Fertilized fish eggs of red sea bre

Fertilized fish eggs of red sea bream P. major were obtained from
a local fish farmer in this study. Eggs were transferred into 100-L
polycarbonate tanks at 10 eggs/L following the procedure of
Ruttanapornvareesakul et al., 2010. In each feeding regime, four polycarbonate
tanks containing 100 L of 34-ppt artificial sea water with
each type of Chlorella (non- or Se-fortified one) at 5 × 105 cells/mL,
were prepared with aeration at a rate of 50 mL/min. Fish were
reared at 19 °C with 12-h diurnal photoperiod (900–2100) for 20 days.
Larvae were fed on two-type rotifers: rotifers fed on non-fortified
Chlorella (control diet) or those fed on Se-fortified Chlorella (enriched
diet), at 10 ind/mL from 2 days post hatch (dph) at mouth opening.
Every 5 days (1, 5, 10, 15 and 20 dph), 10 fish were randomly sampled
from each tank and were anesthetized with MS 222 followed by 5%
formalin fixation. Total and standard lengths were measured for all
sampled larvae using a microscopic measurement system including stereomicroscope
(Discovery V8, Zeiss, Germany) equipped with a digital
camera (AxioCam, HSm) and an image-analysis software (AxioVision
4.8). Additional measurements such as body depth, head length, eye
diameter, notochord flexion and the number of caudal fin rays (Fig. 1)
were made on 20-dph samples. On the last day of larviculture (20 dph),
the viability and survival rate were estimated. The viability of fish
larvae was conducted with air exposure test; the rate of surviving individuals
after 10 min from 5-s air exposure. The survival rate of larvae
was calculated from the average number of surviving larvae in
four aquaria and these larvae were collected by the same method
as rotifer preparation for chemical analyses. To evaluate the quality
of employed fish eggs and hatched larvae, hatching rate and survival
activity index (SAI, Shimma and Tsujigado, 1981) of hatched larvae
were calculated. We placed 30 fertilized eggs in a 500-mL beaker
containing 500-mL same saline water as the larviculture at 19 °C in
total darkness without aeration. Dead larvae were counted

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ปลาไข่ของหุ่น P. รายใหญ่ได้รับจากปฏิสนธิเกษตรกรปลาท้องถิ่นในการศึกษานี้ ไข่ได้ถูกโอนย้ายไป 100 ลิตรถังโพลีคาร์บอเนตที่ 10 ไข่/L ตามขั้นตอนของRuttanapornvareesakul et al. 2010 ในอาหารแต่ละระบอบการปกครอง โพลีคาร์บอเนต 4ถัง 100 L 34 ppt เทียมน้ำที่ประกอบด้วยแต่ละชนิดของสาหร่าย (ไม่ใช่ หรือ Se-ธาตุหนึ่ง) ที่ 5 × 105 เซลล์/มล.มาพร้อมกับอากาศในอัตรา 50 มิลลิลิตร/นาทีปลามีเลี้ยงที่ 19 ° C กับ 12 h การช่วงแสงที่ฟ้า (900-2100) สำหรับ 20 วันตัวอ่อนถูกเลี้ยงด้วย rotifers สองชนิด: rotifers กินไม่ใช่ธาตุคลอเรลล่า (ควบคุมอาหาร) หรือผู้ที่เลี้ยงด้วยสาหร่ายธาตุ Se (อุดมอาหาร), ที่ 10 ind/mL จากฟักโพสต์ 2 วัน(ดีพีเอช) ที่เปิดปากทุก ๆ 5 วัน (ดีเป็น 1, 5, 10, 15 และ 20 พีเอช), ปลา 10 ถูกสุ่มตัวอย่างจากแต่ละถัง และถูกด้วยกับ MS 222 ตาม ด้วย 5%formalin ตรึง ความยาวรวม และมาตรฐานมีวัดทั้งหมดตัวอย่างตัวอ่อนโดยใช้ระบบการวัดด้วยกล้องจุลทรรศน์รวมทั้งวิธี(Discovery V8, Zeiss เยอรมนี) พร้อมกับดิจิตอลกล้อง (AxioCam, HSm) และซอฟต์แวร์การวิเคราะห์ภาพ (AxioVision4.8) . การวัดเพิ่มเติมเช่นความลึกของร่างกาย ใหญ่ยาว ตาเส้นผ่าศูนย์กลาง งอ notochord และจำนวนของครีบครีบรังสี (รูปที่ 1)ทำจากตัวอย่าง 20-ดีพีเอช วันสุดท้ายของ larviculture (20 ดีพีเอช),อัตราการอยู่รอดและชีวิตที่ถูกประเมิน ชีวิตของปลาตัวอ่อนจะดำเนินการ ด้วยการทดสอบแสงอากาศ อัตราการรอดตายบุคคลหลังจาก 10 นาทีจากการสัมผัสอากาศ 5-s อัตราการอยู่รอดของตัวอ่อนคำนวณจากจำนวนตัวอ่อนที่รอดตายในอควาเรียสี่และตัวอ่อนเหล่านี้ถูกจัดเก็บ โดยวิธีการเดียวกันเป็นการเตรียมโรติเฟอร์สำหรับการวิเคราะห์ทางเคมี การประเมินคุณภาพส่วนปลาไข่และตัวอ่อนขีด ฟักและอัตรารอดดัชนีกิจกรรม (ทราย Shimma และ Tsujigado, 1981) ของตัวอ่อนที่ขีดมีคำนวณ เราวางไข่ปฏิสนธิ 30 ในบีกเกอร์ 500 mLที่ประกอบด้วยน้ำเกลือ 500 มล.เป็น larviculture 19 ° c ในมืดโดยไม่ต้องเติมอากาศ นับตัวอ่อนตาย

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ไข่ปลาทะเลปลาชนิดหนึ่งสีแดงพีที่สำคัญที่ได้รับจาก
เกษตรกรปลาท้องถิ่นในการศึกษาครั้งนี้ ไข่ถูกโอนเป็น 100-L
ถังโพลีคาร์บอเนตที่ 10 ฟอง / L ตามขั้นตอนของ
Ruttanapornvareesakul et al., 2010 ในแต่ละระบอบการปกครองให้อาหารสี่โพลีคาร์บอเนต
รถถังที่มี 100 ลิตร 34 PPT น้ำทะเลเทียมกับ
แต่ละประเภทของคลอเรลล่า (Non - หรือ Se-ป้อมหนึ่ง) ที่ 5 × 105 เซลล์ / ml
ถูกจัดทำขึ้นด้วยการเติมอากาศในอัตรา 50 มิลลิลิตร / นาที ปลา
ที่เลี้ยง ณ วันที่ 19 ° C 12 H แสงรายวัน (900-2100) เป็นเวลา 20 วัน
ตัวอ่อนได้รับการเลี้ยงดูในประเภทสองโรติเฟอร์: โรติเฟอร์ที่เลี้ยงที่ไม่เสริม
คลอเรลล่า (ควบคุมอาหาร) หรือผู้ที่เลี้ยง Se เสริมคลอเรลล่า (อุดม
อาหาร) 10 ตัว / มิลลิลิตรจาก 2 วันที่โพสต์ฟัก (DPH) ที่เปิดปาก
ทุก 5 วัน (1, 5, 10, 15 และ 20 DPH), 10 ปลาสุ่ม
จากแต่ละถังและได้รับการดมยาสลบกับ MS 222 ตามด้วย 5%
ฟอร์มาลินตรึง รวมความยาวและมาตรฐานการวัดทุก
ตัวอ่อนตัวอย่างโดยใช้ระบบการวัดรวมทั้งกล้องจุลทรรศน์สเตอริโอ
(ค้นพบ V8, Zeiss, เยอรมนี) พร้อมกับดิจิตอล
กล้อง (AxioCam, HSM) และซอฟต์แวร์การวิเคราะห์ (AxioVision
4.8) วัดเพิ่มเติมเช่นความลึกของร่างกาย, ความยาวหัวตา
เส้นผ่าศูนย์กลางงอ notochord และจำนวนของรังสีครีบหาง (รูปที่ 1).
ได้ทำในกลุ่มตัวอย่าง 20 DPH ในวันสุดท้ายของการอนุบาลปลาวัยอ่อน (20 DPH)
มีศักยภาพและอัตราการรอดตายอยู่ที่ประมาณ ความมีชีวิตของปลา
ตัวอ่อนได้ดำเนินการกับการทดสอบการสัมผัสอากาศ; อัตราของบุคคลที่รอดตาย
หลังจาก 10 นาทีจาก 5-S การสัมผัสอากาศ อัตราการอยู่รอดของตัวอ่อน
ที่คำนวณจากค่าเฉลี่ยของจำนวนที่หลงเหลืออยู่ในตัวอ่อนใน
สี่ตู้และตัวอ่อนเหล่านี้ถูกเก็บรวบรวมโดยวิธีการเดียวกัน
เพื่อเป็นการเตรียมโรติเฟอร์สำหรับการวิเคราะห์ทางเคมี ในการประเมินคุณภาพ
ของไข่ปลาลูกจ้างและตัวอ่อนที่ฟักไข่อัตราการรอดตายและ
ดัชนีกิจกรรม (ไทรชิเมอาและ Tsujigado, 1981) ของตัวอ่อนที่ฟักออกมา
จะถูกคำนวณ เราวางไว้ 30 ไข่ในบีกเกอร์ขนาด 500 มิลลิลิตร
ที่มี 500 มลน้ำเกลือเดียวกับอนุบาลปลาวัยอ่อนที่ 19 ° C ใน
ความมืดทั้งหมดโดยไม่ต้องเติมอากาศ ตัวอ่อนตายนับ

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ปลามีไข่สีแดงปลาทะเลหน้าสาขาที่ได้รับจากเกษตรกรปลาท้องถิ่นในการศึกษานี้ ไข่ถูกย้ายเข้าไปใน 100-lโพลีคาร์บอเนต รถถัง 10 ไข่ / L ตามกระบวนการของruttanapornvareesakul et al . , 2010 ในแต่ละระบบการเลี้ยง สี่ โพลีคาร์บอเนตถัง ( 100 ลิตร 35 ppt เทียมน้ำทะเลด้วยแต่ละชนิดของสาหร่าย ( Non - หรือเซป้อมหนึ่ง ) ที่ 5 × 105 เซลล์ / มิลลิลิตรเตรียมรับมือกับอากาศในอัตรา 50 มิลลิลิตรต่อนาที กลุ่มปลาแบบที่ 19 ° C ในช่วง 12-h ( 900 และ 2100 ) สำหรับ 20 วันตัวอ่อนที่ได้รับในสองประเภท : โรติเฟอร์กินโรติเฟอร์ไม่เสริมสาหร่าย ( อาหารควบคุม ) หรือผู้ที่ได้รับการเสริมสาหร่าย ( อุดมด้วยเซอาหาร ) ที่ 10 IND / ml 2 วันหลังฟัก ( Inc ) ที่ปากเปิดทุก 5 วัน ( 1 , 5 , 10 , 15 และ 20 , Inc ) 10 ปลาสุ่มตัวอย่างจากแต่ละถังและถูกวางยาสลบด้วย MS 222 ตามด้วย 5%การตรึงฟอร์มาลิน รวมและมาตรฐานความยาววัดทั้งหมดตัวอย่างการใช้กล้องจุลทรรศน์และระบบการวัดรวมทั้ง stereomicroscope( ดิส V8 Zeiss , เยอรมัน , ) อุปกรณ์ดิจิตอลกล้อง ( axiocam , HSM ) และซอฟต์แวร์ ( axiovision การวิเคราะห์ภาพ4.8 ) เพิ่มเติม เช่น การวัดความลึก ร่างกายหัวความยาวตาเส้นผ่าศูนย์กลาง งอโนโตคอร์ด และหมายเลขของรังสี ( รูปที่ 1 ) ครีบหางถูกสร้างใน 20 ตัวอย่าง Inc . ในวันสุดท้ายของ larviculture ( 20 Inc )ความมีชีวิตและอัตรารอดประมาณ . ชีวิตของปลาหนอนพันธุ์ทดสอบการสัมผัสอากาศ ; อัตราการรอดตาย บุคคลหลังจาก 10 นาทีจาก 5-s อากาศแสง อัตราการอยู่รอดของตัวอ่อนคำนวณจากอัตราเฉลี่ยของตัวอ่อนรอดตายสี่ วาเรียและตัวอ่อนเหล่านี้ถูกเก็บโดยวิธีเดียวกันขณะที่การเตรียมการของโรติเฟอร์ในการวิเคราะห์ทางเคมี ประเมินคุณภาพใช้ไข่ของปลาและตัวอ่อนฟักออกจากไข่ , อัตรารอดดัชนีกิจกรรม ( ซ้าย ) และชิเมอา tsujigado , 1981 ) ของตัวอ่อนฟักออกมาได้ เรา 30 ไข่ในบีกเกอร์ 500 มล.บรรจุ 500 มล. เหมือนกันน้ำเกลือเป็น larviculture 19 ° C ในความมืด ไม่ให้อากาศ ตาย ~ i ) นับ