- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
dinoflagellates, and examined the t
dinoflagellates, and examined the toxicity by mouse
bioassay. The presence of PSP toxins was confirmed by
electrospray ionization mass spectrometry (ESI-MS), and
the toxin composition of the crab and the mussel were also
analyzed by high performance liquid chromatography with
the postcolumn derivatization (HPLC-FLD) method
(Oshima, 1995a).
2. Materials and methods
2.1. Shellfish
In April 1999, specimens of the crab Telmessus
acutidens, mussel Mytylus galloprovincialis, short-necked
clam Tapes japonica, sea urchin Strongylocentrotus nudus,
oyster Crassostrea gigas, scallop Chlamys farreri nipponensis,
and ascidian Halocynthia roretzi were collected at
Onahama in Japan by scuba diving. The highest concentration
of Alexandrium spp. during our collection in 1999
reached to 2.4 £ 103 cells/l. The crabs and the mussels were
collected again in 2000 at the same point, though the
concentration of Alexandrium spp. reached only 10 cells/l.
The collected shellfishes were stored below 220 8C until
sample preparation.
2.2. Assay of toxicity
The test solution for toxicity assay was extracted from
the viscera of the crabs, and from the whole edible part of
other specimens. Briefly, each tissue was ground with the
same volume of 0.1N HCl, and heated in boiling water for
5 min after adjusting the pH to 2–4. The mixture was
centrifuged, and the supernatant was examined by the
mouse bioassay method which is the official Japanese
method for PSP monitoring (Kawabata, 1978). The activity
was expressed in mouse units (MU), 1 MU being defined as
the amount of toxin required to kill a 20 g ddY strain male
mouse in 15 min after intraperitoneal injection.
2.3. Analysis of the toxin by HPLC-FLD
The extract used for the toxicity assay was passed
through a cartridge column (Sep-Pack C18, Waters) and an
ultrafiltration membrane (Ultrafree C3GC, Millipore), and
then the filtrate was applied for HPLC-FLD analysis. HPLCFLD
analysis was performed on a reversed phase column
(Develosil C8, Nomura Chemicals) by the method of
Oshima (1995a). All chemicals and solvents used were
HPLC or analytical grade.
2.4. ESI-MS analysis of PSP toxins
The peaks expected as gonyautoxins (GTXs) and Nsulfocarbamoyl
toxins (
bioassay. The presence of PSP toxins was confirmed by
electrospray ionization mass spectrometry (ESI-MS), and
the toxin composition of the crab and the mussel were also
analyzed by high performance liquid chromatography with
the postcolumn derivatization (HPLC-FLD) method
(Oshima, 1995a).
2. Materials and methods
2.1. Shellfish
In April 1999, specimens of the crab Telmessus
acutidens, mussel Mytylus galloprovincialis, short-necked
clam Tapes japonica, sea urchin Strongylocentrotus nudus,
oyster Crassostrea gigas, scallop Chlamys farreri nipponensis,
and ascidian Halocynthia roretzi were collected at
Onahama in Japan by scuba diving. The highest concentration
of Alexandrium spp. during our collection in 1999
reached to 2.4 £ 103 cells/l. The crabs and the mussels were
collected again in 2000 at the same point, though the
concentration of Alexandrium spp. reached only 10 cells/l.
The collected shellfishes were stored below 220 8C until
sample preparation.
2.2. Assay of toxicity
The test solution for toxicity assay was extracted from
the viscera of the crabs, and from the whole edible part of
other specimens. Briefly, each tissue was ground with the
same volume of 0.1N HCl, and heated in boiling water for
5 min after adjusting the pH to 2–4. The mixture was
centrifuged, and the supernatant was examined by the
mouse bioassay method which is the official Japanese
method for PSP monitoring (Kawabata, 1978). The activity
was expressed in mouse units (MU), 1 MU being defined as
the amount of toxin required to kill a 20 g ddY strain male
mouse in 15 min after intraperitoneal injection.
2.3. Analysis of the toxin by HPLC-FLD
The extract used for the toxicity assay was passed
through a cartridge column (Sep-Pack C18, Waters) and an
ultrafiltration membrane (Ultrafree C3GC, Millipore), and
then the filtrate was applied for HPLC-FLD analysis. HPLCFLD
analysis was performed on a reversed phase column
(Develosil C8, Nomura Chemicals) by the method of
Oshima (1995a). All chemicals and solvents used were
HPLC or analytical grade.
2.4. ESI-MS analysis of PSP toxins
The peaks expected as gonyautoxins (GTXs) and Nsulfocarbamoyl
toxins (
0/5000
dinoflagellates, and examined the toxicity by mousebioassay. The presence of PSP toxins was confirmed byelectrospray ionization mass spectrometry (ESI-MS), andthe toxin composition of the crab and the mussel were alsoanalyzed by high performance liquid chromatography withthe postcolumn derivatization (HPLC-FLD) method(Oshima, 1995a).2. Materials and methods2.1. ShellfishIn April 1999, specimens of the crab Telmessusacutidens, mussel Mytylus galloprovincialis, short-neckedclam Tapes japonica, sea urchin Strongylocentrotus nudus,oyster Crassostrea gigas, scallop Chlamys farreri nipponensis,and ascidian Halocynthia roretzi were collected atOnahama in Japan by scuba diving. The highest concentrationof Alexandrium spp. during our collection in 1999reached to 2.4 £ 103 cells/l. The crabs and the mussels werecollected again in 2000 at the same point, though theconcentration of Alexandrium spp. reached only 10 cells/l.The collected shellfishes were stored below 220 8C untilsample preparation.2.2. Assay of toxicityThe test solution for toxicity assay was extracted fromthe viscera of the crabs, and from the whole edible part ofother specimens. Briefly, each tissue was ground with thesame volume of 0.1N HCl, and heated in boiling water for5 min after adjusting the pH to 2–4. The mixture wascentrifuged, and the supernatant was examined by themouse bioassay method which is the official Japanesemethod for PSP monitoring (Kawabata, 1978). The activitywas expressed in mouse units (MU), 1 MU being defined asthe amount of toxin required to kill a 20 g ddY strain malemouse in 15 min after intraperitoneal injection.2.3. Analysis of the toxin by HPLC-FLDThe extract used for the toxicity assay was passedthrough a cartridge column (Sep-Pack C18, Waters) and anultrafiltration membrane (Ultrafree C3GC, Millipore), andthen the filtrate was applied for HPLC-FLD analysis. HPLCFLDanalysis was performed on a reversed phase column(Develosil C8, Nomura Chemicals) by the method ofOshima (1995a). All chemicals and solvents used wereHPLC or analytical grade.2.4. ESI-MS analysis of PSP toxinsThe peaks expected as gonyautoxins (GTXs) and Nsulfocarbamoyltoxins (
การแปล กรุณารอสักครู่..
dinoflagellates dinoflagellates, and examined the toxicity by mouse
และการตรวจสอบความเป็นพิษโดยเมาส์ชีวภาพ bioassay. The presence of PSP toxins was confirmed by
electrospray ionization mass spectrometry (ESI-MS), and
the toxin composition of the crab and the mussel were also
analyzed by high performance liquid chromatography with
the postcolumn derivatization (HPLC-FLD) method
(Oshima, 1995a).
2. Materials and methods
2.1. Shellfish
In April 1999, specimens of the crab Telmessus
acutidens, mussel Mytylus galloprovincialis, short-necked
clam Tapes japonica, sea urchin Strongylocentrotus nudus,
oyster Crassostrea gigas, scallop Chlamys farreri nipponensis,
and ascidian Halocynthia roretzi were collected at
Onahama in Japan by scuba diving. The highest concentration
of Alexandrium spp. during our collection in 1999
reached to 2.4 £ 103 cells/l. The crabs and the mussels were
collected again in 2000 at the same point, though the
concentration of Alexandrium spp. reached only 10 cells/l.
The collected shellfishes were stored below 220 8C until
sample preparation.
2.2. Assay of toxicity
The test solution for toxicity assay was extracted from
the viscera of the crabs, and from the whole edible part of
other specimens. Briefly, each tissue was ground with the
same volume of 0.1N HCl, and heated in boiling water for
5 min after adjusting the pH to 2–4. The mixture was
centrifuged, and the supernatant was examined by the
mouse bioassay method which is the official Japanese
method for PSP monitoring (Kawabata, 1978). The activity
was expressed in mouse units (MU), 1 MU being defined as
the amount of toxin required to kill a 20 g ddY strain male
mouse in 15 min after intraperitoneal injection.
2.3. Analysis of the toxin by HPLC-FLD
The extract used for the toxicity assay was passed
through a cartridge column (Sep-Pack C18, Waters) and an
ultrafiltration membrane (Ultrafree C3GC, Millipore), and
then the filtrate was applied for HPLC-FLD analysis. HPLCFLD
analysis was performed on a reversed phase column
(Develosil C8, Nomura Chemicals) by the method of
Oshima (1995a). All chemicals and solvents used were
HPLC or analytical grade.
2.4. ESI-MS analysis of PSP toxins
The peaks expected as gonyautoxins (GTXs) and Nsulfocarbamoyl
toxins (
และการตรวจสอบความเป็นพิษโดยเมาส์ชีวภาพ bioassay. The presence of PSP toxins was confirmed by
electrospray ionization mass spectrometry (ESI-MS), and
the toxin composition of the crab and the mussel were also
analyzed by high performance liquid chromatography with
the postcolumn derivatization (HPLC-FLD) method
(Oshima, 1995a).
2. Materials and methods
2.1. Shellfish
In April 1999, specimens of the crab Telmessus
acutidens, mussel Mytylus galloprovincialis, short-necked
clam Tapes japonica, sea urchin Strongylocentrotus nudus,
oyster Crassostrea gigas, scallop Chlamys farreri nipponensis,
and ascidian Halocynthia roretzi were collected at
Onahama in Japan by scuba diving. The highest concentration
of Alexandrium spp. during our collection in 1999
reached to 2.4 £ 103 cells/l. The crabs and the mussels were
collected again in 2000 at the same point, though the
concentration of Alexandrium spp. reached only 10 cells/l.
The collected shellfishes were stored below 220 8C until
sample preparation.
2.2. Assay of toxicity
The test solution for toxicity assay was extracted from
the viscera of the crabs, and from the whole edible part of
other specimens. Briefly, each tissue was ground with the
same volume of 0.1N HCl, and heated in boiling water for
5 min after adjusting the pH to 2–4. The mixture was
centrifuged, and the supernatant was examined by the
mouse bioassay method which is the official Japanese
method for PSP monitoring (Kawabata, 1978). The activity
was expressed in mouse units (MU), 1 MU being defined as
the amount of toxin required to kill a 20 g ddY strain male
mouse in 15 min after intraperitoneal injection.
2.3. Analysis of the toxin by HPLC-FLD
The extract used for the toxicity assay was passed
through a cartridge column (Sep-Pack C18, Waters) and an
ultrafiltration membrane (Ultrafree C3GC, Millipore), and
then the filtrate was applied for HPLC-FLD analysis. HPLCFLD
analysis was performed on a reversed phase column
(Develosil C8, Nomura Chemicals) by the method of
Oshima (1995a). All chemicals and solvents used were
HPLC or analytical grade.
2.4. ESI-MS analysis of PSP toxins
The peaks expected as gonyautoxins (GTXs) and Nsulfocarbamoyl
toxins (
การแปล กรุณารอสักครู่..
ไดโนแฟลกเจลลา และการตรวจสอบความเป็นพิษ โดยทดสอบเมาส์
การปรากฏตัวของ PSP สารพิษที่ได้รับการยืนยันโดยวิธีพ่นละอองไฟฟ้าไอแมสสเปกโตรเมทรี ( esi-ms
) และสารพิษส่วนประกอบของปูและหอยยัง
วิเคราะห์โดยวิธีโครมาโทกราฟีของเหลวสมรรถนะสูงด้วย
postcolumn ซัล ( hplc-fld )
( ชิมะ 1995a )
2 วัสดุและวิธีการ
2.1 . หอย
ในเดือนเมษายน 1999ตัวอย่างของปู telmessus
acutidens mytylus galloprovincialis , หอยแมลงภู่ , หอยคอสั้น
เทปญี่ปุ่น หอยเม่น strongylocentrotus nudus
กรามดำ Crassostrea ศึกษา , หอยนางรม , หอยเชลล์ chlamys farreri nipponensis
ascidian , และ halocynthia roretzi เก็บตัวที่
onahama ในประเทศญี่ปุ่นโดยการดำน้ำ ความเข้มข้นสูงสุดของ ล็กซานเดรียม spp . ในคอลเลกชันของเรา
ถึงปี 24 กว่า 103 เซลล์ / ลิตร ปูและหอยเป็น
รวบรวมอีกครั้งใน 2000 ที่จุดเดียวกัน แม้ว่า
ความเข้มข้นของอเล็กแซนเดรียม spp . ถึง 10 เซลล์ / ลิตร
รวบรวม shellfishes ที่ถูกเก็บไว้ด้านล่าง 8C 220 ตัวอย่างการเตรียมจนถึง
.
2.2 . การทดสอบความเป็นพิษของสารละลายเพื่อใช้ทดสอบความเป็นพิษ
ถูกสกัดจากเครื่องในของปู และจากส่วนที่กินได้ทั้ง
ตัวอย่างอื่น ๆสั้น ๆ , แต่ละเนื้อเยื่อพื้นดินที่มีปริมาณเดียวกัน
0.1n HCL และให้ความร้อนในน้ำเดือด
5 นาทีหลังจากปรับ pH 2 – 4 ส่วนผสม
ระดับ และสูงระดับ
เมาส์วิธีซึ่งเป็นวิธีทางการญี่ปุ่น
วิธีการตรวจสอบ PSP ( Kawabata , 1978 ) กิจกรรม
ถูกแสดงในหน่วยของเมาส์ ( MU ) 1 มูถูกนิยามเป็น
ปริมาณของสารพิษที่ต้องฆ่า ddy 20 g เมื่อยชาย
เมาส์ใน 15 นาทีหลังฉีดเข้าช่องท้อง .
2.3 การวิเคราะห์สารพิษ ด้วย hplc-fld
สารสกัดที่ใช้สำหรับการทดสอบความเป็นพิษผ่าน
ผ่านตลับคอลัมน์ ( กันยายนแพ็ค c18 น้ำ ) และกรองเมมเบรน ( ultrafree c3gc
,
มิลลิ ) , และจากนั้น โดยใช้การวิเคราะห์ hplc-fld . hplcfld
วิเคราะห์ข้อมูลในคอลัมน์
( กลับเฟส develosil ดอง , โนมูระสารเคมี ) โดยใช้วิธี
ชิมะ ( 1995a ) ทั้งหมดเคมีภัณฑ์และตัวทำละลายที่ใช้คือ HPLC หรือเกรดวิเคราะห์
.
2.4 . esi-ms การวิเคราะห์สารพิษ PSP
ยอดคาดว่า gonyautoxins ( gtxs ) และ nsulfocarbamoyl
สารพิษ (
การปรากฏตัวของ PSP สารพิษที่ได้รับการยืนยันโดยวิธีพ่นละอองไฟฟ้าไอแมสสเปกโตรเมทรี ( esi-ms
) และสารพิษส่วนประกอบของปูและหอยยัง
วิเคราะห์โดยวิธีโครมาโทกราฟีของเหลวสมรรถนะสูงด้วย
postcolumn ซัล ( hplc-fld )
( ชิมะ 1995a )
2 วัสดุและวิธีการ
2.1 . หอย
ในเดือนเมษายน 1999ตัวอย่างของปู telmessus
acutidens mytylus galloprovincialis , หอยแมลงภู่ , หอยคอสั้น
เทปญี่ปุ่น หอยเม่น strongylocentrotus nudus
กรามดำ Crassostrea ศึกษา , หอยนางรม , หอยเชลล์ chlamys farreri nipponensis
ascidian , และ halocynthia roretzi เก็บตัวที่
onahama ในประเทศญี่ปุ่นโดยการดำน้ำ ความเข้มข้นสูงสุดของ ล็กซานเดรียม spp . ในคอลเลกชันของเรา
ถึงปี 24 กว่า 103 เซลล์ / ลิตร ปูและหอยเป็น
รวบรวมอีกครั้งใน 2000 ที่จุดเดียวกัน แม้ว่า
ความเข้มข้นของอเล็กแซนเดรียม spp . ถึง 10 เซลล์ / ลิตร
รวบรวม shellfishes ที่ถูกเก็บไว้ด้านล่าง 8C 220 ตัวอย่างการเตรียมจนถึง
.
2.2 . การทดสอบความเป็นพิษของสารละลายเพื่อใช้ทดสอบความเป็นพิษ
ถูกสกัดจากเครื่องในของปู และจากส่วนที่กินได้ทั้ง
ตัวอย่างอื่น ๆสั้น ๆ , แต่ละเนื้อเยื่อพื้นดินที่มีปริมาณเดียวกัน
0.1n HCL และให้ความร้อนในน้ำเดือด
5 นาทีหลังจากปรับ pH 2 – 4 ส่วนผสม
ระดับ และสูงระดับ
เมาส์วิธีซึ่งเป็นวิธีทางการญี่ปุ่น
วิธีการตรวจสอบ PSP ( Kawabata , 1978 ) กิจกรรม
ถูกแสดงในหน่วยของเมาส์ ( MU ) 1 มูถูกนิยามเป็น
ปริมาณของสารพิษที่ต้องฆ่า ddy 20 g เมื่อยชาย
เมาส์ใน 15 นาทีหลังฉีดเข้าช่องท้อง .
2.3 การวิเคราะห์สารพิษ ด้วย hplc-fld
สารสกัดที่ใช้สำหรับการทดสอบความเป็นพิษผ่าน
ผ่านตลับคอลัมน์ ( กันยายนแพ็ค c18 น้ำ ) และกรองเมมเบรน ( ultrafree c3gc
,
มิลลิ ) , และจากนั้น โดยใช้การวิเคราะห์ hplc-fld . hplcfld
วิเคราะห์ข้อมูลในคอลัมน์
( กลับเฟส develosil ดอง , โนมูระสารเคมี ) โดยใช้วิธี
ชิมะ ( 1995a ) ทั้งหมดเคมีภัณฑ์และตัวทำละลายที่ใช้คือ HPLC หรือเกรดวิเคราะห์
.
2.4 . esi-ms การวิเคราะห์สารพิษ PSP
ยอดคาดว่า gonyautoxins ( gtxs ) และ nsulfocarbamoyl
สารพิษ (
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- พรุ่งนี้ ฉันเดินทางไป สนามบิน นาริตะฉัน
- แรงบันดาลใจที่อยากทำอาชีพนี้คือว่า เชฟเป
- คุณจะไม่อดตาย
- พวกเธอกลับบ้านไปแล้ว
- พ่อมีอาชีพทำไร่
- Urbanization
- cold tofu
- Fatty acids composition of Spanish black
- ฉันอยากกินอาหารแนะนำของบาหลี
- ไม่ใช้วัตถุกันเสีย
- ฉันมีเพื่อนและพีาน้องมากมาย
- คุณเริ่มงานกี่โมง
- what can I do for you
- ข้อมูลส่วนประกอบ
- surveillance
- The job is done.
- ยาเสพติด หมายถึง สารที่ได้จากธรรมชาติ
- คุณไม่มีวันเข้าใจฉัน
- would you believe it
- ราคาย่อมเยาว์
- ต้องการซอสไหมคัีบ
- Confirm New password
- by a rock slide that happenedless than a
- ระยะเวลา
