Plantlet conversion has been a common problem for somatic
embryos from banana and other plant species (Novak
et al. 1989; Dhed'a et al. 1991; Capuana and Debergh 1997;
Lee et al. 1997; Fillipi et al. 2001; Jalil et al. 2003). Embryos
cultured in semi-solid MS medium with GA3 resulted in root
formation within 4–6 d (Fig. 1H). Most of the reported maturation
treatments, desiccation (Desai et al. 2004; Srinivas
et al. 2006), cold treatment, use of various media addenda
(such as coconut water, ancymidol, different concentrations
and combinations of growth regulators, activated charcoal),
ABA (Takahata et al. 1993; Srinivas et al. 2006), use of higher
levels of sugars among others, did not result in successful
conversion of embryos into plantlets. However, when embryos
were transferred to MS medium containing 2.22 μM
BA+2.68 μM NAA (2%; Fig. 1I–K), 4.54 μM TDZ+0.53 μM
NAA+200 mg/L glutamine (3%; Fig. 1L), or 44.39 μM
BA+0.53 μM NAA+200 mg/L glutamine (3%; Fig. 1M, N)
showed germination. All the germinated embryos successfully
grew into complete plantlets.
Plantlet conversion has been a common problem for somaticembryos from banana and other plant species (Novaket al. 1989; Dhed'a et al. 1991; Capuana and Debergh 1997;Lee et al. 1997; Fillipi et al. 2001; Jalil et al. 2003). Embryoscultured in semi-solid MS medium with GA3 resulted in rootformation within 4–6 d (Fig. 1H). Most of the reported maturationtreatments, desiccation (Desai et al. 2004; Srinivaset al. 2006), cold treatment, use of various media addenda(such as coconut water, ancymidol, different concentrationsand combinations of growth regulators, activated charcoal),ABA (Takahata et al. 1993; Srinivas et al. 2006), use of higherlevels of sugars among others, did not result in successfulconversion of embryos into plantlets. However, when embryoswere transferred to MS medium containing 2.22 μMBA+2.68 μM NAA (2%; Fig. 1I–K), 4.54 μM TDZ+0.53 μMNAA+200 mg/L glutamine (3%; Fig. 1L), or 44.39 μMBA+0.53 μM NAA+200 mg/L glutamine (3%; Fig. 1M, N)showed germination. All the germinated embryos successfullygrew into complete plantlets.
การแปล กรุณารอสักครู่..

แปลงต้นได้รับปัญหาที่พบบ่อยสำหรับร่างกายของ
ตัวอ่อนจากกล้วยและพืชชนิดอื่น ๆ (โนวัค
et al, 1989;. Dhed'a et al, 1991;. Capuana และ Debergh 1997;
Lee et al, 1997;.. Fillipi et al, 2001; et Jalil al. 2003) ตัวอ่อนที่
เพาะเลี้ยงในอาหารสูตร MS กึ่งของแข็งที่มีผลในการ GA3 ราก
ก่อตัวภายใน 4-6 D (รูป. 1H) ส่วนใหญ่ที่มีการรายงานการเจริญเติบโตของ
การรักษาผึ่งให้แห้ง (Desai et al, 2004. Srinivas
. et al, 2006) รักษาความเย็น, การใช้งานของภาคผนวกสื่อต่างๆ
(เช่นน้ำมะพร้าว ancymidol ความเข้มข้นที่แตกต่างกัน
และการรวมกันของหน่วยงานกำกับดูแลการเจริญเติบโตถ่าน)
ABA (ทาคาฮาทา et al, 1993;.. Srinivas et al, 2006), การใช้งานที่สูงขึ้นของ
ระดับน้ำตาลในหมู่คนอื่น ๆ ไม่ได้ผลในการประสบความสำเร็จ
ในการแปลงตัวอ่อนเข้าไปในต้นกล้า แต่เมื่อตัวอ่อน
ถูกโอนไปยังกลาง MS ที่ 2.22 ไมครอน
BA + 2.68 ไมครอน NAA (2%. รูป 1I-K) 4.54 ไมครอน TDZ + 0.53 ไมครอน
NAA + 200 มิลลิกรัม / ลิตร glutamine (3%; Fig. 1 ลิตร) หรือ 44.39 ไมครอน
BA + 0.53 ไมครอน NAA + 200 มิลลิกรัม / ลิตร glutamine (3%. รูป 1M, N)
แสดงให้เห็นว่าการงอกของเมล็ด ทุกตัวอ่อนงอกประสบความสำเร็จ
กลายเป็นต้นกล้าที่สมบูรณ์
การแปล กรุณารอสักครู่..
