Young leaf bases and leaf blades of

Young leaf bases and leaf blades of D. muscipula were used as
explants. Explants were surface sterilized by soaking with 70%
alcohol for 1 min and soaked with 10% Clorox (NaOCl) for 10 min,
followed by 5% clorox and washed with sterilized distilled water 3
times to remove the Clorox. They were cultured on 1/2 MS
(Murashige and Skoog, 1962) supplemented with 0, 0.1, 0.2, 0.5, or
1.0 mg/l BA and 3% sucrose, 0.25% gelrite at pH 5.7, which had
been autoclaved at 121o
C for 20 min. The cultures were
maintained at 25 ± 2°C under 16-h photoperiod with illumination
provided by cool fluorescent lamps at an intensity of 60 µmol m-2 s-1
(TLD 36 w/853350 lm Phillips Thailand). These cultures were
maintained in a proliferating state by subculturing every three
weeks into the same medium 4 times. Callus formation was found
at the edge of explants in ½ MS after culturing for four weeks.
A bunch of young leaf bases and leaf blades, about 0.5 cm in
height (4-5 leaf bases and leaf blades) were soaked in various
concentrations (0, 5, 10, 15 and 20 mg/l) of colchicine for 24, 48
and 72 h. Young leaf bases and leaf blades soaked in combinations
of different concentrations of colchicine and incubated for different
times were then cultured in 1/2MS medium and subcultured every 3
weeks 4 times. Percentage of leaf bases and leaf blades that
survived after culturing in 1/2MS were counted as shown in Table 3.
When these leaf bases and leaf blades were cultured longer, it was
found that shoots were proliferated and formed; their growth are
displayed in Table 4. Mutant characters from plantlets were
recorded when these

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ฐานใบอ่อนและใบมีดใบ D. muscipula ถูกนำมาใช้เป็น
ชิ้นส่วน ชิ้นถูกพื้นผิวที่ผ่านการฆ่าเชื้อโดยการแช่ด้วย 70%
เครื่องดื่มแอลกอฮอล์เป็นเวลา 1 นาทีและแช่ด้วย 10% Clorox (NaOCl) เป็นเวลา 10 นาที
ตามด้วย 5% Clorox และล้างด้วยน้ำกลั่นฆ่าเชื้อ 3
ครั้งเพื่อเอา ​​Clorox พวกเขาเลี้ยงบน 1/2 MS
(Murashige และ Skoog, 1962) เสริมด้วย 0, 0.1, 0.2, 0.5, หรือ
1.0 mg / l ปริญญาตรีและ 3% ซูโครส 0.25% gelrite ที่ pH 5.7 ซึ่งได้
รับการนึ่งฆ่าเชื้อที่ 121o
C สำหรับ 20 นาที วัฒนธรรมที่ถูก
เก็บรักษาไว้ที่ 25 ± 2 ° C ภายใต้แสง 16-H กับไฟส่องสว่าง
ให้โดยหลอดเย็นที่ระดับความเข้ม 60 ไมโครโมล M-2 S-1
(TLD 36 w ​​/ 853,350 LM ฟิลลิปประเทศไทย) วัฒนธรรมเหล่านี้ถูก
เก็บรักษาไว้ในสภาพที่ proliferating โดยถ่ายเชื้อทุกสาม
สัปดาห์ในสูตรเดิม 4 ครั้ง แคลลัสก่อตัวถูกพบ
ที่ขอบของชิ้นส่วนใน½ MS หลังจากเพาะเลี้ยงเป็นเวลาสี่สัปดาห์.
พวงของฐานใบอ่อนและใบมีดใบประมาณ 0.5 เซนติเมตร
ความสูง (4-5 ฐานใบและใบมีดใบ) ถูกนำมาแช่ในหลาย
ความเข้มข้น (0 , 5, 10, 15 และ 20 mg / l) ของโคลชิซิน 24, 48
และ 72 ชั่วโมง หนุ่มฐานใบและใบมีดใบแช่ในชุด
ของความเข้มข้นแตกต่างกันของโคลชิซินและบ่มเป็นเวลาที่แตกต่างกัน
ครั้งแล้วเพาะเลี้ยงในอาหาร / 2ms ที่ 1 และเลี้ยงทุก 3
สัปดาห์ที่ผ่านมา 4 ครั้ง ร้อยละของฐานใบและใบมีดใบที่
รอดชีวิตมาได้หลังจากที่เพาะเลี้ยงใน 1/2 มิลลิวินาทีนับดังแสดงในตารางที่ 3
เมื่อทั้งฐานใบและใบมีดใบเลี้ยงอีกต่อไปมันก็
พบว่ายอดถูกแพร่กระจายและรูปแบบ; การเจริญเติบโตของพวกเขาจะ
แสดงในตารางที่ 4 ตัวอักษรกลายพันธุ์จากต้นกล้าถูก
บันทึกเมื่อเหล่านี้

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ฐานใบอ่อนและใบดาบที่ถูกใช้เป็น muscipula dอาหาร . เติมสารฆ่าเชื้อที่ผิวได้โดยการแช่ด้วย 70%แอลกอฮอล์ 1 นาทีและแช่ด้วยน้ำยาคลอรีน 10% ( ไม่ระบุ ) เป็นเวลา 10 นาทีตามด้วย 5% และล้างด้วยน้ำกลั่นนึ่งฆ่าเชื้อต่างๆ 3เวลาลบต่างๆ . พวกเขาถูกเพาะเลี้ยงบนอาหารสูตร MS 1 / 2( อาหารสูตร Murashige and Skoog , 1962 ) ที่เติม 0 , 0.1 , 0.2 , 0.5 , หรือ1.0 มิลลิกรัมต่อลิตร BA และซูโครส 3 เปอร์เซ็นต์ 0.25% gelrite พีเอช 5.7 ซึ่งมีที่ถูกสังเคราะห์ 121oC เป็นเวลา 20 นาที วัฒนธรรมคือไว้ที่ 25 ° C ภายใต้แสง± 2 16-h กับรัศมีโดยหลอดเย็นที่ความเข้ม 60 µโมลด้วยที่สุด( วัดได้ 36 w / 853350 อิม ฟิลลิป ( ประเทศไทย ) วัฒนธรรมเหล่านี้รักษาใน proliferating รัฐโดยเลี้ยงทุกสามสัปดาห์ในเดียวกันกลาง 4 ครั้ง การสร้างแคลลัส พบว่าที่ขอบของการเจริญเติบโตใน½ MS หลังจากเพาะเลี้ยงเป็นเวลา 4 สัปดาห์พวงของฐานใบเล็กและใบใบ ประมาณ 0.5 เซนติเมตรความสูง ( 4-5 ใบ ฐานและใบ ) ใบถูกต่าง ๆความเข้มข้น 0 , 5 , 10 , 15 และ 20 มก. / ล. ) ของการใช้เป็นเวลา 24 , 4872 ชั่วโมง และใบอ่อน และใบฐานใบแช่ในชุดของระดับความเข้มข้นของโคลชิซินและ บ่มให้แตกต่างกันครั้ง แล้วเพาะเลี้ยงบนอาหารสูตร 1 / 2MS ขนาดกลางและ subcultured ทุก 3สัปดาห์ที่ 4 ครั้ง เปอร์เซ็นต์ของฐานใบและใบ ใบที่รอดชีวิตหลังจากเพาะเลี้ยงได้ใน 1 / 2MS ถูกนับ ดังแสดงในตารางที่ 3เมื่อนำใบและใบ ฐานใบ มันเลี้ยงอีกต่อไปพบว่า เกิดการขยายตัว และเกิดขึ้น ; การเจริญเติบโตของพวกเขาแสดงในตารางที่ 4 ที่กลายพันธุ์จากต้นเป็นอักขระบันทึกไว้เมื่อเหล่านี้