The aim of the present study was to test whether the microbial population structure responds to changes in the quality of
the organic substrates in particle size fractions obtained from soils of a long-ferm fertilizer experiment in Ultuna, Sweden. A physical fractionation procedure following low-energy sonication (51) was combined with analysis of microbial communities in different particle size fractions. DNA-based methods were used because most bacteria found in natural environments are not accessible to cultivation (2). The 16S rRNA gene has become a frequently employed phylogenetic marker to describe microbial diversity in soils without the need of cultivation (10, 14, 49). Terminal restriction length polymorphism (T-RFLP) analysis (7, 11, 38, 47, 50) and cloning and sequencing of 16S rRNA genes were applied to analyze bacterial diversity.Data on the nutrient turnover and soil organic matter fractions and changes in physical soil properties and enzyme activities of this long-term field experiment have been published previously (18–21, 35, 36).
The aim of the present study was to test whether the microbial population structure responds to changes in the quality ofthe organic substrates in particle size fractions obtained from soils of a long-ferm fertilizer experiment in Ultuna, Sweden. A physical fractionation procedure following low-energy sonication (51) was combined with analysis of microbial communities in different particle size fractions. DNA-based methods were used because most bacteria found in natural environments are not accessible to cultivation (2). The 16S rRNA gene has become a frequently employed phylogenetic marker to describe microbial diversity in soils without the need of cultivation (10, 14, 49). Terminal restriction length polymorphism (T-RFLP) analysis (7, 11, 38, 47, 50) and cloning and sequencing of 16S rRNA genes were applied to analyze bacterial diversity.Data on the nutrient turnover and soil organic matter fractions and changes in physical soil properties and enzyme activities of this long-term field experiment have been published previously (18–21, 35, 36).
การแปล กรุณารอสักครู่..

จุดมุ่งหมายของการศึกษาครั้งนี้คือการทดสอบว่าโครงสร้างประชากรจุลินทรีย์ที่ตอบสนองต่อการเปลี่ยนแปลงในคุณภาพของพื้นผิวอินทรีย์ในเศษส่วนขนาดอนุภาคที่ได้รับจากดินปุ๋ยยาว Ferm ทดลอง Ultuna, สวีเดน
ขั้นตอนการแยกทางกายภาพต่อไป sonication พลังงานต่ำ (51) ได้ร่วมกับการวิเคราะห์ของกลุ่มจุลินทรีย์ในเศษส่วนขนาดอนุภาคที่แตกต่างกัน วิธีดีเอ็นเอถูกนำมาใช้เพราะแบคทีเรียที่สุดที่พบในสภาพแวดล้อมทางธรรมชาติไม่สามารถเข้าถึงการเพาะปลูก (2) ยีน 16S rRNA ได้กลายเป็นเครื่องหมายสายวิวัฒนาการมักใช้ในการอธิบายความหลากหลายของจุลินทรีย์ในดินโดยไม่จำเป็นต้องของการเพาะปลูก (10, 14, 49) ความแตกต่างข้อ จำกัด ระยะเวลาในเทอร์มิ (T-RFLP) การวิเคราะห์ (7, 11, 38, 47, 50) และการโคลนและการหาลำดับเบสของยีน 16S rRNA ถูกนำไปใช้ในการวิเคราะห์ diversity.Data แบคทีเรียในการหมุนเวียนธาตุอาหารในดินและเศษอินทรียวัตถุและการเปลี่ยนแปลงในทางกายภาพ คุณสมบัติของดินและกิจกรรมของเอนไซม์การทดลองนี้สนามในระยะยาวได้รับการเผยแพร่ก่อนหน้านี้ (วันที่ 18-21, 35, 36)
การแปล กรุณารอสักครู่..

จุดมุ่งหมายของการศึกษาคือ เพื่อทดสอบว่าโครงสร้างประชากรจุลินทรีย์ตอบสนองต่อการเปลี่ยนแปลงในคุณภาพของสารอาหารอินทรีย์
ในส่วนขนาดของอนุภาคที่ได้จากดินที่ยาวมีการทดลองปุ๋ยใน ultuna สวีเดนการแยกทางกายภาพขั้นตอนต่อไปนี้ sonication พลังงานต่ำ ( 51 ) รวมกับการวิเคราะห์ของชุมชนจุลินทรีย์ในแต่ละอนุภาคขนาดเศษส่วน ดีเอ็นเอที่ใช้วิธีการสัมภาษณ์ เพราะส่วนใหญ่ แบคทีเรียที่พบในสภาพแวดล้อมธรรมชาติจะไม่สามารถเข้าถึงเพื่อการเพาะปลูก ( 2 )ส่วนเบส 16S rRNA ยีนได้กลายเป็นบ่อยใช้เครื่องหมายเพื่ออธิบายวิวัฒนาการความหลากหลายของจุลินทรีย์ในดินโดยไม่ต้องปลูก ( 10 , 14 , 49 ) เทอร์มินัลจำกัด length polymorphism ( t-rflp ) การวิเคราะห์ ( 7 , 11 , 38 , 47 , 50 ) และการโคลนยีนของ 16S rRNA ลำดับและมีวัตถุประสงค์เพื่อวิเคราะห์ความหลากหลายของเชื้อแบคทีเรียข้อมูลในการหมุนเวียนธาตุอาหาร และอินทรีย์วัตถุในดิน เศษส่วน และการเปลี่ยนแปลงในคุณสมบัติของดินทางกายภาพและกิจกรรม ของเอนไซม์นี้ระยะยาวการทดลองได้รับการตีพิมพ์ก่อนหน้านี้ ( 18 - 21 , 35 , 36 )
การแปล กรุณารอสักครู่..
