2.4. Fungal deterioration of gelati

2.4. Fungal deterioration of gelatine and varnishes

Exposed glass plates (ORWO - ORiginal WOlfen, Wolfen, Germany) were developed in W35 metol developer by moistening the negatives in water for 5 min at 16 °C and subsequently transferring to the W-35 developer at 18–20 °C. The reagents were removed by placing the negatives in 2% Na2SO3 (POCH SA) for 3 min and rinsing in tap water for 10 min.

Gelatine was strengthen by treating it with tannin (HS 1- Hardelic Solution no 1) by placing moistened in water plates (5 min at 11–16 °C) in tanning solution (1% NaCO3 (POCH S.A), 5% formalin (Chempur, Piekary Slaskie, Poland)) for 5 min at 11 °C. After tanning the negatives were rinsed in water for 5, 10 and 20 min at 16 °C and left to dry for 24 h. After drying, the negatives were sterilised with ethyl alcohol and subsequently dammar or sandarac varnish was applied on the image layer (Wójcik, 1987).

Negatives were covered with varnish evenly distributed along the surface of the negative. After 72 h (the time necessary for evaporation of the solvent used for varnish preparation) the isolated strains of fungi were transferred with a needle in 2 spots onto the layers of varnish. For a single spot approx. 500 spores were used. The negatives were then placed on Petri dishes with filter paper soaked with deionised water and left in an incubator for 3 weeks at 26 °C. At regular intervals of 7 days, fungal growth was monitored. Digital photographs were taken with a Sony DSC-P200 camera alongside macro scale photographs taken with Nikon E995 (Tokyo, Japan) mounted on a 50x magnifying glass. After 21 days the negatives were moved to a dryer.

2.5. Evaluation of the impact of the isolated fungi on photographic gelatine and on photographic emulsion

Susceptibility of the photographic emulsion to microorganisms was examined on the light-sensitive photographic ammonia emulsion, composed of two solutions (I: 1.78 M KBr (POCH S.A.), 0,03 M KI (POCH S.A.), 3% gelatine (126FS, Puławy, Poland) prepared at 45 °C; II: 1,77 M AgNO3 (POCH S.A.) at 20 °C, the pH was adjusted by 25% solution of ammonia (Grupa Azoty S.A., Tarnow, Poland) until the entire sediment was completely dissolved). The emulsion was prepared by mixing the described solutions. To vigorously stirred 120 ml of solution I at 50 °C, 100 ml of the solution II was added. After 9 min, 20 g of gelatin (Puławy) was added. After 20 min 48 ml 50% acetic acid (POCH S.A.) was added and the emulsion was mixed and left for gelation. The emulsion was rinsed in demineralized water in order to remove salt redundant.

A tannin solution was added to the photographic emulsion (20 ml of water; 12 ml of 5% solution of chromium-potassium alum (POCH S.A.), 3 ml of 40% formalin (Chempur)) and alcohol (35 ml of alcohol solution, 33 ml of alcohol per 1 L of the emulsion). 20 Petri dishes with the photographic emulsion were prepared before inoculating with the fungi, 10 plates were autoclaved and 10 were not autoclaved (to compare the effect of sterilisation on fungal growth).

The second substance to be examined was photographic gelatine (Puławy). Gelatine is an extract from hydrolysed animal waste, predominantly animal skin and bones. In photography, the cleanest (first) aqueous extracts (dried) are used (Iliński, 1955). A solution of gelatine (9%) was prepared: dry gelatine was soaked in cold water and left for 24 h. Subsequently, the gelatine was dissolved in a water bath and poured into Petri dishes. The gelatine was subjected to sterilisation.

Subsequently, the isolated strains of fungi were transferred on to the samples of photographic emulsion and photographic gelatine. The samples were then left for 2 weeks at 21 °C. We visually assessed the condition of the medium and after 2 weeks we tested its pH, with wide range pH litmus strips.

2.6. Assessment of UV-induced luminescence of microbiological deterioration in the objects

Before launching conservation and restoration efforts we took digital photographs of UV-induced luminescence of the surface of the negatives. UV light (Philips, Amsterdam, The Nethelands) with 365 nm wavelength was used. Luminescence was recorded with a digital camera (Nikon D50) equipped with a corrective filter Heliopan KR-12 (HELIOPAN LICHTFILTER-TECHNIK SUMMER GMBH & CO KG, Gräfelfing/München, Germany).

3. Results and discussion
3.1. Fungal viability

The viability of microorganisms inhabiting the historic negatives (Fig. 1) was relatively low. The obtained scores, from the ATP count ranged from 27 for negative No. 17 to 325 RLU for negative No. 40. According to the positive control experiment (data not shown), the viability of microorganisms rated with the lumitester ranged from 5808 to 23,500 RLU, indicating that the negatives were probably colonised by microorganisms in the past, but currently the number of viable fungi inhabiting the negative is low. The ATP test can be a useful tool for quick and reliable assessment of microbial a

2.4. Fungal deterioration of gelatine and varnishes

Exposed glass plates (ORWO - ORiginal WOlfen, Wolfen, Germany) were developed in W35 metol developer by moistening the negatives in water for 5 min at 16 °C and subsequently transferring to the W-35 developer at 18–20 °C. The reagents were removed by placing the negatives in 2% Na2SO3 (POCH SA) for 3 min and rinsing in tap water for 10 min.

Gelatine was strengthen by treating it with tannin (HS 1- Hardelic Solution no 1) by placing moistened in water plates (5 min at 11–16 °C) in tanning solution (1% NaCO3 (POCH S.A), 5% formalin (Chempur, Piekary Slaskie, Poland)) for 5 min at 11 °C. After tanning the negatives were rinsed in water for 5, 10 and 20 min at 16 °C and left to dry for 24 h. After drying, the negatives were sterilised with ethyl alcohol and subsequently dammar or sandarac varnish was applied on the image layer (Wójcik, 1987).

Negatives were covered with varnish evenly distributed along the surface of the negative. After 72 h (the time necessary for evaporation of the solvent used for varnish preparation) the isolated strains of fungi were transferred with a needle in 2 spots onto the layers of varnish. For a single spot approx. 500 spores were used. The negatives were then placed on Petri dishes with filter paper soaked with deionised water and left in an incubator for 3 weeks at 26 °C. At regular intervals of 7 days, fungal growth was monitored. Digital photographs were taken with a Sony DSC-P200 camera alongside macro scale photographs taken with Nikon E995 (Tokyo, Japan) mounted on a 50x magnifying glass. After 21 days the negatives were moved to a dryer.

2.5. Evaluation of the impact of the isolated fungi on photographic gelatine and on photographic emulsion

Susceptibility of the photographic emulsion to microorganisms was examined on the light-sensitive photographic ammonia emulsion, composed of two solutions (I: 1.78 M KBr (POCH S.A.), 0,03 M KI (POCH S.A.), 3% gelatine (126FS, Puławy, Poland) prepared at 45 °C; II: 1,77 M AgNO3 (POCH S.A.) at 20 °C, the pH was adjusted by 25% solution of ammonia (Grupa Azoty S.A., Tarnow, Poland) until the entire sediment was completely dissolved). The emulsion was prepared by mixing the described solutions. To vigorously stirred 120 ml of solution I at 50 °C, 100 ml of the solution II was added. After 9 min, 20 g of gelatin (Puławy) was added. After 20 min 48 ml 50% acetic acid (POCH S.A.) was added and the emulsion was mixed and left for gelation. The emulsion was rinsed in demineralized water in order to remove salt redundant.

A tannin solution was added to the photographic emulsion (20 ml of water; 12 ml of 5% solution of chromium-potassium alum (POCH S.A.), 3 ml of 40% formalin (Chempur)) and alcohol (35 ml of alcohol solution, 33 ml of alcohol per 1 L of the emulsion). 20 Petri dishes with the photographic emulsion were prepared before inoculating with the fungi, 10 plates were autoclaved and 10 were not autoclaved (to compare the effect of sterilisation on fungal growth).

The second substance to be examined was photographic gelatine (Puławy). Gelatine is an extract from hydrolysed animal waste, predominantly animal skin and bones. In photography, the cleanest (first) aqueous extracts (dried) are used (Iliński, 1955). A solution of gelatine (9%) was prepared: dry gelatine was soaked in cold water and left for 24 h. Subsequently, the gelatine was dissolved in a water bath and poured into Petri dishes. The gelatine was subjected to sterilisation.

Subsequently, the isolated strains of fungi were transferred on to the samples of photographic emulsion and photographic gelatine. The samples were then left for 2 weeks at 21 °C. We visually assessed the condition of the medium and after 2 weeks we tested its pH, with wide range pH litmus strips.

2.6. Assessment of UV-induced luminescence of microbiological deterioration in the objects

Before launching conservation and restoration efforts we took digital photographs of UV-induced luminescence of the surface of the negatives. UV light (Philips, Amsterdam, The Nethelands) with 365 nm wavelength was used. Luminescence was recorded with a digital camera (Nikon D50) equipped with a corrective filter Heliopan KR-12 (HELIOPAN LICHTFILTER-TECHNIK SUMMER GMBH & CO KG, Gräfelfing/München, Germany).

3. Results and discussion
3.1. Fungal viability

The viability of microorganisms inhabiting the historic negatives (Fig. 1) was relatively low. The obtained scores, from the ATP count ranged from 27 for negative No. 17 to 325 RLU for negative No. 40. According to the positive control experiment (data not shown), the viability of microorganisms rated with the lumitester ranged from 5808 to 23,500 RLU, indicating that the negatives were probably colonised by microorganisms in the past, but currently the number of viable fungi inhabiting the negative is low. The ATP test can be a useful tool for quick and reliable assessment of microbial a

0/5000

จาก: -

เป็น: -

ผลลัพธ์ (ไทย) 1: [สำเนา]

คัดลอก!

2.4. เชื้อราเสื่อมของวุ้นและวาร์นิชแผ่นแก้วสัมผัส (ORWO - WOlfen เดิม Wolfen เยอรมัน) ถูกพัฒนาใน W35 metol พัฒนา โดย moistening เชิงลบในน้ำ 5 นาทีที่ 16 ° C และต่อมาโอนไปยังผู้พัฒนา W-35 ที่ 18 – 20 องศาเซลเซียส เปื้อนถูกเอาออก โดยวางแผ่นลบ 2% Na2SO3 (POCH SA) เป็นเวลา 3 นาที และล้างในน้ำประปาสำหรับ 10 นาทีวุ้นถูกเสริม โดยการรักษาด้วยแทนนิน (HS 1 Hardelic แก้ปัญหา 1) โดยวางชุบในน้ำแผ่น (5 นาทีที่ 11 – 16 ° C) ในการฟอกหนังโซลูชัน (1% NaCO3 (POCH S.A), 5% formalin (Chempur, Piekary ลปุช โปแลนด์)) 5 นาทีที่ 11 องศาเซลเซียส หลังจากฟอกหนัง เชิงลบถูกล้างในน้ำ 5, 10 และ 20 นาทีที่ 16 ° C และทิ้งให้แห้ง 24 ชั่วโมง หลังจากการอบแห้ง เชิงลบได้ผ่านการฆ่าเชื้อ ด้วยเอทิลแอลกอฮอล์และยาง หรือใช้เคลือบ sandarac บนเลเยอร์ภาพ (Wójcik, 1987)ฟิล์มถูกปกคลุม ด้วยวานิชที่กระจายไปตามพื้นผิวของฟิล์ม แยกสายพันธุ์ของเชื้อรามีการโอนย้าย ด้วยเข็มในจุดที่ 2 บนชั้นของเคลือบหลัง 72 ชม. (เวลาที่จำเป็นสำหรับการระเหยของตัวทำละลายที่ใช้สำหรับเตรียมสารเคลือบเงา) สำหรับสปอร์ประมาณ 500 จุดเดียวที่ใช้ เชิงลบแล้วใส่ในจานเพาะ ด้วยกระดาษกรองแช่ ด้วยน้ำ deionised และเหลืออยู่ในตู้อบที่ 3 สัปดาห์ที่ 26 องศาเซลเซียส เชื้อราเจริญเติบโตถูกตรวจสอบอย่างสม่ำเสมอ 7 วัน รูปถ่ายดิจิทัลถ่าย ด้วยกล้อง Sony DSC-P200 ควบคู่ไปกับมาตราส่วนภาพถ่าย ด้วย Nikon E995 50 x แว่นติด (โตเกียว ญี่ปุ่น) หลังจาก 21 วัน เชิงลบถูกย้ายไปเครื่องเป่า2.5. การประเมินผลกระทบของเชื้อแยก บนวุ้นถ่ายภาพ และถ่ายภาพอิมัลชันการตรวจสอบความไวของอิมัลชันถ่ายเพื่อจุลินทรีย์ในอิมัลชันไวแสงถ่ายแอมโมเนีย ประกอบด้วยโซลูชั่นสอง (i: 1.78 M KBr (POCH S.A.), 0,03 M KI (POCH S.A.) วุ้น 3% (126FS, Puławy โปแลนด์) เตรียม 45 ° c II: 1,77 M AgNO3 (POCH S.A.) ที่อุณหภูมิ 20 ° C, pH ถูกปรับปรุง โดย 25% สารละลายแอมโมเนีย (Grupa Azoty S.A., Tarnow โปแลนด์) จนละลายตะกอนทั้งหมด) อิมัลชั่นจัดทำ โดยการผสมการแก้ไขปัญหาที่อธิบายไว้ เพื่อกวนแรง ๆ 120 มล.ของ ฉันที่ 50 ° C, 100 มิลลิลิตรของโซลูชัน II ถูก หลัง 9 นาที 20 g เจลาติน (Puławy) เพิ่มขึ้น เพิ่ม 50% กรดอะซิติก (POCH S.A.) หลังจาก 20 นาที 48 มิลลิลิตร และผสม และซ้ายสำหรับ gelation ในอิมัลชัน ในอิมัลชันถูกล้างในน้ำไอออนเพื่อเอาเกลือที่ซ้ำซ้อนการแก้ปัญหาคะแนนถูกถ่ายภาพอิมัลชัน (20 ml ของน้ำ 12 ml ของ 5% สารละลายสารส้มโพแทสเซียมโครเมียม (POCH S.A.), 40% formalin (Chempur) 3 มิลลิลิตร) และแอลกอฮอล์ (35 ml ของสารละลายแอลกอฮอล์ 33 ml ของแอลกอฮอล์ต่อ 1 L ของอิมัลชัน) อาหารเพาะ 20 ถ่ายภาพอิมัลชันวจัดก่อน inoculating กับเชื้อราการ 10 แผ่นนึ่ง และ 10 มีไม่นึ่ง (การเปรียบเทียบผลของการฆ่าเชื้อในการเจริญเติบโตของเชื้อรา)ถ่ายวุ้น (Puławy) สารสองสามารถตรวจสอบได้ วุ้นเป็นสารสกัดจากขยะซึ่งจะสัตว์ หนังสัตว์ส่วนใหญ่ และกระดูก ในการถ่ายภาพ ใช้สะอาด (แรก) ละลายสารสกัด (แห้ง) (Iliński, 1955) จัดเตรียมสารละลายวุ้น (9%): วุ้นแห้งแช่ในน้ำเย็น และซ้ายใน 24 ชม ต่อมา วุ้นให้ละลายในอ่างน้ำ และเทลงในจานเพาะ วุ้นได้ภายใต้การทำหมันต่อมา แยกสายพันธุ์ของเชื้อราถูกโอนไปยังตัวอย่างของอิมัลชั่นถ่ายภาพและถ่ายภาพวุ้น ตัวอย่างที่ถูกทิ้งจากนั้น 2 สัปดาห์ที่ 21 องศาเซลเซียส เราสายตาประเมินเงื่อนไข ของสื่อ และหลัง จาก 2 สัปดาห์เราทดสอบเป็น pH พร้อมทั้งช่วง pH สารสีน้ำเงินแถบ2.6. การประเมินเรืองแสง UV ที่เกิดการเสื่อมสภาพทางจุลชีววิทยาในวัตถุก่อนที่จะเปิดความพยายามอนุรักษ์และฟื้นฟู เราเอาภาพดิจิตอลของ UV ที่เกิดการเรืองแสงของพื้นผิวของแผ่นลบ ใช้แสงยูวี (Philips อัมสเตอร์ดัม เดอะ Nethelands) กับ 365 nm ความยาวคลื่น มีบันทึกเรืองแสง ด้วยกล้องดิจิตอล (Nikon D50) ประกอบ ด้วยตัวกรองแก้ไข Heliopan KR-12 (HELIOPAN LICHTFILTER TECHNIK ฤดูร้อน GMBH & CO KG, Gräfelfing/München เยอรมนี)3. ผล และการอภิปราย3.1. ชีวิตเชื้อราชีวิตของจุลินทรีย์ที่อาศัยอยู่เชิงลบประวัติศาสตร์ (รูปที่ 1) ได้ค่อนข้างต่ำ ได้รับคะแนน จากจำนวน ATP ที่ตั้งแต่ 27 ลบหมายเลข 17 ไป 325 RLU สำหรับเบอร์ 40 ลบ ตามบวกควบคุมทดลอง (ไม่แสดงข้อมูล), ชีวิตของจุลินทรีย์ได้คะแนนกับ lumitester โจมตีระยะไกลจาก 5808 23,500 RLU ระบุว่า เชิงลบที่อาจจะสิวอักเสบขึ้นจุลินทรีย์ในอดีต แต่ในปัจจุบันจำนวนของเชื้อราที่ได้อาศัยอยู่ในทางลบคือต่ำ การทดสอบ ATP สามารถเป็นเครื่องมือที่มีประโยชน์สำหรับการประเมินอย่างรวดเร็ว และเชื่อถือได้ของจุลินทรีย์

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:[สำเนา]

คัดลอก!

2.4 การเสื่อมสภาพของเจลาตินจากเชื้อราและเคลือบ

แดงแผ่นกระจก (ORWO - เดิม Wolfen, Wolfen, เยอรมนี) ถูกพัฒนาขึ้นในนักพัฒนา W35 metol โดยวัตถุที่เปียกชื้นเชิงลบในน้ำเป็นเวลา 5 นาทีที่ 16 ° C และต่อมาได้โอนไปยังนักพัฒนา W-35 ใน 18 20 ° C น้ำยาถูกถอดออกโดยการวางเชิงลบใน 2% Na2SO3 (Poch SA) เป็นเวลา 3 นาทีและล้างในน้ำประปาเป็นเวลา 10 นาที.

เจลาตินคือสร้างความเข้มแข็งโดยการรักษาด้วยสารแทนนิน (HS 1- Hardelic ไม่มีวิธีแก้ 1) โดยการวางชุบในน้ำ แผ่น (5 นาทีที่ 11-16 ° C) ในการแก้ปัญหาการฟอกหนัง (1% NaCO3 (Poch SA), 5% ฟอร์มาลิน (Chempur, Piekary Slaskie โปแลนด์)) เป็นเวลา 5 นาทีที่ 11 ° C หลังจากฟอกหนังเชิงลบที่ถูกล้างในน้ำเป็นเวลา 5, 10 และ 20 นาทีที่ 16 องศาเซลเซียสและทิ้งให้แห้งเป็นเวลา 24 ชั่วโมง หลังจากการอบแห้งเชิงลบที่ถูกฆ่าเชื้อด้วยแอลกอฮอล์และต่อมา Dammar หรือ sandarac วานิชถูกนำมาใช้ในชั้นของภาพ (Wójcik, 1987).

เชิงลบถูกปกคลุมไปด้วยสารเคลือบเงากระจายไปตามพื้นผิวของเชิงลบ หลังจาก 72 ชั่วโมง (เวลาที่จำเป็นสำหรับการระเหยของตัวทำละลายที่ใช้สำหรับการเตรียมความพร้อมเคลือบเงา) สายพันธุ์ที่แยกจากเชื้อราถูกย้ายด้วยเข็มใน 2 จุดบนชั้นของสารเคลือบเงา สำหรับประมาณจุดเดียว 500 สปอร์ถูกนำมาใช้ เชิงลบที่ถูกวางไว้แล้วในจานเลี้ยงเชื้อด้วยกระดาษกรองแช่ด้วยน้ำ deionised และที่เหลืออยู่ในตู้อบเป็นเวลา 3 สัปดาห์ที่ 26 ° C ในช่วงเวลาปกติของ 7 วันเจริญเติบโตของเชื้อราได้รับการตรวจสอบ ภาพดิจิตอลที่ถูกถ่ายด้วยกล้อง SONY DSC-P200 ควบคู่ไปกับการถ่ายภาพระดับมหภาคที่ถ่ายด้วยกล้อง Nikon E995 (โตเกียวประเทศญี่ปุ่น) ติดตั้งอยู่บนกระจก 50x แว่นขยาย หลังจาก 21 วันเชิงลบที่ถูกย้ายไปอบแห้ง.

2.5 การประเมินผลกระทบของเชื้อราบางแห่งในเจลาตินการถ่ายภาพและอิมัลชันการถ่ายภาพ

ความไวของอิมัลชันถ่ายภาพจุลินทรีย์ได้รับการตรวจสอบในอิมัลชันแอมโมเนียถ่ายภาพความไวต่อแสงประกอบด้วยสองโซลูชั่น (ฉัน: 1.78 M KBr (Poch SA), 0, 03 M KI (Poch SA), 3% เจลาติน (126FS, Puławy, โปแลนด์) เตรียมที่ 45 ° C; ii: 1,77 M AgNO3 (Poch SA) ที่ 20 ° C ค่า pH มีการปรับวิธีการแก้ปัญหาโดย 25% ของแอมโมเนีย (Grupa Azoty SA, Tarnow, โปแลนด์) จนกระทั่งตะกอนทั้งหมดก็เลือนหายไปอย่างสมบูรณ์) อิมัลชันถูกจัดทำขึ้นโดยการผสมการแก้ปัญหาการอธิบาย แรงขยับ 120 มล. ของการแก้ปัญหาผมที่ 50 ° C, 100 มล. ของการแก้ปัญหาเป็นครั้งที่สองเพิ่ม หลังจาก 9 นาที, 20 กรัมของเจลาติน (Puławy) ถูกเพิ่มเข้ามา หลังจาก 20 นาที 48 มล. 50% กรดอะซิติก (Poch SA) เป็นเพิ่มและอิมัลชันก็แตกต่างกันและปล่อยทิ้งให้เจ อิมัลชันถูกล้างในน้ำปราศจากแร่ธาตุเพื่อที่จะลบซ้ำซ้อนเกลือ.

วิธีการแก้ปัญหาแทนนินที่ถูกเพิ่มลงในอิมัลชันการถ่ายภาพ (20 มิลลิลิตรของน้ำ 12 มล. จาก 5% การแก้ปัญหาของสารส้มโครเมียมโพแทสเซียม (Poch SA) 3 มล. 40% ฟอร์มาลิน (Chempur)) และเครื่องดื่มแอลกอฮอล์ (35 มล. ของการแก้ปัญหาเครื่องดื่มแอลกอฮอล์ 33 มล. ของเครื่องดื่มแอลกอฮอล์ต่อ 1 ลิตรอิมัลชัน) 20 จานเลี้ยงเชื้อกับอิมัลชันการถ่ายภาพได้จัดทำก่อนที่จะฉีดวัคซีนกับเชื้อรา 10 แผ่นถูกมวลและ 10 ไม่ได้นึ่งฆ่าเชื้อ (เพื่อเปรียบเทียบผลของการฆ่าเชื้อต่อการเจริญเติบโตของเชื้อรา).

สารที่สองที่จะถูกตรวจสอบเป็นเจลาตินการถ่ายภาพ (Puławy) เจลาตินเป็นสารสกัดจากของเสียจากสัตว์ย่อยผิวส่วนใหญ่สัตว์และกระดูก ในการถ่ายภาพที่สะอาด (ตอนแรก) สารสกัดด้วยน้ำ (แห้ง) จะใช้ (Iliński, 1955) วิธีการแก้ปัญหาของเจลาติน (9%) ถูกจัดทำขึ้น: เจลาตินแห้งแช่ในน้ำเย็นและที่เหลือเป็นเวลา 24 ชั่วโมง ต่อจากเจลาตินก็เลือนหายไปในอ่างน้ำและเทลงในจานเลี้ยงเชื้อ เจลาตินก็จะถูกฆ่าเชื้อ.

ต่อจากนั้นสายพันธุ์ที่แยกจากเชื้อรามีการถ่ายโอนในตัวอย่างของอิมัลชันถ่ายภาพและเจลาตินการถ่ายภาพ กลุ่มตัวอย่างที่ถูกทิ้งไว้แล้วเป็นเวลา 2 สัปดาห์ที่ 21 ° C เราประเมินสภาพสายตาของสื่อและหลังจาก 2 สัปดาห์เราทดสอบค่า pH ของตนกับแผ่นกระดาษลิตมัสช่วงค่า pH กว้าง.

2.6 การประเมินผลการเรืองแสงยูวีที่เกิดจากการเสื่อมสภาพของจุลินทรีย์ในวัตถุ

ก่อนที่จะเปิดตัวการอนุรักษ์และฟื้นฟูความพยายามของเราเอาภาพดิจิตอลของเรืองแสงยูวีที่เกิดขึ้นของพื้นผิวของเชิงลบ แสงยูวี (ฟิลิปส์, อัมสเตอร์ดัม, Nethelands) 365 นาโนเมตรความยาวคลื่นถูกนำมาใช้ เรืองแสงจะถูกบันทึกด้วยกล้องดิจิตอล (Nikon D50) พร้อมกับตัวกรองการแก้ไข Heliopan KR-12 (HELIOPAN LICHTFILTER-Technik SUMMER GmbH & Co KG, Grafelfing / München, เยอรมัน).

3 ผลการค้นหาและการอภิปราย
3.1 มีชีวิตเชื้อรา

ศักยภาพของจุลินทรีย์ที่อาศัยอยู่เชิงประวัติศาสตร์ (รูปที่ 1). ค่อนข้างต่ำ คะแนนที่ได้รับจากเอทีพีนับตั้งแต่ 27 เชิงลบเลขที่ 17-325 RLU เชิงลบครั้งที่ 40 ตามที่การทดลองควบคุมบวก (ไม่ได้แสดงข้อมูล) ที่มีศักยภาพของจุลินทรีย์จัดอันดับกับ lumitester ตั้งแต่ 5808 ไป 23,500 RLU แสดงให้เห็นว่าเชิงลบอาจจะอาณานิคมโดยจุลินทรีย์ในอดีตที่ผ่านมา แต่ขณะนี้จำนวนของเชื้อราที่ทำงานที่อาศัยอยู่ในเชิงลบอยู่ในระดับต่ำ การทดสอบเอทีพีสามารถเป็นเครื่องมือที่มีประโยชน์สำหรับการประเมินผลได้รวดเร็วและเชื่อถือได้ของเชื้อใน

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:[สำเนา]

คัดลอก!

2.4 . การเสื่อมสภาพของเชื้อราและเจลาติน วาร์นิชสัมผัสแผ่นแก้ว ( โอโว่ - ต้นฉบับต้า Wolfen , เยอรมนี ) ถูกพัฒนาขึ้นใน w35 metol พัฒนาโดย moistening ลบในน้ำเดือด 5 นาทีที่ 16 ° C และต่อมาย้ายไป w-35 ผู้พัฒนาที่ 18 – 20 ° C สามารถถูกกำจัดออกโดยการวางฟิล์ม 2% Na2S ( poch ซา ) เป็นเวลา 3 นาที และทําความสะอาดในน้ำประปาเป็นเวลา 10 นาทีวุ้นก็เสริมสร้างโดยการรักษาด้วยแทนนิน ( HS 1 - hardelic โซลูชั่นที่ 1 ) โดยวางแผ่นชุบในน้ำ ( 5 นาทีที่ 11 – 16 ° C ) ในการฟอกหนังโซลูชัน ( 1% naco3 ( poch มี ) , 5% ฟอร์มาลิน ( chempur เพียคารี ซลาสกี , โปแลนด์ , ) เป็นเวลา 5 นาทีที่ 11 องศา หลังจากการฟอกฟิล์มถูกล้างในน้ำ 5 , 10 และ 20 นาทีที่ 16 ° C และทิ้งให้แห้ง 24 ชั่วโมง หลังจากการอบแห้ง , ฟิล์มถูก sterilised กับเอทิลแอลกอฮอล์และต่อมาชันหรือแซนดาแรกทาถูกนำมาใช้บนเลเยอร์ภาพ ( W ó jcik , 1987 )ฟิล์มถูกปกคลุมด้วยทากระจายตัวไปตามพื้นผิวของเชิงลบ หลังจาก 72 ชั่วโมง ( เวลาที่จำเป็นสำหรับการระเหยของตัวทำละลายที่ใช้ในการเตรียมทา ) แยกสายพันธุ์ของเชื้อราที่ถูกย้ายมีเข็ม 2 จุดบนชั้นเคลือบเงา สำหรับประมาณ 500 จุดเดียวที่มีการใช้ ฟิล์มถูกวางไว้แล้วในจานเพาะเลี้ยงด้วยกรองกระดาษที่ชุ่มไปด้วยน้ำ และ deionised เหลืออยู่ในตู้อบ 3 สัปดาห์ที่ 26 องศา เป็นระยะ ๆ 7 วัน การเจริญเติบโตของเชื้อราในการติดตาม ภาพดิจิตอลที่ถ่ายด้วยกล้อง Sony dsc-p200 พร้อมกับมาโครขนาดภาพที่ถ่ายด้วย Nikon e995 ( โตเกียว , ญี่ปุ่น ) ติดตั้งบน 50x แว่นขยาย หลังจาก 21 วันฟิล์มถูกย้ายไปยังห้องอบแห้ง2.5 การประเมินผลของผลกระทบของการแยกเชื้อราในการถ่ายภาพและการถ่ายภาพอิมัลชันเจลาตินความไวของอิมัลชันภาพถ่ายจุลินทรีย์ถูกตรวจสอบในอิมัลชันแอมโมเนียถ่ายภาพ light-sensitive , ประกอบด้วยสองโซลูชั่น ( ผม : 1.78 เมตรา ( poch S.A . ) 0,03 M กี ( poch S.A . ) 3% เจลาติน ( โปแลนด์ 126fs PU ł ออย ) เตรียมไว้ที่ 45 ° C ; 2 : 1,77 M agno3 ( poch S.A . ) 20 ° C , pH ปรับ 25% สารละลายแอมโมเนีย ( grupa azoty SA , ทาร์นอฟ , โปแลนด์ ) จนกระทั่งตะกอนทั้งหมดถูกยุบทั้งหมด ) อิมัลชันที่เตรียมโดยการผสมอธิบาย โซลูชั่น ยนแบบ 120 มิลลิลิตรของสารละลายที่ 50 ° C 100 มิลลิลิตรของสารละลาย 2 เพิ่ม หลังจาก 9 นาที 20 กรัมเจลาติน ( PU ł ออย ) ถูกเพิ่มเข้ามา หลังจาก 20 นาที 48 มิลลิลิตร 50% กรดอะซิติก ( poch SA ) คือการเพิ่มและอิมัลชันผสมและทิ้งให้เจลาติน . อิมัลชันเปอร์เซนต์ถูกล้างในน้ำเพื่อเอาเกลือ )สารละลายแทนนินถูกเพิ่มเข้าไปในการถ่ายภาพอิมัลชัน ( 20 มิลลิลิตรของน้ำ ; 12 มิลลิลิตรของสารละลายสารส้มโพแทสเซียม โครเมียม 5 % ( poch S.A . ) , 3 ml 40% ฟอร์มาลิน ( chempur ) และแอลกอฮอล์ ( 35 มิลลิลิตรของสารละลาย แอลกอฮอล์ 33 มล. ของแอลกอฮอล์ต่อ 1 ลิตรของอิมัลชัน ) 20 จานเลี้ยงเชื้อกับการถ่ายภาพอิมัลชันที่เตรียมก่อนการฉีดวัคซีนกับเชื้อรา 10 แผ่นถูกสังเคราะห์และ 10 ไม่สังเคราะห์ ( เพื่อเปรียบเทียบผลของ sterilisation ต่อการเจริญเติบโตของเชื้อรา )ตัวที่สองที่จะตรวจสอบคือวุ้นถ่าย ( PU ł ออย ) วุ้นเป็นสารสกัดจากน้ำตาลของเสียจากสัตว์ใหญ่สัตว์ที่ผิวหนัง และกระดูก ในการถ่ายภาพ สะอาด ( แรก ) สารสกัดน้ำ ( แห้ง ) จะใช้ ( หรือ ńสกี , 1955 ) สารละลายเจลาติน ( 9% ) เตรียม : แห้ง วุ้นก็แช่ในน้ำเย็นแล้วเป็นเวลา 24 ชั่วโมง ภายหลัง , เจลาตินที่ละลายได้ในน้ำอาบและเทลงในจานเพาะเลี้ยง เจลาตินที่ถูกยัดเยียดให้ sterilisation .ต่อมาแยกสายพันธุ์ของเชื้อราที่ถูกย้ายไปยังตัวอย่างของการถ่ายภาพอิมัลชันเจลาตินและภาพถ่าย จำนวนและทิ้งไว้ 2 สัปดาห์ที่ 21 องศา เราสายตาประเมินสภาพปานกลาง และหลังจาก 2 สัปดาห์ที่เราทดสอบความเป็นกรดของมันกว้างช่วง pH กระดาษลิตมัสแถบ2.6 การประเมินปริมาณการเรืองแสง UV การเสื่อมสภาพในวัตถุก่อนการเริ่มงานอนุรักษ์และฟื้นฟูความพยายามเราเอาภาพถ่ายดิจิตอลของรังสียูวีจากแสงของพื้นผิวของฟิล์ม . แสงยูวี ( Philips , อัมสเตอร์ดัม nethelands ) กับ 365 nm ความยาวคลื่นที่ใช้ การบันทึกด้วยกล้องดิจิตอล ( Nikon D50 ) พร้อมกับการแก้ไขตัวกรอง heliopan kr-12 ( heliopan lichtfilter-technik ฤดูร้อน GmbH & Co KG GR และ felfing / M ü nchen , เยอรมัน )3 . ผลและการอภิปราย3.1 . 1 ราความมีชีวิตของเชื้อจุลินทรีย์ที่อาศัยอยู่ในเชิงประวัติศาสตร์ ( รูปที่ 1 ) ค่อนข้างต่ำ นำคะแนนจากเอทีพี นับตั้งแต่ 27 ลบเบอร์ 17 325 rlu เพื่อลบหมายเลข 40 ตามการทดลองควบคุมบวก ( ข้อมูลไม่แสดง ) , ความมีชีวิตของเชื้อจุลินทรีย์อยู่ด้วย lumitester ระหว่าง 5808 มา 23500 rlu ระบุว่า ฟิล์มเป็นอาณานิคมโดยจุลินทรีย์ในอดีต แต่ในปัจจุบันจำนวนของที่มีเชื้อราที่อาศัยอยู่ในทางต่ำ เอทีพีการทดสอบที่สามารถเป็นเครื่องมือที่มีประโยชน์สำหรับการประเมินที่รวดเร็วและเชื่อถือได้ของจุลินทรีย์

การแปล กรุณารอสักครู่..

ภาษาอื่น ๆ

การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.