properties (Savadogo et al.,

properties (Savadogo et al., 2006). LAB comprise
both Gram-positive bacteria belonging to the
phylum Firmicutes (Carnobacterium, Enterococcus,
Lactobacillus, Lactococcus, Lactosphaera,
Leuconostoc , Melissococcus, Oenococcus ,
Pediococcus, Streptococcus, Tetragenococcus,
Vagococcus, Weissella) (Jay, 2000; Ercolini et al.,
2001; Carr et al., 2002) and Gram-positive bacteria
belonging to the phylum Actinobacteria
(Aerococcus, Microbacterium , Propionibacterium,
Bifidobacterium) (Gibson and Fuller 2000;
Holzapfel et al., 2001; Sneath and Holt, 2001). They
are capable of inhibiting spoilage and pathogenic
microorganisms in a food environment and display
crucial antimicrobial properties with respect to food
preservation and safety. Moreover, it has been
observed that members of LAB such as Lactobacillus
spp., Enterococcus spp. and Bifidobacterium spp.
are classified as probiotics (Klein et al., 1998). These
bacteria possess interesting health-promoting
properties by improving the balance between
beneficial and potentially harmful intestinal
microflora by competitive exclusion and by the
production of antioxidants, enzymes, vitamins,
exopolysaccharides and antimicrobial compounds
such as organic acids (e.g. lactic acid and acetic
acid), diacetyl, hydrogen peroxide, ethanol, carbon
dioxide, bacteriocin- or antibiotic-like substances
and bacteriocins (De Vuyst and Vandamme, 1994;
Stiles and Holzapfel, 1997; Diop et al., 2007). In
addition, probiotics are able to create the maturation
of the immune system and development of normal
intestinal morphology (Tannock, 2004). Probiotics
have also been shown to combat human
gastrointestinal pathogenic bacteria such as
Helicobacter pylori, Escherichia and Salmonella
(De Vuyst and Leroy, 2007). More recently,
increasing consumer demand for healthy foods has
led to greater interest in the application of LAB as
biopreservation organisms in natural and additive
free products (Stiles, 1996). According to numerous
reports, the use of LAB to protect various pathogens
in fermented foods has been successfully developed
(Coffey et al., 1998; Swetwiwathana et al., 1999;
Scannell et al., 2001). Hence, the use of LAB as
starter cultures or protective cocultures in food
fermentation systems implies one of the possible
ways to improve food safety.
In the present study, we reported the
isolation, screening and preliminary characterization
of LAB from various southern Thai fermented
foods with inhibitory effect against indicator
microorganism. The antibacterial activity was tested
against food-borne bacteria. The LAB strain showed
a broad inhibitory spectrum and displayed the
highest level of growth inhibition against all of the
pathogenic bacteria tested was selected and
identified.
Materials and Methods
1. Samples, media and reagents
Freshly-prepared food samples used as the
sources to screen for LAB were bought from
local markets in southern Thailand (Nakhon-Srithummarat, Suratthanee, Songkhla) (Table 1).
De Man Rogosa Sharpe (MRS) was purchased from
Himedia (India). Nutrient broth and tryptic soy broth
were supplied by Difco (USA). Catalase was
purchased from Sigma (USA) whereas Taq DNA
polymerase was supplied by Invitrogen (USA). The
API 50 CHL test kit was purchased from BioMérieux
(France). The NucleoSpin
®
Extract II PCR
purification kit was supplied by Macherey-Nagel
(Germany).
2. Bacterial strains and growth conditions
Bacterial strains used in this study were
obtained from culture collection of Microbiology

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

คุณสมบัติ (sava​​dogo และคณะ. 2006) ห้องปฏิบัติการประกอบด้วย
ทั้งแบคทีเรียแกรมบวกที่เป็นของไฟลัม
firmicutes (carnobacterium, Enterococcus
แลคโตบาซิลลัส, Lactococcus, lactosphaera
Leuconostoc, melissococcus, oenococcus
Pediococcus, Streptococcus, tetragenococcus
vagococcus, weissella) (jay, 2000; . Ercolini et al,,
2001. คาร์ตอัล,2002) และเชื้อแบคทีเรียแกรมบวก
เป็น Actinobacteria ไฟลัม
(aerococcus, microbacterium, Propionibacterium
Bifidobacterium) (กิบสันและฟูลเลอร์ 2000;
Holzapfel et al, 2001;. sneath และโฮลท์, 2001) พวกเขา
มีความสามารถในการยับยั้งเชื้อจุลินทรีย์ที่ทำให้เกิดโรคและการเน่าเสีย
ในสภาพแวดล้อมอาหารและแสดง
คุณสมบัติต้านจุลชีพที่สำคัญเกี่ยวกับการเก็บรักษาอาหาร
และความปลอดภัย นอกจากนี้ยังได้รับการตั้งข้อสังเกตว่า
สมาชิกของห้องปฏิบัติการเช่นแลคโตบาซิลลัส
spp. Enterococcus spp และ Bifidobacterium เอสพีพี
จะจัดเป็นโปรไบโอติก (klein et al,., 1998) เหล่านี้
แบคทีเรียที่น่าสนใจมีการส่งเสริมสุขภาพ
คุณสมบัติโดยการปรับปรุงความสมดุลระหว่าง
ประโยชน์และอาจเป็นอันตรายในลำไส้
จุลินทรีย์โดยการยกเว้นในการแข่งขันและโดย
การผลิตของสารต้านอนุมูลอิสระ, เอนไซม์, วิตามิน,
exopolysaccharides และสารต้านจุลชีพ
เช่นกรดอินทรีย์ (เช่นกรดแลคติกและกรดอะซิติก
) diacetyl , ไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์, เอทานอล
คาร์บอนไดออกไซด์สารแบคเทอริโอหรือยาปฏิชีวนะเช่น
และ bacteriocins (เด vuyst และ Vandamme, 1994;
stiles และ Holzapfel, 1997. diop et al, 2007) ใน
นอกจากนี้โปรไบโอติกมีความสามารถในการสร้างการเจริญเติบโต
ของระบบภูมิคุ้มกันและการพัฒนาของลำไส้ปกติ
สัณฐานวิทยา (Tannock, 2004) โปรไบโอติก
นอกจากนี้ยังได้รับการแสดงที่จะต่อสู้กับเชื้อแบคทีเรียที่ทำให้เกิดโรคระบบทางเดินอาหารของมนุษย์

เช่น Helicobacter pylori, Escherichia และเชื้อ Salmonella
(เด vuyst และ leroy, 2007) มากขึ้นเมื่อเร็ว ๆ นี้
ต้องการของผู้บริโภคที่เพิ่มขึ้นสำหรับอาหารที่ดีต่อสุขภาพได้
นำไปสู่​​ความสนใจมากขึ้นในการใช้ห้องปฏิบัติการที่มีชีวิต
biopreservation ในธรรมชาติและสาร
ผลิตภัณฑ์ฟรี (stiles, 1996) ตามที่หลาย
รายงานการใช้งานของห้องปฏิบัติการในการป้องกันเชื้อโรคต่างๆ
ในอาหารหมักดองที่ได้รับการพัฒนาประสบความสำเร็จ
(เบนจามินและคณะ, 1998;. swetwiwathana et al, 1999;..
scannell และคณะ, 2001) ด้วยเหตุนี้การใช้งานของห้องปฏิบัติการเป็นวัฒนธรรม
เริ่มต้นหรือ cocultures ป้องกันในอาหาร
ระบบการหมักนัยหนึ่ง
วิธีที่เป็นไปเพื่อปรับปรุงความปลอดภัยของอาหาร
ในการศึกษาปัจจุบันที่เรารายงาน
แยกคัดกรองและลักษณะเบื้องต้น
ของห้องปฏิบัติการจากทางใต้ของไทยหมัก
อาหารต่างๆที่มีผลต่อการยับยั้งการเจริญของจุลินทรีย์ตัวบ่งชี้
ฤทธิ์ต้านแบคทีเรียถูกทดสอบ
เชื้อแบคทีเรียที่เกิดจากอาหาร สายพันธุ์ที่ห้องปฏิบัติการแสดงให้เห็น
สเปกตรัมยับยั้งกว้างและแสดง
ระดับสูงสุดของการยับยั้งการเจริญเติบโตกับทุก
แบคทีเรียที่ผ่านการทดสอบและได้รับเลือกระบุ
.
วัสดุและวิธีการ
1 ตัวอย่างสื่อและน้ำยา
สดใหม่จัดทำตัวอย่างอาหารที่ใช้เป็น
แหล่งที่มาที่หน้าจอสำหรับห้องปฏิบัติการที่ถูกซื้อมาจากตลาดท้องถิ่น
ในภาคใต้ของประเทศไทย (นคร-srithummarat, สุราษฎร์ธานี, สงขลา) (ตารางที่ 1)
คนเด rogosa sharpe (นาง) ซื้อมาจาก
himedia (อินเดีย) สารอาหารและน้ำซุปน้ำซุปถั่วเหลืองเอียง
ถูกจัดทำโดย difco (USA) catalase
ถูกซื้อมาจากซิก (USA) ในขณะที่ TAQ dna
โพลิเมอร์ได้รับการจัดจำหน่ายโดย Invitrogen (USA)
API 50 ชุดทดสอบ chl ซื้อจาก BIOMERIEUX
(ฝรั่งเศส) nucleospin

®ดึง ii pcr
ชุดบริสุทธิ์ได้รับการจัดจำหน่ายโดย macherey-nagel
(เยอรมนี).
2 สายพันธุ์แบคทีเรียและสภาวะการเจริญเติบโต
แบคทีเรียที่ใช้ในการวิจัยครั้งนี้
ที่ได้รับจากการเก็บรวบรวมวัฒนธรรมของจุลชีววิทยา

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

คุณสมบัติ (Savadogo และ al., 2006) ห้องปฏิบัติการประกอบด้วย
ทั้งแบคทีเรียที่อยู่ใน
ไฟลัม Firmicutes (Carnobacterium, Enterococcus,
แลคโตบาซิลลัส Lactococcus, Lactosphaera,
Leuconostoc, Melissococcus, Oenococcus,
Pediococcus อุณหภูมิ Tetragenococcus,
Vagococcus, Weissella) (เจย์ 2000 Ercolini et al.,
2001 คาร์ et al., 2002) และแบคทีเรีย
ของไฟลัม Actinobacteria
(Aerococcus, Microbacterium, Propionibacterium,
Bifidobacterium) (กิบสันและออก 2000
Holzapfel et al., 2001 Sneath ก Holt, 2001) พวกเขา
สามารถ inhibiting เน่าเสีย และอุบัติ
จุลินทรีย์ในสิ่งแวดล้อมอาหารและแสดง
คุณสมบัติสำคัญต้านจุลชีพกับอาหาร
เก็บรักษาและความปลอดภัย นอกจากนี้ มันถูก
สังเกตที่สมาชิกของห้องปฏิบัติการเช่นแลคโตบาซิลลัส
โอ โอ Enterococcus และ Bifidobacterium โอ
จัดเป็น probiotics (Klein และ al., 1998) เหล่านี้
มีแบคทีเรียส่งสนใจสุขภาพเสริม
โดยการปรับปรุงสมดุลระหว่างคุณสมบัติ
ประโยชน์ และอันตรายลำไส้
microflora แยกแข่งขัน และโดย
ผลิตสารต้านอนุมูลอิสระ เอนไซม์ วิตามิน,
สารประกอบ exopolysaccharides และ antimicrobial
เช่นกรดอินทรีย์ (เช่น กรดแลกติก และอะซิติก
กรด), diacetyl ไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ เอทานอล คาร์บอน
ไดออกไซด์ bacteriocin - หรือยาปฏิชีวนะสารคล้าย
และ bacteriocins (De Vuyst และ Vandamme, 1994
Stiles และ Holzapfel, 1997 Diop et al., 2007) ใน
เพิ่ม probiotics จะสร้างพ่อแม่ที่
ของระบบภูมิคุ้มกันและพัฒนาปกติ
สัณฐานวิทยาลำไส้ (Tannock, 2004) Probiotics
มีการแสดงการต่อสู้มนุษย์
ระบบแบคทีเรียอุบัติเช่น
pylori กระเพาะ Escherichia และซัล
(De Vuyst และ Leroy, 2007) เมื่อเร็ว ๆ นี้,
เพิ่มความต้องการบริโภคอาหารเพื่อสุขภาพมี
ให้สนใจมากขึ้นในแอพลิเคชันของแล็บเป็น
biopreservation สิ่งมีชีวิตในธรรมชาติและเสริม
ฟรีผลิตภัณฑ์ (Stiles, 1996) ตามไปมากมาย
รายงาน การใช้ห้องปฏิบัติการเพื่อป้องกันโรคต่าง ๆ
ในร้าอาหารได้รับการประสบความสำเร็จพัฒนา
(Coffey et al., 1998 Swetwiwathana et al., 1999
Scannell et al., 2001) ดังนั้น การใช้ห้องปฏิบัติการเป็น
วัฒนธรรมสตาร์ทหรือ cocultures ป้องกันอาหาร
หมายถึงการหมักระบบหนึ่งสุด
วิธีการปรับปรุงความปลอดภัยของอาหาร
ในการศึกษาปัจจุบัน เรารายงานการ
แยก จำแนกเบื้องต้น และการตรวจกรอง
ของ LAB จากต่าง ๆ ประเทศไทยหมัก
อาหาร มีผลต่อตัวบ่งชี้ที่ลิปกลอสไข
จุลินทรีย์ ทดสอบกิจกรรมต้านเชื้อแบคทีเรีย
ต่อต้านแบคทีเรียที่แบกรับอาหาร พันธุ์ห้องปฏิบัติพบ
สเปกตรัมเป็นลิปกลอสไขกว้าง และแสดงการ
ระดับสูงสุดของการยับยั้งการเจริญเติบโตจากทั้งหมด
เลือกทดสอบแบคทีเรียอุบัติ และ
ระบุ
วัสดุและวิธีการ
1 ตัวอย่าง สื่อ และ reagents
ตัวอย่างลิ้มลองอาหารที่ใช้เป็นการ
แหล่งที่มากับหน้าจอสำหรับห้องปฏิบัติถูกซื้อจาก
ตลาดท้องถิ่นในภาคใต้ (สงขลานครศรี-Srithummarat, Suratthanee ) (ตารางที่ 1)
คนเด Sharpe (นาง Rogosa) ถูกซื้อจาก
Himedia (อินเดีย) ธาตุอาหารซุปและซุปถั่วเหลือง tryptic
ถูกจัดเตรียมโดย Difco (สหรัฐอเมริกา) Catalase เป็น
ซื้อจากซิก (สหรัฐอเมริกา) ในขณะที่ Taq DNA
พอลิเมอเรสถูกกำหนดโดย Invitrogen (สหรัฐอเมริกา) ใน
API 50 CHL ทดสอบชุดที่ซื้อจาก BioMérieux
(ฝรั่งเศส) NucleoSpin
®
แยก PCR II
ชุดฟอกถูกกำหนด โดย Macherey Nagel
(เยอรมนี) .
2 แบคทีเรียสายพันธุ์และการเจริญเติบโตสภาพ
สายพันธุ์แบคทีเรียที่ใช้ในการศึกษานี้ได้
ได้รับจากการรวบรวมวัฒนธรรมของจุลชีววิทยา

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

คุณสมบัติ( Properties )( savadogo et al . 2006 ) ประกอบด้วยห้องแล็บกรัม
ทั้ง - ในเชิงบวกแบคทีเรียเป็นของ firmicutes
phylum ( carnobacterium enterococcus
แลคโตบาซิลลัส( Lactobacillus ) lactococcus lactosphaera
leuconostoc melissococcus oenococcus
pediococcus streptococcus tetragenococcus
vagococcus weissella )( Jay 2000 ercolini et al .
2001 Carr et al .2002 )และกรัมบวกแบคทีเรีย
เป็นของ phylum ที่ actinobacteria
( aerococcus microbacterium propionibacterium
รู้จักกัน)(บริการ Gibson ' s และฟูลเลอร์ 2000
holzapfel et al . 2001 sneath และจำหน่าย 2001 ) พวกเขา
มีความสามารถของจุลชีพ spoilage และ pathogenic
ทั้งหมดในการแสดงผลและ สภาพแวดล้อม อาหาร
คุณสมบัติกลุ่มยาปฎิชีวนะชนิดสำคัญด้วยความเคารพและความ ปลอดภัย อาหาร
การรักษา. นอกจากนี้ได้
สังเกตว่าสมาชิกในห้องปฏิบัติการเช่นแลคโตบาซิลลัส( Lactobacillus )
พืชอิงอาศัย enterococcus พืชอิงอาศัยและพืชอิงอาศัยรู้จักกัน
ได้รับการจัด ประเภท ว่าเป็นโปรไบโอติคส์(สนใจ et al . 1998 ).
แบคทีเรียเหล่านี้มีน่าสนใจ สุขภาพ การส่งเสริม
คุณสมบัติ( Properties )โดยการปรับปรุงความสมดุลที่ลงตัวระหว่าง
จะเป็นประโยชน์ต่อและเป็นอันตรายเกี่ยวกับลำไส้
จุลินทรีย์ชนิดโดยในการแข่งขันและการยกเว้นโดย
การผลิตสารต้านอนุมูลอิสระ,เอ็นไซม์,วิตามิน,
exopolysaccharides ชนิดและสารประกอบอินทรีย์
เช่นกรด(เช่นเกี่ยวกับนมกรดและกรดอะซิติก
กรด), diacetyl ,ไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์,เอทานอล,คาร์บอน
ปล่อยก๊าซคาร์บอนไดออกไซด์ bacteriocin หรือปฏิชีวนะ - เช่นสารและ
bacteriocins ( de vuyst และ vandamme 1994
stiles holzapfel และ 1997 diop et al . 2007 ) ใน
นอกจากนี้ยังโปรไบโอติคส์มีความสามารถในการสร้างฝึกตนให้
ของการพัฒนาและระบบ ภูมิคุ้มกัน ของร่างกายที่ปกติ
เกี่ยวกับลำไส้รูปร่างลักษณะของหิน( tannock 2004 ) โปรไบโอติคส์
ได้รับการแสดงเพื่อต่อสู้กับ pathogenic
ทางเดินอาหารมนุษย์ยังเชื้อแบคทีเรียเช่น pylori
helicobacter ริคีอาและพอใจ
( de vuyst และ CTA 2007 ) เมื่อไม่นานมานี้
ความต้องการของ ผู้บริโภค เพิ่มขึ้นสำหรับอาหารเพื่อ สุขภาพ มี
นำไปสู่ความสนใจมากขึ้นในแอปพลิเคชันนี้ในห้องปฏิบัติการเป็นสิ่งมีชีวิต
biopreservation ในธรรมชาติและผสม
ผลิตภัณฑ์ แบบไม่เสียค่าบริการ( stiles 1996 ) ตามจำนวนมาก
รายงานการใช้ในห้องปฏิบัติการเพื่อป้องกันต่างๆเด็กนักเรียน
ในอาหารหมักสำเร็จแล้วพัฒนา
( coffey et al . 1998 swetwiwathana et al . 1999
scannell et al . 2001 ) ดังนั้นการใช้ในห้องปฏิบัติการเป็นวัฒนธรรม
หรือ Starter cocultures ป้องกันในอาหาร
ระบบหมักหมายถึงเป็นหนึ่งในวิธีที่เป็นไปได้
เพื่อปรับปรุงความ ปลอดภัย ด้านอาหาร
ในการศึกษาในปัจจุบันที่เรารายงานการตรวจคัด
แยกและแสดงลักษณะเบื้องต้น
ในห้องปฏิบัติการจากอาหารหมัก
ไทยตอนใต้ที่มีผลต่อ inhibitory สัญลักษณ์แสดง
จุลชีพ กิจกรรมต้านแบคทีเรียจากสิ่งมีชีวิตทำหน้าที่ได้รับการทดสอบแล้ว
ต่อสู้กับเชื้อแบคทีเรียอาหารอยู่. ความตึงเครียดจากห้องปฏิบัติการที่แสดงให้เห็น
ให้ย่านความถี่ inhibitory กว้างและแสดง
ระดับสูงสุดของยับยั้งการขยายตัวจากแบคทีเรีย
pathogenic ที่ได้รับการทดสอบทั้งหมดได้รับเลือกและ
ระบุ.
วัสดุและวิธีการที่
1 ตัวอย่างและการใช้สื่อ reagents
ตัวอย่างอาหารสดใหม่ได้ใช้เป็นสัญลักษณ์
แหล่งในหน้าจอสำหรับห้องปฏิบัติการได้ซื้อมาจาก
ตลาดท้องถิ่นใน ภาค ใต้ของไทย( nakhon-srithummarat คลินิกหมอประสิทธิ์สงขลา)(ตารางที่ 1 )
de ชาย rogosa sharpe (นาง)มีการซื้อจาก
himedia (อินเดีย) น้ำซุปสารอาหารและน้ำซุปถั่วเหลือง tryptic
ได้มาจาก difco (สหรัฐอเมริกา) catalase เป็น
ซื้อจาก Six Sigma ( USA )ในขณะที่ taq ดีเอ็นเอ
polymerase ให้มาโดย invitrogen (สหรัฐอเมริกา) ชุดการทดสอบ
API 50 chl ที่มีการซื้อจาก biomérieux
(ฝรั่งเศส) ชุด
บริสุทธิ์ pcr nucleospin

®,แยก II ให้มาโดย macherey-nagel
(เยอรมนี). N 2 ความตึงเครียดเกิดจากเชื้อแบคทีเรียและเงื่อนไขการขยายตัว
พันธุ์เกิดจากเชื้อแบคทีเรียใช้ในการศึกษานี้เป็น
ได้รับจากคอลเลคชั่นวัฒนธรรมของจุลชีววิทยา