products, such as dried and concent

products, such as dried and concentratedmicro-algae, have been developed
specifically for bivalves. However, while some prior studies have
assessed the potential of such products for pearl oyster larvae (e.g.
Southgate et al., 1998; Teitelbaum and Fale, 2008), successful hatchery
production of pearl oysters has not previously been reported without
the use of live micro-algae. A range of phototrophically grown, highlyconcentrated
marine micro-algae are now available commercially and
have potential inmany aspects of bivalve production including hatchery
culture (Reed and Henry, 2014). This paper reports on successful hatchery
production of P. penguin in Tonga using commercially available
micro-algae concentrates as the sole food source.
2. Material andmethods
Adult oysters with a mean (±SE) dorso-ventral shell measurement
of 192 ± 15 mm were sourced from pearl farmers and transported to
the government aquaculture facility and hatchery at Sopu on the island
of Tongatapu, where they were cleaned and placed into 1 μm filtered
seawater (FSW). Spawning was induced using thermal stimulation following
‘cold conditioning’ (Southgate and Beer, 1997). Broodstockwere
held overnight in a small tank filled with lightly aerated FSW in an airconditioned
room at 20–21 °C, and then placed directly into tanks containing
FSWat 30–31 °C. Tankswere drained to expose the oysters to air
and then refilled with FSW at 30–31 °C on a 60 min cycle; spawning
began after four such cycles. Spawning individuals were removed into
separate containers and were allowed to complete spawning. Fertilised
eggs were collected on a 25 μm mesh screen and incubated at a density
of 30 mL−1 in gently aerated 500 L tanks containing FSW. Antibiotic
(streptomycin sulphate)was added to egg incubation tanks at a concentration
of 10 mg L−1. After 24 h, D-stage veliger larvae were removed
from the incubation tanks using a 25 μm mesh screen, counted and
placed into larval rearing tanks.
2.1. Larval rearing
Four 500 L tanks and two 1000 L tanks were filled with FSW and
stocked (on day 1) with 24 h old P. penguin veligers at a density of
2.75mL−1. Tankswere providedwith gentle aeration andwere drained,
washed and refilled with clean FSW every two days. Larvae were
retained on a suitably sized mesh screen and held in 20 L plastic aquaria
containing FSW, before being returned to the cleaned, newly refilled
tank. Water temperature and salinity ranged from 24.5–30.1 °C and
from 33.2–34.4 g L−1, respectively, during larval culture.
Larvae were fed commercially available micro-algae concentrates,
Instant Algae® (Reed Mariculture Inc., San Jose, CA, USA). The two
products used in this study were “Isochrysis 1800®” and “Pavlova
1800®,” which were obtained from an Australian distributor of the
products. Concentrateswere stored in their original bottles in a refrigerator
at 4 °C for the duration of the study. Prior to use, a 5 mL aliquot of
each concentrate was added to approximately 2 L of FSWin a separate
container and gently hand-shaken to disperse the micro-algae cells.
The cell density in each micro-algal suspension was determined using
a haemocytometer and the volume needed to obtain the required ration
in each larval tank was determined. Micro-algae suspensions were
poured into larval culture tanks through a 20 μmmesh sieve to remove
or break up any clumps of micro-algae cells that might be present.
“Isochrysis 1800®” and “Pavlova 1800®” were fed at a 1:1 ratio (on
the basis of cell numbers) as part of a total daily ration shown in
Fig. 1. Themaximum micro-algae cell density provided to larval culture
tanks was 20,000 cells mL−1 (Fig. 1) and the daily ration was split between
a morning and evening feed.
2.2. Settlement and nursery culture
On days 17, 19, 21, 23 and 25 post-fertilisation, larvae large enough
to be retained on a 170 μm mesh screen were removed from larval culture
tanks and placed into 500 L settlement tanks containing strongly
aerated FSW. Spat collectors measuring approximately 30 × 15 cm
and consisting of an outer 5 mm pore size mesh bag filled with 0.5 m2
of 50% woven shade mesh were suspended in the settlement tanks
froma plastic frame placed on top of the tank. Instant Algae® (prepared
as described above) was added to the settlement tanks at the rate
shown in Fig. 1. Water in the settlement tanks was completely exchanged
on a daily basis using periodic flow-through, and water temperature
in the settlement tanks ranged from 22.8 to 29.0 °C during
the study. Spat collectors were removed from the settlement tanks on
day 30 and placed inside plastic mesh trays (55 × 30 × 10 cm) with
lids. Four collectors were tied into each tray. Trays were then weighted
and transferred to the oceanwhere theywere suspended froma surface
long line at Sopu (21°07′02.19″S 175°13′20.92″W) at a depth of 6 m.
Surviving spat were removed from spat collectors and counted on day
105.
3. Results
Of the 70 broodstock induced for spawning, 20 females collectively
spawned 95 milli

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ผลิตภัณฑ์ เช่นอบแห้งและสาหร่าย concentratedmicro ได้รับการพัฒนาโดยเฉพาะสำหรับ bivalves อย่างไรก็ตาม ขณะที่บางอย่างล่วงหน้ามีการศึกษาประเมินศักยภาพของผลิตภัณฑ์ดังกล่าวสำหรับตัวอ่อนของหอยมุก (เช่นSouthgate et al. 1998 Teitelbaum และ Fale, 2008), บ่อเพาะสำเร็จผลิตไข่มุกหอยนางรมไม่มีก่อนหน้านี้การรายงานโดยใช้ของสดไมโครสาหร่าย ช่วงเติบโต phototrophically, highlyconcentratedไมโครสาหร่ายทะเลขณะนี้มีในเชิงพาณิชย์ และมีลักษณะ inmany ศักยภาพการผลิต bivalve รวมถึงบ่อเพาะวัฒนธรรม (กกและเฮนรี่ 2014) กระดาษนี้รายงานในโรงเพาะฟักที่ประสบความสำเร็จผลิตของเพนกวิน P. ในตองกาใช้ในเชิงสารสกัดสาหร่ายขนาดเล็กเป็นแหล่งอาหารแต่เพียงผู้เดียว2. วัสดุ andmethodsผู้ใหญ่หอยนางรมพร้อมวัดท้อง dorso เปลือกความหมาย (±SE)ของ 192 ± 15 มม.มาจากเกษตรกรมุก และขนไปรัฐบาลสถานเพาะเลี้ยงสัตว์น้ำและบ่อเพาะที่ Sopu บนเกาะของตองกาตาปู ที่พวกเขาทำความสะอาด และอยู่ในกรอง 1 ไมครอนน้ำทะเล (FSW) วางไข่ถูกเหนี่ยวนำโดยใช้ความร้อนกระตุ้นต่อไปนี้'เย็นปรับ' (Southgate และเบียร์ 1997) Broodstockwereถือข้ามคืนในถังขนาดเล็กที่เต็มไป ด้วยมวลเบาเบา ๆ FSW ในการปรับอากาศห้อง 20-21 ° c และวางลงในถังที่ประกอบด้วยโดยตรงFSWat 30-31 องศาเซลเซียส Tankswere ระบายน้ำเพื่อให้หอยนางรมกับอากาศแล้ว เติม ด้วย FSW 30-31 ° c ในวงจร 60 นาที วางไข่เริ่มต้นหลังจากรอบสี่ดังกล่าว บุคคลที่วางไข่ออกมาแยกภาชนะบรรจุ และได้รับอนุญาตให้วางไข่ที่สมบูรณ์ Fertilisedไข่ที่ถูกเก็บรวบรวมไว้บนหน้าจอ 25 ไมครอนตาข่าย และได้รับการกกที่ความหนาแน่นของ mL−1 30 ในมวลเบาเบา ๆ L 500 ถังประกอบด้วย FSW ยาปฏิชีวนะ(streptomycin ซัลเฟต) เพิ่มไข่ถังบ่มที่ความเข้มข้น10 มก. L−1 หลังจาก 24 ชม. D ระยะ veliger อ่อนถูกเอาออกจากการบ่ม ถังใช้μ m 25 ตาข่ายหน้าจอ การตรวจนับ และวางลงในถังเลี้ยงอ่อน2.1. อ่อนเลี้ยงสี่ 500 L ถังและถัง 1000 L สองเต็มไป ด้วย FSW และพร้อมเครื่องดื่ม (ในวันที่ 1) กับ veligers P. เพนกวินเก่า 24 ชม.ที่ความหนาแน่นของ2.75mL−1. Tankswere providedwith อากาศอ่อนโยน andwere ระบายล้าง และเติมด้วยสะอาด FSW ทุกสองวัน ตัวอ่อนได้เก็บไว้บนหน้าจอตาข่ายขนาดเหมาะสม และในอควาเรียพลาสติก 20 Lประกอบด้วย FSW ก่อนส่งคืนเพื่อการทำความสะอาด เติมใหม่ถัง น้ำอุณหภูมิและความเค็มตั้งแต่ 24.5-30.1 ° C และ33.2 – 34.4 กรัม L−1 ตามลำดับ ในระหว่างวัฒนธรรมอ่อนตัวอ่อนที่เลี้ยงในเชิงไมโครสาหร่ายเข้มข้นทันที®สาหร่าย (กก Mariculture Inc., San Jose, CA สหรัฐอเมริกา) ทั้งสองผลิตภัณฑ์ที่ใช้ในการศึกษานี้ได้ "Isochrysis 1800 ®" และ "Pavlova1800 ®, "ซึ่งได้รับมาจากผู้จัดจำหน่ายที่ออสเตรเลียของการผลิตภัณฑ์นี้ Concentrateswere ที่เก็บไว้ในขวดเดิมของพวกเขาในตู้เย็นที่ 4 ° C สำหรับช่วงเวลาของการศึกษา ก่อนที่จะใช้ ส่วนลงตัว 5 มล.ของเข้มข้นแต่ละถูกเพิ่มไป FSWin ประมาณ 2 ลิตรแยกต่างหากคอนเทนเนอร์ และเบา ๆ มือเขย่าเพื่อกระจายเซลล์สาหร่ายขนาดเล็กกำหนดความหนาแน่นเซลล์ในแต่ละระงับสาหร่ายขนาดเล็กโดยใช้แบบ haemocytometer และไดรฟ์ข้อมูลที่จำเป็นในการขอรับการปันส่วนที่จำเป็นในแต่ละถังอ่อนที่ถูกกำหนด สารแขวนลอยขนาดเล็กสาหร่ายได้เทลงในถังวัฒนธรรมอ่อนผ่านตะแกรง μmmesh 20 เพื่อเอาหรือแบ่งกลุ่มก้อนใด ๆ ของเซลล์สาหร่ายขนาดเล็กที่อาจมีอยู่"Isochrysis 1800 ®" และ "Pavlova 1800 ®" ถูกป้อนที่อัตรา 1:1 ในพื้นฐานของตัวเลขเซลล์) เป็นส่วนหนึ่งของการปันส่วนรายวันทั้งหมดที่แสดงในรูปที่ 1 Themaximum ไมโครสาหร่ายเซลล์หนาแน่นที่มีวัฒนธรรมอ่อนรถถังถูก 20,000 เซลล์ mL−1 (1 รูป) และมีแบ่งปันส่วนรายวันการยามเช้าและยามเย็นอาหาร2.2. การชำระเงินและเรือนเพาะชำวัฒนธรรมในวันที่ 17, 19, 21, 23 และ 25 หลังปฏิสนธิ ตัวอ่อนที่มีขนาดใหญ่พอเก็บบน หน้าจอตาข่าย 170 ไมครอนถูกเอาออกจากวัฒนธรรมอ่อนรถถัง และวางลงในถังจ่าย 500 L ที่ประกอบด้วยขอFSW มวลเบา นักสะสม spat ที่วัดประมาณ 30 × 15 ซม.และข้อ 5 มม.ด้านนอกประกอบด้วยถุงตาข่ายขนาดรูพรุนเต็มไป ด้วย 0.5 m250% สีทอตาข่ายถูกหยุดชั่วคราวในถังการจ่ายfroma กรอบพลาสติกอยู่ด้านบนของถัง สาหร่ายทันที® (เตรียมดังที่ระบุไว้ข้างต้น) ถูกเพิ่มไปยังถังจ่ายในอัตราแสดงในรูปที่ 1 ทั้งหมดมีการแลกเปลี่ยนน้ำในถังจ่ายทุกวันโดยใช้ไหลผ่านเป็นระยะ และอุณหภูมิน้ำในถังการชำระเงินที่อยู่ในช่วงจาก 22.8 29.0 ° c ในระหว่างการศึกษา นักสะสม spat ถูกเอาออกจากถังการชำระเงินบนวันที่ 30 และวางไว้ในถาดพลาสติกตาข่าย (55 × 30 × 10 ซม.) ด้วยบอย สะสม 4 ถูกเชื่อมโยงในแต่ละถาด ถาดมีน้ำหนักแล้วและโอนย้ายผิวระงับ froma theywere oceanwhereสายยาวที่ Sopu (21 ° 07′02. 19″S 175 ° 13′20. 92″W) ที่ความลึก 6 เมตรรอดตาย spat ออกจาก spat สะสม และนับวัน1053. ผลลัพธ์ของพ่อแม่พันธุ์ 70 เกิดสำหรับวางไข่ หญิง 20 รวมส่งออกไปรบหนึ่ง 95