At the end of the feeding trial, al

At the end of the feeding trial, all the fish in each tank were bulk-weighed and counted for the calculation of growth parameters and survival. Blood samples were collected from individual fish, and each sample was analyzed separately. Three fish per tank (nine fish
per dietary treatment) were randomly captured, and anesthetized with 2-phenoxyethanol solution (200 mg L−1) and blood samples were taken from the caudal vein with heparinized syringes for determination of hematocrit and hemoglobin concentration, and respiratory burst activity. After the above-mentioned measurements with whole blood, plasma was separated by centrifugation at 5000 ×g for 10 min and stored at −70 °C for the determination of total immunoglobulin
(Ig), glucose, total protein, total cholesterol and triglyceride levels.
Another set of blood samples was taken (three fish per tank, nine fish
per dietary treatment) without heparin and allowed to clot at room
temperature for 30 min. Then, the serum was separated by centrifugation
for 10 min at 5000 ×g and stored at −70 °C for the analysis of
innate immune response including lysozyme, superoxide dismutase
(SOD), myeloperoxidase (MPO) and antiprotease activities. Hematocrit
was determined by a microhematocrit technique (Brown, 1980).
Hemoglobin and plasma levels of glucose, total protein, total cholesterol
and triglyceride were determined by using an automated blood analyzer
(SLIM; SEAC Inc., Florence, Italy).

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

เมื่อสิ้นสุดการทดลองให้อาหาร ปลาทั้งหมดในแต่ละถังมี น้ำหนักจำนวนมาก และนับสำหรับการคำนวณพารามิเตอร์การเจริญเติบโตและอยู่รอด ตัวอย่างเลือดที่เก็บจากปลาแต่ละตัว และมีวิเคราะห์ตัวอย่างแต่ละแยกต่างหาก ปลาสามต่อถัง (เก้าปลาต่ออาหารรักษา) ได้สุ่มจับ และด้วยกับ 2 phenoxyethanol โซลูชัน (200 มิลลิกรัม L−1) และตัวอย่างเลือดที่ได้มาจากหลอดเลือดดำ caudal ด้วยเข็มฉีดยา heparinized สำหรับการกำหนดความเข้มข้นฮีโมโกลบินและ hematocrit และกิจกรรมระเบิดทางเดินหายใจ หลังจากการประเมินดังกล่าวมีทั้งเลือด พลาสม่าถูกคั่น ด้วย centrifugation ที่ 5000 × g สำหรับ 10 นาที และเก็บไว้ที่ −70 ° C สำหรับความมุ่งมั่นของ immunoglobulin ทั้งหมด(Ig), น้ำตาลกลูโคส โปรตีนรวม รวมไขมัน และระดับไตรกลีเซอไรด์ชุดอื่นอย่างเลือดกระ (ปลาสามต่อถัง ปลาเก้าต่ออาหารบำบัด) โดยเฮพาริน และอนุญาตให้ clot ห้องอุณหภูมิสำหรับ 30 นาที เซรั่มถูกแยกออก โดย centrifugation แล้วใน 10 นาทีที่ 5000 × g และเก็บไว้ที่ −70 ° C สำหรับการวิเคราะห์ของการตอบสนองภูมิคุ้มกันโดยธรรมชาติรวมทั้ง lysozyme ซูเปอร์ออกไซด์ dismutase(สด), myeloperoxidase (MPO) และกิจกรรม antiprotease Hematocritถูกกำหนด โดยเทคนิค microhematocrit (สีน้ำตาล 1980)ระดับฮีโมโกลบินและพลาสมากลูโคส โปรตีนรวม ไขมันทั้งหมดและไตรกลีเซอไรด์ถูกกำหนดโดยการวิเคราะห์เลือดอัตโนมัติ(SLIM; SEAC Inc., Florence, Italy).

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ในตอนท้ายของการให้ทดลองทั้งหมดปลาในแต่ละถังมีขนาดใหญ่หนักและนับสำหรับการคำนวณค่าพารามิเตอร์การเติบโตและอยู่รอด การเก็บตัวอย่างเลือดจากปลาของแต่ละบุคคลและแต่ละตัวอย่างวิเคราะห์แยกต่างหาก ปลา 3 บาทต่อถัง ( เก้าปลา
ต่อการทดลอง ) สุ่มจับแล้ววางยาสลบด้วย 2-phenoxyethanol โซลูชั่น ( 200 mg L − 1 ) และตัวอย่างเลือดที่นำมาจากหลอดเลือดดำระดับกลุ่มเข็มฉีดยาสำหรับการหาปริมาณฮีโมโกลบินและฮีมาโตคริต และกิจกรรมออกมาหายใจ หลังจากวัดดังกล่าวกับเลือดทั้งหมดระดับน้ำแยกโดยการเหวี่ยงแยกที่ 5 × G 10 นาทีและอุณหภูมิ− 70 °องศาเซลเซียสการหา
อิมมูโนโกลบูลิน ( IG ) กลูโคส โปรตีนรวม คอเลสเตอรอลรวม และระดับไตรกลีเซอไรด์
อีกชุดของตัวอย่างเลือดถูกจับ ( ปลา 3 บาทต่อถัง เก้าปลา
ต่อการทดลอง ) โดยไม่ต้องหนัก และได้รับอนุญาตให้แข็งตัวที่อุณหภูมิห้อง
เป็นเวลา 30 นาที จากนั้นเซรั่มแยกโดยการเหวี่ยงแยก
10 นาทีที่ 5 ×กรัม และ 70 องศา C อุณหภูมิ−สำหรับการวิเคราะห์การตอบสนองภูมิคุ้มกันโดยกำเนิดรวมถึงไลโซไซม์
,
Superoxide Dismutase ( SOD ) , myeloperoxidase ( สักนิด ) และกิจกรรม antiprotease . ฮีมา
ถูกกำหนดโดยเทคนิค microhematocrit ( สีน้ำตาล , 1980 ) .
ฮีโมโกลบินและระดับพลาสมากลูโคส โปรตีนรวม
คอเลสเตอรอลรวมไตรกลีเซอร์ไรด์ และวิเคราะห์โดยใช้เครื่องวิเคราะห์อัตโนมัติเลือด
( บาง ; SEAC อิงค์ , ฟลอเรนซ์ , อิตาลี )