- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
sand (NaCl90+ N60), (iv) 90 mmol L-
sand (NaCl90+ N60), (iv) 90 mmol L-1 NaCl + 90 mg N
kg-1 sand (NaCl90+ N90), and (v) 90 mmol L-1 NaCl +
120 mg N kg-1 sand (NaCl90+ N120). The concentration
of NaCl was selected on the basis of earlier findings
(e.g., Siddiqui et al. 2009). Each pot was given
200 cm3 of nutrient solution at every two days. The
salts used to make up the nutrient solution were as
follows: Macronutrient stock solution A (g L-1): Mg
(NO3)2
.6H2O, 4.94; Ca(NO3)2
.4H2O, 16.78; NH4NO3,
8.48; KNO3, 2.28. Macronutrient stock solution B (g
L-1): KH2PO4, 2.67; K2HPO4, 1.64; K2SO4, 6.62; Na2SO4,
0.60; NaCl, 0.33. Micronutrient supplement C (mg L-1):
H3BO3, 128.80; CuCl2
.2H2O, 4.84; MnCl2
.4H2O, 81.10;
(NH4)6 Mo7O24
.4H2O, 0.83; ZnCl2, 23.45; ferric citrate
pentahydrate, 809.84. The diluted solution which
was applied to the plants was prepared by mixing 200
mL of each of the macronutrient stock solution with
100 mL of the micronutrient supplement and diluting
to 4.5 L with DDW. The pH was maintained at 6.0 by
adding solution of H2SO4 or KOH.
Sampling was done after 50 days of sowing. The
performance of B. juncea L. cv. Chuutki and Radha
was assessed in terms of fresh weight (FW)/plant and
dry weight (DW)/plant. Water content as a percentage
of FW was calculated using the formula:
WC (%) = [(FW - DW)/FW] × 100
Net photosynthetic rate (PN) and stomatal conductance
(gs) were measured in cloudless clear days at light
saturating intensity between 11.00 and 12.00 h on upper
most fully expanded leaves, using the infrared gas
analyzer (IRGA) and the LICOR-6200 Portable Photosynthesis
System (LI-COR Lincoln, NE, USA).
The youngest fully expanded leaves were extracted
with 80% acetone and the absorbance was read spectrophotometrically
(SPEKOL 1500, Analytik Jena AG,
Germany) at 663 and 645 nm. The chlorophyll was
determined by using the formula of Arnon (1949).
The activity of carbonic anhydrase (CA) (E.C.4.2.1.1)
enzyme was determined by the method of Dwivedi and
Randhawa (1974). The leaf samples were cut into small
pieces and suspended in cystein hydrochloride solution.
The samples were incubated at 4°C for 20 min. The
pieces were blotted and transferred to the test tubes containing
phosphate buffer (pH 6.8), followed by the addition
of alkaline bicarbonate solution and bromothymol blue
indicator. The test tubes were incubated at 5°C for 20
min. After the addition of 0.2 mL of methyl red indicator,
the reaction mixture was titrated against 0.05 N HCl. The
results were expressed as μmol CO2 kg-1 f.m. s-1.
The proline (Pro) concentration was determined
spectrophotometrically by adopting the ninhydrin
method of Bates et al. (1973). We first homogenized
300 mg fresh leaf samples in sulphosalicylic acid. To
the extract, 2 mL each of acid ninhydrin and glacial
acetic acid were added. The samples were heated at
100°C. The mixture was extracted with toluene and
the free toluene was quantified spectrophotometrically
(SPEKOL 1500, Analytik Jena AG, Germany) at 528
nm using L-proline as a standard.
Glycinebetaine (GB) concentration was estimated by
the method of Grieve and Grattan (1983). Leaves were
weighed and oven-dried at 75°C, the dried leaves were
finely ground with deionized water at 100°C for 60
min. GB concentration was determined spectrophotometrically
(SPEKOL 1500, Analytik Jena AG, Germany)
at 365 nm, using aqueous extracts of dry-ground leaf
material after reaction with KI2-I2.
MDA content was determined according to the
method of Heath and Packer (1968). Leaves were
weighed and the homogenates containing 10% trichloroacetic
acid (TCA), 0.65% 2-thiobarbituric acid (TBA),
were heated at 95°C for 60 min, then cooled to room
temperature and centrifuged at 10 000 × g for 10 min.
The absorbance of the supernatant was read at 532 and
600 nm against a reagent blank.
Dried plant material was milled to pass through a
0.42-mm sieve, and 100 mg samples were analysed by
the Kjeldahl method, which included 0.5% selenium as
a catalyst and salicylic acid to reduce nitrate (Eastin
1978). The total N concentration was determined according
to the method of Lindner (1944). Concentrations
of leaf K and Na were estimated using a flame
photometer.
kg-1 sand (NaCl90+ N90), and (v) 90 mmol L-1 NaCl +
120 mg N kg-1 sand (NaCl90+ N120). The concentration
of NaCl was selected on the basis of earlier findings
(e.g., Siddiqui et al. 2009). Each pot was given
200 cm3 of nutrient solution at every two days. The
salts used to make up the nutrient solution were as
follows: Macronutrient stock solution A (g L-1): Mg
(NO3)2
.6H2O, 4.94; Ca(NO3)2
.4H2O, 16.78; NH4NO3,
8.48; KNO3, 2.28. Macronutrient stock solution B (g
L-1): KH2PO4, 2.67; K2HPO4, 1.64; K2SO4, 6.62; Na2SO4,
0.60; NaCl, 0.33. Micronutrient supplement C (mg L-1):
H3BO3, 128.80; CuCl2
.2H2O, 4.84; MnCl2
.4H2O, 81.10;
(NH4)6 Mo7O24
.4H2O, 0.83; ZnCl2, 23.45; ferric citrate
pentahydrate, 809.84. The diluted solution which
was applied to the plants was prepared by mixing 200
mL of each of the macronutrient stock solution with
100 mL of the micronutrient supplement and diluting
to 4.5 L with DDW. The pH was maintained at 6.0 by
adding solution of H2SO4 or KOH.
Sampling was done after 50 days of sowing. The
performance of B. juncea L. cv. Chuutki and Radha
was assessed in terms of fresh weight (FW)/plant and
dry weight (DW)/plant. Water content as a percentage
of FW was calculated using the formula:
WC (%) = [(FW - DW)/FW] × 100
Net photosynthetic rate (PN) and stomatal conductance
(gs) were measured in cloudless clear days at light
saturating intensity between 11.00 and 12.00 h on upper
most fully expanded leaves, using the infrared gas
analyzer (IRGA) and the LICOR-6200 Portable Photosynthesis
System (LI-COR Lincoln, NE, USA).
The youngest fully expanded leaves were extracted
with 80% acetone and the absorbance was read spectrophotometrically
(SPEKOL 1500, Analytik Jena AG,
Germany) at 663 and 645 nm. The chlorophyll was
determined by using the formula of Arnon (1949).
The activity of carbonic anhydrase (CA) (E.C.4.2.1.1)
enzyme was determined by the method of Dwivedi and
Randhawa (1974). The leaf samples were cut into small
pieces and suspended in cystein hydrochloride solution.
The samples were incubated at 4°C for 20 min. The
pieces were blotted and transferred to the test tubes containing
phosphate buffer (pH 6.8), followed by the addition
of alkaline bicarbonate solution and bromothymol blue
indicator. The test tubes were incubated at 5°C for 20
min. After the addition of 0.2 mL of methyl red indicator,
the reaction mixture was titrated against 0.05 N HCl. The
results were expressed as μmol CO2 kg-1 f.m. s-1.
The proline (Pro) concentration was determined
spectrophotometrically by adopting the ninhydrin
method of Bates et al. (1973). We first homogenized
300 mg fresh leaf samples in sulphosalicylic acid. To
the extract, 2 mL each of acid ninhydrin and glacial
acetic acid were added. The samples were heated at
100°C. The mixture was extracted with toluene and
the free toluene was quantified spectrophotometrically
(SPEKOL 1500, Analytik Jena AG, Germany) at 528
nm using L-proline as a standard.
Glycinebetaine (GB) concentration was estimated by
the method of Grieve and Grattan (1983). Leaves were
weighed and oven-dried at 75°C, the dried leaves were
finely ground with deionized water at 100°C for 60
min. GB concentration was determined spectrophotometrically
(SPEKOL 1500, Analytik Jena AG, Germany)
at 365 nm, using aqueous extracts of dry-ground leaf
material after reaction with KI2-I2.
MDA content was determined according to the
method of Heath and Packer (1968). Leaves were
weighed and the homogenates containing 10% trichloroacetic
acid (TCA), 0.65% 2-thiobarbituric acid (TBA),
were heated at 95°C for 60 min, then cooled to room
temperature and centrifuged at 10 000 × g for 10 min.
The absorbance of the supernatant was read at 532 and
600 nm against a reagent blank.
Dried plant material was milled to pass through a
0.42-mm sieve, and 100 mg samples were analysed by
the Kjeldahl method, which included 0.5% selenium as
a catalyst and salicylic acid to reduce nitrate (Eastin
1978). The total N concentration was determined according
to the method of Lindner (1944). Concentrations
of leaf K and Na were estimated using a flame
photometer.
0/5000
sand (NaCl90+ N60), (iv) 90 mmol L-1 NaCl + 90 mg Nkg-1 sand (NaCl90+ N90), and (v) 90 mmol L-1 NaCl +120 mg N kg-1 sand (NaCl90+ N120). The concentrationof NaCl was selected on the basis of earlier findings(e.g., Siddiqui et al. 2009). Each pot was given200 cm3 of nutrient solution at every two days. Thesalts used to make up the nutrient solution were asfollows: Macronutrient stock solution A (g L-1): Mg(NO3)2.6H2O, 4.94; Ca(NO3)2.4H2O, 16.78; NH4NO3,8.48; KNO3, 2.28. Macronutrient stock solution B (gL-1): KH2PO4, 2.67; K2HPO4, 1.64; K2SO4, 6.62; Na2SO4,0.60; NaCl, 0.33. Micronutrient supplement C (mg L-1):H3BO3, 128.80; CuCl2.2H2O, 4.84; MnCl2.4H2O, 81.10;(NH4)6 Mo7O24.4H2O, 0.83; ZnCl2, 23.45; ferric citratepentahydrate, 809.84. The diluted solution whichwas applied to the plants was prepared by mixing 200mL of each of the macronutrient stock solution with100 mL of the micronutrient supplement and dilutingto 4.5 L with DDW. The pH was maintained at 6.0 byadding solution of H2SO4 or KOH.Sampling was done after 50 days of sowing. Theperformance of B. juncea L. cv. Chuutki and Radhawas assessed in terms of fresh weight (FW)/plant anddry weight (DW)/plant. Water content as a percentageof FW was calculated using the formula:WC (%) = [(FW - DW)/FW] × 100Net photosynthetic rate (PN) and stomatal conductance(gs) were measured in cloudless clear days at lightsaturating intensity between 11.00 and 12.00 h on uppermost fully expanded leaves, using the infrared gasanalyzer (IRGA) and the LICOR-6200 Portable PhotosynthesisSystem (LI-COR Lincoln, NE, USA).The youngest fully expanded leaves were extractedwith 80% acetone and the absorbance was read spectrophotometrically(SPEKOL 1500, Analytik Jena AG,Germany) at 663 and 645 nm. The chlorophyll wasdetermined by using the formula of Arnon (1949).The activity of carbonic anhydrase (CA) (E.C.4.2.1.1)enzyme was determined by the method of Dwivedi andRandhawa (1974). The leaf samples were cut into smallpieces and suspended in cystein hydrochloride solution.The samples were incubated at 4°C for 20 min. Thepieces were blotted and transferred to the test tubes containingphosphate buffer (pH 6.8), followed by the additionof alkaline bicarbonate solution and bromothymol blueindicator. The test tubes were incubated at 5°C for 20min. After the addition of 0.2 mL of methyl red indicator,the reaction mixture was titrated against 0.05 N HCl. Theresults were expressed as μmol CO2 kg-1 f.m. s-1.The proline (Pro) concentration was determinedspectrophotometrically by adopting the ninhydrinmethod of Bates et al. (1973). We first homogenized300 mg fresh leaf samples in sulphosalicylic acid. Tothe extract, 2 mL each of acid ninhydrin and glacialacetic acid were added. The samples were heated at100°C. The mixture was extracted with toluene andthe free toluene was quantified spectrophotometrically(SPEKOL 1500, Analytik Jena AG, Germany) at 528nm using L-proline as a standard.Glycinebetaine (GB) concentration was estimated bythe method of Grieve and Grattan (1983). Leaves wereweighed and oven-dried at 75°C, the dried leaves werefinely ground with deionized water at 100°C for 60min. GB concentration was determined spectrophotometrically(SPEKOL 1500, Analytik Jena AG, Germany)at 365 nm, using aqueous extracts of dry-ground leafmaterial after reaction with KI2-I2.MDA content was determined according to themethod of Heath and Packer (1968). Leaves wereweighed and the homogenates containing 10% trichloroaceticacid (TCA), 0.65% 2-thiobarbituric acid (TBA),were heated at 95°C for 60 min, then cooled to roomtemperature and centrifuged at 10 000 × g for 10 min.The absorbance of the supernatant was read at 532 and600 nm against a reagent blank.Dried plant material was milled to pass through a0.42-mm sieve, and 100 mg samples were analysed bythe Kjeldahl method, which included 0.5% selenium asa catalyst and salicylic acid to reduce nitrate (Eastin1978). The total N concentration was determined accordingto the method of Lindner (1944). Concentrationsof leaf K and Na were estimated using a flamephotometer.
การแปล กรุณารอสักครู่..
ทราย (NaCl90 + N60) (iv) 90 มิลลิโมล L-1 โซเดียมคลอไรด์ + 90 มก.
ยังไม่มีกิโลกรัม-1 ทราย (NaCl90 + N90) และ (V) 90 มิลลิโมล L-1 โซเดียมคลอไรด์ +
120 มก. ยังไม่มีกิโลกรัม-1 ทราย (NaCl90 + N120) .
ความเข้มข้นของโซเดียมคลอไรด์ได้รับเลือกบนพื้นฐานของผลการวิจัยก่อนหน้านี้
(เช่น Siddiqui et al. 2009) หม้อแต่ละคนได้รับ
200 cm3 ของสารละลายธาตุอาหารที่ทุกสองวัน
เกลือที่ใช้ในการทำขึ้นสารละลายธาตุอาหารพบว่าต่อไปนี้การแก้ปัญหา macronutrient หุ้น A (กรัม L-1): Mg (NO3) 2 .6H2O, 4.94; Ca (NO3) 2 .4H2O, 16.78; NH4NO3, 8.48; KNO3, 2.28 หุ้น macronutrient แก้ปัญหา B (g L-1): KH2PO4, 2.67; K2HPO4, 1.64; K2SO4, 6.62; Na2SO4, 0.60; โซเดียมคลอไรด์ 0.33 ธาตุอาหารเสริม C (มก. L-1): H3BO3, 128.80; CuCl2 .2H2O, 4.84; MnCl2 .4H2O, 81.10; (NH4) 6 Mo7O24 .4H2O, 0.83; ZnCl2, 23.45; ซิเตรตเฟอริกpentahydrate, 809.84 วิธีการแก้ปัญหาเจือจางซึ่งถูกนำมาใช้กับพืชที่ถูกจัดทำขึ้นโดยการผสม 200 มิลลิลิตรของแต่ละของการแก้ปัญหาที่มีหุ้น macronutrient 100 มิลลิลิตรของอาหารเสริมธาตุและเจือจาง4.5 L กับ DDW ค่า pH ที่ถูกเก็บรักษาไว้ที่ 6.0 โดยเพิ่มการแก้ปัญหาของH2SO4 หรือ KOH. สุ่มตัวอย่างได้ทำหลังจาก 50 วันของการหว่านเมล็ด ประสิทธิภาพการทำงานของบีแอล juncea พันธุ์ Chuutki Radha และได้รับการประเมินในแง่ของน้ำหนักสด(FW) พืช / และน้ำหนักแห้ง(DW) / ต้น ปริมาณน้ำคิดเป็นร้อยละของการส่งต่อที่คำนวณโดยใช้สูตรที่: ห้องสุขา (%) = [(FW - DW) / FW] × 100 อัตราการสังเคราะห์แสงสุทธิ (PN) และสื่อกระแสไฟฟ้าปากใบ(GS) เป็นวัดในวันที่ชัดเจนกระจ่างแสงอิ่มตัวความรุนแรงระหว่าง 11.00 และ 12.00 ต่อชั่วโมงบนบนใบขยายตัวมากที่สุดอย่างเต็มที่โดยใช้ก๊าซชนิดอินฟราเรดวิเคราะห์(Irga) และ Licor-6200 แบบพกพาสังเคราะห์ระบบ(LI-COR ลิงคอล์น, NE, สหรัฐอเมริกา). ใบที่อายุน้อยที่สุดขยายตัวได้เต็มที่ถูกสกัดด้วย 80% อะซีโตนและการดูดกลืนแสงได้อ่าน spectrophotometrically (SPEKOL 1500, Analytik เจเอจี, เยอรมนี) ที่ 663 และ 645 นาโนเมตร คลอโรฟิลถูกกำหนดโดยใช้สูตรของอานนท์ (1949). กิจกรรมของ anhydrase คาร์บอ (CA) (EC4.2.1.1) เอนไซม์ที่ถูกกำหนดโดยวิธีการ Dwivedi และRandhawa (1974) กลุ่มตัวอย่างใบที่ถูกตัดเป็นขนาดเล็กชิ้นและระงับในสารละลายไฮโดรคลอไร cystein. กลุ่มตัวอย่างที่ถูกบ่มที่อุณหภูมิ 4 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 20 นาที ชิ้นเปื้อนและโอนไปยังหลอดทดลองที่มีฟอสเฟตบัฟเฟอร์ (pH 6.8) ตามด้วยการเพิ่มของการแก้ปัญหาสารอัลคาไลน์และbromothymol สีฟ้าตัวบ่งชี้ หลอดทดสอบได้รับการบ่มที่ 5 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 20 นาที หลังจากที่นอกเหนือจาก 0.2 มิลลิลิตรแสดงสถานะสีแดงเมธิล, ผสมปฏิกิริยาถูกปรับขนาดกับ 0.05 ไม่มี HCl ผลการวิจัยแสดงเป็นไมโครโมลต่อกิโลกรัม CO2-1 เอฟเอ็ม s-1. โพรลีน (Pro) ความเข้มข้นถูกกำหนดspectrophotometrically โดยการนำ ninhydrin วิธีการของเบตส์และอัล (1973) ก่อนอื่นเราหดหาย300 มิลลิกรัมตัวอย่างใบสดกรด sulphosalicylic เพื่อให้สารสกัด 2 มิลลิลิตรแต่ละ ninhydrin กรดและน้ำแข็งกรดอะซิติกถูกเพิ่ม กลุ่มตัวอย่างที่ถูกความร้อนที่อุณหภูมิ 100 องศาเซลเซียส ส่วนผสมที่ถูกสกัดด้วยโทลูอีนและโทลูอีนฟรีได้รับการวัด spectrophotometrically (SPEKOL 1500, Analytik เจเอจี, เยอรมนี) ที่ 528 นาโนเมตรโดยใช้ L-โพรลีนเป็นมาตรฐาน. Glycinebetaine (GB) ความเข้มข้นได้รับการประเมินโดยวิธีการของการเสียใจและGrattan (ที่ 1983 ) ใบชั่งน้ำหนักและเตาอบแห้งที่ 75 องศาเซลเซียสใบแห้งที่ถูกบดละเอียดกับน้ำปราศจากไอออนที่100 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 60 นาที GB เข้มข้นถูกกำหนด spectrophotometrically (SPEKOL 1500, Analytik เจเอจี, เยอรมนี) ที่ 365 นาโนเมตรโดยใช้สารสกัดด้วยน้ำของใบแห้งพื้นวัสดุหลังจากทำปฏิกิริยากับKI2-I2. เนื้อหาภาคตะวันออกเฉียงเหนือได้รับการกำหนดให้เป็นไปตามวิธีการของเฮลธ์และเกย์ (1968) . ใบชั่งน้ำหนักและ homogenates ที่มี 10% ไตรคลอโรกรด(TCA) 0.65% 2 thiobarbituric กรด (TBA) ถูกความร้อนที่ 95 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 60 นาทีแล้วระบายความร้อนไปยังห้องพักของอุณหภูมิและหมุนเหวี่ยงที่10 000 ×กรัมเป็นเวลา 10 นาที . การดูดกลืนแสงของสารละลายได้อ่านที่ 532 และ600 นาโนเมตรกับสารว่างเปล่า. วัสดุจากพืชแห้งได้รับการขัดสีจะผ่านตะแกรง 0.42 มิลลิเมตรและ 100 มิลลิกรัมตัวอย่างมาวิเคราะห์โดยวิธีKjeldahl ซึ่งรวมถึงซีลีเนียม 0.5% เป็นตัวเร่งปฏิกิริยาและกรดซาลิไซลิเพื่อลดไนเตรต (อิสติน1978) ความเข้มข้นยังไม่มีรวมได้รับการพิจารณาตามวิธีการของ Lindner (1944) ความเข้มข้นของใบ K และนาอยู่ที่ประมาณโดยใช้เปลวไฟมาตรวัด
ยังไม่มีกิโลกรัม-1 ทราย (NaCl90 + N90) และ (V) 90 มิลลิโมล L-1 โซเดียมคลอไรด์ +
120 มก. ยังไม่มีกิโลกรัม-1 ทราย (NaCl90 + N120) .
ความเข้มข้นของโซเดียมคลอไรด์ได้รับเลือกบนพื้นฐานของผลการวิจัยก่อนหน้านี้
(เช่น Siddiqui et al. 2009) หม้อแต่ละคนได้รับ
200 cm3 ของสารละลายธาตุอาหารที่ทุกสองวัน
เกลือที่ใช้ในการทำขึ้นสารละลายธาตุอาหารพบว่าต่อไปนี้การแก้ปัญหา macronutrient หุ้น A (กรัม L-1): Mg (NO3) 2 .6H2O, 4.94; Ca (NO3) 2 .4H2O, 16.78; NH4NO3, 8.48; KNO3, 2.28 หุ้น macronutrient แก้ปัญหา B (g L-1): KH2PO4, 2.67; K2HPO4, 1.64; K2SO4, 6.62; Na2SO4, 0.60; โซเดียมคลอไรด์ 0.33 ธาตุอาหารเสริม C (มก. L-1): H3BO3, 128.80; CuCl2 .2H2O, 4.84; MnCl2 .4H2O, 81.10; (NH4) 6 Mo7O24 .4H2O, 0.83; ZnCl2, 23.45; ซิเตรตเฟอริกpentahydrate, 809.84 วิธีการแก้ปัญหาเจือจางซึ่งถูกนำมาใช้กับพืชที่ถูกจัดทำขึ้นโดยการผสม 200 มิลลิลิตรของแต่ละของการแก้ปัญหาที่มีหุ้น macronutrient 100 มิลลิลิตรของอาหารเสริมธาตุและเจือจาง4.5 L กับ DDW ค่า pH ที่ถูกเก็บรักษาไว้ที่ 6.0 โดยเพิ่มการแก้ปัญหาของH2SO4 หรือ KOH. สุ่มตัวอย่างได้ทำหลังจาก 50 วันของการหว่านเมล็ด ประสิทธิภาพการทำงานของบีแอล juncea พันธุ์ Chuutki Radha และได้รับการประเมินในแง่ของน้ำหนักสด(FW) พืช / และน้ำหนักแห้ง(DW) / ต้น ปริมาณน้ำคิดเป็นร้อยละของการส่งต่อที่คำนวณโดยใช้สูตรที่: ห้องสุขา (%) = [(FW - DW) / FW] × 100 อัตราการสังเคราะห์แสงสุทธิ (PN) และสื่อกระแสไฟฟ้าปากใบ(GS) เป็นวัดในวันที่ชัดเจนกระจ่างแสงอิ่มตัวความรุนแรงระหว่าง 11.00 และ 12.00 ต่อชั่วโมงบนบนใบขยายตัวมากที่สุดอย่างเต็มที่โดยใช้ก๊าซชนิดอินฟราเรดวิเคราะห์(Irga) และ Licor-6200 แบบพกพาสังเคราะห์ระบบ(LI-COR ลิงคอล์น, NE, สหรัฐอเมริกา). ใบที่อายุน้อยที่สุดขยายตัวได้เต็มที่ถูกสกัดด้วย 80% อะซีโตนและการดูดกลืนแสงได้อ่าน spectrophotometrically (SPEKOL 1500, Analytik เจเอจี, เยอรมนี) ที่ 663 และ 645 นาโนเมตร คลอโรฟิลถูกกำหนดโดยใช้สูตรของอานนท์ (1949). กิจกรรมของ anhydrase คาร์บอ (CA) (EC4.2.1.1) เอนไซม์ที่ถูกกำหนดโดยวิธีการ Dwivedi และRandhawa (1974) กลุ่มตัวอย่างใบที่ถูกตัดเป็นขนาดเล็กชิ้นและระงับในสารละลายไฮโดรคลอไร cystein. กลุ่มตัวอย่างที่ถูกบ่มที่อุณหภูมิ 4 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 20 นาที ชิ้นเปื้อนและโอนไปยังหลอดทดลองที่มีฟอสเฟตบัฟเฟอร์ (pH 6.8) ตามด้วยการเพิ่มของการแก้ปัญหาสารอัลคาไลน์และbromothymol สีฟ้าตัวบ่งชี้ หลอดทดสอบได้รับการบ่มที่ 5 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 20 นาที หลังจากที่นอกเหนือจาก 0.2 มิลลิลิตรแสดงสถานะสีแดงเมธิล, ผสมปฏิกิริยาถูกปรับขนาดกับ 0.05 ไม่มี HCl ผลการวิจัยแสดงเป็นไมโครโมลต่อกิโลกรัม CO2-1 เอฟเอ็ม s-1. โพรลีน (Pro) ความเข้มข้นถูกกำหนดspectrophotometrically โดยการนำ ninhydrin วิธีการของเบตส์และอัล (1973) ก่อนอื่นเราหดหาย300 มิลลิกรัมตัวอย่างใบสดกรด sulphosalicylic เพื่อให้สารสกัด 2 มิลลิลิตรแต่ละ ninhydrin กรดและน้ำแข็งกรดอะซิติกถูกเพิ่ม กลุ่มตัวอย่างที่ถูกความร้อนที่อุณหภูมิ 100 องศาเซลเซียส ส่วนผสมที่ถูกสกัดด้วยโทลูอีนและโทลูอีนฟรีได้รับการวัด spectrophotometrically (SPEKOL 1500, Analytik เจเอจี, เยอรมนี) ที่ 528 นาโนเมตรโดยใช้ L-โพรลีนเป็นมาตรฐาน. Glycinebetaine (GB) ความเข้มข้นได้รับการประเมินโดยวิธีการของการเสียใจและGrattan (ที่ 1983 ) ใบชั่งน้ำหนักและเตาอบแห้งที่ 75 องศาเซลเซียสใบแห้งที่ถูกบดละเอียดกับน้ำปราศจากไอออนที่100 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 60 นาที GB เข้มข้นถูกกำหนด spectrophotometrically (SPEKOL 1500, Analytik เจเอจี, เยอรมนี) ที่ 365 นาโนเมตรโดยใช้สารสกัดด้วยน้ำของใบแห้งพื้นวัสดุหลังจากทำปฏิกิริยากับKI2-I2. เนื้อหาภาคตะวันออกเฉียงเหนือได้รับการกำหนดให้เป็นไปตามวิธีการของเฮลธ์และเกย์ (1968) . ใบชั่งน้ำหนักและ homogenates ที่มี 10% ไตรคลอโรกรด(TCA) 0.65% 2 thiobarbituric กรด (TBA) ถูกความร้อนที่ 95 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 60 นาทีแล้วระบายความร้อนไปยังห้องพักของอุณหภูมิและหมุนเหวี่ยงที่10 000 ×กรัมเป็นเวลา 10 นาที . การดูดกลืนแสงของสารละลายได้อ่านที่ 532 และ600 นาโนเมตรกับสารว่างเปล่า. วัสดุจากพืชแห้งได้รับการขัดสีจะผ่านตะแกรง 0.42 มิลลิเมตรและ 100 มิลลิกรัมตัวอย่างมาวิเคราะห์โดยวิธีKjeldahl ซึ่งรวมถึงซีลีเนียม 0.5% เป็นตัวเร่งปฏิกิริยาและกรดซาลิไซลิเพื่อลดไนเตรต (อิสติน1978) ความเข้มข้นยังไม่มีรวมได้รับการพิจารณาตามวิธีการของ Lindner (1944) ความเข้มข้นของใบ K และนาอยู่ที่ประมาณโดยใช้เปลวไฟมาตรวัด
การแปล กรุณารอสักครู่..
ทราย ( nacl90 n60 ) , ( 4 ) 90 มิลลิโมล L-1 ขนาด 90 มิลลิกรัม n
kg-1 ทราย ( nacl90 TV ) และ ( 5 ) 90 มิลลิโมล L-1 เกลือ
120 มก. N kg-1 ทราย ( nacl90 n120 ) ความเข้มข้นของโซเดียมคลอไรด์
ถูกเลือกบนพื้นฐานของข้อมูล ( เช่นก่อนหน้านี้
siddiqui et al . 2009 ) แต่ละกระถางให้
200 cm3 ของสารละลายธาตุอาหารที่ทุกๆ สองวัน
เกลือที่ใช้เตรียมสารละลายธาตุอาหารเป็น
ดังนี้ :อาหารโซลูชั่นหุ้น ( G L-1 ) : มก
( 3 ) 2
6h2o 4.94 ; Ca ( , 3 ) 2
4h2o 16.78 nh4no3 8.48 , , ;
; kno3 2.28 . อาหารโซลูชั่นหุ้น B ( g
L-1 ) : kh2po4 , 2.67 ; k2hpo4 1.64 k2so4 6.62 ; , ; , na2so4
0 ; NaCl , 0.33 , . เสริมเสริม C ( มก. L-1 ) :
h3bo3 128.80 ; , cucl2
. 2H2O-dx บริษัท ; mncl2 , 4h2o 81.10 ;
. ,
( NH4 ) 6 mo7o24
4h2o 0.83 ; zncl2 23.45 ; , , เฟอร์ริคซิ
Pentahydrate , 809.84 .การเจือจางสารละลายซึ่ง
ใช้พืชถูกเตรียมโดยการผสม 200 มล. ของแต่ละหุ้น
100 มิลลิลิตรด้วยสารละลายอาหารเสริมชนิดเจือจาง
และ 4.5 ลิตร ddw . pH ไว้ที่ 6.0 โดย
เพิ่มโซลูชั่นของกรดซัลฟิวริก หรือเกาะ .
สุ่มตัวอย่าง 50 วันหลังหยอดเมล็ด
งานของ บ. จันเซีย L . cv . chuutki
และ ราดาได้รับการประเมินในแง่ของน้ำหนักสด ( FW ) / ต้น น้ำหนักแห้ง ( แห้ง ) และ
/ พืช ปริมาณน้ำร้อยละ
ของ FW คำนวณโดยใช้สูตร :
สุขา ( % ) = [ ( FW - DW ) / FW ] × 100
( PN ) และอัตราการสังเคราะห์แสงสุทธิของใบรูป
( GS ) ที่วัดในวันที่ชัดเจนกระจ่างแสงความเข้มสูงระหว่าง 11.00
)
H บนบน อย่างเต็มที่ที่สุดขยายใบ โดยใช้
แก๊สอินฟราเรดวิเคราะห์ ( irga ) และ licor-6200 แบบพกพาระบบการสังเคราะห์แสง
( li-cor Lincoln , เน , USA )
น้องเต็มที่ระยะใบถูกสกัดด้วยอะซีโตน 80% และการดูดกลืนแสงได้อ่านนี้
( spekol 1500 ANALYTIK JENA AG
เยอรมนี ) ที่ผม และคุณ nm . คลอโรฟิลล์คือ
กำหนดโดยใช้สูตรของอานนท์ ( 1949 ) .
กิจกรรมฉะนี้แล ( CA ) ( e.c.4.2.1.1 )
เอนไซม์ที่ถูกกำหนดโดยวิธีการ dwivedi และ
randhawa ( 1974 ) ใบตัวอย่างถูกหั่นเป็นชิ้นเล็ก ๆที่แขวนลอยในสารละลายซีสเทอีนไฮโดรคลอไรด์และ
.
ตัวอย่างที่อุณหภูมิ 4 องศา C เป็นเวลา 20 นาที
ชิ้นถูกลบและย้ายไปยังหลอดทดลองที่มี
( ฟอสเฟตบัฟเฟอร์พีเอช 6.8 ) ตามด้วยส่วนของสารละลายด่างและตัวบ่งชี้
) อิฐทนไฟ
หลอดทดสอบที่อุณหภูมิ 5 องศา C เป็นเวลา 20 นาที หลังจากเติม
0.2 มิลลิลิตรของตัวบ่งชี้เมธิลสีแดง
ปฏิกิริยาผสมตลอดเวลากับ 0.05 N HCl .
ผลแสดงเป็นμกระทรวงแรงงานปี CO2 kg-1 ที่สุด .
โปร ( Pro ) สมาธิ ตั้งใจ
ninhydrin นี้ใช้วิธีของเบตส์ et al . ( 1973 ) แรกที่เราบด
300 มิลลิกรัมสดตัวอย่างใบใน sulphosalicylic กรด
น้ำ 2 มล. แต่ละ ninhydrin กรดและกรด glacial
ถูกเพิ่ม จำนวนความร้อนที่
100 องศา ผสมสารโทลูอีนและ
( นี้คือปริมาณโทลูอีนฟรี spekol 1500 ANALYTIK JENA AG , Germany ) ที่ 528
nm ใช้โพรเป็นมาตรฐาน .
ไกลซีนบีเทน ( GB ) มีค่าประมาณโดย
วิธีการและเศร้าโศกแกรตเทิ่น ( 1983 ) เตาอบแห้งและใบ
ชั่งที่ 75 องศา C , ใบไม้แห้งและบดละเอียดด้วย
คล้ายเนื้อเยื่อประสานน้ำที่ 100 องศา C นาน 60 นาที ความเข้มข้น 100 GB นี้
( spekol 1500 ANALYTIK JENA AG , Germany )
ที่ 365 นาโนเมตรโดยใช้น้ำสกัดจากดินแห้งใบ
วัสดุหลังจากปฏิกิริยากับ ki2-i2 2 .
ตั้งใจตามเนื้อหาวิธีของสุขภาพอนามัยและบรรจุหีบห่อ ( 1968 ) ใบ
หนักและ homogenates ที่มี 10% กรดไตรคลอโรอะซิติก
( TCA ) , 0.65 % 2-thiobarbituric acid ( TBA )
ได้รับอุณหภูมิ 95 องศา C นาน 60 นาทีแล้วเย็นที่อุณหภูมิห้อง
ไฟฟ้าที่ 10 000 ×กรัมต่อ 10 นาที
การดูดกลืนแสงของน่านคืออ่านและ
600 nm กับสารเคมีว่างเปล่า
วัสดุที่แห้งพืชบดผ่าน
0ขนาด 42 มม. และ 100 มก. วิเคราะห์โดย
0 วิธี ซึ่งรวม 0.5% ซีลีเนียมเป็น
เป็นตัวเร่งปฏิกิริยาและ salicylic acid ช่วยลดไนเตรท ( อิน
1978 ) โดยไนโตรเจนทั้งหมดมีค่าพิจารณาตาม
วิธีการ ลินด์เนอร์ ( 2487 ) ความเข้มข้นของ K และ Na
ใบประมาณโดยใช้เปลวไฟ
photometer .
kg-1 ทราย ( nacl90 TV ) และ ( 5 ) 90 มิลลิโมล L-1 เกลือ
120 มก. N kg-1 ทราย ( nacl90 n120 ) ความเข้มข้นของโซเดียมคลอไรด์
ถูกเลือกบนพื้นฐานของข้อมูล ( เช่นก่อนหน้านี้
siddiqui et al . 2009 ) แต่ละกระถางให้
200 cm3 ของสารละลายธาตุอาหารที่ทุกๆ สองวัน
เกลือที่ใช้เตรียมสารละลายธาตุอาหารเป็น
ดังนี้ :อาหารโซลูชั่นหุ้น ( G L-1 ) : มก
( 3 ) 2
6h2o 4.94 ; Ca ( , 3 ) 2
4h2o 16.78 nh4no3 8.48 , , ;
; kno3 2.28 . อาหารโซลูชั่นหุ้น B ( g
L-1 ) : kh2po4 , 2.67 ; k2hpo4 1.64 k2so4 6.62 ; , ; , na2so4
0 ; NaCl , 0.33 , . เสริมเสริม C ( มก. L-1 ) :
h3bo3 128.80 ; , cucl2
. 2H2O-dx บริษัท ; mncl2 , 4h2o 81.10 ;
. ,
( NH4 ) 6 mo7o24
4h2o 0.83 ; zncl2 23.45 ; , , เฟอร์ริคซิ
Pentahydrate , 809.84 .การเจือจางสารละลายซึ่ง
ใช้พืชถูกเตรียมโดยการผสม 200 มล. ของแต่ละหุ้น
100 มิลลิลิตรด้วยสารละลายอาหารเสริมชนิดเจือจาง
และ 4.5 ลิตร ddw . pH ไว้ที่ 6.0 โดย
เพิ่มโซลูชั่นของกรดซัลฟิวริก หรือเกาะ .
สุ่มตัวอย่าง 50 วันหลังหยอดเมล็ด
งานของ บ. จันเซีย L . cv . chuutki
และ ราดาได้รับการประเมินในแง่ของน้ำหนักสด ( FW ) / ต้น น้ำหนักแห้ง ( แห้ง ) และ
/ พืช ปริมาณน้ำร้อยละ
ของ FW คำนวณโดยใช้สูตร :
สุขา ( % ) = [ ( FW - DW ) / FW ] × 100
( PN ) และอัตราการสังเคราะห์แสงสุทธิของใบรูป
( GS ) ที่วัดในวันที่ชัดเจนกระจ่างแสงความเข้มสูงระหว่าง 11.00
)
H บนบน อย่างเต็มที่ที่สุดขยายใบ โดยใช้
แก๊สอินฟราเรดวิเคราะห์ ( irga ) และ licor-6200 แบบพกพาระบบการสังเคราะห์แสง
( li-cor Lincoln , เน , USA )
น้องเต็มที่ระยะใบถูกสกัดด้วยอะซีโตน 80% และการดูดกลืนแสงได้อ่านนี้
( spekol 1500 ANALYTIK JENA AG
เยอรมนี ) ที่ผม และคุณ nm . คลอโรฟิลล์คือ
กำหนดโดยใช้สูตรของอานนท์ ( 1949 ) .
กิจกรรมฉะนี้แล ( CA ) ( e.c.4.2.1.1 )
เอนไซม์ที่ถูกกำหนดโดยวิธีการ dwivedi และ
randhawa ( 1974 ) ใบตัวอย่างถูกหั่นเป็นชิ้นเล็ก ๆที่แขวนลอยในสารละลายซีสเทอีนไฮโดรคลอไรด์และ
.
ตัวอย่างที่อุณหภูมิ 4 องศา C เป็นเวลา 20 นาที
ชิ้นถูกลบและย้ายไปยังหลอดทดลองที่มี
( ฟอสเฟตบัฟเฟอร์พีเอช 6.8 ) ตามด้วยส่วนของสารละลายด่างและตัวบ่งชี้
) อิฐทนไฟ
หลอดทดสอบที่อุณหภูมิ 5 องศา C เป็นเวลา 20 นาที หลังจากเติม
0.2 มิลลิลิตรของตัวบ่งชี้เมธิลสีแดง
ปฏิกิริยาผสมตลอดเวลากับ 0.05 N HCl .
ผลแสดงเป็นμกระทรวงแรงงานปี CO2 kg-1 ที่สุด .
โปร ( Pro ) สมาธิ ตั้งใจ
ninhydrin นี้ใช้วิธีของเบตส์ et al . ( 1973 ) แรกที่เราบด
300 มิลลิกรัมสดตัวอย่างใบใน sulphosalicylic กรด
น้ำ 2 มล. แต่ละ ninhydrin กรดและกรด glacial
ถูกเพิ่ม จำนวนความร้อนที่
100 องศา ผสมสารโทลูอีนและ
( นี้คือปริมาณโทลูอีนฟรี spekol 1500 ANALYTIK JENA AG , Germany ) ที่ 528
nm ใช้โพรเป็นมาตรฐาน .
ไกลซีนบีเทน ( GB ) มีค่าประมาณโดย
วิธีการและเศร้าโศกแกรตเทิ่น ( 1983 ) เตาอบแห้งและใบ
ชั่งที่ 75 องศา C , ใบไม้แห้งและบดละเอียดด้วย
คล้ายเนื้อเยื่อประสานน้ำที่ 100 องศา C นาน 60 นาที ความเข้มข้น 100 GB นี้
( spekol 1500 ANALYTIK JENA AG , Germany )
ที่ 365 นาโนเมตรโดยใช้น้ำสกัดจากดินแห้งใบ
วัสดุหลังจากปฏิกิริยากับ ki2-i2 2 .
ตั้งใจตามเนื้อหาวิธีของสุขภาพอนามัยและบรรจุหีบห่อ ( 1968 ) ใบ
หนักและ homogenates ที่มี 10% กรดไตรคลอโรอะซิติก
( TCA ) , 0.65 % 2-thiobarbituric acid ( TBA )
ได้รับอุณหภูมิ 95 องศา C นาน 60 นาทีแล้วเย็นที่อุณหภูมิห้อง
ไฟฟ้าที่ 10 000 ×กรัมต่อ 10 นาที
การดูดกลืนแสงของน่านคืออ่านและ
600 nm กับสารเคมีว่างเปล่า
วัสดุที่แห้งพืชบดผ่าน
0ขนาด 42 มม. และ 100 มก. วิเคราะห์โดย
0 วิธี ซึ่งรวม 0.5% ซีลีเนียมเป็น
เป็นตัวเร่งปฏิกิริยาและ salicylic acid ช่วยลดไนเตรท ( อิน
1978 ) โดยไนโตรเจนทั้งหมดมีค่าพิจารณาตาม
วิธีการ ลินด์เนอร์ ( 2487 ) ความเข้มข้นของ K และ Na
ใบประมาณโดยใช้เปลวไฟ
photometer .
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- สวัสดีพ่อกับแม
- ฉันรักพ่อนะแต่ไม่เคยบอกตรงๆ
- Photos containing fish images were furth
- ฟุ่มเฟือย
- ใส่ภาชนะเพื่อรอการตกตะกอน
- ฉันไม่ค่อยมีเวลาว่างมากนัก
- Perhaps residents did nothave many oppor
- It is said that the first step to recove
- Warehouse
- This phrung will go home
- การที่จะมีสุขภาพดีต้องรับประทานอาหารให้ค
- HHH U ENCOURAGED ME AA
- ครีมบำรุงหน้า
- military top brass
- การทำลายจุลินทรีย์ที่ทำให้เกิดโรค (patho
- ทำไมเป็นสิว
- เช่น การฝึกพ่อนคลายกล้ามเนื้อ การฝึกสมาธ
- love you my wifeneed you now
- Pack
- แม่กุญแจตู้เชฟ
- Vacation for parents
- ฉัน จะจับ แมงมุม ใส่คุณ
- Traditional Fantasy had their beginnings
- ฟุ่มเฟือย
