Materials and methods2.1. Natural s

Materials and methods
2.1. Natural source
Marigold flowers (T. erecta) from a single batch were
used for all experiments. The batch contained flowers
with a yellow-orange coloration ratio of 10:90 and
30% average weight of receptacles. The marigold flowers
were divided in two sets. One set was conserved fresh
and separated in two subsets. One of these subsets was
processed via solid state fermentation. As for the second
fresh flower subset, the petals were separated from their
receptacles and processed via uncontrolled ensilage. Forthe second set, the petals were separated from their
receptacles and processed via enzymatic treatments
using a raw enzymatic extract (non-commercial enzymes)
or commercial cellulose. In order to verify the effect
of the original marigold flower moisture on the
yield, the marigold was processed in two separate
batches: one using fresh petals and the other using dried
petals. The dried petals were obtained by dehydration
under environmental conditions up to a moisture content
of 10% (±1%). Also, to avoid changes on both fresh
and dried marigold, all sets were stored at 4 C and
sealed in black polyethylene bags until they were used
during experimental assays.
2.2. Traditional uncontrolled ensilage
In order to evaluate the traditional ensilage, the marigold
flowers, including theirs receptacles, were stored
for up to seven weeks in a closed yard under uncontrolled
conditions. At the end, the product obtained
was dried and processed to obtain marigold flower flour.
2.3. Microorganisms culture
A mixed culture of microorganisms (Flavobacterium
IIb, Acinetobacter anitratus, and Rhizopus nigricans)
were propagated and mixed, in the proportions according
to Navarrete-Bolan˜os et al. (2003), to obtain the
starter inoculum used in the solid-state fermentation assays.
Furthermore, the starter inoculum was filtrated to
obtain a raw enzymatic extract that was used in the
enzymatic treatment with non-commercial enzymes.
2.4. Enzymatic treatments with non-commercial enzymes
In order to evaluate the effect of raw enzymatic extract
on the marigold petals, the supernatants obtained
from mixed culture filtrated were blended with dried
or fresh petals in 1:12 (w/v) ratio and kept on rotary shaker
at 28 C and 175 rpm (Forma Scientific, model 4520)
for 24 h. The samples treated were filtered to separate
their solid and liquid phases. The solid phases, marigold
petals treated, were processed to obtain marigold flower
flour.
2.5. Enzymatic treatment with commercial cellulase
Commercial enzyme solution at 0.05 (±0.01% (w/v))
concentration and endo-1,4-b-D-glucanase (EC 3.2.1.4
from Aspergillus niger, Sigma Chemical Co., St. Louis,
MO) activity was used for enzymatic treatment with
commercial cellulase according to Navarrete-Bolan˜os
et al. (2004a). In the same manner as for the enzymatic
treatments with raw enzymatic extract, the commercial
enzyme solutions were blended with dried or fresh petals
in 1:12 (w/v) ratio and kept on rotary shaker at 28 C175 rpm for 120 h, the samples treated were filtered and
the solid phases were processed to obtain marigold
flower flour.
2.6. Solid state fermentation
The mixed culture microorganisms was blended with
fresh marigold flower in 1.5:1 (w/v) ratio on a modular
rotating drum fermentation system under the following
conditions: 73.8% moisture content, intermittent agitation
every 14.8 h, and 4.1 l inlet air/min. These conditions
maximize the total xanthophylls extraction
(Navarrete-Bolan˜os et al., 2004b) from the fermented
marigold flower flour obtained.
2.7. Marigold flower flour
The products obtained by all proposed processes,
enzymatic treatment, solid state fermentation and ensilage,
were dehydrated in a vacuum oven (Shel Lab.
model 1430) to 10% (±1%) moisture content, and milled
(0.5-mm sieve) using a Brinkmann mill (Brinkmann,
Westbury, NY). The flour obtained was analyzed by
AOAC (1984) method 970.64 to determine the total xanthophylls
concentration and to obtain oleoresin via a
lixiviation process.
2.8. Xanthophylls extraction by hexane
The flours obtained from described treatments were
extracted in a batch process using analytical grade hexane
(J.T. Baker, Mallinckrodt Baker Inc., Phillipsburg,
NJ) in 1:6 (w/v) flour to hexane ratio and at constant
temperature of 35 C during 15 min of extraction time
(Navarrete-Bolan˜ os, Jime´nez-Islas, Rico-Martı´nez,
Domı´nguez-Domı´nguez, & Regalado-Gonza´lez, 2001).
When the extraction was concluded, the light phase
(hexane + xanthophylls) must be separated of the heavy
phase (solid). The light phase was concentrated to obtain
the oleoresin extract that was weighed (digital analytical
balance, Ohaus-explorer) to quantify the yield
extraction and determine the xanthophylls concentration
according to AOAC (1984) method 970.64. The
heavy phase (solid) was desolventized, and the retained
solvent volume was determined by difference of weights
(Ohaus-explorer balance). Solvent-free solid was also
analyzed to determine

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

วัสดุและวิธีการ2.1. ธรรมชาติแหล่งดอกดาวเรือง (ต.เรือง) จากชุดเดียวได้ใช้สำหรับการทดลองทั้งหมด ดอกไม้ชุดที่มีอยู่อัตราส่วนสีส้มเหลืองของ 10:90 และน้ำหนักเฉลี่ย 30% ของภาชนะ ดอกไม้ดาวเรืองถูกแบ่งออกในสองชุด ชุดหนึ่งคืออนุรักษ์สดและแยกในชุดย่อยสอง ชุดย่อยเหล่านี้อย่างใดอย่างหนึ่งประมวลผลผ่านสถานะของแข็งหมัก ส่วนที่สองดอกไม้สดย่อย แยกตัวจากกลีบของพวกเขาภาชนะบรรจุ และประมวลผลผ่านทาง ensilage ไม่สามารถควบคุม Forthe ชุดที่สอง แยกตัวจากกลีบของพวกเขาภาชนะบรรจุ และประมวลผลผ่านเอนไซม์บำบัดใช้สารสกัดจากเอนไซม์ดิบ (เอนไซม์ไม่ใช่เชิงพาณิชย์)หรือเซลลูโลสพาณิชย์ ตรวจสอบผลความชื้นดอกดาวเรืองต้นฉบับในการผลผลิต ดาวเรืองถูกประมวลผลในสองชุด: โดยใช้กลีบดอกสดและอื่น ๆ โดยใช้แห้งกลีบ กลีบดอกแห้งได้รับ โดยการคายน้ำภายใต้สภาพแวดล้อมได้ถึงความชื้น10% (± 1%) นอกจากนี้ เพื่อหลีกเลี่ยงการเปลี่ยนแปลงทั้งสดดาว เรืองอบแห้ง และชุดทั้งหมดถูกเก็บไว้ที่ 4 C และปิดผนึกในถุงพลาสติกสีดำจนกว่าพวกเขาใช้ในระหว่างทดลอง assays2.2. แบบดั้งเดิมไม่สามารถควบคุม ensilageเพื่อประเมิน ensilage แบบดั้งเดิม ดาวเรืองดอกไม้ รวมทั้งภาชนะบรรจุ พวกเขาถูกเก็บไว้นานถึงเจ็ดสัปดาห์ในลานปิดภายใต้การควบคุมเงื่อนไข ปลาย ผลิตภัณฑ์ที่ได้รับแห้ง และการประมวลผลเพื่อขอรับดาวเรืองดอกไม้แป้ง2.3. จุลินทรีย์วัฒนธรรมวัฒนธรรมผสมของจุลินทรีย์ (FlavobacteriumIIb, Acinetobacter anitratus และบท nigricans)แพร่กระจาย และ ผสม ในสัดส่วนตามการ Navarrete Bolan˜os et al. (2003), การขอรับการstarter inoculum ที่ใช้ใน assays solid-state หมักนอกจากนี้ starter inoculum เป็น filtrated ไปสารสกัดจากเอนไซม์ในวัตถุดิบที่ใช้ในการขอรับการรักษาเอนไซม์ ด้วยเอนไซม์ไม่ใช่เชิงพาณิชย์2.4. เอนไซม์บำบัด ด้วยเอนไซม์ไม่ใช่เชิงพาณิชย์เพื่อประเมินผลของสารสกัดจากเอนไซม์ดิบในกลีบดอกดาวเรือง supernatants รับจากวัฒนธรรมผสม filtrated ถูกผสมกับแห้งกลีบสดใน 1:12 (w/v) หรืออัตราส่วนและปั่นโรตารี่เก็บไว้บนที่ 28 C และ 175 rpm (Forma วิทยาศาสตร์ รุ่น 4520)ใน 24 ชม กรองเพื่อแยกตัวอย่างที่ได้รับการรักษาเฟสของแข็ง และของเหลว ระยะไม้ ดาวเรืองกลีบถือ ประมวลผลการขอรับดอกดาวเรืองแป้ง2.5. เอนไซม์รักษา ด้วยค้า cellulaseเอนไซม์ทางการค้าโซลูชันที่ 0.05 (ค่าความคลากเคลื่อน% (w/v))ความเข้มข้นและเอนโด 1, 4-b-D-glucanase (EC 3.2.1.4จาก Aspergillus ไนเจอร์ บริษัทสารเคมี Sigma เซนต์หลุยส์กิจกรรม MO) ใช้เอนไซม์รักษาด้วยcellulase พาณิชย์ตาม Navarrete Bolan˜oset al. (2004a) ในลักษณะเดียวกันเช่นเอนไซม์ที่ด้วยสารสกัดจากเอนไซม์ดิบ พาณิชย์โซลูชั่นเอนไซม์ถูกผสมกับกลีบดอกที่แห้ง หรือสด1:12 (w/v) ในอัตราส่วนและเก็บไว้บนหมุนปั่นที่ 28 C175 rpm สำหรับ 120 h ตัวอย่างถือว่ากรอง และเฟสของแข็งถูกประมวลผลเพื่อขอรับดาวเรืองแป้งดอกไม้2.6. solid state หมักจุลินทรีย์ที่ผสมวัฒนธรรมถูกผสมด้วยดอกดาวเรืองสดในอัตราส่วน 1.5:1 (w/v) บนเป็นโมดูลหมุนถังหมักระบบภายใต้ต่อไปนี้เงื่อนไข: 73.8% ความชื้น ก่อกวนเป็นระยะ ๆทุก 14.8 h และอากาศไหลเข้า 4.1 l/นาที เงื่อนไขเหล่านี้เพิ่มการสกัดรวม xanthophylls(Navarrete Bolan˜os et al. 2004b) จากการหมักแป้งดอกไม้ดาวเรืองที่ได้รับ2.7. ดาวเรืองดอกไม้แป้งผลิตภัณฑ์ที่ได้รับจากกระบวนการนำเสนอทั้งหมดเอนไซม์บำบัด สถานะของแข็งหมัก และ ensilageถูกอบแห้งในเตาสูญญากาศ (เลือกปฏิบัติรุ่น 1430) ที่ความชื้น 10% (± 1%) เนื้อหา และข้าวสาร(ตะแกรง 0.5 มิลลิเมตร) โดยใช้โรงสี Brinkmann (Brinkmannเดอะโซโห NY) แป้งได้ถูกวิเคราะห์โดยวิธี AOAC (1984) 970.64 เพื่อกำหนด xanthophylls รวมความเข้มข้นและ การขอรับ oleoresin ผ่านการกระบวนการ lixiviation2.8 xanthophylls สกัด ด้วยเฮกเซนแป้งที่ได้จากการรักษาอธิบายได้สกัดในกระบวนการชุดงานที่ใช้เฮกเซนเกรดวิเคราะห์(J.T. เบเกอร์ Mallinckrodt Baker Inc., PhillipsburgNJ) 1:6 (w/v) ผสมอัตราส่วนเฮกเซน และคงอุณหภูมิ 35 C ในช่วง 15 นาทีของเวลาสกัด(Navarrete Bolan˜ os, Jime´nez ไอสลาสมาลวิ เปอร์โตริโก-Martı´nezDomı´nguez-Domı´nguez, & Regalado Gonza´lez, 2001)เมื่อแยกประกอบ ขั้นตอนการแสง(เฮกเซน + xanthophylls) ต้องแยกของหนักเฟส (แข็ง) ระยะแสงได้เข้มข้นเพื่อขอรับสารสกัด oleoresin ที่ชั่งน้ำหนัก (ดิจิตอลวิเคราะห์สมดุล Ohaus explorer) การวัดปริมาณผลผลิตการสกัด และตรวจสอบความเข้มข้นของ xanthophyllsตามวิธี AOAC (1984) 970.64 การหนักระยะ (ของแข็ง) คือ desolventized และการสะสมกำหนด โดยความแตกต่างของน้ำหนักปริมาตรตัวทำละลาย(ดุล Ohaus explorer) ปราศจากตัวทำละลายของแข็งก็วิเคราะห์เพื่อกำหนด

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

วัสดุและวิธีการ
2.1 แหล่งธรรมชาติ
ดอกดาวเรือง ( T. erecta) จากชุดเดียวที่ถูก
นำมาใช้สำหรับการทดลองทั้งหมด ชุดที่มีดอกไม้
ที่มีอัตราส่วนสีสีเหลืองสีส้มของ 10:90 และ
น้ำหนักเฉลี่ย 30% ของภาชนะ ดอกไม้ดอกดาวเรือง
ถูกแบ่งออกเป็นสองชุด หนึ่งชุดได้รับการอนุรักษ์สด
และแยกเป็นสองส่วนย่อย หนึ่งในส่วนย่อยเหล่านี้ได้รับการ
ประมวลผลผ่านการหมักของรัฐที่มั่นคง ในฐานะที่เป็นสอง
กลุ่มย่อยดอกไม้สดกลีบถูกแยกออกจากพวกเขา
ภาชนะและประมวลผลผ่าน Ensilage ไม่สามารถควบคุมได้ ชุดที่สองวงกลีบถูกแยกออกจากพวกเขา
ภาชนะและประมวลผลผ่านการรักษาด้วยเอนไซม์
โดยใช้สารสกัดจากเอนไซม์ดิบ (เอนไซม์ที่ไม่ใช่เชิงพาณิชย์)
หรือเซลลูโลสในเชิงพาณิชย์ เพื่อตรวจสอบผลกระทบ
ของความชื้นดอกดาวเรืองเดิมใน
อัตราผลตอบแทนดาวเรืองถูกประมวลผลในสองแยกต่างหาก
สำหรับกระบวนการหนึ่งใช้กลีบดอกสดและอื่น ๆ ที่ใช้แห้ง
กลีบ กลีบดอกแห้งที่ได้จากการคายน้ำ
ภายใต้สภาพแวดล้อมได้ถึงความชื้น
10% (± 1%) นอกจากนี้เพื่อหลีกเลี่ยงการเปลี่ยนแปลงทั้งสด
ดอกดาวเรืองและแห้งชุดทั้งหมดถูกเก็บไว้ที่ 4 องศาเซลเซียสและ
ปิดผนึกอยู่ในถุงพลาสติกชนิดสีดำจนกว่าพวกเขาจะถูกนำมาใช้
ในระหว่างการตรวจทดลอง.
2.2 Ensilage ไม่มีการควบคุมแบบดั้งเดิม
เพื่อประเมิน Ensilage แบบดั้งเดิมดอกดาวเรือง
ดอกไม้รวมทั้งภาชนะพวกเขาถูกจัดเก็บไว้
ได้นานถึงเจ็ดสัปดาห์ในลานปิดภายใต้ที่ไม่สามารถควบคุม
เงื่อนไข ในตอนท้ายของผลิตภัณฑ์ที่ได้
ถูกทำให้แห้งและประมวลผลเพื่อให้ได้แป้งดอกดาวเรือง.
2.3 วัฒนธรรมจุลินทรีย์
วัฒนธรรมผสมของเชื้อจุลินทรีย์ (Flavobacterium
IIb, Acinetobacter anitratus และ Rhizopus nigricans)
ถูกขยายพันธุ์และผสมในสัดส่วนตาม
ที่จะ Navarrete-Bolan~os et al, (2003) เพื่อให้ได้
หัวเชื้อเริ่มต้นที่ใช้ในการวิเคราะห์การหมักแบบ solid-state.
นอกจากนี้หัวเชื้อเริ่มต้นที่ถูกกรองจะ
ได้รับสารสกัดจากเอนไซม์ดิบที่ใช้ใน
การรักษาด้วยเอนไซม์เอนไซม์ที่ไม่ใช่เชิงพาณิชย์.
2.4 การรักษาด้วยเอนไซม์ที่มีเอนไซม์ที่ไม่ใช่เชิงพาณิชย์
เพื่อที่จะประเมินผลกระทบของสารสกัดจากเอนไซม์ดิบ
บนกลีบดอกดาวเรือง, supernatants ที่ได้
จากการเพาะเลี้ยงผสมกรองถูกผสมกับแห้ง
กลีบหรือสดใน 1:12 (w / v) อัตราการใช้และเก็บไว้ในแบบหมุน เครื่องปั่น
ที่ 28 องศาเซลเซียสและ 175 รอบต่อนาที (Forma วิทยาศาสตร์รุ่น 4520)
เป็นเวลา 24 ชั่วโมง กลุ่มตัวอย่างที่ได้รับการรักษาถูกกรองเพื่อแยก
ขั้นตอนของแข็งและของเหลวของพวกเขา ขั้นตอนที่เป็นของแข็งดาวเรือง
กลีบดอกได้รับการรักษาที่ถูกประมวลผลที่จะได้รับดอกดาวเรือง
แป้ง.
2.5 เอนไซม์ที่มีเซลลูเลสในเชิงพาณิชย์
แก้ปัญหาเอนไซม์ทางการค้าที่ 0.05 (± 0.01% (w / v))
ความเข้มข้นและ Endo-1,4-BD-glucanase (EC 3.2.1.4
จากเชื้อรา Aspergillus ไนเจอร์ซิก Chemical Co. , เซนต์หลุยส์,
มิสซูรี่ ) กิจกรรมที่ถูกนำมาใช้สำหรับการรักษาด้วยเอนไซม์
เซลลูเลสในเชิงพาณิชย์ตาม Navarrete-Bolan~os
et al, (2004a) ในลักษณะเช่นเดียวกับเอนไซม์
การรักษาด้วยสารสกัดจากเอนไซม์ดิบเชิงพาณิชย์
โซลูชั่นเอนไซม์ถูกผสมกับกลีบแห้งหรือสด
ใน 1:12 (w / v) อัตราการใช้และเก็บไว้ในเครื่องปั่นแบบหมุนที่ 28 รอบต่อนาทีสำหรับ C175 120 H ที่ กลุ่มตัวอย่างได้รับการรักษาถูกกรองและ
ขั้นตอนที่เป็นของแข็งที่ถูกประมวลผลที่จะได้รับดอกดาวเรือง
แป้งดอกไม้.
2.6 การหมักของรัฐที่มั่นคง
จุลินทรีย์เชื้อผสมได้รับการผสมกับ
ดอกดาวเรืองสดใน 1.5: 1 (w / v) อัตราการใช้ในแบบแยกส่วน
หมุนระบบกลองหมักภายใต้การดังต่อไปนี้
เงื่อนไขความชื้น 73.8% ปั่นป่วนต่อเนื่อง
ทุก 14.8 ชั่วโมงและ 4.1 ลิตรที่ไหลเข้า อากาศ / นาที เงื่อนไขเหล่านี้
เพิ่ม xanthophylls รวมสกัด
(Navarrete-Bolan~os et al., 2004b) จากการหมัก
แป้งดอกดาวเรืองที่ได้รับ.
2.7 ดอกดาวเรืองแป้ง
ผลิตภัณฑ์ที่ได้จากกระบวนการเสนอทั้งหมด
เอนไซม์หมักของรัฐที่มั่นคงและ Ensilage,
ก็อบแห้งในเตาอบสูญญากาศ (Shel Lab.
รุ่น 1430) ถึง 10% (± 1%) ความชื้นและข้าวสาร
(0.5 มม ตะแกรง) โดยใช้โรงงาน Brinkmann (Brinkmann,
นิวยอร์กซิตี้) แป้งที่ได้มาวิเคราะห์โดย
AOAC (1984) วิธี 970.64 เพื่อตรวจสอบ xanthophylls รวม
ความเข้มข้นและจะได้รับ oleoresin ผ่าน
กระบวนการ lixiviation.
2.8 สกัดเฮกเซน xanthophylls โดย
แป้งที่ได้รับจากการรักษาอธิบายถูก
สกัดในกระบวนการผลิตเป็นชุดโดยใช้เฮกเซนเกรดวิเคราะห์
(JT Baker, Mallinckrodt เบเกอร์อิงค์ลิฟส์,
นิวเจอร์ซีย์) 1: 6 (w / v) แป้งอัตราส่วนเฮกเซนและคง
อุณหภูมิ 35 องศาเซลเซียสในช่วงเวลา 15 นาทีของเวลาการสกัด
(OS Navarrete-Bolan~, Jime'nez-Islas ยั-Martı'nez,
Domı'nguez-Domı'nguezและ Regalado-Gonza'lez, 2001).
เมื่อสกัด สรุปขั้นตอนแสง
(เฮกเซน + xanthophylls) ต้องแยกจากกันของหนัก
เฟส (แข็ง) เฟสแสงเข้มข้นที่จะได้รับ
สารสกัดจาก oleoresin ที่ชั่งน้ำหนัก (วิเคราะห์ดิจิตอล
สมดุล Ohaus-Explorer) ปริมาณผลผลิต
การสกัดและการตรวจสอบความเข้มข้น xanthophylls
ตาม AOAC (1984) วิธี 970.64
เฟสหนัก (ของแข็ง) คือ desolventized และเก็บไว้ใน
ไดรฟ์ตัวทำละลายที่ถูกกำหนดโดยความแตกต่างของน้ำหนัก
(ยอด Ohaus-Explorer) ปราศจากตัวทำละลายที่เป็นของแข็งยังได้
วิเคราะห์เพื่อตรวจสอบ

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

วัสดุและวิธีการ2.1 . แหล่งธรรมชาติดอกดาวเรือง ( T . erecta ) จากชุดเดียวคือใช้สำหรับทุกการทดลอง ชุดประกอบด้วยดอกไม้ด้วยอัตราส่วนของ 10:90 สี ส้ม เหลือง และน้ำหนักเฉลี่ย 30% ของเครื่อง . ดอกดาวเรือง ดอกไม้แบ่งเป็นสองชุด ชุดถนอมอาหารสดคือและแยกเป็นสองส่วนย่อย . หนึ่งของข้อมูลเหล่านี้คือประมวลผลผ่านการหมักของแข็ง . ส่วนที่สองย่อยดอกไม้ กลีบแยกจากพวกเขาเครื่องควบคุมและประมวลผลผ่านทางเปียก . ส่วนชุดที่สอง กลีบแยกจากพวกเขาภาชนะและประมวลผลผ่านการรักษาเอนไซม์การใช้เอนไซม์ ( เอนไซม์ที่สกัดจากวัตถุดิบที่ไม่ใช่เชิงพาณิชย์ )หรือเซลลูโลสเชิงพาณิชย์ เพื่อตรวจสอบผลของเดิมดาวเรืองความชื้นในผลผลิต , ดาวเรืองได้ทำสองแยกชุด : ใช้กลีบดอกสดและอื่น ๆที่ใช้อบแห้งกลีบ กลีบแห้งที่ได้จากการภายใต้สภาพแวดล้อมขึ้นอยู่กับความชื้น10% ( ± 1% ) นอกจากนี้ เพื่อหลีกเลี่ยงการเปลี่ยนแปลงทั้งสดและดาวเรืองแห้ง , ชุดทั้งหมดถูกเก็บไว้ที่ 4 องศาเซลเซียสปิดผนึกถุงพลาสติกสีดำจนกว่าพวกเขาจะถูกใช้ระหว่างวิธีการทดลอง2.2 . ไม่มีการควบคุมแบบเปียกเพื่อประเมินเปียกแบบดั้งเดิม , ดอกดาวเรืองดอกไม้ รวมถึงพวก receptacles , ถูกถึงเจ็ดสัปดาห์ในบ้านภายใต้การปิดที่ไม่สามารถควบคุมได้เงื่อนไข ในตอนท้าย , ผลิตภัณฑ์ได้รับอบแห้งและแปรรูป เพื่อให้ได้ดอกดาวเรืองแป้ง2.3 เพาะจุลินทรีย์วัฒนธรรมผสมของจุลินทรีย์ ( ฟลาโวแบคทีเรียมด้วย Acinetobacter anitratus และเชื้อรา , nigricans )กำลังขยายพันธุ์ และผสมในสัดส่วนตามใน นาบาร์เรเตโบลาน˜ OS et al . ( 2003 ) , ที่จะได้รับเริ่มต้นที่ใช้ในการหมักของเชื้อหรือ .นอกจากนี้ ปริมาณการผลิตเริ่มต้น คือขอรับดิบ เอนไซม์ สารสกัดที่ใช้ในการรักษาด้วยเอนไซม์ เอนไซม์ ที่ไม่ใช่เชิงพาณิชย์2.4 . การรักษาด้วยเอนไซม์ เอนไซม์ที่ไม่ใช่เชิงพาณิชย์เพื่อศึกษาผลของการใช้เอนไซม์สกัดจากวัตถุดิบบนกลีบดอกดาวเรือง , supernatants ได้รับผลิตจากหัวเชื้อผสมผสมกับแห้งหรือสดกลีบดอกไม้ 1 : 12 ( w / v ) อัตราส่วนและเก็บไว้ในแบบเขย่าที่ 28 องศาเซลเซียส และ 175 รอบต่อนาที ( - วิทยาศาสตร์ , รูปแบบใน )24 ชั่วโมง ตัวอย่างที่ถูกกรองเพื่อแยกของของแข็งและของเหลวเฟส ขั้นตอนที่เป็นของแข็ง ดอกดาวเรืองกลีบเลี้ยงมีการประมวลผลเพื่อให้ได้ดอกดาวเรือง ,แป้ง2.5 การรักษาด้วยเอนไซม์เซลลูเลส พาณิชย์กับเอนไซม์ทางการค้าในสารละลาย 0.05 ( ± 0.01 % ( w / v )ความเข้มข้นและ endo-1,4-b-d-glucanase ( EC 3.2.1.4จากเชื้อรา Aspergillus niger , Sigma Chemical Co . , เซนต์ หลุยส์โม ) ใช้เอนไซม์กับกิจกรรมพาณิชย์ตาม นาวาร์เรตเซล˜ OS โบลานet al . ( 2004a ) ในลักษณะเดียวกันกับเอนไซม์การรักษาด้วยเอนไซม์ดิบสกัด , พาณิชย์สารละลายเอนไซม์ผสมกับกลีบแห้งหรือสดในอัตราส่วน 1 : 12 ( w / v ) และเก็บไว้ในเครื่องเขย่าที่ 28 c175 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 120 ชั่วโมง ตัวอย่างที่ถูกกรองและขั้นตอนที่เป็นของแข็งที่ถูกประมวลผลเพื่อให้ได้ดอกดาวเรืองแป้งดอกไม้2.6 การหมักของแข็งจุลินทรีย์ที่ผสมผสานกับวัฒนธรรมดอกดาวเรืองสด 1.5 ( w / v ) อัตราส่วนในโมดูลกลองหมุนหมักภายใต้ระบบต่อไปนี้เงื่อนไข : ความชื้น 73.8 % ต่อเนื่องมากทุกภูมิภาค เอช และ 4.1 ลิตร / นาที เงื่อนไขเหล่านี้ลมร้อนเพิ่มการสกัดสารแซนโทฟิลทั้งหมด( นาวาร์เร็ตเต้โบลาน˜ OS et al . , 2004b ) จากการหมักดอกดาวเรือง แป้งที่ได้2.7 . ดาวเรืองดอกไม้แป้งผลิตภัณฑ์ที่ได้จากการนำเสนอกระบวนการเอนไซม์ , การหมักของแข็ง และเปียก ,ก็อบแห้งในเตาอบสูญญากาศ ( เชล .รุ่น 1 ) 10% ( ± 1% ) มีความชื้น และสาร( 0.5-mm ตะแกรง ) โดยใช้ brinkmann ( brinkmann โรงสี ,Westbury , NY ) แป้งที่ได้มาวิเคราะห์โดยโปรตีน ( 1984 ) วิธี 970.64 หาแซนโทฟิลทั้งหมดความเข้มข้นและโอลีโอเรซินผ่านขอรับกระบวนการ lixiviation .2.8 . การสกัดด้วยสารแซนโธฟิลล์แป้งที่ได้จากการทดลอง อธิบายสกัดโดยใช้เฮกเซนในกระบวนการแบทช์เกรดวิเคราะห์( J.T . Baker , Ltd phillipsburg เบเกอร์ , อิงค์NJ ) 1 : 6 ( w / v ) อัตราส่วนระหว่างแป้งและน้ำที่คงที่อุณหภูมิ 35 องศาเซลเซียสในช่วง 15 นาทีของเวลาการสกัด( นาวาร์เร็ตเต้โบลาน˜ OS jime ใหม่ islas มาร์ทı´เนซเนซ , ริโก้ ,ดอมı´ nguez ดอมı´ nguez & regalado gonza ใหม่ lez , 2001 )เมื่อสกัดจากระยะที่แสง( เฮกเซน + แซนโทฟิลล์ ) ต้องแยกของหนักเฟส ( แข็ง ) ระยะแสงนำขอรับที่สกัดจากโอลีโอเรซินที่ชั่งดิจิตอล ( วิเคราะห์ความสมดุล ohaus Explorer ) ปริมาณผลผลิตการสกัดและศึกษาปริมาณแซนโทฟิลล์ตามองศา เซลเซียส ( 1984 ) วิธี 970.64 . ที่ขั้นหนัก ( แข็ง ) คือ desolventized , และการตัวทำละลาย ปริมาณ ถูกกำหนดโดยความแตกต่างของน้ำหนัก( สมดุล Explorer ohaus ) ตัวทำละลายเป็นของแข็งยังฟรีวิเคราะห์เพื่อตรวจสอบ