3. ResultsBoth the infected and con

3. Results
Both the infected and control groups of hamsters were healthy throughout the experiment and no hamsters died. Liver fluke eggs were first observed in the faeces one month after infection [11].

3.1. Histological changes
The biliary system consists of two main parts: the intrahepatic and extrahepatic bile ducts including the gall bladder. In this study, the intrahepatic bile ducts of the hamster were classified as the first and second order bile ducts. The second order bile ducts were large bile ducts and their main branches, starting from the hepatic hilus, are characterised by the presence of a fibrous ductal wall and lined by low columnar to columnar epithelium. They corresponded to the left or right hepatic ducts, segmental ducts and area ducts in human [16] and [17]. The first order bile ducts were small bile ducts corresponded to the septal and interlobular bile ducts, and bile ductules. Normally, the adult liver flukes inhabited the second order bile ducts and were not found in the first order bile ducts.

No obvious pathological changes were observed in any specimens in the control group. In infected hamsters, the liver changes were similar to those previously described [4]. A distinct inflammatory response was observed around the juvenile flukes in the intrahepatic second order bile duct at the hepatic hilus and extrahepatic bile duct by day 3 p.i. Mild inflammation without flukes was also seen in the periportal areas and first order bile ducts. The cell types mainly comprised mononuclear cells and eosinophils. The severity of the inflammation gradually increased from day 7 p.i. onwards. Heavy mononuclear cell and eosinophil infiltration around the intrahepatic bile ducts was noted in the areas with epithelial desquamation. Focal liver cell necrosis was also observed early in the infection. Maximal inflammation was established by 1 month p.i.

From the second month onwards, active inflammatory changes around the bile ducts (both the first and second order bile ducts) regressed slightly and lymphoid follicles, as well as plasma cell infiltration, were predominant. Active germinal centers were seen in most large lymphoid follicles of the liver, extrahepatic bile duct and gall bladder. The most obvious histological changes in the liver in chronic infection were periductal fibrosis, ductal dilatation and mononuclear cell infiltration with lymphoid aggregation. The pathological changes were more severe in the liver and extrahepatic bile duct than that in the gall bladder. Granulomatous inflammation around fluke eggs was frequently seen in the intrahepatic periductal areas and protruding from the mucosal infolding within the bile duct lumen.

3.2. Immunohistochemical localisation of Opisthorchis antigens
A positive reaction to the immunoperoxidase staining for Opisthorchis antigens is recognised by reddish-brown deposits. To compare, immunofluorescent staining produced a bright fluorescence. In both methods, the more intense the reaction, the greater the amount of antigens. Both antiserum preparations (i.e. anti-ES and anti-somatic antibodies) produced strongly positive staining in the tegument, muscle, digestive tract and reproductive organs including eggs of the liver fluke. The anti-ES antibody exhibited less activity for the parasite eggs than that of the anti-somatic. The specificity of the reaction was confirmed by comparing the staining of the adjacent sections treated with either the rabbit anti-Opisthorchis antibody alone, the antibody after absorption with O. viverrini antigens or normal rabbit serum. The purified antibody to ES antigens cross-reacted with the host vascular smooth muscle. The sensitivity of both staining techniques for localisation of Opisthorchis antigens were similar. Immunoperoxidase staining was therefore used in most of the specimens because of its convenience, permanence and excellent morphology.

Opisthorchis antigens were not detected in any of the uninfected control specimens. Positive staining was seen in all stages of the parasite in the infected tissue sections. Extraparasitic staining was found in the mucus coat and on the apical surface of the biliary epithelium lining in close contact with the flukes as early as day 3 p.i. Obvious staining of parasites and biliary epithelium was observed by day 7 p.i.. On day 14 p.i., when the parasites were growing, parasite antigens were observed diffusely distributed in the flukes, biliary epithelium and surrounding stromal tissue near the flukes.

The presence of parasite antigen-positive biliary epithelium was associated with heavy mononuclear cell infiltration. The staining of biliary epithelium was either homogeneous or heterogeneous. Similar patterns of parasite antigen staining, which were slightly increased in intensity, were seen from day 30 p.i. until the end of the experiment. Interestingly, intense staining was observed in the epithelium and periductal fibrotic areas in close contact with the flukes of chronically infected specimens. The gall bladder epithelium contained smaller amounts of antigens on the mucosal coat than on the epithelia of the intrahepatic and extrahepatic bile ducts. Representative photomicrographs of the sequential immunohistochemical localisation of Opisthorchis antigens in the infected biliary system are shown in Fig. 1A–F.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

3. ผลลัพธ์ทั้งการติดเชื้อ และควบคุมกลุ่มของแฮมสเตอร์ถูกสุขภาพทดลอง และแฮมสเตอร์ไม่ตาย ไข่พยาธิใบไม้ในตับก่อนสุภัค faeces หนึ่งเดือนหลังจากการติดเชื้อ [11]3.1. การเปลี่ยนแปลงสรีรวิทยาระบบ biliary ประกอบด้วยสองส่วนหลัก: intrahepatic และ extrahepatic น้ำดีท่อน้ำดีรวมถึงการ ในการศึกษานี้ ท่อน้ำดี intrahepatic ของหนูแฮมสเตอร์ถูกจัดประเภทเป็นท่อน้ำดี และสองสั่ง ท่อน้ำดีสั่งสองท่อน้ำดีใหญ่ และสาขาของพวกเขาหลัก เริ่มต้นจาก hilus ตับ มีประสบการ์ของกำแพง ductal ข้อ และเรียงตามคอลัมน์การ columnar epithelium ต่ำ พวกเขา corresponded ซ้าย หรือขวา hepatic ท่อ ท่องานติด segmental และท่อตั้งในมนุษย์ [16] [17] ท่อน้ำดีสั่งแรกท่อ corresponded กับท่อน้ำดีของผนังกั้น และ interlobular และ ductules น้ำดีน้ำดีขนาดเล็กได้ โดยปกติ flukes ตับผู้ใหญ่อาศัยอยู่ในท่อน้ำดีสั่งสอง และไม่พบในท่อน้ำดีลำดับแรกเปลี่ยนแปลงทางพยาธิวิทยาไม่ชัดเจนสุภัค specimens ใด ๆ ในกลุ่มควบคุม ในแฮมสเตอร์ที่ติดเชื้อ การเปลี่ยนแปลงที่ตับได้คล้ายกับที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ [4] การตอบสนองการอักเสบทั้งหมดถูกตรวจสอบสถานเยาวชน flukes ในสอง intrahepatic ตามท่อน้ำดีที่ hilus ตับและท่อน้ำดี extrahepatic p.i. วัน 3 อักเสบไม่รุนแรง โดย flukes ถูกเห็นในพื้นที่ periportal และก่อน สั่งท่อน้ำดี ชนิดเซลล์ส่วนใหญ่ประกอบด้วยเซลล์ mononuclear และ eosinophils ค่อย ๆ เพิ่มความรุนแรงของการอักเสบจาก p.i. วัน 7 เป็นต้นไป เซลล์หนัก mononuclear และอีโอซิโนแทรกซึมรอบท่อน้ำดี intrahepatic ถูกตั้งข้อสังเกตในพื้นที่กับ epithelial desquamation การตายเฉพาะส่วนเซลล์ตับโฟกัสยังได้ถูกตรวจสอบในช่วงการติดเชื้อ อักเสบสูงสุดก่อตั้งขึ้น โดย p.i. 1 เดือนเดือนสองเป็นต้นไป เปลี่ยนงานอักเสบรอบ ๆ ท่อน้ำดี (ทั้งสั่ง พักน้ำดีท่อ) มีปัญหาเล็กน้อย และ lymphoid รูขุมขน เป็นพลาสมาเซลล์แทรกซึม ถูกกัน ศูนย์งาน germinal ที่เห็นในรูขุมขน lymphoid ขนาดใหญ่ที่สุดของตับ ท่อน้ำดี extrahepatic และน้ำดี การเปลี่ยนแปลงสรีรวิทยาชัดเจนสุดในตับในการติดเชื้อเรื้อรังได้ periductal fibrosis, ductal dilatation และแทรกซึม mononuclear เซลล์ ด้วยรวม lymphoid การเปลี่ยนแปลงทางพยาธิวิทยาอย่างรุนแรงมากขึ้นในท่อน้ำดีตับ และ extrahepatic ได้น้ำดีได้ อักเสบ granulomatous สถาน fluke ไข่ได้บ่อยในพื้นที่ intrahepatic periductal และเกินจาก infolding mucosal ใน lumen ท่อน้ำดี3.2. Immunohistochemical สังคมธุรกิจของ Opisthorchis antigensปฏิกิริยาเชิงบวกเพื่อ immunoperoxidase ย้อมสีสำหรับ Opisthorchis antigens เป็นยัง โดยฝากน้ำตาลน้ำตาล การเปรียบเทียบ การย้อมสี immunofluorescent ผลิต fluorescence สดใส ในทั้งสองวิธี รุนแรงมากขึ้นปฏิกิริยา ยอดยิ่งของ antigens ทั้งเตรียม antiserum (เช่น ES ป้องกัน และต่อต้าน somatic แอนตี้) ผลิตย้อมสีบวกอย่างยิ่ง tegument กล้ามเนื้อ ระบบทางเดินอาหาร และอวัยวะสืบพันธุ์รวมทั้งไข่ของพยาธิใบไม้ในตับ แอนติบอดีต่อต้าน-ES จัดแสดงกิจกรรมสำหรับปรสิตไข่น้อยกว่าของ somatic ต้าน Specificity ของปฏิกิริยาถูกยืนยัน โดยการเปรียบเทียบทั้งที่กระต่ายป้องกัน Opisthorchis แอนติบอดีอยู่คนเดียว แอนติบอดีหลังจากดูดซึม antigens viverrini โอหรือเซรั่มกระต่ายปกติย้อมสีส่วนติดรับ แอนติบอดีที่บริสุทธิ์เพื่อ antigens ES cross-reacted กับการโฮสต์ของหลอดเลือดกล้ามเนื้อเรียบ ความไวของทั้งสองเทคนิค staining สำหรับสังคมธุรกิจ Opisthorchis antigens คล้ายกันได้ ย้อมสี Immunoperoxidase ดังนั้นใช้เป็นไว้เป็นตัวอย่างเนื่องจากความสะดวก permanence และสัณฐานวิทยาแห่งไม่พบ Opisthorchis antigens ใด ๆ ไว้เป็นตัวอย่างควบคุมเชื้อ ย้อมสีบวกที่เห็นในทุกขั้นตอนของปรสิตในส่วนเนื้อเยื่อที่ติดเชื้อ ย้อมสี extraparasitic พบในตรามูก และบนพื้นผิวที่ปลายยอดของซับ biliary epithelium ในชิด flukes ก่อนเป็นวันที่ 3 p.i. Obvious ย้อมสีของปรสิตและ biliary epithelium ถูกตรวจสอบ โดย p.i. วัน 7 ในวันที่ 14 p.i. เมื่อปรสิตได้เติบโต ปรสิต antigens สุภัค diffusely กระจาย flukes, biliary epithelium และบริเวณเนื้อเยื่อ stromal ใกล้ flukesของ epithelium biliary บวกตรวจหาปรสิตเชื่อมโยงกับเซลล์หนัก mononuclear แทรกซึม การย้อมสีของ biliary epithelium เหมือน หรือแตกต่างกัน รูปแบบคล้ายของปรสิตตรวจหาย้อมสี ซึ่งเล็กน้อยก็เพิ่มความเข้ม ได้เห็นจาก p.i. 30 วันจนสิ้นสุดการทดลอง เป็นเรื่องน่าสนใจ ย้อมสีเข้มถูกสังเกตในพื้นที่ fibrotic epithelium และ periductal ในชิด flukes ของไว้เป็นตัวอย่างที่ติดเชื้อโรคเรื้อรัง Epithelium น้ำดีประกอบด้วยขนาดเล็กจำนวน antigens บนตรา mucosal กว่าบน epithelia ของท่อน้ำดี intrahepatic และ extrahepatic Photomicrographs ตัวแทนของสังคมธุรกิจ immunohistochemical ลำดับของ antigens Opisthorchis ใน biliary ระบบติดไวรัสจะแสดงอยู่ใน Fig. 1A-เอฟ

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

3. ผลการ
ทั้งสองกลุ่มที่ติดเชื้อและการควบคุมของแฮมสเตอร์มีสุขภาพดีตลอดการทดลองและหนูแฮมสเตอร์ไม่เสียชีวิต ไข่พยาธิใบไม้ตับที่พบครั้งแรกในอุจจาระหนึ่งเดือนหลังจากการติดเชื้อ [11]. 3.1 จุลกายวิภาคเปลี่ยนแปลงระบบทางเดินน้ำดีประกอบด้วยสองส่วนหลักคือท่อน้ำดี intrahepatic และ extrahepatic รวมทั้งถุงน้ำดี ในการศึกษานี้ท่อน้ำดี intrahepatic ของหนูแฮมสเตอร์ถูกจัดให้เป็นลำดับแรกและครั้งที่สองท่อน้ำดี ลำดับที่สองมีท่อน้ำดีท่อน้ำดีที่มีขนาดใหญ่และสาขาหลักของพวกเขาเริ่มต้นจากการ hilus ตับมีความโดดเด่นด้วยการปรากฏตัวของผนัง ductal เส้นใยและเรียงรายไปด้วยเสาต่ำไปเยื่อบุผิวเสา พวกเขาสอดคล้องกับท่อตับซ้ายหรือขวา, ท่อปล้องและท่อในพื้นที่ของมนุษย์ [16] และ [17] สั่งซื้อครั้งแรกท่อน้ำดีท่อน้ำดีถูกขนาดเล็กก็ตรงกับผนังและท่อน้ำดี interlobular และ ductules น้ำดี โดยปกติพยาธิตัวแก่อาศัยอยู่ในท่อน้ำดีลำดับที่สองและไม่ได้พบในการสั่งซื้อครั้งแรกท่อน้ำดี. ไม่มีการเปลี่ยนแปลงที่เห็นได้ชัดพยาธิวิทยาพบในตัวอย่างใด ๆ ในกลุ่มควบคุม ในหนูแฮมสเตอร์ที่ติดเชื้อจะมีการเปลี่ยนแปลงตับมีความคล้ายคลึงกับที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ [4] ตอบสนองการอักเสบที่แตกต่างกันเป็นที่สังเกตรอบ flukes เด็กและเยาวชนในลำดับที่สอง intrahepatic ท่อน้ำดีที่ hilus ตับและท่อน้ำดี extrahepatic โดยวันที่ 3 ปี่อักเสบอย่างอ่อนโดยไม่ต้อง flukes ถูกมองว่ายังอยู่ในพื้นที่ periportal และสั่งซื้อครั้งแรกท่อน้ำดี เซลล์ชนิดส่วนใหญ่ประกอบด้วยเซลล์โมโนนิวเคลียร์และ eosinophils ความรุนแรงของการอักเสบค่อยๆเพิ่มขึ้นจากวัน 7 ปี่เป็นต้นไป เซลล์โมโนนิวเคลียร์หนักแทรกซึม eosinophil รอบท่อน้ำดี intrahepatic ได้ระบุไว้ในพื้นที่ที่มี desquamation เยื่อบุผิว เซลล์ตับโฟกัสเนื้อร้ายนอกจากนี้ยังพบในช่วงต้นของการติดเชื้อ การอักเสบสูงสุดก่อตั้งขึ้นโดย 1 เดือนปี่จากเดือนที่สองเป็นต้นไปการเปลี่ยนแปลงการอักเสบที่ใช้งานรอบท่อน้ำดี (ทั้งสั่งซื้อครั้งแรกและครั้งที่สองท่อน้ำดี) ถดถอยเล็กน้อยและรูขุมต่อมน้ำเหลืองเช่นเดียวกับการแทรกซึมของเซลล์พลาสม่าเป็นเด่น ศูนย์เชื้อโรคที่ใช้งานได้เห็นในรูขุมต่อมน้ำเหลืองที่มีขนาดใหญ่ที่สุดของตับท่อน้ำดี extrahepatic และถุงน้ำดี การเปลี่ยนแปลงทางเนื้อเยื่อที่ชัดเจนที่สุดในตับในการติดเชื้อเรื้อรังเป็นพังผืด periductal, ขยาย ductal และการแทรกซึมของเซลล์โมโนนิวเคลียร์ที่มีการรวมตัวต่อมน้ำเหลือง การเปลี่ยนแปลงทางพยาธิวิทยามีความรุนแรงมากขึ้นในตับและท่อน้ำดี extrahepatic กว่าในถุงน้ำดี การอักเสบ granulomatous รอบไข่พยาธิที่เห็นบ่อยครั้งในพื้นที่ periductal intrahepatic และโผล่ออกมาจากเยื่อเมือก infolding ภายในเซลล์ท่อน้ำดี. 3.2 การแปล Immunohistochemical ของ Opisthorchis antigens ปฏิกิริยาในเชิงบวกต่อการย้อมสี immunoperoxidase สำหรับแอนติเจน Opisthorchis ได้รับการยอมรับโดยเงินฝากสีน้ำตาลแดง เพื่อเปรียบเทียบการย้อมสี immunofluorescent ผลิตเรืองแสงสดใส ในทั้งสองวิธีที่รุนแรงมากขึ้นปฏิกิริยาที่มากขึ้นปริมาณของแอนติเจน การเตรียมการทั้ง antiserum (เช่นป้องกัน ES และแอนติบอดีต่อต้านร่างกาย) การย้อมสีที่ผลิตในเชิงบวกอย่างมากในกระดองกล้ามเนื้อระบบทางเดินอาหารและอวัยวะสืบพันธุ์รวมทั้งไข่ของพยาธิใบไม้ตับ แอนติบอดีต่อต้าน ES แสดงฤทธิ์น้อยลงสำหรับไข่พยาธิกว่าป้องกันร่างกาย ความจำเพาะของการเกิดปฏิกิริยาได้รับการยืนยันโดยการเปรียบเทียบการย้อมสีของส่วนที่ติดกันได้รับการรักษาที่มีทั้งกระต่ายแอนติบอดีต่อต้าน Opisthorchis คนเดียวแอนติบอดีหลังจากการดูดซึมด้วยทุมแอนติเจน viverrini หรือซีรั่มกระต่ายปกติ แอนติบอดีบริสุทธิ์เพื่อ ES antigens ข้ามปฏิกิริยากับกล้ามเนื้อเรียบของหลอดเลือดโฮสต์ ความไวของทั้งเทคนิคการย้อมสีสำหรับการแปลของแอนติเจน Opisthorchis มีความคล้ายคลึงกัน การย้อมสี immunoperoxidase จึงถูกนำมาใช้ในส่วนของชิ้นงานเนื่องจากความสะดวกของความคงทนและสัณฐานวิทยาที่ดีเยี่ยม. แอนติเจน Opisthorchis ไม่ได้ถูกตรวจพบในใด ๆ ของตัวอย่างการควบคุมที่ไม่ติดเชื้อ การย้อมสีบวกที่เห็นในทุกขั้นตอนของปรสิตในส่วนเนื้อเยื่อที่ติดเชื้อ การย้อมสี Extraparasitic ถูกพบในเสื้อเมือกและบนพื้นผิวปลายของเยื่อบุเยื่อบุผิวทางเดินน้ำดีในการติดต่อใกล้ชิดกับ flukes เป็นช่วงต้นของวันที่ 3 ปี่การย้อมสีที่เห็นได้ชัดของปรสิตและเยื่อบุผิวทางเดินน้ำดีเป็นที่สังเกตโดยวัน 7 ปี่ ในวันที่ 14 ปี่เมื่อปรสิตกำลังเติบโต, แอนติเจนพยาธิพบกระจายคลุ้งใน flukes, เยื่อบุผิวทางเดินน้ำดีและเนื้อเยื่อรอบ stromal ใกล้ flukes. การปรากฏตัวของเยื่อบุผิวทางเดินน้ำดีแอนติเจนบวกปรสิตที่เกี่ยวข้องกับเซลล์โมโนนิวเคลียร์หนักแทรกซึม การย้อมสีของเยื่อบุผิวทางเดินน้ำดีเป็นอย่างใดอย่างหนึ่งเหมือนกันหรือต่างกัน รูปแบบที่คล้ายกันของการย้อมสีแอนติเจนพยาธิซึ่งเพิ่มขึ้นเล็กน้อยในความรุนแรงถูกมองเห็นได้จากวันที่ 30 ปี่จนสิ้นสุดการทดลอง ที่น่าสนใจการย้อมสีที่รุนแรงพบว่าในเยื่อบุผิวและ periductal พื้นที่ fibrotic ในการติดต่อใกล้ชิดกับ flukes ตัวอย่างการติดเชื้อเรื้อรัง เยื่อบุผิวถุงน้ำดีที่มีขนาดเล็กจำนวนมากของแอนติเจนบนเสื้อเยื่อเมือกมากกว่า epithelia ของท่อน้ำดี intrahepatic และ extrahepatic ตัวแทน photomicrographs ของการแปลลำดับ Immunohistochemical แอนติเจน Opisthorchis ในระบบทางเดินน้ำดีที่ติดเชื้อจะแสดงในรูป 1A-F

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

3 . ผลลัพธ์
ทั้งติดเชื้อและกลุ่มควบคุมของแฮมสเตอร์มีสุขภาพดีตลอดการทดลอง และไม่มีสัตว์ตาย โรคพยาธิใบไม้ตับไข่ครั้งแรกที่พบในอุจจาระหนึ่งเดือนหลังจากการติดเชื้อ [ 11 ] .

1 . การเปลี่ยนแปลงทางจุลกายวิภาค
ระบบท่อน้ำประกอบด้วยสองส่วนหลัก : intrahepatic นอกตับน้ำดีและท่อรวมทั้งถุงน้ำดี ในการศึกษานี้การ intrahepatic การเวกของหนูแฮมสเตอร์ที่ถูกจัดเป็นครั้งแรกและครั้งที่สองเพื่อท่อน้ำดี . 2 สั่งท่อน้ำดีคือการเวกขนาดใหญ่และสาขาหลักของพวกเขา เริ่มต้นจาก hilus ตับ เป็นลักษณะการปรากฏตัวของเส้นใย ductal ผนังและเรียงรายไปด้วยต่ำมีให้โดยเยื่อบุผิว . พวกเขาตรงกับซ้ายหรือขวาขนาดท่อ ,ท่อและท่อย่อยในพื้นที่มนุษย์ [ 16 ] และ [ 17 ] คนแรกสั่งท่อน้ำดีคือ การเวกเล็ก และตรงกับความ interlobular การเวก และ ductules น้ำดี ปกติแล้ว ผู้ใหญ่ตับพยาธิใบไม้ที่อาศัยอยู่สองสั่งท่อน้ำดีและไม่พบในคำสั่งแรกของท่อน้ำดี

ไม่มีการเปลี่ยนแปลงพยาธิสภาพชัดเจนที่พบในตัวอย่างในกลุ่มควบคุมในหนูแฮมสเตอร์ที่ติดเชื้อ ตับมีการเปลี่ยนแปลงคล้ายกับที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ [ 4 ] ที่แตกต่างกันการตอบสนองการอักเสบพบว่ารอบ ๆ เยาวชนใน intrahepatic เพื่อฟลุคท่อน้ำดีในตับและท่อที่สอง hilus น้ำดีนอกตับอ่อนอักเสบ โดยวันที่ 3 PI โดยฟลุคก็ยังเห็นในพื้นที่ periportal และท่อน้ำดีสั่งก่อนชนิดเซลล์ส่วนใหญ่ประกอบด้วยเซลล์ปกติ และการพิเคราะห์ . ความรุนแรงของการอักเสบจะค่อยๆ เพิ่มขึ้นจากวันที่ 7 อ. น. เป็นต้นไป หนักปกติเซลล์และอีโอซิโนฟิลแทรกซึมทั่วการเวก intrahepatic ถูกระบุไว้ในพื้นที่ที่มีบุโลหิตจาง . เซลล์ตับ พบว่าในช่วงต้นของการระบาดได้การอักเสบสูงสุดก่อตั้งขึ้นโดย 1 เดือน PI

จากเดือนที่สองเป็นต้นไป การเปลี่ยนแปลงความปราดเปรียวรอบท่อน้ำดี ( ทั้งครั้งแรกและครั้งที่สองเพื่อท่อน้ำดี ) ถอยหลังเล็กน้อย และน้ำเหลืองรูขุมขนเช่นเดียวกับการแทรกซึมของเซลล์พลาสมาเด่น ศูนย์เชื้อปราดเปรียวอยู่ในรูขุมขนใหญ่ที่สุดของเม็ดเลือด ตับท่อน้ำดีนอกตับ และถุงน้ำดี ที่ชัดเจนที่สุดจากการเปลี่ยนแปลงในตับติดเชื้อเรื้อรัง คือ periductal พังผืด การ ductal ปกติและเซลล์ของเม็ดเลือดรวม . การเปลี่ยนแปลงทางพยาธิวิทยาเป็นรุนแรงมากขึ้นในตับนอกตับและท่อน้ำดีกว่าในถุงน้ำดีพบไข่พยาธิใบไม้การอักเสบรอบ ๆเห็นบ่อยใน intrahepatic periductal พื้นที่และยื่นออกมาจาก infolding เยื่อเมือกภายในท่อน้ำดีอย่างเดียว

2 . ในการแปลเต็มแอนติเจน
ปฏิกิริยาบวกกับการตรวจหา Opisthorchis แอนติเจนสำหรับได้รับการยอมรับจากสีน้ำตาลแดง เงินฝากธนาคาร การเปรียบเทียบวิธีการผลิตเรืองสว่าง immunofluorescent . ทั้งสองวิธี เข้มมากขึ้นปฏิกิริยา ปริมาณมากของแอนติเจน ทั้งการเตรียมเชื้อ ( เช่นต่อต้าน ES และแอนติบอดีต่อต้านโซมา ) ผลิตในเชิงบวกอย่างมากจากการ กล้ามเนื้อ ระบบทางเดินอาหาร และอวัยวะสืบพันธุ์ รวมถึงไข่ของพยาธิใบไม้ตับ .แอนติบอดีต่อต้าน ES มีกิจกรรมน้อยกว่าพยาธิไข่กว่าของ anti โซมาติก . ความจำเพาะของปฏิกิริยาที่ได้รับการยืนยันโดยเปรียบเทียบการย้อมสีของส่วนที่อยู่ติดกันได้รับให้กระต่ายเต็มแอนติบอดีต่อต้านคนเดียว ) หลังจากการดูดซึมกับ O . viverrini แอนติเจนหรือซีรั่มกระต่ายปกตินำแอนติบอดีที่ทำปฏิกิริยากับแอนติเจน ES ข้ามโฮสต์ที่กล้ามเนื้อเรียบของหลอดเลือด . ความไวของวิธีการทดสอบสำหรับการแปลเต็มและมีลักษณะคล้ายคลึงกัน การตรวจหาจึงใช้ในส่วนของชิ้นงาน เพราะความสะดวก ความทนทาน และสัณฐานยอดเยี่ยม

เต็มและไม่พบในใด ๆของการควบคุมมาก่อน ตัวอย่าง บวกจากที่เห็นในขั้นตอนทั้งหมดของปรสิตในส่วนเนื้อเยื่อที่ติดเชื้อ extraparasitic staining พบเมือกเคลือบบนพื้นผิวของเยื่อบุซับในปลายท่อน้ำในการสัมผัสใกล้ชิดกับฟลุคก่อนวันที่ 3 พีไอชัดเจนการย้อมสีของปรสิตและเยื่อบุท่อน้ำ 2 วัน 7 PI . ในวันที่ 14 PI เมื่อปรสิตเติบโตคลุ้งกระจาย แอนติเจนพยาธิที่พบในเยื่อบุท่อน้ำฟลุคและเนื้อเยื่อโดยรอบ , stromal ใกล้ฟลุค

มีปรสิตแอนติเจนบวกน้ำดีชนิดที่เกี่ยวข้องกับหนักปกติ เซลล์ การแทรกซึมการย้อมสีของน้ำดีเป็นเนื้อเดียวกันหรือชนิดเดียวกัน รูปแบบคล้ายคลึงกันของแอนติเจนพยาธิ staining ซึ่งเพิ่มขึ้นเล็กน้อยในความ เห็นจาก 30 วันเป็นนักสืบจนสิ้นสุดการทดลอง น่าสนใจ เข้ม staining พบในเยื่อบุผิว และ periductal ลา พื้นที่ในการสัมผัสใกล้ชิดกับฟลุคนั้นติดเชื้อเรื้อรัง .ถุงน้ำดีอักเสบเยื่อบุผิวมีปริมาณน้อยของแอนติเจนที่เคลือบบนมีถูกกว่าของ intrahepatic และนอกตับผลิตน้ำดี ตัวแทน photomicrographs ของการแปลในลำดับขั้นของ Opisthorchis แอนติเจนในน้ำดีติดเชื้อระบบแสดงในรูปที่ 1 – F