3. Results and discussion 3.1. Coag

3. Results and discussion
3.1. Coagulation of cyanobacteria
Coagulation experiments were conducted using two cyanobacteria, A. circinalis and C. raciborskii. The water quality results for the alum coagulation of C. raciborskii (at two cell densities) in Plant A inlet water are shown in Fig. 1. Similar results were observed for the alum coagulation of A. circinalis in the same water (results not shown). The purpose of the coagulation experiments was to select an optimum coagulant dose (based on the removal of turbidity, DOC and UV254) to generate cyanobacterial-laden sludge for subsequent experiments. Interestingly, cyanobacterial numbers of up to 200,000 cells mL−1 did not contribute considerably to the turbidity or the coagulant demand of the water. This suggests that an unexpected increase in cell numbers of this magnitude would not be expected to lead to an increased coagulant requirement. While the initial DOC and UV254 values were greater in the presence of the cells (and in the absence of coagulant), the removal trends of these natural organic material (NOM) constituents were similar to that of the turbidity.
Based on these results, an optimum alum dose of 40 mg L−1 in Plant A inlet water was selected for subsequent experiments. For Plant B inlet water, an optimum ferric chloride dose of 10 mg L−1 was chosen using similar principles (results not shown).
The removal of the cyanobacteria and their metabolites by alum coagulation in Plant A inlet water are shown in Figs. 2 and 3, respectively. While the cell counts, geosmin and STX-eq concentrations from the A. circinalis experiments support the selection of the optimum coagulant dose, the C. raciborskii experiments suggest that a greater coagulant dose may be required. This may be due to the different cell types, as previous studies have documented that cell morphology and characteristics can influence coagulation processes; in particular, smaller cell types were more difficult to effectively remove by coagulation and sedimentation (Bernhardt and Clasen, 1991; Ma et al., 2007). C. raciborskii cells (cell breadth 2.5–4.0 μm) are smaller than A. circinalis cells (cell breadth 7.0–8.5 μm) (Baker and Fabbro, 1999), confirming these previous findings. Other factors, such as surface charge and presence of extracellular organic matter, have also been shown to influence the coagulation of cyanobacteria (Chen and Yeh, 2006). Nonetheless, an alum dose of 40 mg L− 1 still removed a sizeable proportion (~75%) of C. raciborskii cells; therefore, it was decided to use this dose for subsequent experiments for consistency. To date, no published studies have assessed the effectiveness of coagulation for C. raciborskii cells and/or CYN.
In general, the removal of the cyanobacterial cells mirrored that of their intracellular metabolites in accordance with previous studies which showed coagulation to be ineffective in removing extracellular metabolites (Chow et al., 1998, 1999; Mouchet and Bonnélye, 1998; Newcombe and Nicholson, 2004; Velzeboer et al., 1995). Similar removal trends were observed when using cyanobacterial numbers of 100,000 and 200,000 cells mL− 1 for each cell type. Prior to coagulation, a large proportion of geosmin was intracellular (>98%); consequently, removal of intact A. circinalis cells by alum (Fig. 2a) also resulted in efficient removal of total geosmin (Fig. 3a). For the saxitoxins, approximately 50% was intracellular, and it was only this proportion that was removed, in accordance with the cell removal (Fig. 3b). For CYN, different trends were observed (Fig. 3c). Approximately 55% of the CYN was initially intracellular and this percentage remained constant with an alum dose of 20 mg L− 1 . However, as the alum dose increased (from 40 to 100 mg L− 1 ) the intracellular component decreased (approximately 16% at a dose of 100 mg L− 1 ). In contrast, the extracellular component fluctuated with the alum dose, with an initial increase, followed by a gradual decrease with increasing alum dose.
The initial increase in the extracellular CYN component suggests that the addition of alum may have caused cell lysis, although it may also be possible that the cells themselves may have simply released CYN through some natural processes. The latter is likely since studies have documented that not only is CYN generally detected in extracellular form, but this component of CYN can fluctuate dramatically during different stages of CYN-producing blooms. Griffiths and Saker (2003) showed that approximately 80–90% of CYN remained in the C. raciborskii cells during active or log phase of growth; however, during the stationary phase, up to 50% of total CYN was found to be extracellular. Similarly, Chiswell et al. (1999) found that at different stages of a C. raciborskii bloom, extracellular CYN varied between 19 and 98% of total CYN.
The gradual decrease in the extracellular CYN concentration with increasing alum dose (from 40 to 100 mg L−1 ) suggests some removal mechanism occurred, possibly adsorption of extracellular CYN to floc particles. As mentioned previously, coagulation has been shown to be ineffective in removing other extracellular cyanobacterial metabolites; however, no studies to date have evaluated coagulation of CYN. CYN is an organic zwitterion which carries both a negative and positive charge at neutral pH and studies have shown that such zwitterions can adsorb to soils and soil minerals through cation exchange and surface complexation to metal oxides (Carrasquillo et al., 2008; Klitzke et al., 2011) which could provide some evidence for its adsorption to the flocs. Further work is required to substantiate this supposition.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

3. ผลลัพธ์ และสนทนา 3.1 การแข็งตัวของเลือดของ cyanobacteria แข็งตัวของเลือดได้ดำเนินการทดลองใช้สอง cyanobacteria, A. circinalis และ C. raciborskii คุณภาพน้ำสำหรับการแข็งตัวของเลือดสารส้มของ C. raciborskii (ที่ความหนาแน่นเซลล์สอง) ในโรงงานทางเข้าของน้ำจะแสดงใน Fig. 1 ผลคล้ายถูกสังเกตการแข็งตัวของเลือดสารส้มของอ. circinalis ในน้ำเดียวกัน (ไม่แสดงผล) วัตถุประสงค์ของการทดลองการแข็งตัวของเลือดเพื่อ เลือกยา coagulant เหมาะสม (ตามการกำจัดความขุ่น DOC และ UV254) เพื่อสร้าง cyanobacterial ลาดินตะกอนสำหรับการทดลองภายหลังได้ แล็ จำนวนถึง 200000 เซลล์ mL−1 cyanobacterial ได้ไม่มีส่วนร่วมมากที่ความขุ่นหรือความ coagulant น้ำ แนะนำให้ เพิ่มขึ้นโดยไม่คาดคิดในเซลล์จำนวนขนาดนี้จะไม่สามารถคาดว่าจะนำไปสู่ความต้องการ coagulant ที่เพิ่มขึ้น ขณะที่ค่า DOC และ UV254 เริ่มต้นมากกว่าในต่อหน้า ของเซลล์ (และ ในการขาดงานของ coagulant), แนวโน้มเอาของเหล่านี้ธรรมชาติอินทรีย์วัสดุ (นม) constituents ถูกความขุ่นของน้ำที่ ขึ้นอยู่กับผลลัพธ์เหล่านี้ มีปริมาณสารส้มที่เหมาะสมของ 40 มิลลิกรัม L−1 ในโรงงานที่ทางเข้าของน้ำถูกเลือกสำหรับการทดลองต่อมา โรงงาน B ทางเข้าของน้ำ ยาคคลอไรด์เหมาะสมการของ 10 มก. L−1 ถูกเลือกโดยใช้หลักการคล้ายกัน (ไม่แสดงผล) เอา cyanobacteria และ metabolites ของพวกเขา โดยการแข็งตัวของสารส้มในโรงงานทางเข้าของน้ำแสดงใน Figs. 2 และ 3 ตามลำดับ ในขณะที่เซลล์นับ geosmin และความเข้มข้นของ STX eq จากทดลอง A. circinalis สนับสนุนการเลือกยา coagulant เหมาะสม ทดลอง C. raciborskii แนะนำว่า coagulant ปริมาณมากอาจจำเป็น นี้อาจเป็น เพราะชนิดของเซลล์ต่าง ๆ การศึกษาก่อนหน้านี้มีเอกสารที่สัณฐานวิทยาของเซลล์ และลักษณะที่สามารถมีอิทธิพลต่อกระบวนการแข็งตัวของเลือด โดยเฉพาะ ชนิดเซลล์เล็กยากต่อการเอาออกได้อย่างมีประสิทธิภาพ โดยการแข็งตัวของเลือดและการตกตะกอน (แบร์นฮาร์ดและ Clasen, 1991 Ma et al., 2007) C. raciborskii เซลล์ (เซลล์กว้าง 2.5 – 4.0 μm) มีขนาดเล็กกว่าเซลล์ A. circinalis (เซลล์กว้าง μm 7.0 – 8.5) (เบเกอร์และ Fabbro, 1999), ยืนยันการค้นพบก่อนหน้านี้ ยังมีการแสดงปัจจัยอื่น ๆ เช่นของ extracellular อินทรีย์ และพื้นผิวค่ามีผลต่อการแข็งตัวของเลือดของ cyanobacteria (เฉินและ Yeh, 2006) กระนั้น พื้นที่ซึ่งมีทั้งสารส้มของ 40 mg L− 1 ยังเอาสัดส่วนสำหรับผู้พิการ (~ 75% เซลล์ C. raciborskii ดังนั้น มันเป็นการตัดสินใจใช้ยานี้สำหรับการทดลองต่อ ๆ มาความสอดคล้อง วันที่ การศึกษาเผยแพร่ไม่ได้ประเมินประสิทธิภาพของเซลล์ C. raciborskii และ/หรือ CYN เลือดแข็งตัว ทั่วไป การกำจัดของเซลล์ cyanobacterial มิเรอร์ของ metabolites ของ intracellular ตามศึกษาก่อนหน้านี้ซึ่งแสดงให้เห็นการแข็งตัวของเลือดไม่มีผลในการเอา extracellular metabolites (เชาและ al., 1998, 1999 Mouchet และ Bonnélye, 1998 Newcombe และ Nicholson, 2004 Velzeboer และ al., 1995) แนวโน้มเอาคล้ายสุภัคเมื่อใช้จำนวน 100000 และ 200000 เซลล์ mL− 1 cyanobacterial สำหรับเซลล์แต่ละชนิด ก่อนการแข็งตัวของเลือด สัดส่วนใหญ่ของ geosmin ถูก intracellular (> 98%); เหตุ กำจัดเซลล์ A. circinalis เหมือนเดิมโดยสารส้ม (Fig. 2a) ยังมีผลในประสิทธิภาพกำจัด geosmin รวม (Fig. 3a) สำหรับ saxitoxins ประมาณ 50% คือ intracellular และก็เท่านี้สัดส่วนที่ถูกเอาออก ตามกำจัดเซลล์ (Fig. 3b) CYN แนวโน้มต่าง ๆ ที่ถูกสังเกต (Fig. 3 c) ประมาณ 55% ของ CYN ถูกเริ่ม intracellular และเปอร์เซ็นต์นี้ยังคงคงที่กับพื้นที่ซึ่งมีทั้งสารส้มของ 20 มิลลิกรัม L− 1 อย่างไรก็ตาม เป็นสารส้มยาเพิ่มขึ้น (จาก 40 ถึง 100 มิลลิกรัม L− 1) ใน intracellular ส่วนประกอบลดลงประมาณ 16% ในปริมาณ 100 มิลลิกรัม L− 1) ในทางตรงกันข้าม ส่วนประกอบ extracellular fluctuated กับปริมาณรังสีสารส้ม กับการเริ่มต้นเพิ่มขึ้น ตาม ด้วยลดลงสมดุลกับปริมาณสารส้มที่เพิ่มขึ้น เพิ่มคอมโพเนนต์ CYN extracellular เริ่มต้นแนะนำว่า การเพิ่มสารส้มอาจทำให้เกิดเซลล์ lysis แม้ว่ามันอาจจะเป็นไปได้ว่า เซลล์ตัวเองอาจมีเพียงออก CYN ผ่านกระบวนการธรรมชาติบางอย่าง หลังได้อาจเนื่องจากการศึกษาได้บันทึกว่า ไม่เพียง CYN โดยทั่วไปพบใน extracellular ฟอร์ม แต่คอมโพเนนต์นี้ของ CYN สามารถผันผวนอย่างมากในช่วงระยะต่าง ๆ ของการผลิต CYN บลูมส์ Griffiths และ Saker (2003) พบว่า ประมาณ 80 – 90% ของ CYN ยังคงอยู่ในเซลล์ C. raciborskii ในระหว่างใช้งานหรือล็อกระยะเจริญเติบโต อย่างไรก็ตาม ระยะ เครื่องเขียนถึง 50% ของทั้งหมด CYN พบจะ extracellular ในทำนองเดียวกัน Chiswell et al. (1999) พบว่าในระยะต่าง ๆ ของบลูมเป็น C. raciborskii, CYN extracellular ระหว่าง 19 และ 98% ของ CYN รวมที่แตกต่างกัน ลดลงสมดุลความเข้มข้น CYN extracellular กับเพิ่มปริมาณสารส้ม (จาก 40 ถึง 100 มิลลิกรัม L−1) แนะนำเอากลไกบางอย่างเกิดขึ้น อาจของ CYN extracellular ให้อนุภาค floc เป็นที่กล่าวถึงก่อนหน้านี้ ได้รับการแสดงเลือดแข็งตัวมีผลในการลบอื่น ๆ extracellular cyanobacterial metabolites อย่างไรก็ตาม ไม่ศึกษาวันได้ประเมินของ CYN เลือดแข็งตัว CYN เป็น zwitterion มีอินทรีย์ที่ดำเนินการ ทั้งค่าบวก และค่าลบที่ pH เป็นกลาง และการศึกษาแสดงให้เห็นว่า zwitterions ดังกล่าวสามารถชื้นดินเนื้อปูนและดินแร่ผ่าน cation exchange และ complexation ผิวกับโลหะออกไซด์ (Carrasquillo et al., 2008 Klitzke et al., 2011) ซึ่งสามารถแสดงหลักฐานบางอย่างสำหรับการดูดซับการ flocs ได้ การจะต้อง substantiate หลักนี้

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

3. ผลการอภิปรายและ
3.1 การแข็งตัวของไซยาโนแบคทีเรียทดลองแข็งตัวได้ดำเนินการโดยใช้สองไซยาโนแบคทีเรียเอ circinalis และ C. raciborskii
ผลคุณภาพน้ำสำหรับการแข็งตัวของสารส้ม C. raciborskii (ที่สองความหนาแน่นของเซลล์) ในพืชน้ำที่ไหลเข้าได้แสดงไว้ในรูป 1. ผลที่คล้ายกันถูกตั้งข้อสังเกตสำหรับการแข็งตัวของสารส้ม circinalis กในน้ำเหมือนกัน (ผลไม่แสดง) วัตถุประสงค์ของการแข็งตัวของการทดลองคือการเลือกยาที่ตกตะกอนที่เหมาะสม (ขึ้นอยู่กับการกำจัดของความขุ่น, DOC และ UV254) เพื่อสร้างตะกอนไซยาโนแบคทีเรียที่รับภาระสำหรับการทดลองที่ตามมา ที่น่าสนใจตัวเลขไซยาโนแบคทีเรียได้ถึง 200,000 เซลล์ mL-1 ไม่ได้มีส่วนร่วมอย่างมากที่จะขุ่นหรือตกตะกอนความต้องการของน้ำ นี้แสดงให้เห็นว่าการเพิ่มขึ้นที่ไม่คาดคิดในจำนวนเซลล์ของขนาดนี้จะไม่ได้คาดหวังว่าจะนำไปสู่ความต้องการที่เพิ่มขึ้นตกตะกอน ในขณะที่ DOC เริ่มต้นและค่า UV254 มีมากขึ้นในการปรากฏตัวของเซลล์ (และในกรณีที่ไม่มีการตกตะกอน) จากแนวโน้มการกำจัดสารอินทรีย์ธรรมชาติเหล่านี้ (NOM) องค์ประกอบมีความคล้ายคลึงกันกับที่ของความขุ่น.
พิจารณาจากผลการเหล่านี้เป็น ปริมาณสารส้มที่เหมาะสมของ 40 มก. L-1 ในพืชน้ำที่ไหลเข้าได้รับเลือกสำหรับการทดลองที่ตามมา สำหรับพืชน้ำที่ไหลเข้า B, ยาเฟอริกคลอไรด์ที่เหมาะสมของ 10 mg L-1 ได้รับเลือกโดยใช้หลักการที่คล้ายกัน (ผลไม่แสดง).
การกำจัดของไซยาโนแบคทีเรียและสารของพวกเขาโดยการแข็งตัวของสารส้มในน้ำที่ไหลเข้าโรงงาน A ประเภทที่แสดงอยู่ในมะเดื่อ 2 และ 3 ตามลำดับ ในขณะที่การนับจำนวนเซลล์ geosmin และ STX-EQ ความเข้มข้นจากการทดลอง circinalis เอสนับสนุนการเลือกยาที่ตกตะกอนที่เหมาะสมที่ C. raciborskii ทดลองชี้ให้เห็นว่าปริมาณการตกตะกอนมากขึ้นอาจจำเป็นต้องใช้ นี้อาจจะเป็นเพราะเซลล์ชนิดที่แตกต่างกันเช่นการศึกษาก่อนหน้านี้ได้รับการบันทึกไว้ว่าลักษณะทางสัณฐานวิทยาและลักษณะเซลล์สามารถมีอิทธิพลต่อกระบวนการแข็งตัว; โดยเฉพาะอย่างยิ่งเซลล์ชนิดที่มีขนาดเล็กเป็นเรื่องยากมากขึ้นที่จะมีประสิทธิภาพลบโดยการแข็งตัวและการตกตะกอน (แบร์นฮาร์ดและ Clasen 1991; Ma et al, 2007). C. raciborskii เซลล์ (เซลล์กว้าง 2.5-4.0 ไมครอน) มีขนาดเล็กกว่าเอ circinalis เซลล์ (เซลล์กว้าง 7.0-8.5 ไมครอน) (เบเกอร์และ Fabbro, 1999) ยืนยันผลการวิจัยก่อนหน้าเหล่านี้ ปัจจัยอื่น ๆ เช่นค่าใช้จ่ายในพื้นผิวและการปรากฏตัวของสารอินทรีย์สารได้รับการแสดงที่มีอิทธิพลต่อการแข็งตัวของไซยาโนแบคทีเรียนี้ (Chen และ Yeh, 2006) อย่างไรก็ตามปริมาณสารส้ม 40 mg L- 1 ยังคงถูกลบออกในสัดส่วนที่ใหญ่มาก (~ 75%) ของเซลล์ C. raciborskii; จึงได้ตัดสินใจที่จะใช้ยานี้สำหรับการทดลองต่อมาเพื่อความมั่นคง ในวันที่การศึกษาที่เผยแพร่ไม่ได้รับการประเมินประสิทธิภาพของการแข็งตัวสำหรับซีเซลล์ raciborskii และ / หรือ CYN.
โดยทั่วไปการกำจัดของเซลล์ไซยาโนแบคทีเรียสะท้อนว่าสารภายในเซลล์ของพวกเขาให้สอดคล้องกับการศึกษาก่อนหน้านี้แสดงให้เห็นว่าการแข็งตัวซึ่งจะไม่ได้ผลในการลบ สารนอก (Chow, et al, 1998, 1999. Mouchet และBonnélye, 1998; Newcombe และนิโคลสัน, 2004. Velzeboer, et al, 1995) แนวโน้มการกำจัดที่คล้ายกันถูกตั้งข้อสังเกตเมื่อใช้ไซยาโนแบคทีเรียจำนวน 100,000 และ 200,000 เซลล์ mL- 1 สำหรับแต่ละเซลล์ชนิด ก่อนที่จะมีการแข็งตัวเป็นสัดส่วนใหญ่ของ geosmin เป็นเซลล์ (> 98%); ดังนั้นการกำจัดของเซลล์เหมือนเดิมเอ circinalis โดยสารส้ม (รูป. 2a) นอกจากนี้ยังส่งผลให้มีประสิทธิภาพในการกำจัดของทั้งหมด geosmin (รูป. 3a) สำหรับ saxitoxins ประมาณ 50% เป็นเซลล์และมันก็เป็นเพียงสัดส่วนที่ถูกลบออกตามความในการกำจัดเซลล์ (รูป. 3b) สำหรับ CYN แนวโน้มที่แตกต่างกันถูกตั้งข้อสังเกต (รูป. 3c) ประมาณ 55% ของ CYN ภายในเซลล์เป็นครั้งแรกและร้อยละนี้คงมีปริมาณสารส้ม 20 มิลลิกรัม L- 1 อย่างไรก็ตามในขณะที่ปริมาณสารส้มเพิ่มขึ้น (40-100 มก. L- 1) องค์ประกอบภายในเซลล์ลดลง (ประมาณ 16% ในขนาด 100 มิลลิกรัม L- 1) ในทางตรงกันข้ามส่วนประกอบสารความผันผวนที่มีปริมาณสารส้มที่มีการเพิ่มขึ้นครั้งแรกตามด้วยการค่อยๆลดลงด้วยการเพิ่มปริมาณสารส้ม.
เพิ่มขึ้นครั้งแรกในองค์ประกอบ CYN extracellular แสดงให้เห็นว่าการเพิ่มขึ้นของสารส้มอาจจะก่อให้เกิดการสลายเซลล์แม้ว่ามันอาจจะ นอกจากนี้ยังเป็นไปได้ว่าเซลล์ของตัวเองอาจจะได้รับการปล่อยตัวเพียง CYN ผ่านกระบวนการทางธรรมชาติบางอย่าง หลังมีแนวโน้มเนื่องจากการศึกษามีเอกสารที่ไม่เพียง แต่มีการตรวจพบ CYN ทั่วไปในรูปแบบนอก แต่ส่วนประกอบของ CYN นี้จะมีความผันผวนอย่างมากในช่วงขั้นตอนต่างๆของบุปผา CYN ผลิต และกริฟฟิเกอร์ (2003) พบว่าประมาณ 80-90% ของ CYN ยังคงอยู่ในเซลล์ C. raciborskii ระหว่างขั้นตอนการใช้งานหรือเข้าสู่ระบบของการเจริญเติบโต; แต่ในช่วงนิ่งเพิ่มขึ้นถึง 50% จากทั้งหมด CYN ถูกพบว่าเป็นสาร ในทำนองเดียวกัน Chiswell et al, (1999) พบว่าในแต่ละขั้นตอนของซีบาน raciborskii, extracellular CYN ที่แตกต่างกันระหว่างวันที่ 19 และ 98% จากทั้งหมด CYN.
ลดลงอย่างค่อยเป็นค่อยไปในความเข้มข้น CYN สารเพิ่มปริมาณสารส้ม (40-100 มก. L-1) แสดงให้เห็น กลไกการกำจัดบางอย่างที่เกิดขึ้นอาจจะดูดซับสาร CYN อนุภาค floc ดังที่ได้กล่าวไว้ก่อนหน้านี้การแข็งตัวได้รับการแสดงจะไม่ได้ผลในการกำจัดสารไซยาโนแบคทีเรียอื่น ๆ นอก; แต่ไม่มีการศึกษาถึงวันที่มีการประเมินการแข็งตัวของ CYN CYN เป็น zwitterion อินทรีย์ซึ่งถือทั้งประจุลบและบวกที่ pH เป็นกลางและการศึกษาได้แสดงให้เห็นว่า zwitterions ดังกล่าวสามารถดูดซับดินและแร่ธาตุในดินโดยการแลกเปลี่ยนไอออนบวกและเชิงซ้อนพื้นผิวโลหะออกไซด์ (Carrasquillo et al, 2008;. Klitzke et al, . 2011) ซึ่งจะมีหลักฐานบางอย่างสำหรับการดูดซับเพื่อกลุ่มแบคทีเรีย นอกจากนี้การทำงานจะต้องยืนยันการคาดคะเนนี้

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

3 . ผลและการอภิปราย
3.1 . การตกตะกอนของไซยาโนแบคทีเรีย
การทดลองโดยใช้ไซยาโนแบคทีเรีย อ. circinalis . raciborskii . ผลการค้นหาสำหรับคุณภาพน้ำสารส้มตกตะกอน C raciborskii ( 2 ) เซลล์ในพืชน้ำเข้าจะแสดงในรูปที่ 1 results similar สำหรับ observed for the alum coagulation ของ a.circinalis ในน้ำเดียวกัน ( ผลลัพธ์ไม่แสดง ) จุดประสงค์ของการทดลองคือการเลือกปริมาณสารตกตะกอนที่เหมาะสม ( ตามการกำจัดความขุ่น , DOC และ uv254 ) การสร้างตะกอนหนัก ระบบยูสำหรับการทดลองที่ตามมา ทั้งนี้ ตัวเลขของระบบยูถึง 200000 เซลล์ ml − 1 ไม่ได้มีส่วนร่วมมากถึงความขุ่นหรือความต้องการการตกตะกอนของน้ำ นี้แสดงให้เห็นว่าการเพิ่มขึ้นที่ไม่คาดคิดในเซลล์ตัวเลขของขนาดนี้จะไม่คาดว่าจะนำไปสู่การเพิ่มการตกตะกอนความต้องการ ในขณะที่หมอครั้งแรก และ uv254 มีค่ามากขึ้นในการแสดงตนของเซลล์ ( และในการขาดสาร )กำจัดแนวโน้มเหล่านี้วัสดุอินทรีย์ธรรมชาติ ( นม ) องค์ประกอบคล้ายกับที่ของความขุ่น
ขณะ results คลอง , an dose alum optimum ของ 40 mg l − 1 in ร้องเพลง a water inlet was selected for experiments subsequent . สำหรับโรงงาน บี น้ำเข้า เป็นสูงสุด เฟอร์ริค คลอไรด์ขนาด 10 mg L − 1 คือเลือกใช้หลักการที่คล้ายกัน ( ผลลัพธ์ไม่แสดง )
การกำจัดไซยาโนแบคทีเรียและสารโดยใช้สารส้มตกตะกอนในพืชน้ำเข้าจะแสดงในผลมะเดื่อ . 2 และ 3 ตามลำดับ ในขณะที่เซลล์นับ สนับสนุนการเลือกปริมาณที่เหมาะสมและผ่านการ geosmin STX EQ ความเข้มข้นจาก อ. circinalis การทดลอง ค . raciborskii การทดลองชี้ให้เห็นว่าสารรังสีมากขึ้น อาจจะต้องนี้อาจจะเนื่องจากการชนิดที่แตกต่างกันของเซลล์ในขณะที่การศึกษาก่อนหน้านี้ได้บันทึกไว้ว่าลักษณะเซลล์และลักษณะสามารถมีอิทธิพลต่อกระบวนการการแข็งตัวของเลือด โดยเฉพาะชนิดเซลล์เล็กยากที่จะมีประสิทธิภาพลบโดยการสร้างและการตกตะกอน ( แบร์นฮาร์ด และเคลเซิ่น , 1991 ; ma et al . , 2007 ) C . raciborskii เซลล์ ( เซลล์ความกว้าง 2.5 – 4.0 μ M ) มีขนาดเล็กกว่า .circinalis เซลล์ ( เซลล์กว้าง 7.0 และ 8.5 μ M ) ( เบเกอร์และ fabbro , 1999 ) ยืนยันผลการวิจัยก่อนหน้านี้ ปัจจัยอื่น ๆเช่น ประจุพื้นผิวและการแสดงตนของสารอินทรีย์และมียังถูกแสดงเพื่อมีผลต่อการแข็งตัวของไซยาโนแบคทีเรีย ( เฉินและ Yeh , 2006 ) อย่างไรก็ตาม , ปริมาณสารส้มเท่ากับ 40 มิลลิกรัมต่อลิตร− 1 ยังเอาสัดส่วนใหญ่ ~ i ( 75% ) ของ raciborskii เซลล์จึงตัดสินใจที่จะใช้ยาเพื่อการทดลองที่ตามมาสำหรับความสอดคล้อง ถึงวันที่ไม่มีเผยแพร่การศึกษาประเมินประสิทธิผลของการบำบัดสำหรับ C raciborskii เซลล์ และ / หรือ ซิน .
ในทั่วไปการกำจัดเซลล์ที่เซลล์ metabolites ของระบบยูซึ่งสอดคล้องกับการศึกษาก่อนหน้านี้ที่แสดงการจะไม่ได้ผลในการกำจัดและ metabolites ( เชา et al . , 1998 , 1999 ; และ mouchet บอนน์และด่าง , 1998 ; นูเคิ่ม และ นิโคลสัน , 2004 ; velzeboer et al . , 1995 ) แนวโน้มการกำจัดที่คล้ายกันที่พบเมื่อใช้ระบบยูจำนวน 100 ,000 และ 200000 − 1 สำหรับแต่ละเซลล์ต่อเซลล์ชนิด ก่อนที่จะตกตะกอน สัดส่วนขนาดใหญ่ของ geosmin อยู่ภายในเซลล์ ( > 98% ) ; ดังนั้นการกำจัดเหมือนเดิม . circinalis เซลล์โดยใช้สารส้ม ( รูปที่ 2A ) ยังให้ผลในการกำจัดที่มีประสิทธิภาพของ geosmin ทั้งหมด ( รูปที่ 3 ) สำหรับแซกซิท็อกซิน ประมาณ 50 % ภายในเซลล์ และมันเป็นเพียงสัดส่วนที่ถูกเอาออกสอดคล้องกับการกำจัดเซลล์ ( รูปที่ 3B ) สำหรับซิน แนวโน้มที่แตกต่างกันได้ ( รูปที่ 3 ) ประมาณ 55% ของซินคือการเริ่มต้นและร้อยละนี้คงที่กับปริมาณสารส้ม 20 mg L − 1 อย่างไรก็ตาม ขณะที่ปริมาณสารส้มเพิ่มขึ้น ( จาก 40 ถึง 100 mg L − 1 ) ส่วนประกอบภายในเซลล์ลดลง ( ประมาณ 16 ล้านบาท ขนาด 100 mg L − 1 ) ในทางตรงกันข้ามส่วนประกอบสำคัญ เปรียบกับปริมาณสารส้ม กับเพิ่มเริ่มต้น ตามด้วยการลดลงทีละน้อย ด้วยการเพิ่มปริมาณสารส้ม .
เพิ่มเริ่มต้นในส่วนของซินและชี้ให้เห็นว่า นอกจากสารส้ม อาจจะเกิดจากการสลายเซลล์ แม้ว่ามันอาจเป็นไปได้ว่าเซลล์ตัวเองอาจได้เพียงแค่เปิดตัวซินผ่านกระบวนการธรรมชาติบางอย่างหลังมีโอกาสเนื่องจากการศึกษามีเอกสารที่ไม่เพียง แต่โดยทั่วไปจะพบในรูปแบบและซิน แต่องค์ประกอบของซินสามารถผันผวนอย่างมากในระหว่างขั้นตอนที่แตกต่างกันของซินผลิตบุปผา กริฟฟิ และเซเคอร์ ( 2546 ) พบว่าประมาณ 80 – 90% ของซินอยู่ใน C raciborskii เซลล์ในระหว่างที่ใช้งานหรือเข้าสู่ระบบขั้นตอนของการเจริญเติบโต แต่ในช่วงระยะเครื่องเขียนถึง 50% ของทั้งหมด พบว่า มีการพบว่า ซิน . ในทํานองเดียวกัน chiswell et al . ( 1999 ) น่าจะมากกว่า stages ห้องของ a c. raciborskii สีครีม , เบื่อ cyn varied between 19 ( 98 % ของ cyn )
ทยอยลดความเข้มข้นซินและเพิ่มปริมาณสารส้ม ( จาก 40 ถึง 100 mg L − 1 ) แสดงกลไกการเกิดขึ้นอาจจะดูดซับและอนุภาคฟล็อกซิน . as mentioned previously , coagulation has been shown ที่นี่ ineffective in removing Beebe cyanobacterial ท่าเบื่อ ; หยาบ no เจ้ายพวกเขาถาม coagulation พบขโมยของ cyn .ซินเป็นอินทรีย์ไอออนซึ่งมีประจุบวกและลบ ซึ่งมีทั้งด้านบวกและลบค่า Ph เป็นกลางและการศึกษาได้แสดงให้เห็นว่า zwitterions สามารถดูดซับ เช่น สภาพดินและแร่ธาตุในดินที่ผ่านการแลกเปลี่ยนไอออนบวกและพื้นผิวเพื่อออกไซด์โลหะ ( carrasquillo et al . , 2008 ; klitzke et al . , 2011 ) ซึ่งอาจให้หลักฐานของการดูดซับไป flocs .งานต่อไปคือต้องพิสูจน์สมมุติฐานนี้
.