There is considerable promise for the routine incorporation of doubled haploidy into induced mutagenesis by treating these gametic cells prior to regeneration of the DHs [101–103]. With the availability of in vitro mechanisms that permit the spontaneous and/or induced doubling of the haploid chromosomes, homozygous individuals could be produced quite routinely [104]. This would be a very rapid route to homozygousity [105,106] of the mutant’s genome and hence the mutated allele. Indeed, the authors [106] concluded that a mutation is captured in a homozygous, pure line in just one generation by using either the haploid or doubled haploid cells as starting materials for mutation treatments. This implies that the gametes of the M1 plants could be subjected to doubled haploidy or the gametes (haploid cells) of the wildtypes could be induced to mutate and then subsequently subjected to doubled haploidy. Both routes achieve the same purpose of the attainment of homozygousity in one generation. Szarejko and Forster [106] reviewed the productions of DH from M1 materials of Hordeum vulgare, Oryza sativa, Solanum nigrum and Triticum aestivum. Mutations had also been induced successfully in haploid cells of different species of Brassica, Datura innoxia, Hordeum vulgare, Malus x domestica, different species of Nicotiana and Oryza sativa. Different physical and chemical mutagens were used. For seed propagated crops therefore, DH strategies provide the fastest method for attaining homozygousity. The savings in time and cost are significant as recessive mutations usually are not detectable till the second (M2) or later generations of selfing. Reproducible DH protocols are available for over 250 plant species [107] across most plant genera. Technical challenges still remain however with regard to developing genotype-independent protocols, improving the level of callus production by the pollen grains, the differentiation of callus into green plants and the doubling of chromosomes.
มีสัญญามากสำหรับการเพิ่มขึ้นในการ haploidy ตามปกติของการรักษาด้วยเซลล์ gametic เหล่านี้ก่อนการงอกของ DHS [ 101 - 103 ] ด้วยความพร้อมของร่างกายกลไกที่อนุญาตให้ธรรมชาติและ / หรือเกิดสนิม โครโมโซมโฮโมไซกัสโครโมโซม แต่ละบุคคลสามารถผลิตค่อนข้างตรวจ [ 104 ]นี้จะเป็นอย่างรวดเร็วมากเส้นทาง homozygousity [ 105106 ] ของ Mutant จีโนมและดังนั้นยีนกลายพันธุ์ . แน่นอน ผู้เขียน [ 106 ] สรุปว่า การกลายพันธุ์เป็นบันทึกในแบบ บริสุทธิ์ บรรทัดในหนึ่งรุ่น โดยใช้ทั้งเดี่ยวหรือเป็นเซลล์แฮพลอยด์เป็นวัตถุดิบเริ่มต้น สำหรับการรักษานี้แสดงให้เห็นว่า gametes ของ M1 พืชอาจจะต้องเพิ่ม haploidy หรือ gametes ( แฮพลอยด์เซลล์ ) ของ wildtypes สามารถชักนำการกลายพันธุ์ แล้วต่อมาต้องสองเท่า haploidy . ทั้งสองเส้นทางบรรลุจุดประสงค์เดียวกันของความสำเร็จของ homozygousity ในรุ่นหนึ่งszarejko ฟอสเตอร์ [ 106 ] และตรวจสอบการผลิตของ DH จากวัสดุของ M1 hordeum vulgare , ข้าว , ข้าวสาลีและพบว่าไม่สามารถจะยอมรับได้ . การกลายพันธุ์ยังได้รับการประสบความสำเร็จในเซลล์แฮพลอยด์ของสายพันธุ์ที่แตกต่างกันของพืชตระกูลกะหล่ำลำโพง innoxia hordeum vulgare , , , domestica มารุ X , ชนิดที่แตกต่างกันของขนะ และข้าว . ต่างทางกายภาพและทางเคมีที่แตกต่างกันถูกนำมาใช้สำหรับเมล็ดขยายพันธุ์พืชดังนั้นกลยุทธ์คือวิธีที่เร็วที่สุดเพื่อให้บรรลุ homozygousity . เงินฝากออมทรัพย์ในเวลาและค่าใช้จ่ายที่สำคัญเป็นยีนด้อยมักจะไม่พบจนถึงวินาที ( M2 ) หรือรุ่นที่ใหม่กว่ารุ่นผสม . DH ) โปรโตคอลมีกว่า 250 ชนิดพืช [ 107 ] ข้ามสกุลของพืชมากที่สุดความท้าทายทางเทคนิคยังคงอย่างไรก็ตามเกี่ยวกับการพัฒนาพันธุกรรมอิสระโปรโตคอลการปรับปรุงระดับของการผลิตแคลลัสโดยเรณู , ความแตกต่างของแคลลัสเป็นโรงงานสีเขียว และเสแสร้งของโครโมโซม
การแปล กรุณารอสักครู่..
