2.5. Disease incidenceThe plants we

2.5. Disease incidence
The plants were monitored weekly after treatments were
applied by recording the expression of disease or damage symptoms to assess disease incidence. Plant with chlorotic, necrotic,
curling, mottling, stunting or bunching symptom was considered
as diseases infection. The proportion of infected plants per plot
was calculated and expressed as a percentage of disease incidence
(Galanihe et al., 2004).
2.6. Relative chlorophyll content and chlorophyll fluorescence
Relative chlorophyll content was measured on the upper most
fully expanded leaves of the four individual plants per treatment
at 20, 40, 60, 80 and 100 DAT using chlorophyll meter (SPAD 502,
MINOLTA
TM Camera Ltd., Japan). The measurement of fast chlorophyll fluorescence was taken on the upper surface of the latest
fully expanded leaves from four individual plants per treatments at
09:00–10:00 h, which was used for primary photochemistry detection. Prior to fluorescence measurements, a circular surface of the
upper face was dark-adapted for 30min using dark clips, hence the
induction curve (Fv/Fm ratio) was then estimated by a Plant Effi-
ciency Analyzer (Handy PEA, Hansatech Ltd King’s Lynn, Norfolk,
England) with 600Wm−2
of red (630) light intensity (excitation
intensity). Fv/Fm provides an estimation of the maximum photochemical efficiency or quantum yield of photosystem II (PSII)
(Ouzounidou et al., 2010).
2.7. Leaf photosynthetic rate
An open-path portable photosynthesis system (Li-6400XT, LICOR, Lincoln, Nebraska-USA) was used to determine the net
photosynthetic rate (molm−2
s−1
) per unitleaf area. Three uppermost fully expanded young leaves of the five individual plants per
treatment were randomly chosen and measured at midday (10–11
AM). The data were taken at 20, 40, 60, 80 and 100 DAT.
2.8. Statistical analysis
An analysis of variance was performed using the SAS software
(SAS, 2009). Duncan Multiple Range Test (DMRT) at P ≤ 0.05 was
used to test differences between the treatments.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.5. โรคอุบัติการณ์พืชถูกตรวจสอบทุกสัปดาห์หลังจากรักษาใช้ โดยการบันทึกการแสดงออกของอาการโรคหรือความเสียหายเพื่อประเมินอุบัติการณ์ของโรค พืชกับแคนตาลูป necroticคนแคระ ดัดผม รอยจุดหรืออาการรวบถือเป็นโรคติดเชื้อ สัดส่วนของพืชที่ติดเชื้อต่อพล็อตคำนวณ และแสดงเป็นเปอร์เซ็นต์ของอัตราการเกิดโรค(Galanihe et al. 2004)2.6. เนื้อหาญาติคลอโรฟิลและคลอโรฟิล fluorescenceคลอโรฟิลที่สัมพันธ์เนื้อหาโดยวัดเป็นส่วนใหญ่ด้านบนขยายเต็มใบของพืชแต่ละสี่ต่อการรักษาที่ใช้คลอโรฟิล DAT 20, 40, 60, 80 และ 100 เมตร (502 ค่ามินอลต้าTM กล้องจำกัด ญี่ปุ่น) วัด fluorescence คลอโรฟิลล์รวดเร็วถ่ายบนผิวบนของล่าสุดขยายเต็มใบจากพืชแต่ละสี่ต่อทรีทเมนท์09:00 – 10:00 h ซึ่งถูกใช้สำหรับการตรวจสอบเคมีแสงหลัก ก่อนการวัด fluorescence พื้นผิวของวงกลมใบหน้าส่วนบนคือ dark-adapted สำหรับ 30 นาทีใช้เข้มคลิป ดังนั้นการแล้วประมาณโค้งเหนี่ยวนำ (อัตราส่วน Fv/Fm) โดยโรงงาน Effi-อำนาจตัดสินใจวิเคราะห์ (มีประโยชน์ถั่ว Hansatech Ltd King's Lynn โฟล์คอังกฤษ) กับ 600Wm−2ของความเข้มแสงสีแดง (630) (กระตุ้นความรุนแรง) การประมาณผลผลิตสูงสุด photochemical efficiency หรือควอนตัมของ photosystem II (PSII) ให้ Fv/Fm(Ouzounidou et al. 2010)2.7. ใบอัตราสังเคราะห์แสงระบบการสังเคราะห์แสงแบบพกพาเปิดเส้นทาง (Li 6400XT, LICOR ลินคอล์น เนบราสกาประเทศสหรัฐอเมริกา) ถูกใช้เพื่อกำหนดสุทธิอัตราการสังเคราะห์แสง (molm−2s−1) ต่อพื้นที่ unitleaf สามบนสุดขยายเต็มใบอ่อนของพืชแต่ละด้านต่อรักษาโดยการสุ่มเลือก และวัดเที่ยง (10-11ตัวนี้ ถ่ายข้อมูลที่ซิงค์ข้อมูลและสาย 20, 40, 60, 80 และ 1002.8. สถิติวิเคราะห์ทำการวิเคราะห์ความแปรปรวนโดยใช้ซอฟต์แวร์ SAS(SAS, 2009) คือดันแคนหลายช่วงทดสอบ (DMRT) ที่ P ≤ 0.05ใช้ในการทดสอบความแตกต่างระหว่างการรักษา