2.6. Continuous fermentation with f

2.6. Continuous fermentation with free and immobilised cells
Continuous fermentation with free-cells ofC. acetobutylicum
started with the same conditions as the batch fermentation
described above. When concentrations of glucose reached 4 g/L,
continuous fermentation mode was initiated. Stock production
media was not treated by N2-sparging.
Continuous fermentation with immobilised cells occurred by a
process similar to the cell-free fermentation with the exception
that 800 mL of production medium with 200 g of LentiKats

containing C. acetobutylicumwas used. Biomass in LentiKats

was
propagated during the experiments in repeated batch fermentation
mode, which preceded continuous fermentation. At the end of the
21st repeated batch, when the concentration of glucose decreased
to the 4 g/L, the continuous mode of fermentation was set up.
2.7. Fed-batch fermentation with immobilised cells in repeated batch
mode
Before the fed-batch fermentation, immobilised cells ofC. acetobutylicumused in continuous fermentations were repeatedly revitalised in six repeated batch fermentations (Section 2.5) until
similar batch parameters (fermentation time, productivities)
described in Section3.3were reached. Fed-batch fermentation
was started as standard batch fermentation with immobilised cells
(Section2.5); after glucose decreased to 0.1–1.7 g/L, its concentration was reinitialised to an average of 30 g/L using 0.05 L of 500 g/L
sterile stock glucose solution. The feeding of stock solution
occurred only once per batch, and after further glucose decrease,
the entire production medium was separated through a sieve and
replaced with a fresh production medium. The whole process
was repeated for three consecutive batch fermentations.
2.8. Analytical assays
The cell concentration of the suspension (OD) was measured at
600 nm with a spectrophotometer (BioSpectometer

, Eppendorf,
Germany). Glucose, acid, and solvent productions were analysed
by HPLC on a Polymer IEX H
+
form with a 2508-mm column
(Watrex, Czech Republic) at 32C attached to an RI 2000 refractive
index detector (Schambeck SFD, Germany). The mobile phase used
9mMH2SO4at a flow rate of 0.7 mL/min. Solvent (acetone–butanol–ethanol) productivity (g/L/h) was calculated as all solvents
produced (g/L) divided by the time of fermentation, until the
microorganism was active; butanol productivity was calculated
similarly. Solvent and butanol yields were calculated as grams of
solvent or butanol produced per gram of sugar utilised, expressed
as gram per gram.
3. Results and discussion
To observe the high yields and productivity process with immobilised cells, it is important to optimise all process conditions (i.e.,
medium composition, optimum temperature, pH control, etc.).
These optimisation processes occurred in cell-free fermentations,
and then the results were applied to immobilised cell processes.
3.1. Batch and continuous fermentation with free cells
It is known that the potential commercial use of the free-cell
batch system suffers due to low volumetric productivity, and product concentrations in excess of 20 g/L are rarely observed (Qureshi
and Maddox, 1995).
During the free-cell batch fermentation a maximum butanol
concentration of 2.66 g/L was reached, with quite low solvent
and butanol productivities 0.14 and 0.10 g/L/h (Table 1). These
was caused by the excessive duration of fermentation (27.8 h
including 17 h of acidogenic phase) and low solvent and butanol
yields (0.21 and 0.14 g/g, respectively). These results correspond
with reported yields of 0.35 and 0.24 g/g (Li et al., 2011b) and confirm that cell-free fermentation systems traditionally produce solvent yields of approximately 0.3 g/g (Qureshi and Maddox, 2005).
Higher solvent productivity of 0.50 ± 0.07 g/L/h and average
butanol productivity of 0.33 ± 0.05 g/L/h were obtained in free-cell
continuous fermentation with residual glucose 0 g/L a nearconstant concentration of butanol (3.03 ± 0.48 g/L) (Table 1). This
correspond with reported data for continuous fermentation with
free-cell systems 0.6 g/L/h (Lai and Traxler, 1994) and 0.37 g/L/h
(Yen and Li, 2011).
3.2. Optimisation of immobilisation process for anaerobic bacteria
The microorganismC. acetobutylicumwas successfully immobilised within a porous matrix of PVA hydrogel by a method called
LentiKats

. This immobilisation method is based on cell entrapment to prevent their diffusion into the surrounding medium but
still allows mass transfer of nutrients and metabolites

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.6 หมักอย่างต่อเนื่องกับเซลล์ฟรี และ immobilisedหมักต่อเนื่องกับเซลล์ฟรีสน acetobutylicumเริ่มต้น ด้วยเงื่อนไขเดียวกันเป็นชุดหมักอธิบายไว้ข้างต้น เมื่อความเข้มข้นของกลูโคสถึง 4 g/Lโหมดหมักอย่างต่อเนื่องเป็นจุดเริ่มต้น ผลิตสินค้าคงคลังสื่อไม่ได้ถูกรักษา โดย N2 spargingหมักต่อเนื่องกับเซลล์ immobilised เกิดขึ้นโดยการกระบวนการคล้ายกับการหมักปราศจากเซลล์ยกเว้นมล.ที่ 800 ของผลิตสื่อกับ g 200 ของ LentiKatsประกอบด้วยซี acetobutylicumwas ใช้ ชีวมวลใน LentiKatsถูกเผยแพร่ในระหว่างการทดลองในชุดซ้ำหมักโหมด ซึ่งหน้าหมักอย่างต่อเนื่อง เมื่อสิ้นสุดการ21 ชุดซ้ำ เมื่อความเข้มข้นของกลูโคสลดลงใน 4 g/L วิธีการหมักอย่างต่อเนื่องถูกกำหนดขึ้น2.7 การเฟดชุดหมักเซลล์ immobilised ในชุดซ้ำโหมดก่อนหมักชุดงานเลี้ยง immobilised เซลล์ ofC ซ้ำ ๆ ได้ revitalised ในหกชุดซ้ำหมักแหนม (2.5 ส่วน) acetobutylicumused ในการหมักแหนมอย่างต่อเนื่องจนถึงพารามิเตอร์ชุดคล้าย (เวลาหมัก productivities)อธิบายไว้ใน Section3.3were ถึง เฟดชุดหมักเริ่มต้นเป็นชุดมาตรฐานหมักเซลล์ immobilised(Section2.5); หลังจากกลูโคสลดลงไป 0.1 – 1.7 g/L ความเข้มข้นของถูก reinitialised ไปโดยเฉลี่ย 30 g/L โดยใช้ 0.05 L 500 g/Lแก้ปัญหาใส่น้ำตาลในหุ้น อาหารของหุ้นเกิดขึ้นเพียงครั้งเดียว ต่อชุด และเพิ่มเติม กลูโคส ลดสื่อที่ผลิตทั้งหมดถูกแยกผ่านตะแกรงเป็น และแทนที่ ด้วยสื่อผลิตสด กระบวนการทั้งหมดไม่ซ้ำสำหรับการหมักแหนมสามชุดติดกัน2.8 assays วิเคราะห์มีที่วัดความเข้มข้นของเซลล์การระงับ (OD)600 nm ด้วยเครื่องทดสอบกรดด่าง (BioSpectometer, Eppendorfเยอรมนี) Analysed น้ำตาลกลูโคส กรด และการผลิตตัวทำละลายโดย HPLC ในการพอลิเมอร์ IEX H+แบบฟอร์ม มีคอลัมน์ 8 มม. 250(Watrex สาธารณรัฐเช็ก) ที่ C 32 กับ 2000 RI จักษุตรวจจับดัชนี (Schambeck SFD เยอรมนี) ระยะเคลื่อนที่ใช้9mMH2SO4at อัตราการไหลของ 0.7 mL/นาที ประสิทธิภาพ (อะซิโตนบิวทานอเอทานอล) ตัวทำละลาย (g/L/h) ถูกคำนวณหรือสารทำละลายได้ทั้งหมดผลิต (g/L) หาร ด้วยเวลาของการหมัก จนถึงการจุลินทรีย์ที่ถูกใช้งานอยู่ มีคำนวณผลผลิตบิวทานอในทำนองเดียวกัน มีคำนวณอัตราผลตอบแทนตัวทำละลายและบิวทานอเป็นกรัมของตัวทำละลายหรือบิวทานอผลิตต่อกรัมของน้ำตาลที่ใช้ แสดงเป็นกรัมต่อกรัม3. ผลลัพธ์ และสนทนาสังเกตอัตราผลตอบแทนสูงและกระบวนการผลิตเซลล์ immobilised มันเป็นสิ่งสำคัญเพื่อเพิ่มประสิทธิภาพของกระบวนการเงื่อนไข (เช่นองค์ประกอบกลาง อุณหภูมิสูง ควบคุมค่า pH ฯลฯ)การเพิ่มประสิทธิภาพกระบวนการเหล่านี้เกิดขึ้นในเซลล์ฟรีหมักแหนมแล้ว ผลลัพธ์ได้กับกระบวนการ immobilised เซลล์3.1 ชุด และหมักอย่างต่อเนื่อง ด้วยเซลล์ว่างเป็นที่รู้จักที่ใช้ในเชิงพาณิชย์เป็นไปได้ของฟรีเซลล์ชุดระบบ suffers จาก volumetric ประสิทธิภาพต่ำ และความเข้มข้นของผลิตภัณฑ์เกินกว่า 20 g/L ไม่ค่อยพบ (Qureshiก แมดด็อกซ์ 1995)ระหว่างการหมักเซลล์ฟรีชุดบิวทานอสูงสุดความเข้มข้นของ 2.66 g/L แล้ว ด้วยตัวทำละลายที่ค่อนข้างต่ำและบิวทานอ productivities 0.14 และ 0.10 g/L/h (ตารางที่ 1) เหล่านี้ที่เกิดจากระยะเวลาการหมัก (27.8 h มากเกินไปรวม h 17 ของระยะ acidogenic) และตัวทำละลายต่ำและบิวทานอทำให้ (0.14 g/g และ 0.21 ตามลำดับ) ผลลัพธ์เหล่านี้สอดคล้องมีรายงานอัตราผลตอบแทน 0.35 และ 0.24 g/g (Li et al., 2011b) และยืนยันว่า ระบบหมักที่ปราศจากเซลล์ดั้งเดิมผลิตอัตราผลตอบแทนที่เป็นตัวทำละลายของประมาณ 0.3 g/g (Qureshi และแมดด็อกซ์ 2005)ประสิทธิภาพสูงกว่าตัวทำละลายของ 0.50 ± 0.07 g/L/h และค่าเฉลี่ยผลิตบิวทานอของ 0.33 ± 0.05 g/L/h ได้รับมาในเซลล์ฟรีหมักต่อเนื่องกับน้ำตาลกลูโคสส่วนที่เหลือ 0 บัญชี nearconstant เข้มข้นของบิวทานอ (3.03 ± 0.48 g/L) (ตารางที่ 1) นี้สอดคล้องกับข้อมูลรายงานสำหรับหมักอย่างต่อเนื่องด้วยเซลล์ฟรีระบบ 0.6 g/L/h (ลายและ Traxler, 1994) และ 0.37 g/L/h(เย็นและ Li, 2011)3.2 การเพิ่มประสิทธิภาพของกระบวนการ immobilisation ในแบคทีเรียไม่ใช้ออกซิเจนMicroorganismC acetobutylicumwas immobilised ภายในเมทริกซ์ porous ของ PVA hydrogel สำเร็จ โดยวิธีเรียกว่าLentiKats. Entrapment เซลล์เพื่อป้องกันการแพร่ของพวกเขาในสภาพแวดล้อมที่ใช้วิธีนี้ immobilisation แต่ขนาดกลางยัง ช่วยให้การถ่ายโอนมวลของสารอาหารและ metabolites

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.6 การหมักอย่างต่อเนื่องกับเซลล์ฟรีและตรึง
หมักอย่างต่อเนื่องกับเซลล์ฟรี OFC acetobutylicum
เริ่มต้นด้วยเงื่อนไขเดียวกับการหมักแบบ
ที่อธิบายข้างต้น เมื่อความเข้มข้นของน้ำตาลกลูโคสถึง 4 กรัม / ลิตร,
โหมดการหมักอย่างต่อเนื่องได้ริเริ่ม การผลิตหุ้น
สื่อที่ไม่ได้รับการรักษาโดย N2-sparging.
การหมักอย่างต่อเนื่องกับเซลล์ตรึงเกิดขึ้นโดย
กระบวนการที่คล้ายกับการหมักปราศจากเซลล์มีข้อยกเว้น
ที่ 800 มิลลิลิตรของกลางการผลิตที่มี 200 กรัม LentiKats
?
บรรจุ C. acetobutylicumwas ใช้ ชีวมวลใน LentiKats
?
ถูก
แพร่กระจายในระหว่างการทดลองในการหมักแบบซ้ำ
โหมดซึ่งก่อนการหมักอย่างต่อเนื่อง ในตอนท้ายของ
ชุดที่ 21 ซ้ำเมื่อความเข้มข้นของน้ำตาลกลูโคสลดลง
ไป 4 กรัม / ลิตร, โหมดถ่ายต่อเนื่องของการหมักถูกจัดตั้งขึ้น.
2.7 หมักเฟดชุดกับเซลล์ตรึงในชุดซ้ำ
โหมด
ก่อนการหมักอาหารชุดเซลล์ตรึง OFC acetobutylicumused ในหมักอย่างต่อเนื่องได้รับการฟื้นฟูซ้ำแล้วซ้ำอีกในหกซ้ำหมักชุด (มาตรา 2.5) จนกระทั่ง
พารามิเตอร์ชุดที่คล้ายกัน (เวลาหมักผลผลิต)
อธิบายไว้ใน Section3.3were ถึง หมักเฟดชุด
เริ่มต้นเป็นหมักแบบมาตรฐานกับเซลล์ตรึง
(Section2.5); หลังจากกลูโคสลดลงเหลือ 0.1-1.7 กรัม / ลิตร, ความเข้มข้นของมัน reinitialised กับค่าเฉลี่ยของ 30 กรัม / ลิตรโดยใช้ 0.05 ลิตร 500 กรัม / ลิตร
หุ้นวิธีการแก้ปัญหาน้ำตาลกลูโคสผ่านการฆ่าเชื้อ การให้อาหารของการแก้ปัญหาหุ้น
ที่เกิดขึ้นเพียงครั้งเดียวต่อชุดและหลังจากลดลงกลูโคสเพิ่มเติม
กลางการผลิตทั้งหมดถูกแยกผ่านตะแกรงและ
แทนที่ด้วยสื่อที่ผลิตสดใหม่ กระบวนการทั้งหมด
ซ้ำสามหมักชุดติดต่อกัน.
2.8 การวิเคราะห์การตรวจ
ความเข้มข้นของเซลล์ของระบบกันสะเทือน (OD) วัดที่
600 นาโนเมตรที่มีสเปก (BioSpectometer
?
, Eppendorf,
เยอรมนี) กลูโคสกรดและโปรดักชั่นตัวทำละลายที่ได้มาวิเคราะห์
โดย HPLC และพอลิเมอ IEX H
+
แบบฟอร์มที่มี 250? คอลัมน์ 8 มม
(Watrex, สาธารณรัฐเช็ก) ที่ 32 องศาเซลเซียสที่แนบมากับหักเห RI 2000
เครื่องตรวจจับดัชนี (Schambeck SFD, เยอรมนี) . เฟสเคลื่อนที่ใช้
9mMH2SO4at อัตราการไหล 0.7 มิลลิลิตร / นาที ตัวทำละลาย (อะซิโตนบิวทานอ-เอทานอล) ผลผลิต (กรัม / ลิตร / ชั่วโมง) ที่คำนวณได้เป็นตัวทำละลายทั้งหมด
ผลิต (กรัม / ลิตร) หารด้วยเวลาของการหมักจน
จุลินทรีย์ที่มีบทบาท; การผลิตบิวทานอที่คำนวณได้
ในทำนองเดียวกัน อัตราผลตอบแทนที่เป็นตัวทำละลายและบิวทานอจะถูกคำนวณเป็นกรัมของ
ตัวทำละลายหรือบิวทานอผลิตต่อกรัมของน้ำตาลที่ถูกใช้แสดงความ
เป็นกรัมต่อกรัม.
3 และอภิปรายผล
การสังเกตผลตอบแทนสูงและขั้นตอนการผลิตกับเซลล์ตรึงมันเป็นสิ่งสำคัญที่จะเพิ่มประสิทธิภาพในกระบวนการทั้งหมด (เช่น
องค์ประกอบกลางอุณหภูมิที่เหมาะสมในการควบคุมค่า pH ฯลฯ ).
การเพิ่มประสิทธิภาพกระบวนการเหล่านี้เกิดขึ้นในกระบวนการหมักเซลล์ฟรี
และ แล้วผลที่ได้ถูกนำไปใช้กับกระบวนการเซลล์ตรึง.
3.1 ชุดและการหมักอย่างต่อเนื่องกับเซลล์อิสระ
เป็นที่ทราบกันว่าการใช้ในเชิงพาณิชย์ที่มีศักยภาพของฟรีมือถือ
ระบบชุดทนทุกข์ทรมานเนื่องจากผลผลิตปริมาตรต่ำและความเข้มข้นของผลิตภัณฑ์เกินกว่า 20 กรัม / ลิตรจะสังเกตไม่ค่อย (Qureshi
และแมดดอกซ์ 1995)
ในระหว่างการหมักแบบฟรีเซลล์บิวทานอสูงสุด
ความเข้มข้นของ 2.66 กรัม / ลิตรก็มาถึงด้วยตัวทำละลายที่ค่อนข้างต่ำ
และบิวทานอผลผลิต 0.14 และ 0.10 กรัม / ลิตร / ชั่วโมง (ตารางที่ 1) เหล่านี้
มีสาเหตุมาจากระยะเวลาที่มากเกินไปของการหมัก (27.8 ชั่วโมง
รวม 17 ชั่วโมงเฟส acidogenic) และตัวทำละลายที่ต่ำและบิวทานอ
อัตราผลตอบแทน (0.21 และ 0.14 g / g ตามลำดับ) ผลการศึกษานี้สอดคล้อง
กับรายงานของอัตราผลตอบแทน 0.35 และ 0.24 กรัม / g (Li et al., 2011b) และยืนยันว่าระบบการหมักเซลล์ฟรีประเพณีผลผลิตตัวทำละลายประมาณ 0.3 g / g (Qureshi และแมดดอกซ์, 2005).
การผลิตตัวทำละลายที่สูงขึ้น 0.50 ± 0.07 กรัม / ลิตร / ชั่วโมงและค่าเฉลี่ย
การผลิตบิวทานอ 0.33 ± 0.05 กรัม / ลิตร / ชั่วโมงที่ได้รับในเซลล์ฟรี
หมักอย่างต่อเนื่องกับน้ำตาลกลูโคสที่เหลือ 0 กรัม / ลิตรความเข้มข้นของบิวทานอ nearconstant (3.03 ± 0.48 กรัม / ลิตร) (ตารางที่ 1) ซึ่ง
สอดคล้องกับข้อมูลที่รายงานสำหรับการหมักอย่างต่อเนื่องกับ
ระบบฟรีเซลล์ 0.6 กรัม / ลิตร / ชั่วโมง (Lai และ Traxler, 1994) และ 0.37 กรัม / ลิตร / ชั่วโมง
(เยนและหลี่, 2011).
3.2 การเพิ่มประสิทธิภาพของกระบวนการตรึงสำหรับแบคทีเรีย
microorganismC acetobutylicumwas ตรึงประสบความสำเร็จภายในเมทริกซ์ที่มีรูพรุนของไฮโดรเจล PVA โดยวิธีการที่เรียกว่า
LentiKats
?
วิธีการหยุดการเคลื่อนย้ายนี้จะขึ้นอยู่กับการกักเก็บเซลล์เพื่อป้องกันการแพร่กระจายของพวกเขาในกลางรอบ แต่
ยังช่วยให้การถ่ายโอนมวลของสารอาหารและสาร

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2.6 การหมักแบบต่อเนื่องกับฟรีและตรึงเซลล์
อย่างต่อเนื่องการหมักด้วยเซลล์ฟรีแจก . acetobutylicum
เริ่มต้นด้วยเงื่อนไขเดียวกันกับการหมักแบบ
ที่อธิบายข้างต้น เมื่อความเข้มข้นของกลูโคสถึง 4 G / L ,
โหมดการหมักแบบต่อเนื่องได้ริเริ่มขึ้น การผลิตสื่อที่ไม่ได้รับการรักษา โดยหุ้น

2 sparging .การหมักแบบต่อเนื่องกับตรึงเซลล์เกิดขึ้นโดย
กระบวนการคล้ายกับการสังเคราะห์กระบวนการหมักด้วยข้อยกเว้น
ที่ 800 มิลลิลิตร การผลิตสื่อด้วย 200 กรัม lentikats

 ประกอบด้วย C acetobutylicumwas ใช้ . ชีวมวล lentikats


ไป  อยู่ในระหว่างการทดลองในโหมดซ้ำหมัก
ชุดซึ่งนำหน้าในการหมักแบบต่อเนื่อง ในตอนท้ายของ
21 ซ้ำชุดเมื่อความเข้มข้นของกลูโคสลดลง
ถึง 4 กรัมต่อลิตร โหมดต่อเนื่องของการหมักตั้งขึ้น .
2.7 . การหมักแบบตรึงเซลล์ในอาหารด้วยซ้ำ

ก่อนเฟดแบทช์โหมดการหมักแบบตรึงเซลล์ , แจก . acetobutylicumused ใน fermentations ต่อเนื่องมีชีวิตใหม่แก่ fermentations ซ้ำๆในหกซ้ำชุด ( มาตรา 2 ) จนกว่า
พารามิเตอร์ชุดเหมือนกัน ( เวลาหมัก , การผลิต )
section3.3were อธิบายถึง ชุดป้อนอาหารหมัก
เริ่มต้นเป็นชุดมาตรฐานและตรึงเซลล์
( section2.5 ) ; หลังจากกลูโคสลดลง 0.1 – 1.7 กรัม / ลิตรความเข้มข้นของ reinitialised เฉลี่ย 30 กรัม / ลิตรใช้ 0.05 ลิตร 500 กรัม / ลิตร
ปลอดเชื้อในหุ้นโซลูชั่น การให้อาหารของโซลูชั่นหุ้น
เกิดขึ้นเพียงหนึ่งครั้งต่อชุด และหลังจากลดกลูโคสต่อไป
ขนาดกลางผลิตทั้งหมดถูกแยกผ่านตะแกรงและ
แทนที่ด้วยขนาดกลางผลิตสด กระบวนการทั้งหมด
กันสาม fermentations ชุดติดต่อกัน
2.8 . วิธีวิเคราะห์
เซลล์ความเข้มข้นของช่วงล่าง ( OD ) เป็นวัดที่
600 nm กับ Spectrophotometer ( biospectometer
 เพนดอร์ฟ

, ,เยอรมนี ) กลูโคส กรดและตัวทำละลายการผลิตวิเคราะห์โดย HPLC ในพอลิเมอร์จัดการ
H

ฟอร์มกับ 250  8-mm คอลัมน์
( watrex , สาธารณรัฐเช็ก ) ที่ 32  C แนบมากับรี 2000 ดัชนีหักเห
ตรวจจับ ( schambeck sfd , เยอรมัน ) ขั้นตอนการใช้โทรศัพท์มือถือ
9mmh2so4at อัตราการไหลของสารละลาย ( 0.7 มิลลิลิตร / นาที ) และบิวทานอลและเอทานอล ) การผลิต ( G / L / H ) คือคำนวณเป็นตัวทำละลาย
ทั้งหมดผลิต ( กรัม / ลิตร ) แบ่งตามระยะเวลาการหมักจุลินทรีย์ที่ถูกใช้งานจน

; บิวทานอลผลผลิตมีค่า เช่น ตัวทำละลายและบิวทานอลผลผลิตได้เป็นกรัม
ตัวทำละลายหรือบิวทานอล 1 กรัม น้ำตาลที่ใช้ แสดงเป็น กรัมต่อกรัม
.
3 ผลและการอภิปราย
สังเกตผลผลิตสูงและผลผลิต กระบวนการตรึงเซลล์มันเป็นสิ่งสำคัญในการปรับสภาวะของกระบวนการทั้งหมด ( I ,
) องค์ประกอบที่เหมาะสมในการควบคุมอุณหภูมิ , pH , ฯลฯ ) .
เหล่านี้เพิ่มประสิทธิภาพกระบวนการที่เกิดขึ้นในการสังเคราะห์ fermentations
, แล้วผลลัพธ์ที่ได้ใช้กระบวนการตรึงเซลล์
3.1 . ชุดและการหมักแบบต่อเนื่องกับเซลล์ฟรี
มันเป็นที่รู้จักกันว่าใช้ศักยภาพในเชิงพาณิชย์ของ
มือถือฟรีระบบแบทช์ได้รับความทุกข์เนื่องจากผลผลิตผลิตภัณฑ์ปริมาตรต่ำ และความเข้มข้นเกิน 20 กรัมต่อลิตรจะไม่ค่อยสังเกต ( qureshi
และ แมดดอกซ์ , 1995 ) .
ในระหว่างการหมักแบบฟรีเซลล์สูงสุดความเข้มข้นของบิวทานอล
2.66 กรัม / ลิตรถึงค่อนข้างต่ำ และบิวทานอลเป็นตัวทำละลาย
ผลิตภาพ 0.14 และ 0.10 กรัมต่อลิตร ลิตร / ชั่วโมง ( ตารางที่ 1 ) เหล่านี้
จากระยะเวลาที่มากเกินไปของการหมัก ( 27.8 H
รวม 17 ชั่วโมงจากกากสับปะรด เฟส ) และตัวทำละลายต่ำและผลิตบิวทานอล
( 0.21 และ 0.14 กรัม / กรัม ตามลำดับ ) ผลลัพธ์เหล่านี้สอดคล้องกับรายงานผลผลิต
0.35 และ 0.24 กรัม / กรัม ( Li et al . , 2011b ) และยืนยันว่าระบบหมักแบบดั้งเดิมผลิตตัวทำละลายการสังเคราะห์ผลผลิตประมาณ 0.3 กรัม / กรัม ( qureshi และ แมดดอกซ์ , 2005 ) .
สูงกว่าตัวทำละลายการผลิต 0.50 ± 0.07 กรัม / ลิตร / ชั่วโมง และเฉลี่ย
การผลิตบิวทานอลจาก 0.33 ± 0.05 กรัม / ลิตร / ชั่วโมง ได้ในฟรีเซลล์
อย่างต่อเนื่องการหมักกากน้ำตาล 0 กรัม / ลิตร ความเข้มข้นของบิวทานอล nearconstant ( 3.03 ± 0.48 กรัม / ลิตร ) ( ตารางที่ 1 ) นี้สอดคล้องกับรายงานข้อมูล

การหมักแบบต่อเนื่องด้วยระบบมือถือฟรี 0.6 กรัม / ลิตร / ชั่วโมง ( ลาย และ traxler , 1994 ) และ 0.37 กรัม / L / H
( เยนและ Li , 2011 ) .
2 .เพิ่มประสิทธิภาพของกระบวนการ immobilisation สำหรับแอโรบิคแบคทีเรีย
microorganismc . acetobutylicumwas เรียบร้อยแล้วตรึงภายในรูพรุนของพอลิไวนิลแอลกอฮอล์ไฮโดรเจลเมทริกซ์โดยวิธีการที่เรียกว่า lentikats 


วิธีนี้ immobilisation ขึ้นอยู่กับเซลล์เพื่อป้องกันการแพร่กระจายของการในรอบกลาง แต่ก็ยังช่วยให้มีการถ่ายเทมวล
ของสารอาหารและสาร