Twenty-nine mung germplasm lines we

Twenty-nine mung germplasm lines were obtained from
gene bank of Plant Genetic
Resources Institute, NARC, Islamabad and screened
against M. phaseolina by blotter paper technique (Nene et
al., 1981). Ten surface sterilized seeds (5 min. in 2.5%
sodium hypo chlorite) of each accession were sown in
thermopore tumblers containing sterilized sand. Pure
culture of M. phaseolina was obtained on potato dextrose
agar medium from infected mung bean plants collected
from the experimental plots of National Agricultural
Research Centre, Islamabad. Culture of the fungus was
multiplied on 100 ml potato dextrose broth in 250 ml
flasks and incubated as stationary culture for 10 days at
25°C. Mycelial mats of the flasks were added in the
sterilized water at the rate of two flacks in 100 ml,
macerated in a Warring blender for 5 min. Fresh inoculum
was used after every ten blotters each containing 10
seedlings. Seven days after sowing, the seedlings were
uprooted and roots were carefully washed in running tap
water and then rinsed in sterilized water. Roots of ten
seedlings of each test accession were dipped in the
inoculum with an up and down movement for about ten
seconds and placed side by side on a paper towel. Each
paper towel was then folded, covering the roots and
leaving the green tops outside. Control plants were dipped
in sterile, distilled water. Paper towels were then kept one
over the other in heaps of 5 on a tray and placed in the
incubator at 30±2ºC for 7 days with 12 h artificial light
per day. Paper towels were kept moist by adding sterile
water as needed. Symptoms were observed on ten
seedlings of each variety. Seedlings were examined for
the extent root damage using a 0-9 rating scale (Nene et
al., 1981) where 0(no infection) = Highly resistant (HR),
1(10 % seedlings infected) =Resistant (R), 3(30%
seedlings infected) = Moderately resistant (MR), 5 (50%
seedlings infected)= Moderately susceptible (MS) ,
7(70% seedlings infected) = Susceptible (S) and 9 (90%
or above 90% seedlings infected)= Highly susceptible
(HS).

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ยี่สิบเก้ามุง germplasm บรรทัดได้รับมาจากธนาคารยีนของพันธุกรรมพืชสถาบันทรัพยากร NARC อิสลามาบัด และฉายกับม. phaseolina โดยเทคนิคกระดาษดูดซึม (Nene ร้อยเอ็ดal., 1981) ผิว 10 sterilized เมล็ด (5 นาทีเป็น 2.5%โซเดียม hypo ภูมิ chlorite) ของแต่ละทะเบียนถูกหว่านในประกอบด้วยทราย sterilized tumblers thermopore บริสุทธิ์วัฒนธรรมม. phaseolina กล่าวบนมันฝรั่งขึ้นรวบรวมสื่อ agar จากพืชเมล็ดถั่วที่ติดไวรัสจากโครงการทดลองของเกษตรแห่งชาติศูนย์วิจัย อิสลามาบัด วัฒนธรรมของเชื้อราเป็นคูณในซุปขึ้นมันฝรั่ง 100 ml ใน 250 mlน้ำ และ incubated เป็นวัฒนธรรมเครื่องเขียนสำหรับ 10 วันที่25 องศาเซลเซียส Mats mycelial ของน้ำถูกเพิ่มในการน้ำ sterilized ในอัตรา flacks 2 ใน 100 mlmacerated ใน blender Warring ใน inoculum สด 5 นาทีใช้หลังจากทุก 10 blotters ละประกอบด้วย 10กล้าไม้ เจ็ดวันหลังจาก sowing กล้าไม้มีuprooted และรากถูกล้างอย่างระมัดระวังในการทำประปาน้ำแล้ว rinsed sterilized น้ำ รากของสิบกล้าไม้ของแต่ละการทดสอบทะเบียนถูกจุ่มลงในinoculum การขึ้น และ ลงการเคลื่อนไหวประมาณสิบวินาทีและวางเคียงข้างกันบนผ้ากระดาษ แต่ละผ้าเช็ดตัวกระดาษได้แล้วพับ ครอบคลุมราก และออกจากท็อปสีเขียวด้านนอก พืชควบคุมถูกสอดในน้ำกลั่น กอซ ผ้าขนหนูกระดาษได้แล้วเก็บไว้หนึ่งช่วงอื่น ๆ ในเซฟ 5 บนกระบะ และในการบ่มเพาะวิสาหกิจที่ 30±2ºC 7 วันแสงประดิษฐ์ 12 hต่อวัน ผ้าขนหนูกระดาษที่ถูกเก็บไว้ชุ่มชื่น โดยการเพิ่มใส่น้ำตามความจำเป็น อาการที่สังเกตสิบกล้าไม้ของแต่ละ กล้าไม้มีการตรวจสอบสำหรับความเสียหายหลักขอบเขตใช้ 0-9 ระดับจัดอันดับ (Nene ร้อยเอ็ดal., 1981) ที่ 0 (ไม่ติด) =สูงทน (ชั่วโมง),1 (ติดกล้าไม้ 10%) =ทนต่อ (R) 3(30%กล้าไม้ที่ติดเชื้อ) =ปานกลางทน (นาย), 5 (50%กล้าไม้ที่ติดเชื้อ) =ค่อนข้างไวต่อ (MS),7 (กล้าไม้ 70% ที่ติดเชื้อ) =ไวต่อ (S) และ 9 (90%หรือสูง กว่ากล้าไม้ 90% ที่ติดเชื้อ) =สูงไวต่อ(HS)

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ยี่สิบเก้าสายพันธุ์เขียวที่ได้รับจากธนาคารยีนพันธุกรรมพืชสถาบันทรัพยากร, สอดแนม, กรุงอิสลามาบัดและคัดเลือกกับM. phaseolina โดยใช้เทคนิคกระดาษหมึก (เน et al., 1981) สิบผิวเมล็ดฆ่าเชื้อ (5 นาที. ใน 2.5% โซเดียมคลอไรป้องกัน) ของคู่สัญญาแต่ละหว่านในแก้วที่มีทรายthermopore ผ่านการฆ่าเชื้อ เพียววัฒนธรรมของ M. phaseolina ที่ได้รับในเดกซ์โทรสมันฝรั่งขนาดกลางวุ้นจากพืชถั่วเขียวที่ติดเชื้อที่เก็บรวบรวมจากแปลงทดลองของการเกษตรแห่งชาติศูนย์วิจัยกรุงอิสลามาบัด วัฒนธรรมของเชื้อราถูกคูณ 100 มล. น้ำซุปมันฝรั่งเดกซ์โทรสใน 250 มลขวดและบ่มเป็นวัฒนธรรมนิ่งเป็นเวลา10 วันที่อุณหภูมิ25 องศาเซลเซียส เสื่อเส้นใยของขวดที่ถูกเพิ่มเข้ามาในน้ำฆ่าเชื้อในอัตราสอง flacks ใน 100 มล., แหลกเละในเครื่องปั่นต่อสู้เป็นเวลา 5 นาที หัวเชื้อสดถูกนำมาใช้หลังจากที่ทุกสิบบันทึกประจำแต่ละที่มี 10 ต้นกล้า เจ็ดวันหลังจากหว่านต้นกล้าถูกถอนรากถอนโคนและรากถูกล้างอย่างรอบคอบในการทำงานประปาน้ำและล้างแล้วฆ่าเชื้อในน้ำ รากสิบต้นกล้าของการเข้าทดสอบแต่ละถูกจุ่มลงในหัวเชื้อที่มีการเคลื่อนไหวขึ้นและลงประมาณสิบวินาทีและอยู่เคียงข้างกันบนผ้ากระดาษ แต่ละผ้ากระดาษพับแล้วครอบคลุมรากและออกจากท็อปส์ซูสีเขียวที่อยู่ด้านนอก พืชควบคุมถูกจุ่มลงในหมันน้ำกลั่น ผ้าขนหนูกระดาษถูกเก็บไว้แล้วหนึ่งในช่วงอื่น ๆ ในกองของ 5 บนถาดและวางไว้ในตู้อบที่อุณหภูมิ30 ±2ºCเป็นเวลา 7 วันมี 12 ชั่วโมงแสงเทียมต่อวัน ผ้าขนหนูกระดาษถูกเก็บไว้ชื้นโดยการเพิ่มการฆ่าเชื้อน้ำตามความจำเป็น อาการที่พบในสิบต้นกล้าของความหลากหลายในแต่ละ ต้นกล้าที่ได้รับการตรวจสอบขอบเขตความเสียหายรากใช้ระดับคะแนน 0-9 (เน et al., 1981) โดยที่ 0 (ไม่มีการติดเชื้อ) = ทนสูง (HR), 1 (ต้นกล้า 10% ติดเชื้อ) = ทน (R) 3 (30% ต้นกล้าติดเชื้อ) = ทนปานกลาง (MR), 5 (50% ติดเชื้อต้นกล้า) = ปานกลางไวต่อ (MS), 7 (70% ต้นกล้าติดเชื้อ) = อ่อนแอ (S) และ 9 (90% หรือสูงกว่า 90% ติดเชื้อต้นกล้า ) = ความอ่อนไหวสูง(HS)

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ยี่สิบเก้า , สายพันธุกรรมที่ได้จาก

ธนาคารยีนพันธุกรรมพืช ทรัพยากรสถาบัน , รบกวน , อิสลามาบัด และ ร่ม
กับม. ชีวภาพโดยเทคนิคกระดาษดูดซึม ( nene
et al . , 1981 ) สิบฆ่าเชื้อพื้นผิวเมล็ด ( 5 นาที โซเดียมไฮโปคลอไรท์ใน 2.5 %
) ของแต่ละชนิดถูกหว่านใน
thermopore ฆ่าเชื้อ Tumblers ที่มีทราย เพียว
วัฒนธรรมม.ชีวภาพได้บนอาหาร potato dextrose agar medium เชื้อมาจากถั่วเขียว

จากพืชเพื่อแปลงทดลองของศูนย์วิจัยการเกษตรแห่งชาติ
Islamabad วัฒนธรรมของเชื้อรา
คูณ 100 ml Potato Dextrose Broth ใน 250 ml
flasks บ่มเป็นวัฒนธรรมเครื่องเขียน 10 วันที่ 25 ° C
เจริญเสื่อของขวดที่ถูกเพิ่มใน
ฆ่าเชื้อน้ำที่อัตราสอง flacks 100 ml
macerated ในสงครามเป็นเวลา 5 นาที ปั่นสด 3
ถูกใช้หลังจากทุกสิบ blotters แต่ละที่มี 10
ต้นกล้า เจ็ดวัน หลังหว่านต้นกล้าถูกถอนรากถอนโคน , และเป็นอย่างรอบคอบล้างราก

วิ่งแตะน้ำแล้วล้างฆ่าเชื้อในน้ำ รากของต้นกล้าแต่ละชนิดสิบ

ถูกจุ่มลงในการทดสอบโดยมีการเคลื่อนไหวขึ้นลงประมาณ 10
วินาที และอยู่เคียงข้างกันบนกระดาษเช็ด แต่ละ
ผ้าขนหนูกระดาษแล้วพับครอบคลุมรากและ
ออกจากตัวเขียวนอก พืชควบคุมจุ่ม
ในหมัน , น้ำกลั่น ผ้าขนหนูกระดาษแล้วเก็บไว้หนึ่ง
เหนืออื่น ๆในกองที่ 5 บนถาดและวางไว้ในตู้อบที่อุณหภูมิ 30 ±
2 º C เป็นเวลา 7 วัน กับ 12 H
แสงประดิษฐ์ต่อวัน ผ้าขนหนูกระดาษถูกเก็บไว้ที่ชุ่มชื้น โดยการเพิ่มน้ำหมัน
ได้ตามต้องการ อาการที่พบได้ในสิบ
ต้นกล้าที่หลากหลายของแต่ละคน ต้นกล้าเพื่อตรวจวัด
ขอบเขตความเสียหายโดยใช้รากขนาด 0-9 คะแนน ( nene
อัล et . , 1981 ) ที่ 0 ( ไม่มีการติดเชื้อ ) = ทนทาน ( HR )
1 ( 10 % ต้นกล้าติดเชื้อ ) = ต้านทาน ( R ) , 3 ( 30 %
ต้นกล้าติดเชื้อ ) = ค่อนข้างต้านทาน ( คุณ ) 5 ( 50 %
ต้นกล้าติดเชื้อ ) = เสี่ยงปานกลาง ( MS ) ,
7 ( 70 % ต้นกล้าติดเชื้อ ) = อ่อนแอ ( s ) และ 9 ( 90%
ขึ้นไป 90% ต้นกล้าติดเชื้อ ) = สูงเสี่ยง
( HS )