The repeated-batch fermentation whi

The repeated-batch fermentation which consisted of 16 cycles was
examined using the juice of FS902 in cycles 1–10, that of FS501 in
cycles 11–13, and that of KCS105 in cycles 14–16 as a carbon source,
respectively (Fig. 2). The pre-culture using the glycerol stock solution
of strains NBRC 0216 or Hitachi was carried out according to the
procedure mentioned above. For cycle 1, the pre-culture was transferred
into 10 ml of the juice of FS902 in 15 ml-plastic tubes with 0.1%
(v/v)-inoculation, and cultivated at 30°C for 3 days. In cycle 2 and
the later cycles, the cells in the tube were collected by centrifugation
at 3500×g for 5 min at room temperature, and the fermentation
broth was removed. One of the three kinds of fresh juice (10 ml) was
added into the tube containing the cells and incubated at 30°C for
1 day each. The procedure was repeated up to cycle 16. The tubes used
in this experiment were not sterilized and the manipulation was
performed under ambient atmosphere except for the pre-culture.
Consequently, the strain Hitachi produced 5.59 to 6.13% (v/v) ethanol,
and from 10.1% (w/v) sugar in FS902 during the first 10 cycles,
showing 83.3–91.4% conversion of the theoretical value. The strain
NBRC 0216 also fermented ethanol well with 78.7–89.2% conversion,
although a lower conversion of 61.4% was observed in cycle 2. The
juice of FS501 used in cycles 11–13 and that of KCS105 used in cycles
14–16 were also fermentable materials in the repeated-batch
fermentation with conversion of over 85%, although neither strains
could grew well in the juices. Generally, ethanol yields differ with
the sweet sorghum strain, growing conditions, and juice batches, as
well (17). In this study, however, good yields were obtained with
all the sweet sorghum extracts after yeast was adapted to the ethanol
producing conditions. By applying the technique reported here to
ethanol production using yeast, the range of sorghum strains which
could be used as a bioresource could be broadened.

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

หมักซ้ำชุดซึ่งประกอบไปด้วย 16 รอบได้รับการ
ตรวจสอบโดยใช้น้ำผลไม้ของ FS902 ในรอบ 1-10, ที่ FS501 ใน
รอบ 11-13 และของ KCS105 ในรอบวันที่ 14-16 เป็นแหล่งคาร์บอน
ตามลำดับ (รูปที่ 2) วัฒนธรรมก่อนโดยใช้วิธีการแก้ปัญหาหุ้นกลีเซอรอล
สายพันธุ์ NBRC 0216 หรือฮิตาชิได้รับการดำเนินการตาม
ขั้นตอนดังกล่าวข้างต้น สำหรับรอบที่ 1, วัฒนธรรมก่อนถูกย้าย
เป็น 10 มิลลิลิตรของน้ำผลไม้ของ FS902 ใน 15 มลหลอดพลาสติกที่มี 0.1%
(v / v) -inoculation และเพาะปลูกที่อุณหภูมิ 30 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 3 วัน ในรอบที่ 2 และ
รอบต่อมาเซลล์ในหลอดที่ถูกเก็บรวบรวมโดยการหมุนเหวี่ยง
ที่ 3500 ×กรัมเป็นเวลา 5 นาทีที่อุณหภูมิห้องและการหมัก
น้ำซุปจะถูกลบออก หนึ่งในสามชนิดของน้ำผลไม้สด (10 มล.) ได้รับการ
เพิ่มเข้าไปในท่อที่มีเซลล์และบ่มที่อุณหภูมิ 30 องศาเซลเซียสเป็นเวลา
1 ในแต่ละวัน ขั้นตอนซ้ำได้ถึงรอบ 16 หลอดที่ใช้
ในการทดลองนี้ไม่ได้ผ่านการฆ่าเชื้อและการจัดการได้รับการ
ดำเนินการภายใต้บรรยากาศยกเว้นวัฒนธรรมก่อน.
ดังนั้นความเครียด Hitachi ผลิต 5.59-6.13% (v / v) เอทานอล
และจาก 10.1% (w / v) น้ำตาลใน FS902 ในช่วงแรก 10 รอบ
การแสดงการแปลง 83.3-91.4% ของมูลค่าทางทฤษฎี ความเครียด
NBRC 0216 เอทานอลที่หมักยังดีกับการแปลง 78.7-89.2%
แม้ว่าการแปลงล่างของ 61.4% พบว่าในรอบ 2
น้ำผลไม้ของ FS501 ใช้ในรอบ 11-13 และของ KCS105 ใช้ในรอบ
วันที่ 14-16 ก็มี วัสดุที่ย่อยในการทำซ้ำชุด
หมักกับการแปลงกว่า 85% แม้จะมีสายพันธุ์ที่ไม่
สามารถเจริญเติบโตได้ดีในน้ำ โดยทั่วไปผลผลิตเอทานอลแตกต่างกับ
สายพันธุ์ข้าวฟ่างหวาน, สภาพการเจริญเติบโตและสำหรับกระบวนการน้ำผลไม้เป็น
อย่างดี (17) ในการศึกษาครั้งนี้อย่างไรก็ตามอัตราผลตอบแทนที่ดีได้รับกับ
ทุกสารสกัดจากข้าวฟ่างหวานหลังจากที่ถูกนำมาดัดแปลงยีสต์เอทานอล
ที่ผลิตเงื่อนไข โดยใช้เทคนิคที่มีการรายงานที่นี่เพื่อ
การผลิตเอทานอลโดยใช้ยีสต์ช่วงของสายพันธุ์ข้าวฟ่างซึ่ง
สามารถใช้เป็น Bioresource อาจจะมีการขยาย

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

การหมักแบบซ้ำซึ่งประกอบด้วย 16 รอบคือ
ตรวจสอบการใช้น้ำของ fs902 ในรอบ 1 - 10 ของ fs501 ใน
รอบ 11 – 13 และของ kcs105 ในรอบ 14 – 16 เป็นคาร์บอนแหล่ง
ตามลำดับ ( รูปที่ 2 ) ก่อนวัฒนธรรม โดยใช้โซลูชั่นหุ้นกลีเซอรอล
สายพันธุ์ nbrc 0216 หรือ Hitachi ได้ดำเนินการตาม
ขั้นตอนที่กล่าวถึงข้างต้น วงจรที่ 1วัฒนธรรมก่อนโอน
ออกเป็น 10 มิลลิลิตรของน้ำของ fs902 15 ml หลอดพลาสติก 0.1 %
( v / v ) - การฉีดวัคซีน และบ่มที่อุณหภูมิ 30 องศา C เป็นเวลา 3 วัน ในฤดูกาลที่ 2 และ
รอบต่อมาเซลล์ในหลอดมีจำนวน 3
ที่ 3500 × G สำหรับ 5 นาทีที่อุณหภูมิห้อง และหมัก
ซุปถูกลบออก หนึ่งในสามชนิดของน้ำผลไม้ ( 10 ml ) คือ
เพิ่มลงในหลอดที่มีเซลล์ที่บ่มที่ 30 ° C
1 วัน แต่ละ กระบวนการทำซ้ำถึงรอบ 16 หลอดที่ใช้ในการทดลองนี้ไม่ได้

การฆ่าเชื้อและจัดการภายใต้สภาวะบรรยากาศ ยกเว้นวัฒนธรรม pre .
ดังนั้นเมื่อย Hitachi ผลิต 5.59 ถึง 6.13 เปอร์เซ็นต์ ( v / v )
, เอทานอลและ 10.1 % ( w / v ) น้ำตาลใน fs902 ในช่วง 10 รอบแรก
ส่วนการแปลงค่าและแสดง % ของมูลค่าทางทฤษฎี เมื่อย
nbrc 0216 ยังหมักเอทานอลด้วยการแปลง 78.7 – 89.2 %
ถึงแม้ว่าการลดลงของ 61.4% พบว่าในรอบ 2
น้ำ fs501 ใช้ในรอบ 11 – 13 และที่ใช้ในรอบ kcs105
14 16 และยังวัสดุหมักในซ้ำชุด
หมักกับการแปลงมากกว่า 85 %แม้ว่าทั้งสายพันธุ์
อาจขยายตัวดีในน้ำผลไม้ โดยทั่วไปผลผลิตเอทานอลแตกต่างกับ
ข้าวฟ่างหวานสายพันธุ์ , เงื่อนไขที่เติบโต และน้ำผลไม้ได้ เช่น
ดี ( 17 ) ในการศึกษานี้ อย่างไรก็ตาม ผลผลิตที่ดีได้
ทั้งหมดข้าวฟ่างหวาน สารสกัดจากยีสต์ที่ถูกดัดแปลงเพื่อการผลิตเอทานอล
เงื่อนไข โดยการประยุกต์ใช้เทคนิครายงานที่นี่

การผลิตเอทานอลโดยใช้ยีสต์ช่วงของข้าวฟ่างสายพันธุ์ซึ่ง
สามารถใช้เป็นทรัพยากรชีวภาพอาจเป็นวงกว้าง .