Transmission: Bornavirus transmission is not well understood. Bornavirus is thought to be primarily transferred from one individual to another through direct or intimate contact, or by exposure to infected fecal material. Avian Biotech is currently studying ABV transmission from an infected female to an egg and performing testing to determine embryonic infection of ABV. Additional work is being done to study ABV-specific antibody levels in the yolk of an egg laid by an infected bird. ABI is also studying cellular transmission and variations in specific ABV protein expression from one individual to another.
________________________________________
Symptoms: Signs suggestive of PDD include weight loss over a period of weeks to months despite a good appetite, passage of undigested food, vomiting, abdominal distention, and impaction of the crop and proventriculus.
Neurological signs include intermittent shaking of the bird's head, feather plucking and mutilation, problems with balance, moaning or crying due to digestive problems, change in aggression, and seizures. Some or all of these signs may or may not be present.
It is also important to note that in many cases birds infected with ABV may not develop any symptoms of ABD or PDD for years or even decades before the onset of disease. It is still unknown if a percentage of birds may never develop any symptoms of disease but may continue to function as a reservoir for ABV and allow the virus to infect other birds.
________________________________________
Prevention: In 2010 ABI began testing a sub-unit vaccine to prevent the spread of the disease and the results are looking very promising.
To disinfect areas that may have been contaminated by bornavirus, use an oxidizer solution such as diluted bleach: 50 parts water to 1 part bleach, plus a small amount of dish soap as a wetting agent.
________________________________________
Treatment: There are no known treatments for ABV infections. ABI is looking forward to conducting experimental treatments using ABI's own parrot-specific gamma and alpha interferon, as well as combining these cytokins with specific anti-viral drugs. Proventricular Dilatation Disease (PDD
________________________________________
Diagnosis: Complete ABV/PDD panel!!
Two methods of identifying ABV infection are available at ABI: serology (rELISA) which tests for immunological exposure to specific ABV antigens, and direct rtPCR which detects the presence of ABV-specific RNA. Our complete ABV panel includes both the rtPCR and the ELISA panel.
ABV ELISA panel consists of 4 AVB-specific proteins (P40, P24, P29, and matrix). A small serum sample is required for the rELISA panel.
ABV rtPCR panel is a multiplex assay that amplifies both conserved ABV M&N segment genes as well as two internal RNA controls (housekeeping genes). Internal controls are extremely important to confirm proper RNA isolation. For routine ABV screening using rtPCR, the most reliable samples are chest or breast contour feathers.
Cloacal or vent swabs as well as fecal samples are not recommended for routine screening due to the intermittent shedding of the virus, as well as bacterial and enzymatic degradation, that greatly reduce the reliability of this sample type. Because of the neurotropic nature of the virus, blood is also not recommended for rtPCR.
For postmortem detection of ABV RNA, samples from the brain, proventricular tissue, or crop biopsies stored in alcohol are preferred.
Animal Genetics' latest publication on ABV was submitted for publication to the Journal of Veterinarian Diagnostic Investigation. Our research paper describes current methods used by Animal Genetics for detection of ABV. This paper also demonstrates the effectiveness of testing for ABV from feathers, and compares the reliability of a feather sample with a cloacal swab and serum sample.
________________________________________
Sample: Serum samples are currently accepted for ELISA. However, fecal samples and blood cards are being evaluated and could become an alternative sample for ELISA. Cloacal swabs are not considered an reliable source for ABV RNA and should not be submitted by them selfs for rtPCR. Due to the neurotropic nature of the virus, the calamus of 4-8 plucked chest or breast feathers provides the best source of viral RNA for screening of birds infected with ABV.
Postmortem testing requires a small brain tissue sample placed in alcohol. Detailed information has been submitted for publication in the "Journal of Veterinary Diagnostic Investigation". Proventricular Dilatation Disease (PDD)
________________________________________
Handling: Samples should be submitted by overnight or two day air.
________________________________________
Limitations: Because of mutations occurring in ABV genome, it may be difficult to detect all subtypes. Proventricular Dilatation Disease (PDD
________________________________________
References:
HOME -DNA SEXING - DISEASE TESTING - RESULTS - PRICING - FAQ - LINKS
FREE COLLECTION KITS - DOWNLOAD FORMS - AVIAN CONNECTION - Member Login
http://www.avianbiotech.com/diseases/bornavirus.htm
Borna disease is an infectious neurological syndrome[1] of warm-blooded animals, caused by Borna disease virus (BDV), which causes abnormal behaviour and fatality. The Borna disease virus is a neurotropic virus and is a member of the Bornaviridae family within the Mononegavirales order.
Although the Borna disease virus is mainly seen as the causative agent of borna disease in horses and other animals, it also infects humans and is therefore considered to be azoonotic agent. The role of BDV in human illness is controversial and it is yet to be established whether BDV causes any overt disease in humans. However, correlative evidence exists linking BDV infection with neuropsychiatric disorders such as bipolar disorder.[2]
Contents
[hide]
• 1 Epidemiology
o 1.1 Vectors
o 1.2 Animals
• 2 History
o 2.1 Psychiatric disease
• 3 References
Epidemiology[edit]
Vectors[edit]
The mode of transmission of BDV is unclear but probably occurs through intranasal exposure to contaminated saliva or nasal secretions. Following infection, individuals may develop Borna disease, or may remain subclinical, possibly acting as a carrier of the virus.
Animals[edit]
Borna virus appears to have a wide host range, having been detected in horses, cattle, sheep, dogs and foxes. In 1995, the virus was isolated from cats suffering from a "staggering disease" in Sweden. Since that time, the virus has also been detected in cats in Japan and Britain.
Borna virus has been detected in humans, and researchers have presented evidence connecting these infections withpsychiatric disorders.[3][4][5]
Experimental infection of rats has been demonstrated to lead to learning impairments and altered social behaviour. The virus appears to be distributed primarily in the limbic system of the brain, including the hippocampus and entorhinal cortex. These areas of the brain are considered to be of importance in emotion.
Originally identified in sheep and horses[6] in Europe, it has since been found to occur in a wide range of warm-blooded animals including birds, cattle, cats[7] and primates and has been found in animals in
เกียร์: ส่ง Bornavirus ไม่เข้าใจ Bornavirus เป็นความคิดที่ถูกโอนมาจากบุคคลหนึ่งไปยังอีกผ่านการสัมผัสโดยตรงหรือใกล้ชิดหรือจากการสัมผัสกับวัสดุที่ติดเชื้อในอุจจาระ นกไบโอเทคกำลังศึกษาการส่ง ABV จากหญิงที่ติดเชื้อไปไข่และดำเนินการทดสอบเพื่อตรวจสอบการติดเชื้อจากตัวอ่อนของ ABV ทำงานเพิ่มเติมจะถูกดำเนินการในการศึกษาระดับแอนติบอดี ABV เฉพาะในไข่แดงของไข่วางโดยนกที่ติดเชื้อ ABI นอกจากนี้ยังมีการศึกษาการส่งผ่านโทรศัพท์มือถือและรูปแบบในการแสดงออกของโปรตีน ABV เฉพาะจากบุคคลหนึ่งไปยังอีก.
________________________________________
อาการ: สัญญาณชี้นำของ PDD รวมถึงการสูญเสียน้ำหนักในช่วงสัปดาห์ที่ผ่านมาแม้จะมีการเดือนความอยากอาหารที่ดีทางเดินอาหารไม่ได้แยกแยะอาเจียนอาการท้องอืด และคุดของพืชและ proventriculus.
อาการทางระบบประสาทรวมถึงการสั่นเนื่องของหัวของนกดึงขนและตัดปัญหาเกี่ยวกับความสมดุลเสียงสวดหรือร้องไห้เนื่องจากปัญหาทางเดินอาหาร, การเปลี่ยนแปลงในการรุกรานและชัก บางส่วนหรือทั้งหมดของอาการเหล่านี้อาจจะหรืออาจจะไม่เป็นปัจจุบัน.
นอกจากนี้ยังเป็นสิ่งสำคัญที่จะทราบว่าในหลายกรณีนกที่ติดเชื้อ ABV ไม่อาจมีอาการใด ๆ ของ ABD หรือ PDD สำหรับปีหรือแม้กระทั่งทศวรรษที่ผ่านมาก่อนที่จะเริ่มมีอาการของโรค มันยังคงเป็นที่รู้จักว่าร้อยละของนกอาจจะไม่เคยมีอาการของโรคใด ๆ แต่อาจจะยังคงทำงานเป็นอ่างเก็บน้ำสำหรับ ABV และอนุญาตให้ไวรัสที่จะติดเชื้อนกอื่น ๆ .
________________________________________
ป้องกัน: ในปี 2010 ABI เริ่มทดสอบวัคซีนย่อยหน่วยเพื่อป้องกันไม่ให้ การแพร่กระจายของโรคและผลที่กำลังมองแนวโน้มมาก.
ในการฆ่าเชื้อในพื้นที่ที่อาจมีการปนเปื้อนจาก bornavirus ใช้วิธีการแก้ปัญหาสันดาปเช่นสารฟอกขาวเจือจาง: 50 ส่วนน้ำ 1 ส่วนสารฟอกขาวบวกเป็นจำนวนเงินที่เล็ก ๆ ของสบู่เป็น ตัวแทนเปียก.
________________________________________
การรักษา: ไม่มีการรักษาที่รู้จักกันสำหรับการติดเชื้อ ABV เป็น ABI รอคอยที่จะดำเนินการรักษาการทดลองโดยใช้นกแก้วเฉพาะของตัวเองของ ABI แกมมาและ interferon alpha เช่นเดียวกับการรวม cytokins เหล่านี้ด้วยยาต้านไวรัสที่เฉพาะเจาะจง Proventricular การขยายโรค (PDD
________________________________________
วินิจฉัยสมบูรณ์ ABV / PDD แผง !!
สองวิธีในการระบุการติดเชื้อ ABV มีที่ ABI: เซรุ่มวิทยา (rELISA) ซึ่งการทดสอบสำหรับการเปิดรับภูมิคุ้มกันเพื่อแอนติเจน ABV ที่เฉพาะเจาะจงและ rtPCR โดยตรงที่ตรวจพบการปรากฏตัวของ ABV- อาร์เอ็นเอที่เฉพาะเจาะจง. แผง ABV ของเราสมบูรณ์รวมถึงทั้ง rtPCR และแผง ELISA.
ABV แผง ELISA ประกอบด้วย 4 โปรตีน AVB เฉพาะ (P40, P24, P29 และเมทริกซ์). ตัวอย่างซีรั่มที่มีขนาดเล็กเป็นสิ่งจำเป็นสำหรับแผง rELISA. ABV rtPCR แผงทดสอบทวีคูณที่ขยายทั้งอนุรักษ์ ABV M & N ยีนส่วนเช่นเดียวกับสองควบคุม RNA ภายใน (ยีนทำความสะอาดห้อง). การควบคุมภายในที่มีความสำคัญมากที่จะยืนยันการแยก RNA ที่เหมาะสม. สำหรับกิจวัตรประจำวัน ABV คัดกรองโดยใช้ rtPCR, ตัวอย่างที่เชื่อถือได้มากที่สุดคือหน้าอกหรือ ขนรูปร่างเต้านม. cloacal หรือระบาย Swabs เช่นเดียวกับอุจจาระไม่แนะนำให้ตรวจคัดกรองตามปกติเนื่องจากการไหลสม่ำเสมอของไวรัสเช่นเดียวกับการย่อยสลายแบคทีเรียและเอนไซม์ที่ช่วยลดความน่าเชื่อถือของชนิดตัวอย่างนี้ เพราะธรรมชาติของไวรัสประสาทเลือดนี้ยังไม่แนะนำสำหรับ rtPCR. สำหรับการตรวจสอบการชันสูตรศพของอาร์เอ็นเอ ABV ตัวอย่างจากสมองเนื้อเยื่อ proventricular หรือขริบพืชที่เก็บไว้ในเครื่องดื่มแอลกอฮอล์เป็นที่ต้องการ. พันธุศาสตร์สัตว์ 'ตีพิมพ์ล่าสุดเกี่ยวกับ ABV ที่ถูกส่งมา สำหรับการตีพิมพ์วารสารสัตวแพทย์สอบสวนวินิจฉัย รายงานการวิจัยของเราอธิบายวิธีการที่ใช้ในปัจจุบันโดยพันธุศาสตร์สัตว์สำหรับการตรวจหา ABV กระดาษนี้แสดงให้เห็นถึงประสิทธิภาพของการทดสอบสำหรับ ABV จากขนและเปรียบเทียบความน่าเชื่อถือของกลุ่มตัวอย่างที่มีขนไม้กวาด cloacal และตัวอย่างซีรั่ม. ________________________________________ ตัวอย่าง: ตัวอย่างเซรั่มได้รับการยอมรับในขณะนี้สำหรับวิธี ELISA แต่อุจจาระและบัตรเลือดมีการประเมินและอาจจะกลายเป็นตัวอย่างทางเลือกสำหรับวิธี ELISA Swabs cloacal จะไม่ถือว่าเป็นแหล่งที่เชื่อถือได้สำหรับ ABV อาร์เอ็นเอและไม่ควรส่งมาโดยพวกเขา selfs สำหรับ rtPCR เพราะธรรมชาติประสาทของไวรัส, calamus 4-8 ดึงขนหน้าอกหรือเต้านมให้แหล่งที่ดีที่สุดของอาร์เอ็นเอไวรัสสำหรับการคัดกรองของนกที่ติดเชื้อ ABV. การทดสอบการชันสูตรศพต้องใช้ตัวอย่างเนื้อเยื่อสมองเล็ก ๆ วางไว้ในเครื่องดื่มแอลกอฮอล์ รายละเอียดข้อมูลถูกส่งมาให้ตีพิมพ์ใน "วารสารสัตวแพทย์วินิจฉัยสืบสวน" Proventricular การขยายโรค (PDD) ________________________________________ การจัดการ:. ตัวอย่างที่ควรจะส่งมาโดยในชั่วข้ามคืนหรืออากาศวันที่สอง________________________________________ ข้อ จำกัด : เนื่องจากการกลายพันธุ์ที่เกิดขึ้นในจีโนม ABV มันอาจจะเป็นเรื่องยากที่จะตรวจพบเชื้อทั้งหมด Proventricular การขยายโรค (PDD ________________________________________ อ้างอิง: หน้าแรก -DNA sexing - โรคทดสอบ - ผล - ราคา - คำถามที่พบบ่อย - ลิงค์ฟรีชุด COLLECTION - ดาวน์โหลดแบบฟอร์ม - การเชื่อมต่อ AVIAN - สมาชิกเข้าสู่ระบบhttp://www.avianbiotech.com/diseases/bornavirus.htm โรค Borna เป็นกลุ่มอาการของโรคติดเชื้อทางระบบประสาท [1] ของสัตว์เลือดอุ่นที่เกิดจากเชื้อไวรัสโรค Borna (BDV) ซึ่งเป็นสาเหตุของพฤติกรรมที่ผิดปกติและเสียชีวิต. ไวรัสโรค Borna เป็นไวรัสประสาทและเป็นสมาชิกของครอบครัว Bornaviridae ภายใน เพื่อ Mononegavirales. แม้ว่าไวรัสโรค Borna จะเห็นส่วนใหญ่เป็นสาเหตุของการเกิดโรค Borna ในม้าและสัตว์อื่น ๆ ก็ยังติดเชื้อในมนุษย์และมีการพิจารณาจึงเป็นตัวแทน azoonotic. บทบาทของ BDV ในความเจ็บป่วยของมนุษย์เป็นที่ถกเถียงกันและมันก็ยัง ที่จะจัดตั้งขึ้นว่า BDV ทำให้เกิดโรคใด ๆ ที่ชัดเจนในมนุษย์. อย่างไรก็ตามหลักฐานที่มีอยู่คู่กันเชื่อมโยงการติดเชื้อ BDV มีความผิดปกติ neuropsychiatric เช่นโรค bipolar. [2] เนื้อหา[ซ่อน] • 1 ระบาดวิทยาo 1.1 เวกเตอร์o 1.2 สัตว์• 2 ประวัติศาสตร์o 2.1 จิตเวช โรค• 3 อ้างอิงระบาดวิทยา [แก้ไข] เวกเตอร์ [แก้ไข] โหมดของการส่ง BDV ก็ไม่มีความชัดเจน แต่อาจเกิดขึ้นผ่านการสัมผัส intranasal การปนเปื้อนน้ำลายหรือน้ำมูก ต่อไปนี้การติดเชื้อบุคคลที่อาจก่อให้เกิดโรค Borna หรืออาจจะยังคงไม่แสดงอาการอาจจะทำหน้าที่เป็นผู้ให้บริการของไวรัส. สัตว์ [แก้ไข] ไวรัส Borna ดูเหมือนจะมีช่วงกว้างโฮสต์ได้รับการตรวจพบในม้าวัวแกะสุนัขและสุนัขจิ้งจอก . ในปี 1995, ไวรัสที่แยกได้จากแมวที่ทุกข์ทรมานจากโรค "ส่าย" ในสวีเดน ตั้งแต่เวลาที่ไวรัสยังได้รับการตรวจพบในแมวในญี่ปุ่นและสหราชอาณาจักร. ไวรัส Borna ได้รับการตรวจพบในมนุษย์และนักวิจัยได้นำเสนอหลักฐานที่เชื่อมต่อการติดเชื้อเหล่านี้ผิดปกติจิตเวช. [3] [4] [5] การติดเชื้อของหนูทดลองมี รับการแสดงให้เห็นถึงจะนำไปสู่ความบกพร่องในการเรียนรู้และการเปลี่ยนแปลงพฤติกรรมทางสังคม ไวรัสจะปรากฏขึ้นที่จะกระจายส่วนใหญ่ในระบบ limbic ของสมองรวมทั้งฮิบโปและเยื่อหุ้มสมอง entorhinal พื้นที่เหล่านี้ของสมองได้รับการพิจารณาว่ามีความสำคัญในอารมณ์. ระบุ แต่เดิมในแกะและม้า [6] ในยุโรปจะได้รับตั้งแต่พบว่าเกิดขึ้นในหลากหลายของสัตว์เลือดอุ่นรวมทั้งนก, วัว, แมว [7 ] และบิชอพและได้รับการพบในสัตว์ใน
การแปล กรุณารอสักครู่..