน 2 กรัม L? 1 โซเดียม
แก้ปัญหาไฮโปคลอไรต์ 10 นาทีแช่ใน 500 mg L? 1 Iprodione
วิธีการแก้ปัญหา (Kuaida มณฑลเจียงซูประเทศจีน) และ 500 มิลลิกรัม L? 1 prochloraz
วิธีการแก้ปัญหา (Huifeng มณฑลเจียงซู จีน) เป็นเวลา 1 นาทีเพื่อขจัดศักยภาพ
จุลินทรีย์และอากาศแห้งที่อุณหภูมิห้อง.
2.2 การรักษาและการสุ่มตัวอย่าง
การรักษาที่ถูกแบ่งออกเป็นสามขั้นตอน ประการแรกความเข้มข้น
การของการรักษา 1-MCP ถูกปรับให้เหมาะสม กล้วยผลไม้ที่เลือกถูก
แบ่งออกเป็นสี่กลุ่ม 150
นิ้วมือแต่ละสำหรับ
การรักษาต่อไป แต่ละกลุ่มจะได้รับการรักษาด้วย 0, 200, 400,
600 nL L? 11-MCP (EthylBloc, LYTONE ไต้หวัน) สำหรับ 16 ชั่วโมงตามลำดับ
และเก็บไว้แล้ว ณ วันที่ 25
? 1? C (1-MCP ผงที่คำนวณได้จาก
เปอร์เซ็นต์การใช้งาน ส่วนผสมตามคู่มือและละลายใน
น้ำปราศจากไอออน) ผลไม้ที่ได้รับการตรวจสอบโดยการวัดระยะ
สุกอัตรา
ความแน่นและสีเปลือกในขั้นต่ำของ
สิบห้า
นิ้ว ที่ดีที่สุดของ 1-MCP concentrationwas กำหนดเป็น 400 nL L? 1.
ประการที่สองสามกลุ่มของผลไม้ได้รับการรักษาด้วย 0, 50, 100 มล L? 1
Ethephon ตามลำดับเวลา 1 นาทีตามด้วยการเพิ่มประสิทธิภาพ 1-MCP
รักษาและเก็บไว้แล้ว ณ วันที่ 25
? 1? C ผลไม้ได้รับการตรวจสอบโดย
มาตรการระยะสุกของอัตรา
ความแน่นและสีเปลือกสำหรับ
อย่างน้อย
สิบห้า
นิ้ว การรักษาทั้งหมดถูกดำเนินการกับ
สามซ้ำทางชีวภาพและทุกทดลอง
twiceindependently ประการที่สาม anotherexperimentwasconductedfor
ผลของการรักษาที่เลือก ผลไม้กล้วยเลือกถูก
แบ่งออกเป็นสามกลุ่ม 150
นิ้วมือแต่ละสำหรับ
การรักษาต่อไป ผลไม้ของกลุ่มที่ 1 (การควบคุมที่ไม่ได้รับการรักษา
สุกธรรมชาติ) ที่ถูกเก็บไว้โดยตรงที่ 25
? 1? C ผลไม้ของกลุ่ม
ที่ 2 ได้รับการรักษาด้วย 400 nL L? 1-MCP ที่ 1 เป็นเวลา 16 ชั่วโมงแล้วเก็บไว้ที่
25
? 1? C ผลของกลุ่มที่ 3 ได้รับการรักษาด้วย 50 มล L? 1 Ethephon สำหรับ
1 นาที, อากาศแห้งที่อุณหภูมิห้องตามด้วย 400 nL L? 1 1-
MCP สำหรับ 16 ชั่วโมงและเก็บไว้แล้ว ณ วันที่ 25
? 1? C ความชื้นสัมพัทธ์ได้รับการ
ตั้งค่าให้เป็น 90% ผลไม้ทั้งหมดถูกวางไว้ต่อมาเป็น 10 บุคคล
เปิดผนึกเอทิลีนถุงพลาสติก (0.03 มมหนา) และเก็บไว้ที่
25
? 1? C หลังจากการจัดเก็บ 14 D, ผลไม้ทั้งหมดได้รับการรักษาโดย 800 มล L? 1
Ethephon เป็นเวลา 3 นาทีแล้วเก็บไว้ที่สภาพเดิมจนถึง
วันที่ 20 ผลไม้ที่ได้รับการตรวจสอบโดยการวัดระยะของ
การหายใจ, เอทิลีน
ความแน่นและสีเปลือกสำหรับขั้นต่ำของ
สิบห้า
นิ้ว ถูกนำตัวอย่างที่ 0, 5, 8,10,12,14,16,18,20 D และ
เนื้อเยื่อเยื่อกระดาษที่ถูกเก็บรวบรวม.
ตัวอย่างทั้งหมดถูกแช่แข็งในไนโตรเจนเหลวทันที
หลังจากการสุ่มตัวอย่างและเก็บไว้ที่
? 80? C เป็นเวลา ใช้งานต่อไป การรักษาทั้งหมด
ได้ดำเนินการในสามซ้ำทางชีวภาพ.
2.3 การประเมินผลของผลไม้สุก
เพื่อกำหนดขอบเขตของผลไม้สุกที่
สิบห้าผลไม้ที่ถูก
เลือกต่อการทำซ้ำและผลไม้สีถูกจัดอันดับในระดับที่จะ 1 จาก
7 โดย Zhu, et al (2010) ที่ 1 = สีเขียวทั้งหมด 2 = ทำลายสีเขียว
3 = มากขึ้นสีเขียวมากกว่าสีเหลือง 4 = อื่น ๆ สีเหลืองกว่าสีเขียว 5 = สีเหลือง
พร้อมด้วยเคล็ดลับสีเขียว, 6 = สีเหลืองทั้งหมดและ 7 = สีเหลืองอย่างสิ้นเชิงกับ
ฝ้ากระสีน้ำตาล . ดัชนีสุก (RI) ถูกกำหนดและนำมาคำนวณ
เป็น: RI = P (จำนวนของผลไม้ในระดับที่กำหนด
?
ค่ามาตราส่วน) / รวม
. จำนวนผลการประเมิน
2.4 การกำหนดสีผิวเปลือกและผลไม้ความแน่น
สิบผลไม้ของแต่ละบุคคลได้รับการคัดเลือกในการกำหนด
สีเปลือกซึ่งได้รับการวัดรอบภูมิภาคแถบเส้นศูนย์สูตรของ
ส่วนตรงกลางของผลไม้ที่สามจุดใช้ Chromameter-
สะท้อน colorimeter 2 (Minolta โอซาก้าประเทศญี่ปุ่น) การติดตั้ง
กับหัว CR-300 วัด สีที่ถูกบันทึกไว้โดยใช้
CIE a * b * และ L * ขนาดที่ * หมายถึงสีเขียวสีแดง, b *
บ่งชี้สีฟ้าสีเหลืองและสี L * หมายถึงแสง (ปรับขนาด 1-100,
1 แสดงสีดำและ 100 แสดงให้เห็นสีขาว) เครื่องมือที่ได้รับการ
สอบเทียบกับกระเบื้องสีขาวมาตรฐานก่อนที่จะวัดได้รับการ
ดำเนินการ ค่าของ a * และ b * ถูกแปลงเป็นมุมเว้:
H? = Tan 1 (b * / A *).
ผลไม้
ความแน่นถูกกำหนดตามที่อธิบาย Yan, et al (2011).
ผลไม้
ความแน่น (N) ถูกแสดงเป็นค่าเฉลี่ยของสามวัด
ments.
2.5 การผลิตเอทิลีนและอัตราการหายใจ
สำหรับการผลิตเอทิลีนและอัตราการหายใจ,
ห้าผลไม้ต่อ
การรักษาได้รับการชั่งน้ำหนักและวางไว้ในสุญญากาศเป็นรายบุคคล
ภาชนะพร้อมกับอุดยางเป็นเวลา 2 ชั่วโมงที่อุณหภูมิ 25 องศาเซลเซียส เพิ่มขึ้นสามเท่า
ตัวอย่าง 1 มิลลิลิตรของก๊าซ headspace ถูกนำสำหรับเอทิลีนและ
respirationratedetermination Ethyleneproductionwasdetermined
ตามที่อธิบาย Yan, et al (2011) ตัวอย่างเพิ่มขึ้นสามเท่าเพิ่มเติม
1 มิลลิลิตรของก๊าซ headspace ถูกถอนออกและฉีดเข้าไปในก๊าซ
chromatograph (G3900, Hitach, Ltd. ประเทศญี่ปุ่น) สำหรับการกำหนดของ
การผลิตก๊าซ CO2 ทั้งการผลิตเอทิลีนและอัตราการหายใจถูก
แสดงเป็นไมโครกรัมต่อกิโลกรัมต่อวินาที.
2.6 การทดสอบของเซลล์
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- ตอนเย็นฉันก่อต้องเดินกลับบ้าน
- and Lacobacillus plantarum can reduce th
- เด็กขอทาน
- 1. By the time I get to Phoenix, she’ll
- ในวันหยุด
- Off-shoring of work, in which a firm sen
- เคล็ดลับกินสลัด เพื่อลดน้ำหนัก 1. เลือกน
- years
- ซึ่งมีประสิทธิภาพล้ำลึกเหนือกว่าการขจัดร
- บาง น้ำ เปรี้ยว
- 4. ยุคใหม่ (Modern Age) ค.ศ. 1800 - ปัจจ
- What is the famous landmark that is pict
- 4. ยุคใหม่ (Modern Age) ค.ศ. 1800 - ปัจจ
- สถานที่ที่มืดๆ
- Their main function is to increase chall
- single parents
- So we should respect ,although we are of
- Beate Gütschow’s exploration as an artis
- sales are not going up. We need to find
- Beate Gütschow’s exploration as an artis
- listen carefully to what customer say an
- Not everyone sees me as their friends al
- นมและผลิตภัณฑ์
- เคล็ดลับกินสลัด เพื่อลดน้ำหนัก 1. เลือกน
