350 mM/L/h oxygen transfer rate obt

350 mM/L/h oxygen transfer rate obtained through
powerful fermentation agitation motor and 6-bladed
Rushton impellers dissolve 20% air saturation in the medium,
which was controlled by agitation at 500 rpm and
aeration rate 1 vvm. Unless otherwise stated, the pH of medium
was adjusted at 7.0 1 by the controlled addition of
NaOH (5 N) or 4 N HCl. The operations were controlled
and recorded by a digital control unit (DCU) in combination
with the software package. Samples of 10-20 mL were
withdrawn from the culture fluid for analytical purposes.
Bioreactor as a one-stage batch culture
In this experiment the fermentation vessel (bioreactor)
containing 9800 mL productive medium without
WFO was autoclaved at 121 °C for 40 min. WFO (1%) was
added after sterilization. The fermentation medium was inoculated
with 1% standard inoculum of the bacterial strain.
The standard inoculum was prepared in a conical flask
(250 mL) containing 100 mL of nutrient broth medium inoculated
with a loop of Ps. fluorescens S48 and incubated at
28-30 °C with shaking (300 rpm) for 24 h prior to inoculation
(5 x 108 cfu / mL).
The final working volume was 10 liter. Initial pH was
adjusted to 7 0.1 which was not controlled during the fermentation
period. Temperature, dissolved O2 and speed of
agitation were kept at 30 °C, 20% of air saturation and
500 rpm, respectively, during cultivation.
During fermentation, samples (10-20 mL) were withdrawn
from the culture (fermentation vessel) periodically.
The samples were centrifuged at 15000 xg for 4 min at 4 °C.
The sediment (biomass) was washed twice with distilled
water, and then dried at 70 °C to constant weight.
Bioreactor as a two-stage batch culture
The production of PHAs was carried out in two-stage
cultivation. In the first stage, two sterile conical flasks
(1000 mL) each containing 400 mL nutrient medium was
inoculated with 10 mL standard inoculum of the bacterial
strain, then incubated at 30 °C for 24 h on rotary shaker
(150 rpm) in order to get a luxurious growth. Then the culture
fluid was centrifuged at 15000 xg for 4 min at 4 °C and
the bacterial cells were collected and suspended in additional
sterile productive medium to inoculate the bioreactor
vessel to give a final working volume of 10 L sterile productive
medium. The cultivation conditions and microbiological
determinations were done as mentioned before.
Bioreactor as high-cell-density fed-batch culture
This experiment of fed-batch culture was constructed
to study the effect of washed high-cell-densities (0.64 g/L)
of Ps. fluorescens S48 on PHAs production. WFO was fed
continuously at 0.55 mL/L/h during the first 18 h of cultivation
(according to the obtained results from Gamal et al.
(2012) for the semi-scale production. Samples (10-20 mL)
were taken from the growing culture periodically under

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

350 mM/L/h ออกซิเจนอัตราที่ได้รับผ่านอาการกังวลต่อการหมักมีประสิทธิภาพมอเตอร์ และ 6 ใบใบพัด Rushton ละลายอิ่มตัวอากาศ 20% ในกลางซึ่งถูกควบคุม โดยปั่นป่วนที่ 500 รอบต่อนาที และเติมอากาศอัตรา 1 vvm เว้นแต่ที่ระบุไว้ ค่า pH ของตัวกลางปรับปรุง 1 7.0 นอกการควบคุมของNaOH (5 N) หรือ 4 N HCl การดำเนินการถูกควบคุมและบันทึก โดยหน่วยควบคุมดิจิตอลกลับ) ในชุดด้วยแพคเกจซอฟต์แวร์ มีตัวอย่าง 10-20 มล.ถอนออกจากของเหลววัฒนธรรมสำหรับวัตถุประสงค์วิเคราะห์ถังปฏิกรณ์ชีวภาพเป็นวัฒนธรรมชุดหนึ่งขั้นในที่นี้ทดลองหมักภาชนะ (ถังปฏิกรณ์ชีวภาพ)ประกอบด้วย 9800 mL ปานกลางผลิตโดยWFO ถูกนึ่งที่ 121 ° C สำหรับ 40 นาที WFO (1%)เพิ่มหลังจากทำหมัน กลางหมักถูก inoculatedกับ 1% inoculum มาตรฐานของสายพันธุ์เชื้อแบคทีเรียถูกเตรียม inoculum มาตรฐานในขวดรูปกรวย(250 มล) ประกอบด้วย 100 มิลลิลิตรของน้ำธาตุอาหารกลาง inoculatedมีการวนรอบของชุบ fluorescens S48 และได้รับการกกที่28-30 ° C มีสั่น (300 รอบต่อนาที) สำหรับ 24 ชั่วโมงก่อน inoculation(อาหรับ 5 x 108 / mL)ทำเสียงสุดท้ายเป็น 10 ลิตร มีค่า pH เริ่มต้นปรับเป็น 0.1 7 ซึ่งไม่ได้ถูกควบคุมในระหว่างการหมักระยะเวลาการ อุณหภูมิ ละลายเร็วและ O2ปั่นป่วนถูกเก็บไว้ที่อุณหภูมิ 30 ° C, 20% ของอากาศอิ่มตัว และ500 รอบต่อนาที ตามลำดับ ในระหว่างการเพาะปลูกระหว่างการหมัก ถูกถอนตัวอย่าง (10-20 mL)จากวัฒนธรรม (หมักเรือ) เป็นระยะ ๆตัวอย่างถูกเหวี่ยงที่ xg 15000 สำหรับ 4 นาทีที่อุณหภูมิ 4 องศาเซลเซียสตะกอน (ชีวมวล) ถูกล้างสองครั้งกลั่นน้ำ และอบแห้งที่อุณหภูมิ 70 ° C น้ำหนักคงถังปฏิกรณ์ชีวภาพเป็นวัฒนธรรมสองชุดการผลิต PHAs ได้ดำเนินการในสองระดับเพาะปลูก ในระยะแรก สองขวดรูปกรวยเป็นหมันถูกสื่อสารอาหารแต่ละ 400 มล.มี (1000 mL)inoculated กับ 10 มล. inoculum มาตรฐานของแบคทีเรียสายพันธุ์ แล้ว ได้รับการกกที่ 30 ° C ใน 24 h บนปั่นโรตารี่(150 รอบต่อนาที) เพื่อที่จะได้เติบโตหรูหรา แล้ววัฒนธรรมของเหลวถูกเหวี่ยงที่ xg 15000 สำหรับ 4 นาทีที่อุณหภูมิ 4 ° C และเก็บรวบรวมเซลล์แบคทีเรีย และในเพิ่มเติมผ่านการฆ่าเชื้อมีประสิทธิภาพปานกลางถังปฏิกรณ์ชีวภาพการปลูกฝีเรือเพื่อให้ทำงานเบาสุดท้าย 10 L ที่ผ่านการฆ่าเชื้อมีประสิทธิภาพกลาง สภาพการเพาะปลูก และจุลินทรีย์วัดได้ทำดังกล่าวก่อนถังปฏิกรณ์ชีวภาพเป็นวัฒนธรรมชุดเลี้ยงเซลล์สูงความหนาแน่นสร้างวัฒนธรรมอาหารชุดการทดลองนี้การศึกษาผลของการล้างสูงเซลล์ความหนาแน่น (0.64 g/L)การชุบ fluorescens S48 การผลิต PHAs WFO ถูกเลี้ยงอย่างต่อเนื่องที่ 0.55 mL/L/h ใน h 18 ครั้งแรกของการเพาะปลูก(ตามได้รับผลจาก Gamal et al(2012) สำหรับการผลิตขนาดกึ่ง ตัวอย่าง (10-20 mL)ถูกนำมาจากวัฒนธรรมเติบโตเป็นระยะ ๆ ภายใต้

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

350 มม. / l / h อัตราการถ่ายเทออกซิเจนได้ผ่านประสิทธิภาพการหมักและการ 6-bladed มอเตอร์Rushton ใบพัดละลาย 20% อากาศอิ่มตัวในกลางซึ่งถูกควบคุมโดยการกวน 500 รอบต่อนาที และคะแนน 1 vvm . เว้นแต่ที่ระบุไว้เป็นอย่างอื่น , pH กลางปรับที่ 7.0 1 โดยควบคุมเพิ่มNaOH ( 5 n ) หรือ 4 N HCl . การดำเนินงานควบคุมและบันทึกโดยการควบคุมแบบดิจิตอลหน่วย ( DCU ) รวมกันกับซอฟต์แวร์แพคเกจ ตัวอย่างของ 10-20 มิลลิลิตร คือถอนตัวจากของเหลววัฒนธรรมเพื่อวัตถุประสงค์ในการวิเคราะห์เครื่องปฏิกรณ์ชีวภาพเป็น one-stage ชุดวัฒนธรรมในการทดลองนี้มีการหมักเรือ ( แบบ )ที่มีประสิทธิผลปานกลางโดยไม่รวมมลwfo 121 ° C ที่ถูกสังเคราะห์สำหรับ 40 นาที wfo ( % 1 )เพิ่มหลังการฆ่าเชื้อ การหมักกลางเป็นเชื้อกับเชื้อมาตรฐาน 1 % ของสายพันธุ์แบคทีเรียเชื้อมาตรฐานที่เตรียมไว้ในขวดรูปกรวย( 250 ml ) ( 100 ml ของน้ำซุปที่ใส่สารอาหารปานกลางกับวงของ PS . fluorescens s48 บ่มที่28-30 องศา C สั่น ( 300 รอบต่อนาที ) สำหรับ 24 ชั่วโมงก่อนการฉีดวัคซีน( 5 x 108 CFU / ml )ปริมาณงานสุดท้ายคือ 10 ลิตร pH เริ่มต้น คือปรับ 7 0.1 ซึ่งไม่ควบคุมในระหว่างการหมักระยะเวลา อุณหภูมิ น้ำ ออกซิเจน และความเร็วของการไว้ที่ 30 องศา C , 20% ของอากาศอิ่มตัวและ500 รอบต่อนาที ตามลำดับ ในช่วงการเพาะปลูกในระหว่างการหมัก ตัวอย่าง ( 10-20 มิลลิลิตร ) ถูกถอนจากวัฒนธรรม ( ภาชนะหมัก ) เป็นระยะ ๆจำนวนระดับที่ 15000 XG 4 นาทีที่ 4 องศาตะกอน ( ชีวมวล ) คือล้างด้วยน้ำกลั่น 2 ครั้งน้ำ แล้วอบที่อุณหภูมิ 70 องศา C น้ำหนักคงที่แบบเป็นชุดสองวัฒนธรรมการผลิตยังได้ดำเนินการสองขั้นตอนการเพาะปลูก ในขั้นตอนแรก สองขวดรูปกรวยปลอดเชื้อ( 1000 ml . ) แต่ละที่มี 400 มล. สารอาหารปานกลางใส่ 10 มิลลิลิตร ปริมาณของเชื้อได้มาตรฐานเมื่อยแล้วบ่มที่อุณหภูมิ 30 องศา C เป็นเวลา 24 ชั่วโมงในแบบเขย่า( 150 รอบต่อนาที ) เพื่อที่จะได้เติบโตที่หรูหรา แล้วกระทรวงวัฒนธรรมของเหลวที่ระดับ 11 , 000 XG 4 นาทีที่ 4 ° C และเซลล์แบคทีเรียได้รวบรวมและพักในเพิ่มเติมผลิตสื่อเพื่อปลูกฝีที่แบบปลอดเชื้อเรือเพื่อให้ปริมาณงานสุดท้ายของ 10 ลิตรปลอดเชื้อ มีประสิทธิภาพปานกลาง การเงื่อนไขและจุลชีววิทยาใช้เสร็จตามที่กล่าวถึงก่อนหน้านี้เครื่องปฏิกรณ์ชีวภาพสูงความหนาแน่นเซลล์วัฒนธรรมชุดเฟดนี้ทดลองเลี้ยงชุดวัฒนธรรมถูกสร้างขึ้นเพื่อศึกษาผลของความหนาแน่นเซลล์ล้างสูง ( 0.64 กรัม / ลิตร )ของ PS . fluorescens s48 การผลิตยัง . wfo เป็นเฟดอย่างต่อเนื่องใน / L / H 0.55 มิลลิลิตรในช่วง 18 H ของการเพาะปลูก( ตามผลจากกามัล et al .( 2012 ) สำหรับกึ่งขนาดการผลิต ตัวอย่าง ( 10-20 ml )ถ่ายจากที่เติบโตภายใต้วัฒนธรรมเป็นระยะ ๆ