Three pot experiments were conducte

Three pot experiments were conducted outdoor at Faculty of Agriculture,
Chiang Mai University, Thailand during November 2008 to March 2009. The soil
collected from Mae Hia Research and Training Center, Faculty of Agriculture,
Chiang Mai University was sterilized by autoclaving at 125°C for 1 hour before
using for soybean cultivation in order to reduce the native population of root nodule
bacteria in the soil. The autoclaved soil had pH 7.6, 55 mg/kg of NH4
+N, 15 mg/
kg of NO3
-
N, 40 mg/kg of available P, 87 mg/kg of exchangeable K, 1447 mg/
kg of exchangeable Ca and 101 mg/kg of exchangeable Mg. One of these three
recommended soybean varieties from Myanmar (Hinthada), Thailand (SJ 5) and
Cambodia (DT 84) was grown in each pot experiment, using randomized complete
block design (RCB) with 3 replications and 6 treatments. There were three plants
per pot containing 10 kg of sterile soil. The treatments for each soybean variety
were uninoculated control treatment, single inoculation with selected endophytic
actinomycetes (EA), two single inoculated treatments with MA and MB, native
Bradyrhizobial isolates from Myanmar soil and two dual inoculated treatments
with EA+MA and EA+MB. MA and MB were isolated from nodules of Myanmar
soybean trap host grown in soil sample collected from soybean cultivated area
in Bagan, Middle Myanmar. This soybean trap host was a local variety used by
owner of the selected soybean cultivated field. These two native Bradyrhizobial
isolates could improve shoot dry weight of Myanmar local soybean variety about
50-56% over that of uninoculated control under controlled room condition with
sterile sand and N-free nutrient solution (Soe, unpublished data). From preliminary
study of MA and MB root nodule bacterial isolates, single colony of MA
and MB isolates could be observed after streaking on yeast manitol congo red
agar for five days. They did not absorb congo red dye and showed typical colony
morphology of root nodule bacteria. On YMA with Bromothymol blue dye, these
two isolates changed slightly the color of this medium from green to blue. Both
of them had rod shaped and were Gram negative bacteria. According to Vincent
(1972) both MA and MB could be identified as the bacterial isolates in genus
Bradyrhizobia.
However in this study, identification of these two isolates into species or
strains were not possible because the detail on IAA production or serological differences
or information on their genetics are required which were not inoculated in
this scope of this research. These two Bradyrhizobial isolates were tested for their
infectiveness and effectiveness with the same soybean trap host under controlled
room condition with sterile sand and N-free nutrient solution (Somasegaran and
Hoben, 1994). Under such testing condition, both MA and MB Bradyrhizobial
isolates could improve shoot dry weight of the local Myanmar soybean test host
about 50-56% over that of uninoculated control at one month after inoculation.
The selected endophytic actinomycetes was identified as Streptomyces sp. and
was tested previously as the effective endophyte which could be compatible with
USDA 110 strain of Bradyrhizobium for one of Thai soybean without detail of
variety (Thapanapongworakul, 2003).
EA and Bradyrhizobial isolates were grown in Inhibited mold agar 2 (IMA
2) and yeast mannitol broth, respectively. After the maximum density of mycelia
of EA or cell suspension of each Bradyrhizobium were obtained (>109 cfu/ ml),
fresh liquid culture of each microbe was inoculated to the seeds of each soybean
variety germinated in plastic seedling tray, using sterile peat-moss substrate. The
rate of inoculation was 106 cfu/seed for both EA and bradyrhizobial isolates. Ten
days after seed germination, soybean seedlings for all treatments were transplanted
into the soil using three plants per pot with 10 kg of soil.
There were three sets of pots with complete treatments and replications,
one set for each harvest at V6, R3.5 and maturity stage. Ordinary tap water
was used for irrigation once a day through out the growing season. Nodule dry
weight, root dry weight and shoot dry weight at V6 and R3.5 growth stages,
relative ureide index (RUI) of root bleeding sap and total N uptake of shoot at
R3.5 stage, percentage (Herridge and Peoples, 2002) and amount of N derived
from N2 fixation throughout the growing season and seed yield were collected
and statistically analyzed by F-test.
The root bleeding sap samples were analyzed for amino-N (Yemm and
Cooking, 1955), NO3
-
N (Cataldo et al., 1975) and ureide-N (Young and Conway,
1942). The total N content of the plant samples were analyzed by the method
suggested by Novozamsky et al. (1974).
Relative ureide index (RUI) of root bleeding sap was calculated according
to Peoples et al. (1988).
Relative ureide index (%) = 4 x ureide* x 100
(4 x ureide* + amino acid* + nitrate*)
Note: (* = mole)
Percentage of fixed N throughout the growing season of soybean was
calculated by the equation proposed by Herridge and Peoples (2002).
y = 4.8 + 0.83x (at early pod filling stage on R3.5 stage);
where: y = relative ureide index (%)
x = nitrogen derived from air (%)
The total N accumulation or N uptake of the shoot was calculated according
to this formula

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ได้ดำเนินการทดลองหม้อสามกลางแจ้งที่คณะเกษตรมหาวิทยาลัยเชียงใหม่ ไทยระหว่าง 2551 พฤศจิกายนถึง 2552 มีนาคม ดินรวบรวมจากงานวิจัยแม่เหีและศูนย์ฝึกอบรม คณะเกษตรมหาวิทยาลัยเชียงใหม่ได้ sterilized โดย autoclaving ที่ 125° C 1 ชั่วโมงก่อนใช้สำหรับเพาะปลูกถั่วเหลืองเพื่อลดประชากรพื้นเมืองของ nodule รากแบคทีเรียในดิน Autoclaved ดินมี pH 7.6, 55 mg/kg ของ NH4+ N, 15 มิลลิกรัม /กก.ของ NO3-N, 40 มิลลิกรัม/กิโลกรัมของว่าง P, 87 mg/kg ของกำนัล K, 1447 มิลลิกรัม /กิโลกรัมของกำนัล Ca 101 มิลลิกรัม/กิโลกรัมของกำนัลมิลลิกรัม สามเหล่านี้อย่างใดอย่างหนึ่งแนะนำสายพันธุ์ถั่วเหลืองจากประเทศพม่า (Hinthada), ไทย (5 เอส) และกัมพูชา (DT 84) ถูกปลูกในแต่ละกระถางทดลอง ใช้ randomized สมบูรณ์บล็อกออก (อาร์ซีบี) ระยะที่ 3 และ 6 บำรุง มีพืช 3ต่อหม้อที่ประกอบด้วยการใส่ดิน การรักษาถั่วเหลืองต่าง ๆ แต่ละรักษาควบคุม uninoculated, inoculation เดียวกับเลือก endophyticactinomycetes (EA), สองเดียวรักษา inoculated MA และ MB พื้นเมืองBradyrhizobial ที่แยกได้จากดินพม่าและรักษา inoculated คู่สองเอ + MA และ EA + MB ม้าและ MB ถูกแยกต่างหากจาก nodules ของพม่าโฮสต์กับถั่วเหลืองปลูกในตัวอย่างดินที่เก็บจากพื้นที่ cultivated ถั่วเหลืองในพุกาม พม่ากลาง โฮสต์กับดักนี้ถั่วเหลืองมีหลายท้องถิ่นที่ใช้โดยเจ้าของถั่วเหลืองเลือก cultivated ฟิลด์ Bradyrhizobial พื้นเมืองเหล่านี้สองแยกสามารถปรับปรุงการยิงแห้งน้ำหนักของถั่วเหลืองภายในพม่าเกี่ยวกับ50-56% มากกว่าที่ควบคุม uninoculated ภายใต้สภาพห้องควบคุมด้วยใส่ทรายและฟรี N ธาตุอาหารโซลูชัน (เส ข้อมูลประกาศ) จากเบื้องต้นศึกษาของ MA และ MB ราก nodule แบคทีเรียล โคโลนีเดี่ยวของ MAและสามารถสังเกตแยก MB หลังจาก streaking ในยีสต์ manitol คองโกแดงagar ห้าวัน พวกเขาได้ดูดซับสีย้อมสีแดงคองโก และพบอาณานิคมทั่วไปสัณฐานวิทยาของแบคทีเรีย nodule ราก บน YMA Bromothymol สีย้อม สีเหล่านี้แยกที่สองการเปลี่ยนแปลงเล็กน้อยสีของสื่อประเภทนี้จากสีเขียวเป็นสีน้ำเงิน ทั้งสองอย่างพวกเขา มีร็อดรูป และถูกแบคทีเรียลบกรัม ตาม Vincent(1972) MA และ MB สามารถระบุเป็นแบคทีเรียแยกได้ในพืชสกุลBradyrhizobiaอย่างไรก็ตาม ในการศึกษานี้ รหัสสองเหล่านี้แยกเป็นพันธุ์ หรือสายพันธุ์ไม่ได้เนื่องจากรายละเอียดผลิต IAA หรือความแตกต่างของสภาวะหรือจำเป็นต้องมีข้อมูลเกี่ยวกับพันธุศาสตร์ของพวกเขาที่ถูก inoculated ในนี้ขอบเขตของงานวิจัยนี้ เหล่านี้สอง Bradyrhizobial แยกทดสอบสำหรับการinfectiveness และประสิทธิผลกับดักโฮสต์เดียวของถั่วเหลืองภายใต้ควบคุมห้องสภาพใส่ทรายและโซลูชันธาตุอาหาร N-ฟรี (Somasegaran และHoben, 1994) ภายใต้เงื่อนไขดังกล่าวทดสอบ ม้าและ MB Bradyrhizobialแยกสามารถปรับปรุงการยิงแห้งน้ำหนักของโฮสต์ทดสอบถั่วเหลืองพม่าท้องถิ่นประมาณ 50-56% ที่ควบคุม uninoculated ในหนึ่งเดือนหลังจาก inoculation มากกว่าActinomycetes endophytic เลือกระบุเป็น Streptomyces sp. และทดสอบก่อนหน้านี้เป็น endophyte มีประสิทธิภาพที่สามารถเข้ากันได้กับต้องใช้จาก 110 ของ Bradyrhizobium สำหรับถั่วเหลืองไทยโดยไม่มีรายละเอียดอย่างใดอย่างหนึ่งต่าง ๆ (Thapanapongworakul, 2003)EA และ Bradyrhizobial แยกปลูกถูกแม่ห้าม agar 2 (IMA2) และยีสต์ mannitol ซุป ตามลำดับ หลังจากความหนาแน่นสูงสุดของ myceliaได้รับระงับ Bradyrhizobium ละเอหรือเซลล์ (> 109 cfu / ml),วัฒนธรรมสดสภาพคล่องของแต่ละ microbe ถูก inoculated กับเมล็ดของถั่วเหลืองแต่ละต่าง ๆ เปลือกงอกในถาดพลาสติกแหล่ง พรุตะไคร่ฆ่าเชื้อพื้นผิวใช้ ที่อัตรา inoculation cfu 106 เมล็ดสำหรับ EA และ bradyrhizobial แยกได้ สิบวันหลังจากการงอกของเมล็ด กล้าไม้ถั่วเหลืองสำหรับการรักษาทั้งหมดถูก transplantedลงในดินโดยใช้พืชสามต่อหม้อกับ 10 กก.ของดินมีสามชุดหม้อรักษาเสร็จสมบูรณ์และระยะหนึ่งชุดสำหรับฤดูเก็บเกี่ยวที่ระยะ V6, R3.5 และวันครบกำหนด น้ำประปาธรรมดาใช้สำหรับการชลประทานเมื่อวันผ่านฤดูกาลเติบโต Nodule ที่แห้งน้ำหนัก น้ำหนักแห้งของราก และน้ำหนักแห้งยิงในระยะเจริญเติบโตของ V6 และ R3.5ดัชนี ureide สัมพันธ์ (รุย) ของรากเลือดซับและดูดธาตุอาหาร N รวมของยิงที่ระยะ R3.5 เปอร์เซ็นต์ (Herridge และคน 2002) และจำนวน N ที่มาจากปฏิกิริยาการตรึง N2 ตลอดการเจริญเติบโตช่วงฤดูและผลผลิตถูกเก็บรวบรวมและวิเคราะห์ทางสถิติ โดยทดสอบตัวอย่างรากมีเลือดออก sap ได้วิเคราะห์สำหรับอะมิโน N (Yemm และทำอาหาร 1955), NO3-N (Cataldo et al., 1975) และ ureide-N (Young และ Conwayปี 1942) มีวิเคราะห์เนื้อหา N รวมตัวอย่างพืช โดยวิธีแนะนำโดย Novozamsky et al. (1974)มีคำนวณตามดัชนี ureide สัมพันธ์ (รุย) ของรากเลือดซับการชนและ al. (1988)ดัชนี ureide สัมพัทธ์ (%) = 4 x ureide * x 100 (4 x ureide * กรดอะมิโน * + ไนเตรต *)หมายเหตุ: (* =โมล)เปอร์เซ็นต์ของ N คงที่ตลอดทั้งฤดูกาลเจริญเติบโตของถั่วเหลืองได้ตามสมการที่เสนอ โดย Herridge และกลุ่มชน (2002)y = x 4.8 + 0.83 (ในช่วงฝักบรรจุขั้นบนเวที R3.5);ที่: y =ดัชนี ureide สัมพัทธ์ (%) x =ไนโตรเจนจากอากาศ (%)รวมสะสม N หรือ N การดูดซับของการถ่ายภาพไม่ได้ตามสูตรนี้

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

สามหม้อทดลองกลางแจ้งที่คณะเกษตรศาสตร์มหาวิทยาลัยเชียงใหม่ประเทศไทยในช่วงเดือนพฤศจิกายน 2008 ถึงเดือนมีนาคม 2009 ดินที่เก็บมาจากแม่เหียะวิจัยและศูนย์ฝึกอบรมคณะเกษตรศาสตร์มหาวิทยาลัยเชียงใหม่ได้รับการฆ่าเชื้อโดยการนึ่งฆ่าเชื้อที่125 องศาเซลเซียส 1 ชั่วโมงก่อนที่จะใช้สำหรับการเพาะปลูกถั่วเหลืองเพื่อลดประชากรพื้นเมืองของปมรากแบคทีเรียในดิน ดินเบามีค่า pH 7.6 55 mg / kg ของ NH4 + N 15 มิลลิกรัม / กิโลกรัมของ NO3 - N, 40 mg / kg ของฟอสฟอรัส 87 มิลลิกรัม / กิโลกรัมของ K แลกเปลี่ยน, 1,447 มก. / กก. ของ Ca แลกเปลี่ยนและ 101 มิลลิกรัม / กิโลกรัมของ Mg แลกเปลี่ยน หนึ่งในสามคนนี้แนะนำพันธุ์ถั่วเหลืองจากประเทศพม่า (Hinthada) ประเทศไทย (SJ 5) และกัมพูชา(DT 84) ได้รับการปลูกในกระถางแต่ละสมบูรณ์แบบสุ่มโดยใช้การออกแบบบล็อก(RCB) 3 ซ้ำและ 6 การรักษา มีสามพืชต่อกระถางที่มี 10 กิโลกรัมของดินผ่านการฆ่าเชื้อ การรักษาความหลากหลายในแต่ละถั่วเหลืองมีการรักษาควบคุม uninoculated, การฉีดวัคซีนเดียวกับที่เลือกเอนโดไฟท์ actinomycetes (EA) สองการรักษาเชื้อเดียวกับซาชูเซตส์และ MB พื้นเมืองBradyrhizobial แยกจากดินพม่าและสองการรักษาเชื้อคู่กับอีเอ+ ซาชูเซตส์และอี + MB แมสซาชูเซตและ MB แยกได้จากก้อนพม่าเจ้าภาพดักถั่วเหลืองที่ปลูกในตัวอย่างดินที่เก็บมาจากพื้นที่เพาะปลูกถั่วเหลืองในพุกามกลางพม่า โฮสต์ดักถั่วเหลืองนี่คือความหลากหลายในท้องถิ่นมาใช้โดยเจ้าของสนามที่ปลูกถั่วเหลืองที่เลือก ทั้งสอง Bradyrhizobial พื้นเมืองสายพันธุ์สามารถปรับปรุงการถ่ายน้ำหนักแห้งของถั่วเหลืองพันธุ์พม่าในท้องถิ่นเกี่ยวกับ50-56% ในช่วงของการควบคุม uninoculated ภายใต้เงื่อนไขที่ห้องควบคุมด้วยทรายผ่านการฆ่าเชื้อและสารละลายธาตุอาหารN-ฟรี (Soe ข้อมูลที่ไม่ถูกเผยแพร่) เบื้องต้นจากการศึกษาปริญญาโทและปมราก MB แบคทีเรียอาณานิคมเดียวของแมสซาชูเซตและMB แยกจะเห็นหลังจากที่พุ่งในยีสต์ manitol คองโกแดงวุ้นเป็นเวลาห้าวัน พวกเขาไม่ได้ดูดซับสีย้อมสีแดงคองโกอาณานิคมและแสดงให้เห็นโดยทั่วไปลักษณะทางสัณฐานวิทยาของเชื้อแบคทีเรียที่ปมราก ใน YMA กับสีย้อมสีฟ้า Bromothymol เหล่านี้สองสายพันธุ์การเปลี่ยนแปลงเล็กน้อยสีของกลางนี้จากสีเขียวเป็นสีฟ้า ทั้งสองของพวกเขาได้รูปแท่งและแบคทีเรียแกรมเชิงลบ ตามที่วินเซนต์(1972) ทั้งแมสซาชูเซตและ MB จะได้รับการระบุว่าเป็นแบคทีเรียในสกุลBradyrhizobia. อย่างไรก็ตามในการศึกษาครั้งนี้ประจำตัวประชาชนของทั้งสองแยกออกเป็นชนิดหรือสายพันธุ์ที่เป็นไปไม่ได้เพราะรายละเอียดในการผลิต IAA หรือความแตกต่างทางภูมิคุ้มกันหรือข้อมูลเกี่ยวกับพันธุศาสตร์ของพวกเขาจะต้องซึ่งไม่ได้เชื้อในขอบเขตของการวิจัยนี้ ทั้งสองสายพันธุ์ Bradyrhizobial ได้รับการตรวจของพวกเขาinfectiveness และประสิทธิผลกับโฮสต์ดักถั่วเหลืองเดียวกันภายใต้การควบคุมสภาพห้องที่มีหาดทรายที่ผ่านการฆ่าเชื้อและสารละลายธาตุอาหารN-ฟรี (Somasegaran และHoben, 1994) ภายใต้เงื่อนไขการทดสอบดังกล่าวทั้งในแมสซาชูเซตและ MB Bradyrhizobial แยกสามารถปรับปรุงยิงน้ำหนักแห้งของถั่วเหลืองพม่าในท้องถิ่นเป็นเจ้าภาพการทดสอบเกี่ยวกับ 50-56% ในช่วงของการควบคุม uninoculated ที่หนึ่งเดือนหลังจากฉีดวัคซีน. ที่เลือก actinomycetes เอนโดไฟท์ที่ถูกระบุว่า Streptomyces SP และได้รับการทดสอบก่อนหน้านี้เป็น endophyte ที่มีประสิทธิภาพที่สามารถเข้ากันได้กับ USDA 110 สายพันธุ์ของ Bradyrhizobium สำหรับหนึ่งในถั่วเหลืองไทยโดยไม่มีรายละเอียดของความหลากหลาย(Thapanapongworakul, 2003). อีเอและไอโซเลท Bradyrhizobial ปลูกในอาหารเลี้ยงเชื้อเชื้อรายับยั้ง 2 (IMA 2) และยีสต์ น้ำซุปแมนนิทอลตามลำดับ หลังจากที่มีความหนาแน่นสูงสุดของเส้นใยของอีเอหรือเซลล์แขวนลอยของ Bradyrhizobium แต่ละที่ได้รับ (> 109 cfu / ml) วัฒนธรรมของเหลวใหม่ของจุลินทรีย์แต่ละเชื้อเมล็ดของแต่ละถั่วเหลืองหลากหลายงอกในถาดต้นกล้าพลาสติกใช้พรุตะไคร่น้ำหมันพื้นผิว อัตราการฉีดวัคซีนเป็น 106 cfu / เมล็ดพันธุ์สำหรับทั้งอีเอและไอโซเลท bradyrhizobial สิบวันหลังจากงอกของเมล็ดต้นกล้าถั่วเหลืองสำหรับการรักษาทั้งหมดถูกปลูกลงในดินโดยใช้สามพืชต่อหม้อที่มี10 กิโลกรัมของดิน. มีสามชุดของหม้อกับการรักษาที่สมบูรณ์และซ้ำได้หนึ่งชุดสำหรับการเก็บเกี่ยวแต่ละ V6, R3.5 และขั้นตอนการครบกําหนด น้ำประปาธรรมดาถูกนำมาใช้เพื่อการชลประทานวันละครั้งตลอดฤดูปลูก ก้อนแห้งน้ำหนักรากน้ำหนักแห้งและยิงน้ำหนักแห้งที่ V6 และ R3.5 ระยะการเจริญเติบโต, ดัชนี ureide ญาติ (RUI) น้ำเลี้ยงรากเลือดออกและการดูดซึมไนโตรเจนทั้งหมดของการถ่ายที่เวทีR3.5 ร้อยละ (Herridge และประชาชน, 2002) และจำนวนเงินที่ไม่มีที่ได้มาจากการตรึงN2 ตลอดฤดูปลูกและผลผลิตเมล็ดพันธุ์ที่ถูกเก็บรวบรวมและวิเคราะห์ทางสถิติโดยF-ทดสอบ. ตัวอย่างนมเลือดออกรากวิเคราะห์สำหรับอะมิโน-N (Yemm และการทำอาหาร, 1955), NO3 - N (Cataldo et al., 1975) และ ureide-N (หนุ่มและคอนเวย์, 1942) รวมเนื้อหาไม่มีตัวอย่างพืชที่นำมาวิเคราะห์โดยวิธีการที่แนะนำโดย Novozamsky et al, (1974). ดัชนี ureide สัมพัทธ์ (RUI) ของนมเลือดออกรากที่คำนวณได้ตามเพื่อประชาชนet al, . (1988) ดัชนี ureide สัมพัทธ์ (%) = 4 x ureide * x 100 (4 x ureide * + กรดอะมิโน * + ไนเตรต *) หมายเหตุ: (* = ตุ่น) ร้อยละของยังไม่มีคงที่ตลอดฤดูปลูกถั่วเหลืองได้รับการคำนวณโดยสมการที่เสนอโดย Herridge และประชาชน (2002). Y = 4.8 + 0.83 เท่า (ในขั้นตอนการบรรจุฝักต้นบนเวที R3.5); ที่: Y = ดัชนี ureide ญาติ (%) x = ไนโตรเจนจากอากาศมา (%) ไม่มีการสะสมรวมหรือการดูดซึมไม่มีของการถ่ายที่คำนวณตามสูตรนี้

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

สามหม้อการทดลองกลางแจ้ง
คณะเกษตรศาสตร์ มหาวิทยาลัยเชียงใหม่ ในช่วงเดือนพฤศจิกายน 2551 ถึงมีนาคม 2552 ดิน
เก็บจากแม่และศูนย์ฝึกอบรมวิจัยแม่เหียะ คณะเกษตรศาสตร์ มหาวิทยาลัยเชียงใหม่ ได้ฆ่าเชื้อ
โดยอัตราส่วนโฟกัส 125 ° C เป็นเวลา 1 ชั่วโมงก่อน
ใช้สำหรับการเพาะปลูกถั่วเหลืองเพื่อลดประชากรพื้นเมืองของ
ปมรากแบคทีเรียในดิน ดินสังเคราะห์มี pH 7.6 55 มก. / กก. NH4
n 15 mg / kg ของ
3
-
n 40 มก. / กก. ฟอสฟอรัส , 87 มก. / กก. ของ exchangeable K เป็นมิลลิกรัม / กิโลกรัม -
CA และ 101 มิลลิกรัม / กิโลกรัม ของ มก. ที่แลกเปลี่ยน . หนึ่งในสาม
แนะนำพันธุ์ถั่วเหลืองจากพม่า ( hinthada ) , ประเทศไทย ( SJ
5 ) และกัมพูชา ( DT 84 ) ปลูกในกระถางแต่ละการทดลองใช้แผนการทดลองแบบ Randomized Complete
ออกแบบบล็อก ( RCB ) มี 3 ซ้ำ 6 ตำรับ มีสามพืช
/ กระถางดิน บรรจุ 10 กิโลกรัม เป็นหมัน การรักษาสำหรับแต่ละพันธุ์มีการควบคุมการรักษาถั่วเหลือง

เดียวการเลือกราแอคติโนมัย ( EA ) สองเดียว หัวเชื้อรักษากับแม่และ MB , พื้นเมือง
bradyrhizobial ที่แยกได้จากดิน และสองคู่ หัวเชื้อรักษา
พม่ากับแม่เอและเอ MB มา และบางครั้งที่แยกได้จากปมของถั่วเหลืองที่ปลูกในพม่า
กับดักโฮสการเก็บตัวอย่างดินจากพื้นที่ปลูกถั่วเหลือง
กลางในพุกาม , พม่า กับดักนี้ถั่วเหลืองยังเป็นท้องถิ่นต่าง ๆที่ใช้โดย
เจ้าของพื้นที่เพาะปลูกถั่วเหลืองที่เลือก . สองคนพื้นเมือง bradyrhizobial
ไอโซเลทสามารถปรับปรุงยิงน้ำหนักแห้งของถั่วเหลืองพันธุ์เกี่ยวกับ
พม่าท้องถิ่น50-56 % มากกว่าที่ควบคุมการควบคุมสภาพห้องพักกับ
ทรายปลอดเชื้อและสารละลายธาตุอาหาร n-free ( โซ เผยแพร่ข้อมูล จากการศึกษาเบื้องต้น
มาบางครั้งรากปมและแบคทีเรียสายพันธุ์เดี่ยวอาณานิคมมา
และ MB ไอโซเลท สามารถสังเกตได้หลังจาก streaking ยีสต์มานิตอลคองโกเรด
วุ้น 5 วัน พวกเขาไม่ได้ซึมซับคองโกสีแดงสีและพบ
อาณานิคมทั่วไปสัณฐานวิทยาของแบคทีเรียปมราก ใน yma กับอิฐทนไฟสีเหล่านี้
2 ไอโซเลทเล็กน้อยสีปานกลางนี้ เปลี่ยนจากสีเขียวเป็นสีฟ้า ทั้งสองของพวกเขามีแท่ง
รูปและเป็นแบคทีเรียแกรมลบ ตามวินเซนต์
( 1972 ) ทั้ง MA และบางครั้งอาจจะระบุว่าเป็นเชื้อที่แยกได้ใน bradyrhizobia สกุล
.
แต่อย่างไรก็ตามในการศึกษานี้การจำแนกชนิดของทั้งสองสายพันธุ์เป็นสายพันธุ์หรือ
สายพันธุ์ไม่ได้เพราะรายละเอียดในการผลิต หรือ IAA ข้อมูลความแตกต่างทางพันธุกรรมของพวกเขา
หรือต้องการซึ่งไม่ใช่เชื้อใน
นี้ขอบเขตของการวิจัยนี้ ทั้งสอง bradyrhizobial สายพันธุ์ทดสอบของพวกเขา
infectiveness และประสิทธิผลกับเดียวกันกับดักถั่วเหลืองโฮสต์ที่ควบคุม
ห้องภาพด้วยทรายปลอดเชื้อและสารละลายธาตุอาหาร n-free ( somasegaran และ
โฮเบ็น , 1994 ) ภายใต้เงื่อนไขการทดสอบดังกล่าว ทั้งแม่และ MB bradyrhizobial
ไอโซเลทสามารถปรับปรุงยิงน้ำหนักแห้งของถั่วเหลืองทดสอบโฮสต์ท้องถิ่นพม่า
เกี่ยวกับ 50-56 % มากกว่าที่ควบคุมการในหนึ่งเดือนหลังจากปลูกเชื้อ รา
เลือกด้วยกัน ที่ถูกระบุว่าเป็น Streptomyces sp . และ
คือการทดสอบก่อนหน้านี้เป็น endophyte ที่มีประสิทธิภาพซึ่งสามารถเข้ากันได้กับ
USDA 110 ของถั่วเหลืองสายพันธุ์หนึ่งของถั่วเหลืองไทย โดยไม่มีรายละเอียดต่าง ๆ (
thapanapongworakul , 2003 ) .
EA และ bradyrhizobial สายพันธุ์ปลูกในยับยั้งแม่พิมพ์วุ้น 2 ( Ima
2 ) และยีสต์ mannitol broth ตามลำดับ หลังจากสูงสุดความหนาแน่นของเส้นใย
ของอีเอหรือเซลล์แขวนลอยของแต่ละกลุ่มที่ได้รับถั่วเหลือง ( > 109 CFU / ml ) ,
อาหารเหลวเป็นเชื้อจุลินทรีย์สดของแต่ละเมล็ดของถั่วเหลืองงอก
หลากหลายในแต่ละถาดต้นกล้าพลาสติกโดยใช้ปลอดเชื้อ พีทมอสที่ทนทาน
คะแนนการฉีดวัคซีนคือ 106 cfu / เมล็ดทั้ง EA และ bradyrhizobial เชื้อ สิบวัน
หลังจากการงอกของเมล็ดถั่วเหลืองที่ปลูกต้นกล้าทุกต้น
ลงในดิน ใช้สามต้นต่อกระถาง 10 กิโลกรัมของดิน .
มีหม้อด้วยการรักษาที่สมบูรณ์ และมี 3 ชุด ชุดหนึ่งสำหรับแต่ละเก็บเกี่ยว
ที่ V6 r3.5 และวุฒิภาวะ , เวที
น้ำประปาธรรมดาใช้น้ำวันละครั้งตลอดฤดูปลูก . น้ำหนักแห้งปม
,น้ำหนักแห้งของราก น้ำหนักแห้งและการยิงที่ระยะการเจริญเติบโต และ r3.5 V6
ดัชนีสูง , ญาติ ( รุย ) ของรากเลือด SAP และไนโตรเจนการยิงที่ระยะ
r3.5 ค่าร้อยละ ( herridge และประชาชน , 2002 ) และปริมาณไนโตรเจนที่ได้จากการตรึงไนโตรเจน
ตลอดฤดูปลูกและผลผลิตเมล็ดที่ได้รวบรวม
และ ทำการวิเคราะห์ข้อมูลทางสถิติโดย
Fรากเลือดตัวอย่าง SAP วิเคราะห์ amino-n ( yemm และ
ทำอาหาร , 1955 ) 3
-
n ( cataldo et al . , 1975 ) และ ureide-n ( หนุ่มและ Conway ,
1942 ) รวม ความของพืชที่วิเคราะห์โดยวิธี
แนะนำ novozamsky et al . ( 1974 )
ดัชนีสูงสัมพัทธ์ ( รุย ) ของรากเลือด SAP ได้คำนวณตาม
ประชาชน et al .
( 1988 )ดัชนีสูงสัมพัทธ์ ( % ) = 4 x สูง x 100 ( 4 X *
* กรดอะมิโนไนเตรทสูง * * หมายเหตุ : ( * )

= ตุ่น ) ร้อยละคงที่ N ตลอดฤดูปลูกของถั่วเหลือง
คำนวณโดยสมการที่เสนอโดยประชาชน และ herridge ( 2545 ) .
y = 4.8 ของ ( ในช่วงแรกฝักเต็มเวที บนเวที r3.5 ) ;
: Y = ดัชนีสูงสัมพัทธ์ ( % )
x = ไนโตรเจนที่ได้จากอากาศ (
% )มีไนโตรเจนสะสมหรือไนโตรเจนของยิงถูกคำนวณตาม
กับสูตรนี้