2.5. Determination of biochemical c

2.5. Determination of biochemical composition of biofloc
Biofloc samples for biochemical analysis were collected on a
fortnightly basis. Concentrated floc samples collected from each tank
using a floc separator were dried in an oven at 102°C until constant
weight and then preserved in a refrigerator. At the end of the
experiment, tank-wise pooled samples were ground and processed for
proximate analysis followingAOAC (1990). For ash contents, a known
amount of dry sample was burnt in a muffle furnace at 550 °C for 4 h
and the ash cooled and weighed. The crude protein content was
determined by the Kjeldahl method. Lipid content was determined
with Soxhlet apparatus. The energy content was determined by a
bomb calorimeter (Gallenkamp Autobomb). The C:N ratios were
determined using a CHN analyzer (Perkin Elmer 2400 Series II). Biofloc
samples for fatty acid analysis were collected at the end of the
experiment and freeze-dried. Fatty acid analysis was undertaken by a
modified direct methylation method (Christie, 2003) using an N-Evap
112 Liquid Gas Chromatograph (Organomation Associates Inc.).
2.6. Determination of fish welfare indicators
More than 50% of fish in each tank were sampled fortnightly,
anaesthetized and length and weight measured individually. These
fish were also checked for any skin or fin damage. At the end of the
experiment, one fish in each BFT treatment tank and two fish in each
RAS35 tanks were sacrificed, the 1st and second gills from one side
were removed and preserved in 10% buffered formalin. The samples
were then processed for histology. Unpreserved gills were examined
for parasites using a binocular microscope. Samples of skin mucus
were also checked under microscope.
At the end of the experiment, 10 fish were netted randomly from
each BFT35 and RAS35 tank. They were mildly anaesthetized with
benzocaine in a bucket, weighed and measured. Blood samples were
collected from the dorsal caudal aorta using heparinised syringes and
placed in microcentrifuge tubes. After blood sampling, fish were
individually tagged (internally) and recovered in another bucket with
clean water and air supply. Then they were transferred to another fish
tank within a RAS until they were blood sampled for second time after
1 h following the same procedure mentioned above.
Haematocrit (% packed red cell volume) was measured after
centrifuging sub-samples of whole blood collected the first time using
heparinised micro-haematocrit tubes for 5 min at 5000 g. The
remaining blood was centrifuged at 1200 g for 15 min and the plasma
was separated and stored at −70 °C. Concentrations of plasma cortisol
were determined using the radioimmunoassay described by Ellis et al.
(2004) with the modifications to the steroid extraction. Aliquots
(200 μl) of plasma were extracted with 1 ml ethyl acetate and after
thorough mixing and centrifugation (430 g for 10 min), 200 μl of
chilled (4 °C) supernatant were pipetted into duplicate polypropylene
tubes, which were evaporated to dryness under vacuum at 35 °C and
before cooling to 4 °C. Proximate composition and energy content of
fish were also compared. Ten randomly selected fish at stocking and
three fish in each tank at harvest were analyzed using the similar
methods described above for biofloc.
2.7. Statistical analysis
Water quality parameters were compared by two-way repeated
measures ANOVA with treatment (system type) as main factor and
sampling date as repeated measures factor (Gomez and Gomez, 1984).
The fish yield and blood parameters and biochemical composition of
floc and fish were compared using one-way ANOVA. If main effects
were significant, differences among the treatments were tested with
Tukey's multi-comparison test of means. The analyses were run at 5%
significance level using Statistica package.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.5 การกำหนดองค์ประกอบชีวเคมี bioflocBiofloc ตัวอย่างสำหรับการวิเคราะห์เชิงชีวเคมีถูกเก็บรวบรวมในการพื้นฐาน fortnightly ตัวอย่างเข้มข้น floc ที่รวบรวมจากแต่ละถังใช้แยก floc ถูกอบแห้งในเตาอบที่ 102° C จนคงน้ำหนัก และเก็บรักษาไว้ในตู้เย็น เมื่อสิ้นสุดการการทดลอง tank-wise ทางถูกพูอย่างถูกดิน และสำหรับการประมวลผลวิเคราะห์เคียง followingAOAC (1990) สำหรับเนื้อหาเถ้า รู้จักจำนวนตัวอย่างแห้งถูกเผาในการเตาเตาที่ 550 ° C สำหรับ 4 hและเถ้าหนัก และการระบายความร้อนด้วย เนื้อหาโปรตีนหยาบกำหนด โดยวิธี Kjeldahl กำหนดเนื้อหาของไขมันด้วยเครื่อง Soxhlet เนื้อหาพลังงานถูกกำหนดโดยการแคลอรีมิเตอร์ระเบิด (Gallenkamp Autobomb) มีอัตราส่วน C:Nกำหนดโดยใช้ตัววิเคราะห์ CHN (เพอร์เอลเมอ 2400 ชุด II) Bioflocตัวอย่างสำหรับการวิเคราะห์กรดไขมันถูกเก็บรวบรวมเมื่อสิ้นสุดการทดลอง และอบแห้ง ดำเนินการวิเคราะห์กรดไขมันโดยการปรับเปลี่ยนวิธีการปรับโดยตรง (คริสตี้ 2003) ใช้เป็น Evap N112 ของเหลวก๊าซ Chromatograph (Organomation สมาคม Inc.)2.6 การกำหนดตัวชี้วัดสวัสดิการของปลามากกว่า 50% ของปลาในแต่ละถังมีความ fortnightlyanaesthetized และความยาวและน้ำหนักวัดแต่ละ เหล่านี้ปลายังได้ตรวจสอบความเสียหายใด ๆ ผิวหรือหู เมื่อสิ้นสุดการการทดลอง ปลาหนึ่งในแต่ละถังบำบัด BFT และปลาทั้งสองในแต่ละถัง RAS35 ได้เสียสละ gills 1 และสองจากด้านใดด้านหนึ่งถูกเอาออก และเก็บรักษาไว้ใน 10% buffered formalin ตัวอย่างแล้วถูกประมวลผลสำหรับมิญชวิทยา Unpreserved gills ถูกตรวจสอบสำหรับปรสิตใช้กล้องจุลทรรศน์ส่องทางไกล ตัวอย่างของเมือกผิวหนังนอกจากนี้ยังได้ตรวจสอบภายใต้กล้องจุลทรรศน์เมื่อสิ้นสุดการทดลอง ปลา 10 ได้สุทธิได้จากแต่ละถัง BFT35 และ RAS35 พวกเขาถูก mildly anaesthetized ด้วยbenzocaine ในกลุ่ม ชั่งน้ำหนัก และวัด ตัวอย่างเลือดได้รวบรวมจาก aorta caudal dorsal ใช้เข็มฉีดยา heparinised และวางท่อ microcentrifuge หลังจากเก็บตัวอย่างเลือด ได้ปลาแต่ละแท็ก (ภายใน) และกู้คืนในกลุ่มอื่นด้วยน้ำสะอาดและอากาศจัด จากนั้น จะถูกโอนย้ายไปปลาอื่นถังภายในราจนกว่าพวกเลือดตัวอย่างครั้งที่สองหลังจากh 1 วิธีดำเนินการเดียวที่กล่าวถึงข้างต้นHaematocrit (%บรรจุปริมาตรเซลล์สีแดง) เป็นวัดหลังจากcentrifuging ย่อยตัวอย่างเลือดทั้งหมดรวบรวมใช้ครั้งแรกheparinised ท่อไมโคร haematocrit ใน 5 นาทีที่ 5000 กรัมเลือดที่เหลือถูก centrifuged ที่ 1200 g 15 นาทีและพลาสม่าถูกแยกออกจากกัน และเก็บไว้ที่ −70 องศาเซลเซียส ความเข้มข้นของ cortisol พลาสม่าได้กำหนดใช้ radioimmunoassay อธิบายโดย Ellis et al(2004) มีการปรับเปลี่ยนแยกสเตอรอยด์ Aliquots(200 μl) ของพลาสมาถูกสกัด ด้วย 1 ml เอทิล acetate และหลังผสมอย่างละเอียด และ centrifugation (430 กรัมสำหรับ 10 นาที) μl 200 ของsupernatant เย็น (4 ° C) มี pipetted เป็นการผลิตซ้ำหลอด ซึ่งได้หายไปกับความแห้งกร้านภายใต้สุญญากาศที่ 35 ° C และก่อนที่จะระบายความร้อนถึง 4 องศาเซลเซียส เนื้อหาองค์ประกอบและพลังงานของเคียงปลายังมีการเปรียบเทียบ สิบสุ่มเลือกปลาที่มิติ และปลาสามในแต่ละถังที่เก็บเกี่ยวได้วิเคราะห์โดยใช้คล้ายกันวิธีที่อธิบายข้างต้นสำหรับ biofloc2.7. สถิติวิเคราะห์คุณภาพน้ำพารามิเตอร์ถูกเทียบสองซ้ำวัดวิเคราะห์ความแปรปรวน ด้วยการรักษา (ระบบชนิด) เป็นปัจจัยหลัก และสุ่มตัวอย่างที่เป็นปัจจัยการประเมินซ้ำ (เมซและเมซ 1984)พารามิเตอร์การผลผลิตและเลือดปลาและองค์ประกอบชีวเคมีfloc และปลาถูกเปรียบเทียบโดยใช้การวิเคราะห์ความแปรปรวนแบบทางเดียว ถ้าผลหลักสำคัญ ทดสอบความแตกต่างระหว่างการรักษาด้วยการทดสอบเปรียบเทียบหลายของ Tukey หมายถึง วิเคราะห์ถูกเรียกใช้ที่ 5%ระดับนัยสำคัญที่ใช้แพคเกจ Statistica

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.5 ความมุ่งมั่นขององค์ประกอบทางชีวเคมีของ biofloc
ตัวอย่าง biofloc
สำหรับการวิเคราะห์ทางชีวเคมีที่ถูกเก็บบนพื้นฐานรายปักษ์ เข้มข้น floc
ตัวอย่างที่เก็บได้จากแต่ละถังใช้คั่นfloc แห้งในเตาอบที่ 102
องศาเซลเซียสจนคงน้ำหนักและเก็บรักษาไว้แล้วในตู้เย็น ในตอนท้ายของการทดสอบตัวอย่าง pooled ถังที่ชาญฉลาดเป็นพื้นดินและประมวลผลสำหรับการวิเคราะห์ใกล้เคียงfollowingAOAC (1990) สำหรับเนื้อหาเถ้าที่รู้จักกันจำนวนของตัวอย่างแห้งถูกไฟไหม้ในเตาเผาที่ 550 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 4 ชั่วโมงและเถ้าเย็นและชั่งน้ำหนัก เนื้อหาโปรตีนถูกกำหนดโดยวิธี Kjeldahl ไขมันที่ถูกกำหนดด้วยวิธีการสกัดแบบอุปกรณ์ ปริมาณพลังงานที่ได้รับการกำหนดโดยระเบิดความร้อน (Gallenkamp Autobomb) C: N อัตราส่วนที่ถูกกำหนดโดยใช้การวิเคราะห์CHN (Perkin Elmer 2400 Series II) biofloc ตัวอย่างสำหรับการวิเคราะห์กรดไขมันที่ถูกเก็บรวบรวมในตอนท้ายของการทดลองและแห้ง กรดไขมันที่วิเคราะห์ได้ดำเนินการโดยวิธีการแก้ไข methylation โดยตรง (คริสตี้, 2003) โดยใช้ Evap แบบ N-112 Liquid Chromatograph ก๊าซ (Organomation Associates Inc). 2.6 การกำหนดตัวชี้วัดสวัสดิการปลามากกว่า 50% ของปลาในแต่ละถังเก็บตัวอย่างปักษ์อสัญญีและระยะเวลาและน้ำหนักวัดรายบุคคล เหล่านี้ปลายังถูกตรวจสอบสำหรับผิวหรือความเสียหายครีบ ในตอนท้ายของการทดลองหนึ่งปลาในแต่ละถังบำบัด BFT กับปลาสองตัวในแต่ละถังRAS35 ถูกเสียสละที่ 1 และเหงือกที่สองจากด้านใดด้านหนึ่งถูกถอดออกและเก็บรักษาไว้ในบัฟเฟอร์ฟอร์มาลิน10% กลุ่มตัวอย่างที่ได้รับการประมวลผลแล้วสำหรับจุล เหงือก unpreserved ถูกตรวจสอบปรสิตใช้กล้องจุลทรรศน์กล้องสองตา ตัวอย่างของเมือกผิวได้รับการตรวจสอบยังภายใต้กล้องจุลทรรศน์. ในตอนท้ายของการทดลอง 10 ปลาตาข่ายสุ่มจากแต่ละBFT35 และถัง RAS35 พวกเขาได้รับอสัญญีอย่างอ่อนโยนด้วยbenzocaine ในถังชั่งน้ำหนักและวัด ตัวอย่างเลือดที่เก็บจากหลอดเลือดแดงใหญ่หางหลังโดยใช้เข็มฉีดยาที่มีสาร heparinised และวางไว้ในหลอดไมโคร หลังจากการเก็บตัวอย่างเลือดปลาที่ติดแท็กเป็นรายบุคคล (ภายใน) และการกู้คืนในถังอีกด้วยน้ำสะอาดและอากาศ แล้วพวกเขาก็ถูกย้ายไปปลาอีกถังภายใน RAS จนกว่าพวกเขาจะเลือดตัวอย่างสำหรับครั้งที่สองหลังจาก 1 ชั่วโมงต่อไปนี้ขั้นตอนเดียวกันดังกล่าวข้างต้น. ฮีมาโต (% บรรจุปริมาณเซลล์สีแดง) วัดหลังจากเหวี่ยงตัวอย่างย่อยของเลือดที่เก็บรวบรวมแรกเวลาที่ใช้สาร heparinised หลอดไมโครฮีเป็นเวลา 5 นาทีที่ 5,000 กรัม เลือดที่เหลือได้รับการหมุนเหวี่ยงที่ 1,200 กรัมเป็นเวลา 15 นาทีและพลาสม่าถูกแยกออกและเก็บไว้ที่อุณหภูมิ-70 องศาเซลเซียส ความเข้มข้นของคอร์ติซอพลาสม่าได้รับการพิจารณาโดยใช้ radioimmunoassay อธิบายโดยเอลลิส et al. (2004) มีการปรับเปลี่ยนเพื่อสกัดเตียรอยด์ aliquots (200 ไมโครลิตร) ของพลาสม่าถูกสกัดด้วย 1 มิลลิลิตรเอทิลอะซิเตและหลังการผสมอย่างละเอียดและการหมุนเหวี่ยง(430 กรัมเป็นเวลา 10 นาที) 200 ไมโครลิตรของแช่เย็น(4 ° C) ใสถูกปิเปตลงในโพรพิลีนที่ซ้ำกันท่อที่มีการระเหยความแห้งกร้านภายใต้สุญญากาศที่ 35 องศาเซลเซียสและก่อนที่จะระบายความร้อนถึง4 องศาเซลเซียส องค์ประกอบใกล้เคียงและเนื้อหาการใช้พลังงานของปลายังถูกนำมาเปรียบเทียบ สิบปลาที่สุ่มเลือกถุงน่องและสามปลาในถังที่เก็บเกี่ยวในแต่ละที่ได้มาวิเคราะห์โดยใช้คล้ายกับวิธีการที่อธิบายไว้ข้างต้นสำหรับbiofloc. 2.7 การวิเคราะห์ทางสถิติพารามิเตอร์ที่มีคุณภาพน้ำที่ได้มาเปรียบเทียบโดยสองทางซ้ำมาตรการANOVA กับการรักษา (ชนิดของระบบ) เป็นปัจจัยหลักและวันที่เก็บตัวอย่างเป็นซ้ำปัจจัยมาตรการ(โกเมซและโกเมซ, 1984). ผลผลิตปลาและพารามิเตอร์เลือดและองค์ประกอบทางชีวเคมีของfloc และ ปลาที่ได้มาเปรียบเทียบโดยใช้หนึ่งในวิธีการวิเคราะห์ความแปรปรวน หากผลกระทบหลักอย่างมีนัยสำคัญ, ความแตกต่างระหว่างการรักษาที่ได้รับการทดสอบกับของTukey การทดสอบหลายเปรียบเทียบวิธีการ การวิเคราะห์วิ่งที่ 5% ระดับนัยสำคัญโดยใช้แพคเกจ Statistica

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2.5 การวิเคราะห์องค์ประกอบทางชีวเคมีของ biofloc
biofloc ตัวอย่างเพื่อการวิเคราะห์ทางชีวเคมีครั้งนี้มี
พื้นฐานรายปักษ์ เข้มข้นฟล็อคจำนวนจากถังแต่ละ
โดยใช้ฟล็อคคั่นแห้งในเตาอบที่ 102 ° C จนน้ำหนักคงที่
แล้วดองไว้ในตู้เย็น ในตอนท้ายของ
ทดลองถังปัญญารวมจำนวนดินและประมวลผลสำหรับ
followingaoac การวิเคราะห์โดยประมาณ ( 1990 ) สำหรับเถ้า , รู้จัก
จํานวนแห้งตัวอย่างถูกเผาในเตาเผาที่อุณหภูมิ 550 องศา C 4 H
และเถ้าเย็นและชั่งน้ำหนัก โปรตีนหยาบ โดยพิจารณาเนื้อหา
0 วิธีการ ไขมันตั้งใจ
ด้วย 1 เครื่อง เนื้อหาพลังงานถูกกำหนดโดยบอมบ์แคลอริมิเตอร์ (
gallenkamp autobomb ) อัตราส่วน C : N (
พิจารณาการใช้เครื่องวิเคราะห์ ( เพอร์กินเอลเมอร์ CHN 2400 Series II ) biofloc
ตัวอย่างวิเคราะห์กรดไขมันในตอนท้ายของ
ทดลองและแห้ง . การวิเคราะห์กรดไขมันถูกดำเนินการโดย
แก้ไขวิธีจากโดยตรง ( คริสตี้ , 2003 ) โดยใช้ n-evap
แก๊สเหลว 112 ( organomation Associates Inc . ) .
2.6 การกำหนดตัวชี้วัดสวัสดิการปลา
มากกว่า 50% ของจำนวนปลาในถังแต่ละรายปักษ์ ,
ให้ยาสลบโดยความยาวและน้ำหนักและวัดแบบ ปลาเหล่านี้
ยังตรวจสอบผิวใด ๆหรือความเสียหาย ครีบ ในตอนท้ายของ
การทดลองหนึ่งปลาในถังและรับการรักษาแต่ละสองปลาในแต่ละ
ras35 รถถังพลีชีพ , 1 และ 2 เหงือกจากด้านหนึ่ง
ถูกเอาออก และเก็บรักษาไว้ใน 10% ฟอร์มาลินบัฟเฟอร์ . ตัวอย่าง
ถูกประมวลผลแล้วเพื่อขึ้นไป unpreserved เหงือกตรวจร่างกาย
ปรสิตใช้กล้องจุลทรรศน์กล้องส่องทางไกล ตัวอย่างของ
เมือกผิวยังตรวจสอบภายใต้กล้องจุลทรรศน์ .
เมื่อสิ้นสุดการทดลอง 10 ปลาเป็นตาข่ายสุ่มจากแต่ละ bft35 ras35
และถัง พวกเขาอย่างอ่อนโยนให้ยาสลบโดยกับ
สมณศักดิ์ในถัง , ชั่งน้ำหนักและวัด ตัวอย่างเลือดถูก
รวบรวมจากหลอดเลือดแดงใหญ่ส่วนหาง ใช้เข็มฉีดยาและ heparinised
อยู่ในหลอดไมโครเซนตริฟิวจ์ . หลังจากตัวอย่างเลือด ปลาถูก
แบบแท็ก ( ภายใน ) และคืนในถังอีก
สะอาดและอากาศ . แล้วพวกเขาก็ถูกย้ายไปยังอีกปลา
ถังภายในราสจนเลือด โดยครั้งที่สองหลังจาก
1 H ตามขั้นตอนเดียวกันที่กล่าวข้างต้น
ฮีมาโตคริต ( % บรรจุเซลล์สีแดงปริมาตร ) สารตัวอย่างถูกวัดหลังจาก
ซับเลือดเก็บครั้งแรกใช้
heparinised ไมโครฮีมาโตคริตหลอดสำหรับ 5 นาทีที่ 5000 g .
เหลือเลือดระดับ 1200 กรัม 15 นาทีและพลาสมา
ถูกแยกเก็บไว้ที่อุณหภูมิ 70 องศา − 10
cortisol พลาสม่า วิเคราะห์การใช้ radioimmunoassay อธิบายโดย Ellis et al .
( 2547 ) ด้วยการปรับเปลี่ยนไปใช้ในการสกัด เฉยๆ
( 200 μ L ) พลาสมาถูกสกัดด้วยเอทิลอะซีเตท 1 มิลลิลิตร และหลังจาก
อย่างละเอียดผสมและปั่น ( 430 กรัมต่อ 10 นาที ) , 200 μ l
แช่เย็น ( 4 ° C ) นำกำลัง pipetted เข้าท่อโพลิโพรพิลีน
ซ้ำ ซึ่งระเหยแห้งภายใต้สูญญากาศที่อุณหภูมิ 35 องศา C
ก่อนเย็น 4 องศาเนื้อหาองค์ประกอบและพลังงานโดยประมาณของ
ปลาก็เทียบได้ สิบสุ่มปลาที่ปล่อยและ
3 ปลาในแต่ละถังที่เก็บเกี่ยวโดยใช้วิธีการที่อธิบายข้างต้นสำหรับ biofloc เหมือนกัน
.
2.7 . การวิเคราะห์คุณภาพน้ำในพารามิเตอร์
เปรียบเทียบโดยการวิเคราะห์ความแปรปรวนแบบสองทาง ซ้ำ
มาตรการการรักษา ( ประเภทระบบ ) เป็นปัจจัยหลักและ
ตัวอย่างอาจเป็นปัจจัยวัดซ้ำ ( Gomez และ Gomez 1984 ) .
ปลาผลผลิตและองค์ประกอบทางชีวเคมีของเลือด และค่า
ฟล็อคและปลามาเปรียบเทียบ โดยใช้การวิเคราะห์ความแปรปรวนแบบทางเดียว ถ้าผลหลักเป็นสำคัญ ความแตกต่างระหว่างวิธีทดสอบกับ
ทดสอบหลายการทดสอบเปรียบเทียบว่า รวมถึง การวิเคราะห์ใช้อย่างมีนัยสำคัญทางสถิติที่ระดับ 5 เปอร์เซ็นต์ statistica
ใช้แพคเกจ