For slide preparation, individual e

For slide preparation, individual eggs were picked
up with fine forceps and placed on clean microscope slides. Excess
fixative was allowed to evaporate, then as small a drop as possible
of 45% acetic acid was added with a pipette, and at this stage the
egg was torn apart with fine pins. The developing tissue disaggre-
gates in the acetic acid solution, away from the fragments of egg
shell. A small drop of fixative was dropped from a pipette to spread
the cell suspension as a fine film over the slide, and it was then
allowed to dry. It is important that the drops of 45% acetic acid and
fixative should be as small as possible to avoid all the cells being
carried to the edges of the slide. Once slides are completely dry
they may be stained in 1% Giemsa stain (1% Giemsa stain in
distilled water at pH 6.8) in Coplin jars. Slides were stained for
5e10 min, rinsed in unbuffered distilled water and dried vertically.
Wet slides were examined under a low power microscope to see if
useful preparations had been obtained

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

สำหรับการเตรียมภาพนิ่ง รับของไข่แต่ละขึ้นกับคีม fine และวางภาพนิ่งกล้องจุลทรรศน์สะอาด เกินfixative ได้รับอนุญาตให้ระเหย วางแล้วเล็กที่สุด45% กรดอะซิติกเพิ่มเป็นเปตต์ และ ในขั้นตอนนี้ไข่ฉีกแยกกับหมุด fine การพัฒนาเนื้อเยื่อ disaggre-ประตูในโซลูชันกรดอะซิติก จากการกระจายตัวของไข่เชลล์ หยาดของ fixative ถูกตัดทิ้งจากเปตต์แพร่กระจายระงับเซลล์เป็น film fine ภาพนิ่ง และมันถูกแล้วอนุญาตให้แห้ง มันเป็นสิ่งสำคัญที่ลดลงของกรดน้ำส้ม 45% และfixative ควรจะเป็นขนาดเล็กที่สุดที่จะหลีกเลี่ยงทุกเซลล์ถูกทำให้ขอบของภาพนิ่ง เมื่อสไลด์แห้งสนิทพวกเขาอาจจะสี 1% Giemsa คราบ (1% Giemsa คราบในกลั่นน้ำที่ pH 6.8) ใน Coplin ขวด ภาพนิ่งมีสีสำหรับ5e10 นาที rinsed ใน unbuffered กลั่นน้ำ และแห้งในแนวตั้งภาพนิ่งเปียกถูกตรวจสอบภายใต้กล้องจุลทรรศน์พลังงานต่ำเพื่อดูว่ามีการได้รับประโยชน์เตรียม

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

สำหรับการเตรียมสไลด์ไข่แต่ละถูกหยิบ
ขึ้นมาพร้อมกับไฟคีมตะวันออกเฉียงเหนือและวางไว้บนสไลด์กล้องจุลทรรศน์สะอาด ส่วนเกิน
xative Fi ได้รับอนุญาตให้ระเหยแล้วมีขนาดเล็กลดลงเป็นไปได้
45% กรดอะซิติกที่ถูกเพิ่มเข้ามาด้วยปิเปตและในขั้นตอนนี้
ไข่ถูกฉีกออกจากกันด้วยสายพินภาคตะวันออกเฉียงเหนือ เนื้อเยื่อพัฒนา disaggre-
ประตูในสารละลายกรดอะซิติกห่างจากชิ้นส่วนของไข่
เปลือก ลดลงเล็ก ๆ ของสาย xative ถูกทิ้งจากปิเปตที่จะแพร่กระจาย
เซลล์แขวนลอยเป็นสายตะวันออกเฉียงเหนือสาย LM มากกว่าการนำเสนอภาพนิ่งและมันก็ถูกแล้ว
ปล่อยให้แห้ง มันเป็นสิ่งสำคัญที่ลดลง 45% และกรดอะซิติก
xative ไฟควรจะเป็นขนาดเล็กที่สุดที่จะหลีกเลี่ยงทุกเซลล์ที่มีการ
ดำเนินการไปยังขอบของภาพนิ่ง เมื่อสไลด์แห้งสนิท
พวกเขาอาจจะย้อมสีใน 1% Giemsa คราบ (คราบ Giemsa 1% ใน
น้ำกลั่นที่ pH 6.8) ในขวด Coplin สไลด์มีการย้อมสำหรับ
5e10 นาทีล้างในน้ำกลั่น unbuffered และแห้งในแนวตั้ง.
ภาพนิ่งเปียกถูกตรวจสอบภายใต้กล้องจุลทรรศน์พลังงานต่ำเพื่อดูว่า
การเตรียมการที่มีประโยชน์ได้รับ

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

การเตรียมสไลด์ ไข่แต่ละคนถูกเลือก
กับจึง NE คีมและวางไว้บนสไลด์กล้องจุลทรรศน์ที่สะอาด xative จึงเกิน
ได้รับอนุญาตให้ระเหยแล้วเล็กลงที่สุด
45 % กรดเพิ่มกับปิเปต และในขั้นตอนนี้
ไข่ถูกฉีกขาดด้วยจึงไม่หมุด การพัฒนาเยื่อ disaggre -
ประตูในสารละลายกรดอะซิติก ห่างจากเศษเปลือกไข่

หยดเล็ก ๆของ xative จึงถูกลดลงจากเปตกระจาย
เซลล์แขวนลอยเป็นจึงไม่ถ่ายทอดโดยผ่านภาพนิ่ง และตอนนั้น
ได้รับอนุญาตให้แห้ง มันเป็นสิ่งสำคัญที่ลดลง 45% และ
xative กรดจึงควรเป็นขนาดเล็กที่สุดเพื่อหลีกเลี่ยงทุกเซลล์ถูก
อุ้มไปที่ขอบของภาพนิ่ง เมื่อสไลด์จะแห้งสนิท
พวกเขาอาจจะเลอะคราบ ( 1% 1% จิมซาคราบ
จิมซาน้ำกลั่นที่พีเอช 6.8 ) ใน coplin เหยือก ภาพนิ่งถูกย้อมให้
5e10 มิน unbuffered ล้างในน้ำกลั่น แห้งและเปียกเป็นภาพนิ่งแนวตั้ง
ตรวจสอบภายใต้กล้องจุลทรรศน์เพื่อดูว่าพลังต่ำ
การเตรียมประโยชน์ได้