Antibacterial, antifungal, and anti

Antibacterial, antifungal, and antiviral activities of
the lipophylic extracts of Pistacia vera
Berrin O¨zcelika
, Mustafa Aslanb,
, Ilkay Orhanb
, Taner Karaogluc
a
Department of Pharmaceutical Microbiology, Faculty of Pharmacy, Gazi University, 06330 Ankara, Turkey
b
Department of Pharmacognosy, Faculty of Pharmacy, University of Gazi, 06330 Ankara, Turkey
c
Department of Virology, Faculty of Veterinary, University of Ankara, 06100 Ankara, Turkey
Accepted 29 November 2004
Summary
In the present study, antibacterial, antifungal, and antiviral properties of 15 lipohylic
extracts obtained from different parts (leaf, branch, stem, kernel, shell skins, seeds)
of Pistacia vera were screened against both standard and the isolated strains of
Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa, Enterococcus faecalis, Staphylococcus
aureus, Candida albicans and C. parapsilosis by microdilution method. Both Herpes
simplex (DNA) and Parainﬂuenza viruses (RNA) were used for the determination of
antiviral activity of the P. vera extracts by using Vero cell line. Ampicilline, oﬂoxocine,
ketoconazole, ﬂuconazole, acyclovir and oseltamivir were used as the control agents.
The extracts showed little antibacterial activity between the range of 128–256mg/ml
concentrations whereas they had noticeable antifungal activity at the same
concentrations. Kernel and seed extracts showed signiﬁcant antiviral activity
compared to the rest of the extracts as well as the controls.
& 2004 Elsevier GmbH. All rights reserved.
Introduction
Traditional medicines based mostly on medicinal
plants have been used for the treatment of various
diseases by mankind for centuries. Plants are also
well-known to be the rich sources of biologically
active compounds. Therefore, one approach that
has been used for the discovery of antimicrobial
agents from natural sources is based on the
evaluation of traditional plant extracts. Also, it is
important that acquired agents resistant to microorganisms can cause serious infections especially in
immunosuppressed patients that withstand with
usages of antimicrobial agents.
Pistacia vera L., a member of Anacardiaceae family,
is native to Asia minor and widely distributed in the
Mediterranean region as well as USA. Among the 11
species of Pistacia genus, P. vera is by far the most
ARTICLE IN PRESS
www.elsevier.de/micres
KEYWORDS
Antibacterial activity;
Antifungal activity;
Antiviral activity;
Pistacia vera;
Anacardiaceae;
Plant extract
0944-5013/$ - see front matter & 2004 Elsevier GmbH. All rights reserved.
doi:10.1016/j.micres.2004.11.002

Corresponding author.
E-mail address: marslan@gazi.edu.tr (M. Aslan).economically important one. In addition to its
economical value, kernels of P. vera are remarkably
rich in linoleic and linolenic acids, the fatty acids vital
for human health (Garcia et al., 1992; Maskan and
Karatas, 1998; Aslan et al., 2002; Satil et al., 2003).
On the other hand, Pistacia species were reported to
have various biological activities such as anti-atherogenic, hypoglycemic, antioxidant, anti-inﬂammatory,
and anti-insect activities (Demo et al., 1998; PascualVillalobos and Robledo, 1998;Giner-Larza et al., 2000;
Dedoussis et al., 2004; Hamdan and Aﬁﬁ, 2004).
Antifungal activity of the essential oils and the leaf
extracts of three Pistacia species including P. vera
were also studied (Duru et al., 2003; Kordali et al.,
2003). Besides, the mastic obtained from P. terebinthus is also used as urinary and respiratory
antiseptic in Turkish folk medicine (Baytop, 1999).
On the other hand, antibacterial, antifungal and
antiviral activities of the other parts of P. vera have
not been studied so far. In this study, we aimed to
investigate the antimicrobial, and antiviral properties
of edible and non-edible parts of P. vera. On this
purpose, 16 lipophylic extracts of the plant were
tested against Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa, Enterococcus faecalis, Staphylococcus aureus,
Candida albicans,C. parapsilosis,Herpes simplex virus
(HSV), Parainﬂuenza virus(PIV) (Jawetz et al., 1991).
Materials and methods
Plant material
Plant material (P. vera) was collected from Nizip,
Gaziantep, Turkey in September 2003 and the
leaves, branches, stem, shell skins and kernels
were separated individually.
The plant parts used in this study were classiﬁed
as follows: fresh leaves (PV-FL), stem (PV-ST),
branches (PV-BR), fresh skin of natural-woody shell
(non-processed) (PV-FSN), dried skin of naturalwoody shell (non-processed) (PV-DSN), fresh kernel
(PV-FK) and skin of processed-woody shell (PV-SPS).
The seeds used were of three types, collected two
localities in Turkey (Siirt & Gaziantep) and Iran in
three stages including unripe, ripe and processed
and were coded as follows: Siirt sample-ripe (PVSR), Siirt sample-processed (PV-SP), Gaziantep
sample-unripe (PV-GU), Gaziantep sample-ripe
(PV-GR), Gaziantep sample-processed (PV-GP), Iran
sample-unripe (PV-IU), Iran sample-ripe (PV-IR),
Iran sample-processed (PV-IP).
Preparation of the extracts
The parts of P. vera mentioned above were
chopped and extraction of the samples was carried
out with n-hexane during 8 h continuously for each
part using a Soxhlet apparatus in the presence of
anhydrous Na2SO4. After ﬁltrating, the n-hexane
phases evaporated under vacuum at 401C to
dryness and the lipophylic extracts were obtained
as described in our previous study (Aslan et al.,
2002).
Microbiological studies
Test materials
The lipophylic extracts of P. vera were dissolved
in ethanol:hexane (1:1) by using 1% Tween 80
solution at a ﬁnal concentration of 1024, 512 and
256mg/ml and sterilized by ﬁltration using 0.22mm
Millipore (MA, USA) and used as the stock solutions.
Standard antibacterial powders of ampicillin
(AMP, Faco), oﬂoxacin (OFX, Hoechst Marion Roussel) and standard antifungal powders of ketoconazole (KET, Bilim) and ﬂuconazole (FLU, Pﬁzer),
were obtained from their respective manufacturers
and dissolved in phosphate buffer solution (ampicillin, pH: 8.0, 0.1 mol/l), dimethylsulphoxide
(ketoconazole), in water (ﬂuconazole, oﬂoxacin).
The stock solutions of the agents were prepared in
medium according to the NCCLS recommendations
(National Committee, 1996).
Microorganisms
Standard and the isolated strains of the following
bacteria, namely E. coli (ATCC 35218), P. aeroginosa (ATCC 10145), E. faecalis (ATCC 29212), and
S. aureus (ATCC 25923) for the determination of
antibacterial activity, and standard strains of C.
albicans (ATCC 10231) and C. parapsilosis (ATCC
22019) for the determination of antifungal activity
were used. Microorganisms were obtained from
Department of Microbiology and Clinical Microbiology, Faculty of Medicine, Karadeniz Technical
University (Trabzon-Turkey). The isolated strains
of E. coli, P. aeruginosa, E. faecalis and S. aureus
were obtained from Department of Medical
Microbiology, Faculty of Medicine, Gazi University
(Ankara-Turkey).
Inoculum preparation
Mueller–Hinton Broth (Difco) and Mueller–Hinton
Agar (Oxoid) were applied for growing and diluting
of the microorganism suspensions.
Before the test, all strains of fungi were cultured
on Sabouraud dextrose agar (SDA) (Oxoid) and
ARTICLE IN PRESS
160 B. O¨zc-elik et al.passaged at least twice to ensure purity and
viability at 351C for 24–48 h. Five colonies were
used from each culture. The synthetic medium
RPMI-1640 with L-glutamine was buffered pH: 7
with 3-[N-morpholino]-propansulfonic acid (MOPS)
and culture suspensions were prepared according
to the NCCLS M27-A. Also, standard and isolated
strains of bacteria were grown to exponential phase
in medium (MHB) at 371C overnight with aeration.
Twenty microlitre of the culture was then plated on
MHA. After overnight incubation at 371C with
aeration, approximately ﬁve colonies of cultures
were plated in MHB.
The bacterial suspensions used for inoculation
were prepared at 105
cfu/ml by diluting fresh
cultures at McFarland 0.5 density (108
cfu/ml).
The fungi suspension was prepared by the spectrophotometric method of inoculum preparation at a
ﬁnal culture suspension of 2.5103
cfu/ml (National Committee, 2002; Baran et al., 1994).
Antibacterial and antifungal tests
The microdilution method was employed for
antibacterial and antifungal activity tests. Media
were placed into each 96 wells of the microplates.
Extract solutions at 256 and 512mg/ml were added
into ﬁrst raws of microplates and two fold dilutions
of the compounds (256–0.06mg/ml) were made by
dispensing the solutions to the remaining wells. Ten
microlitre culture suspensions were inoculated into
all the wells. The sealed microplates were incubated at 351C for 24 and 48 h in humid chamber.
The lowest concentration of the extracts that
completely inhibit macroscopic growth was determined and minimum inhibitory concentrations
(MICs) were reported. Antimicrobial activities of
the extracts were tested against two Gram-positive, two Gram-negative bacteria and isolated
strains of these bacteria and a yeast-like fungus
using ampicillin, oﬂoxacin, ketoconazole and ﬂuconazole as the standards.
Cytotoxicity and antiviral tests
Cell line and growth condition
Vero cell line (African green monkey kidney) used
in this study was obtained from Department of
Virology, Faculty of Veterinary, Ankara University
(Ankara-Turkey).
The culture of the cells were grown in Eagle’s
Minimal Essential Medium (EMEM) enriched with
10% fetal calf serum (FCS) (Biochrom, Germany),
100 mg/ml of streptomycin and 100 IU/ml of penicillin in a humidiﬁed atmosphere of 5% CO2 at 371C.
The cells were harvested using trypsin solution
(Bipco Life Technologies, UK).
Test viruses
In order to determine the antiviral activity of the
extracts, HSV and PIV were used. The test viruses
were obtained from Department of Virology, Faculty of Veterinary, Ankara University.
Antiviral activity
Media (EMEM) were placed into each 96 wells of
the microplates (GreinerR
, Germany). Stock solutions of the extracts were added into ﬁrst raws

Corresponding author.
E-mail address: marslan@gazi.edu.tr (M. Aslan).economically important one. In addition to its
economical value, kernels of P. vera are remarkably
rich in linoleic and linolenic acids, the fatty acids vital
for human health (Garcia et al., 1992; Maskan and
Karatas, 1998; Aslan et al., 2002; Satil et al., 2003).
On the other hand, Pistacia species were reported to
have various biological activities such as anti-atherogenic, hypoglycemic, antioxidant, anti-inﬂammatory,
and anti-insect activities (Demo et al., 1998; PascualVillalobos and Robledo, 1998;Giner-Larza et al., 2000;
Dedoussis et al., 2004; Hamdan and Aﬁﬁ, 2004).
Antifungal activity of the essential oils and the leaf
extracts of three Pistacia species including P. vera
were also studied (Duru et al., 2003; Kordali et al.,
2003). Besides, the mastic obtained from P. terebinthus is also used as urinary and respiratory
antiseptic in Turkish folk medicine (Baytop, 1999).
On the other hand, antibacterial, antifungal and
antiviral activities of the other parts of P. vera have
not been studied so far. In this study, we aimed to
investigate the antimicrobial, and antiviral properties
of edible and non-edible parts of P. vera. On this
purpose, 16 lipophylic extracts of the plant were
tested against Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa, Enterococcus faecalis, Staphylococcus aureus,
Candida albicans,C. parapsilosis,Herpes simplex virus
(HSV), Parainﬂuenza virus(PIV) (Jawetz et al., 1991).
Materials and methods
Plant material
Plant material (P. vera) was collected from Nizip,
Gaziantep, Turkey in September 2003 and the
leaves, branches, stem, shell skins and kernels
were separated individually.
The plant parts used in this study were classiﬁed
as follows: fresh leaves (PV-FL), stem (PV-ST),
branches (PV-BR), fresh skin of natural-woody shell
(non-processed) (PV-FSN), dried skin of naturalwoody shell (non-processed) (PV-DSN), fresh kernel
(PV-FK) and skin of processed-woody shell (PV-SPS).
The seeds used were of three types, collected two
localities in Turkey (Siirt & Gaziantep) and Iran in
three stages including unripe, ripe and processed
and were coded as follows: Siirt sample-ripe (PVSR), Siirt sample-processed (PV-SP), Gaziantep
sample-unripe (PV-GU), Gaziantep sample-ripe
(PV-GR), Gaziantep sample-processed (PV-GP), Iran
sample-unripe (PV-IU), Iran sample-ripe (PV-IR),
Iran sample-processed (PV-IP).
Preparation of the extracts
The parts of P. vera mentioned above were
chopped and extraction of the samples was carried
out with n-hexane during 8 h continuously for each
part using a Soxhlet apparatus in the presence of
anhydrous Na2SO4. After ﬁltrating, the n-hexane
phases evaporated under vacuum at 401C to
dryness and the lipophylic extracts were obtained
as described in our previous study (Aslan et al.,
2002).
Microbiological studies
Test materials
The lipophylic extracts of P. vera were dissolved
in ethanol:hexane (1:1) by using 1% Tween 80
solution at a ﬁnal concentration of 1024, 512 and
256mg/ml and sterilized by ﬁltration using 0.22mm
Millipore (MA, USA) and used as the stock solutions.
Standard antibacterial powders of ampicillin
(AMP, Faco), oﬂoxacin (OFX, Hoechst Marion Roussel) and standard antifungal powders of ketoconazole (KET, Bilim) and ﬂuconazole (FLU, Pﬁzer),
were obtained from their respective manufacturers
and dissolved in phosphate buffer solution (ampicillin, pH: 8.0, 0.1 mol/l), dimethylsulphoxide
(ketoconazole), in water (ﬂuconazole, oﬂoxacin).
The stock solutions of the agents were prepared in
medium according to the NCCLS recommendations
(National Committee, 1996).
Microorganisms
Standard and the isolated strains of the following
bacteria, namely E. coli (ATCC 35218), P. aeroginosa (ATCC 10145), E. faecalis (ATCC 29212), and
S. aureus (ATCC 25923) for the determination of
antibacterial activity, and standard strains of C.
albicans (ATCC 10231) and C. parapsilosis (ATCC
22019) for the determination of antifungal activity
were used. Microorganisms were obtained from
Department of Microbiology and Clinical Microbiology, Faculty of Medicine, Karadeniz Technical
University (Trabzon-Turkey). The isolated strains
of E. coli, P. aeruginosa, E. faecalis and S. aureus
were obtained from Department of Medical
Microbiology, Faculty of Medicine, Gazi University
(Ankara-Turkey).
Inoculum preparation
Mueller–Hinton Broth (Difco) and Mueller–Hinton
Agar (Oxoid) were applied for growing and diluting
of the microorganism suspensions.
Before the test, all strains of fungi were cultured
on Sabouraud dextrose agar (SDA) (Oxoid) and
ARTICLE IN PRESS
160 B. O¨zc-elik et al.passaged at least twice to ensure purity and
viability at 351C for 24–48 h. Five colonies were
used from each culture. The synthetic medium
RPMI-1640 with L-glutamine was buffered pH: 7
with 3-[N-morpholino]-propansulfonic acid (MOPS)
and culture suspensions were prepared according
to the NCCLS M27-A. Also, standard and isolated
strains of bacteria were grown to exponential phase
in medium (MHB) at 371C overnight with aeration.
Twenty microlitre of the culture was then plated on
MHA. After overnight incubation at 371C with
aeration, approximately ﬁve colonies of cultures
were plated in MHB.
The bacterial suspensions used for inoculation
were prepared at 105
cfu/ml by diluting fresh
cultures at McFarland 0.5 density (108
cfu/ml).
The fungi suspension was prepared by the spectrophotometric method of inoculum preparation at a
ﬁnal culture suspension of 2.5103
cfu/ml (National Committee, 2002; Baran et al., 1994).
Antibacterial and antifungal tests
The microdilution method was employed for
antibacterial and antifungal activity tests. Media
were placed into each 96 wells of the microplates.
Extract solutions at 256 and 512mg/ml were added
into ﬁrst raws of microplates and two fold dilutions
of the compounds (256–0.06mg/ml) were made by
dispensing the solutions to the remaining wells. Ten
microlitre culture suspensions were inoculated into
all the wells. The sealed microplates were incubated at 351C for 24 and 48 h in humid chamber.
The lowest concentration of the extracts that
completely inhibit macroscopic growth was determined and minimum inhibitory concentrations
(MICs) were reported. Antimicrobial activities of
the extracts were tested against two Gram-positive, two Gram-negative bacteria and isolated
strains of these bacteria and a yeast-like fungus
using ampicillin, oﬂoxacin, ketoconazole and ﬂuconazole as the standards.
Cytotoxicity and antiviral tests
Cell line and growth condition
Vero cell line (African green monkey kidney) used
in this study was obtained from Department of
Virology, Faculty of Veterinary, Ankara University
(Ankara-Turkey).
The culture of the cells were grown in Eagle’s
Minimal Essential Medium (EMEM) enriched with
10% fetal calf serum (FCS) (Biochrom, Germany),
100 mg/ml of streptomycin and 100 IU/ml of penicillin in a humidiﬁed atmosphere of 5% CO2 at 371C.
The cells were harvested using trypsin solution
(Bipco Life Technologies, UK).
Test viruses
In order to determine the antiviral activity of the
extracts, HSV and PIV were used. The test viruses
were obtained from Department of Virology, Faculty of Veterinary, Ankara University.
Antiviral activity
Media (EMEM) were placed into each 96 wells of
the microplates (GreinerR
, Germany). Stock solutions of the extracts were added into ﬁrst raws

0/5000

จาก: -

เป็น: -

ผลลัพธ์ (ไทย) 1: [สำเนา]

คัดลอก!

กิจกรรมต้านเชื้อแบคทีเรีย ต้านเชื้อรา และยาต้านไวรัสสารสกัดจาก lipophylic ของหาง PistaciaBerrin O¨zcelika, Mustafa Aslanb, Ilkay Orhanb, Taner Karaoglucมีจุลชีววิทยาภาควิชาเภสัชกรรม คณะเภสัชศาสตร์ มหาวิทยาลัยฆอซี 06330 อังการา ตุรกีบีภาควิชาเภสัชเวท คณะเภสัชศาสตร์ มหาวิทยาลัยฆอซี 06330 อังการา ตุรกีcแผนกชเป็น คณะสัตว มหาวิทยาลัยอังการา 06100 อังการา ตุรกียอมรับ 29 2547 พฤศจิกายนสรุปในปัจจุบันการศึกษา ต้านเชื้อแบคทีเรีย ต้านเชื้อรา และต้านไวรัสคุณสมบัติของ 15 lipohylicสารสกัดที่ได้จากส่วนต่าง ๆ (ใบไม้ สาขา ก้าน เคอร์เนล สกินเปลือก เมล็ดพันธุ์)ของหาง Pistacia ได้ฉายกับมาตรฐานและสายพันธุ์แยกของEscherichia coli, Pseudomonas aeruginosa, Enterococcus faecalis, Staphylococcusหมอเทศข้างลาย Candida albicans และ C. parapsilosis โดยวิธี microdilution ทั้ง Herpesใช้สำหรับกำหนดการ simplex (DNA) และไวรัส Parainﬂuenza (อาร์เอ็นเอ)กิจกรรมต้านไวรัสของหาง P. สารสกัด โดยใช้บรรทัดเซลล์ Vero Ampicilline, oﬂoxocineketoconazole, ﬂuconazole, acyclovir และ oseltamivir ถูกใช้เป็นตัวควบคุมแทนกิจกรรมต้านเชื้อแบคทีเรียน้อยระหว่างช่วง 128 – 256mg/ml พบว่าสารสกัดความเข้มข้นในขณะที่พวกเขามีกิจกรรมสังเกตอาการที่เหมือนกันความเข้มข้น เมล็ดและเมล็ดพบว่าสารสกัดจาก signiﬁcant ต้านไวรัสกิจกรรมเมื่อเทียบกับส่วนเหลือของสารสกัดเป็นตัวควบคุมและ 2004 Elsevier GmbH สงวนลิขสิทธิ์ทั้งหมดแนะนำยาโบราณตามส่วนใหญ่ยาการใช้พืชในการบำบัดรักษาต่าง ๆโรค โดยมนุษย์มานานหลายศตวรรษ พืชสามารถรู้จักเป็น แหล่งอุดมของชิ้นสารที่ใช้งานอยู่ ดังนั้น หนึ่งวิธีการที่ใช้สำหรับการค้นพบจุลินทรีย์ตัวแทนจากแหล่งน้ำธรรมชาติตามการประเมินผลของสารสกัดจากพืชดั้งเดิม เป็นสำคัญว่า ทนต่อจุลินทรีย์ตัวแทนได้รับอาจทำให้ติดเชื้อรุนแรงโดยเฉพาะอย่างยิ่งในผู้ป่วย immunosuppressed ที่ทนต่อด้วยประเพณีของจุลินทรีย์หาง Pistacia L. สมาชิกของครอบครัว Anacardiaceaeเป็นวิชารองเอเชีย และกระจายอย่างกว้างขวางในการภูมิภาคเมดิเตอร์เรเนียนเช่นประเทศสหรัฐอเมริกา หมู่ 11พันธุ์สกุล Pistacia, P. เป็นโดยไกลที่สุดบทความในวารสารwww.elsevier.de/micresคำสำคัญกิจกรรมต้านเชื้อแบคทีเรียกิจกรรมต้านเชื้อรากิจกรรมต้านไวรัสPistacia หางAnacardiaceaeสารสกัดจากพืช0944-5013 / $ - ดูเรื่องหน้าและ 2004 Elsevier GmbH สงวนลิขสิทธิ์ทั้งหมดdoi:10.1016/j.micres.2004.11.002ผู้ที่เกี่ยวข้องที่อยู่อีเมล์: .economically marslan@gazi.edu.tr (ม. Aslan) หนึ่งที่สำคัญ นอกนั้นค่าประหยัด เมล็ดของ P. หางเป็นอย่างยิ่งอุดม linoleic และ linolenic กรด กรดไขมันที่สำคัญสำหรับสุขภาพของมนุษย์ (การ์เซียและ al., 1992 Maskan และKaratas, 1998 Aslan et al., 2002 Satil และ al., 2003)บนมืออื่น ๆ พันธุ์ Pistacia ได้รายงานมีกิจกรรมทางชีวภาพต่าง ๆ เช่นต่อต้าน atherogenic ②ฤทธิ์ลด น้ำตาล สารต้านอนุมูลอิสระ ต่อต้าน-inﬂammatoryและกิจกรรมป้องกันแมลง (สาธิตและ al., 1998 PascualVillalobos และ Robledo, 1998 Giner Larza et al., 2000Dedoussis et al., 2004 Hamdan ก Aﬁﬁ, 2004)กิจกรรมต้านเชื้อราของน้ำมันหอมระเหยและใบสารสกัดจากพันธุ์สาม Pistacia รวมหาง P.แนะนำศึกษา (Duru et al., 2003 Kordali et al.,2003) . สำรอง เหมาะที่ได้รับจาก P. terebinthus ใช้เป็นท่อปัสสาวะ และระบบทางเดินหายใจยาฆ่าเชื้อในยาพื้นบ้านตุรกี (Baytop, 1999)ในอื่น ๆ มือ ต้านเชื้อแบคทีเรีย ต้านเชื้อรา และส่วนอื่น ๆ ของหาง P. กิจกรรมต้านไวรัสได้ไม่ได้ศึกษาจน ในการศึกษานี้ เรามีวัตถุประสงค์เพื่อตรวจสอบคุณสมบัติจุลินทรีย์ และยาต้านไวรัสกิน และไม่กินส่วนของ P. หาง ในที่นี้วัตถุประสงค์ 16 lipophylic บางส่วนของโรงงานได้ทดสอบกับ Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa, Enterococcus faecalis, Staphylococcus หมอเทศข้าง ลายCandida albicans, C. parapsilosis ไวรัสเริม(HSV), Parainﬂuenza virus(PIV) (Jawetz et al., 1991)วัสดุและวิธีการวัสดุโรงงานวัสดุโรงงาน (P. หาง) รวบรวมจาก NizipGaziantep ตุรกีในเดือน 2003 กันยายนและใบ สาขา ก้าน สกินเปลือก และเมล็ดถูกคั่นแต่ละรายการชิ้นส่วนของพืชที่ใช้ในการศึกษานี้ได้ classiﬁedดังนี้: (PV-FL) ใบสด เกิด (อาทิตย์-ST),สาขา (PV-BR), ผิวหนังสดของธรรมชาติไม้ยืนต้นเปลือก(ดำเนิน) ผิวของเปลือก naturalwoody (ดำเนิน) (PV-DSN), เคอร์เนลสดแห้ง (PV-ผล FSN),(PV-FK) และผิวของเปลือกประมวลผลไม้ยืนต้น (PV-SPS)เมล็ดพันธุ์ที่ใช้มีสามชนิด สองรวบรวมมาในอิหร่านและตุรกี (Siirt & Gaziantep)สามขั้นตอนรวมทั้งดิบ ๆ สุก และประมวลผลและเขียนดังนี้: ตัวอย่างสุก Siirt (PVSR) Gaziantep, Siirt ตัวอย่างการประมวลผล (PV-SP)ตัวอย่างดิบ ๆ (PV กู) Gaziantep อย่างสุก(PV-GR), อิหร่าน Gaziantep ประมวลผลตัวอย่าง (PV-GP)ตัวอย่างดิบ ๆ (PV-IU), อิหร่านอย่างสุก (PV-IR),อิหร่านตัวอย่างการประมวลผล (PV-IP)การเตรียมสารสกัดจากใบส่วนของหางจระเข้ P. ดังกล่าวข้างต้นได้สับ และทำการสกัดตัวอย่างออก ด้วยเอ็นเฮกเซนระหว่าง 8 h อย่างต่อเนื่องสำหรับแต่ละส่วนที่ใช้เครื่อง Soxhlet หน้าNa2SO4 ได หลังจาก ﬁltrating เอ็นเฮกเซนระยะหายไปภายใต้สุญญากาศที่ C 401 การรับความแห้งกร้านและสารสกัดจาก lipophylicตามที่อธิบายไว้ในการศึกษาก่อนหน้านี้ของเรา (Aslan et al.,2002)การศึกษาทางจุลชีววิทยาทดสอบวัสดุสารสกัดจาก lipophylic ของ P. หางมีส่วนยุบในเอทานอล: เฮกเซน (1:1) โดยใช้ 1% Tween 80โซลูชันที่เป็น ﬁnal ความเข้มข้นของ 1024, 512 และ256 มิลลิกรัม/มิลลิลิตร และ sterilized โดยใช้ 0.22 มม. ﬁltrationมาก (MA, USA) และใช้เป็นโซลูชั่นสินค้าคงคลังผงช่วยกำจัดมาตรฐานของแอมพิซิลลิน(แอมป์ Faco), oﬂoxacin (OFX, Roussel มารีอย่างไร Hoechst) และผงมาตรฐานต้านเชื้อรา ketoconazole (KET, Bilim) และ ﬂuconazole (ไข้หวัด Pﬁzer),ได้รับมาจากผู้ผลิตที่เกี่ยวข้องของพวกเขาและละลายในโซลูชันฟอสเฟตบัฟเฟอร์ (pH แอมพิซิลลิน: 8.0, 0.1 โมล/l), dimethylsulphoxide(ketoconazole), น้ำ (ﬂuconazole, oﬂoxacin)มีเตรียมการแก้ตัวแทนหุ้นในขนาดกลางตามคำแนะนำของ NCCLS(คณะกรรมการแห่งชาติ 1996)จุลินทรีย์มาตรฐานและสายพันธุ์แยกต่อไปนี้แบคทีเรีย ได้แก่ E. coli (ATCC 35218), P. aeroginosa (ATCC 10145) E. faecalis (ATCC 29212), และหมอเทศ S. (ATCC 25923) ข้างลายสำหรับกำหนดการกิจกรรมต้านเชื้อแบคทีเรีย และมาตรฐานสายพันธุ์ของซีalbicans (ATCC 10231) และ C. parapsilosis (ATCC22019) ในการกำหนดการกิจกรรมต้านเชื้อราใช้ จุลินทรีย์ได้รับจากภาควิชาจุลชีววิทยาและจุลชีววิทยาคลินิก คณะแพทยศาสตร์ เทคนิค Karadenizมหาวิทยาลัย (ทรับซอนตุรกี) สายพันธุ์ที่แยกต่างหากE. coli, P. aeruginosa, E. faecalis และ S. หมอเทศข้างลายได้รับจากกรมแพทย์จุลชีววิทยา คณะแพทยศาสตร์ มหาวิทยาลัยฆอซี(อังการา)เตรียม inoculumMueller – Hinton ซุป (Difco) และ Mueller Hinton-Agar (Oxoid) ใช้สำหรับการเจริญเติบโต และ dilutingของบริการจุลินทรีย์ก่อนการทดสอบ ทุกสายพันธุ์ของเชื้อรามีอ่างใน Sabouraud agar ขึ้น (SDA) (Oxoid) และบทความในวารสาร160 B. O¨zc elik et al.passaged ที่ให้ความบริสุทธิ์ และชีวิตที่ 351C ใน 24 – 48 h. ห้าอาณานิคมได้ใช้จากแต่ละวัฒนธรรม อาหารสังเคราะห์RPMI 1640 กับ L glutamine ได้ถูกบัฟเฟอร์ pH: 7มี 3- [N-morpholino] -กรด propansulfonic (MOPS)และวัฒนธรรมบริการเตรียมไว้ตามการ NCCLS M27-อ. ยัง มาตรฐาน และแยกสายพันธุ์ของแบคทีเรียถูกปลูกระยะเนนในกลาง (MHB) ที่ C 371 ค้างคืนกับ aerationMicrolitre ยี่สิบของวัฒนธรรมถูกชุบบนMHA หลังจากบ่มค้างคืนที่ 371C ด้วยaeration ประมาณ ﬁve อาณานิคมของวัฒนธรรมถูกชุบ MHBบริการจากแบคทีเรียที่ใช้สำหรับ inoculationได้เตรียมที่ 105cfu/ml โดย diluting สดวัฒนธรรมที่ความหนาแน่น McFarland 0.5 (108cfu/ml)การระงับเชื้อราถูกเตรียม โดยวิธี spectrophotometric การเตรียม inoculum ในการﬁnal วัฒนธรรมทุเลา 2.5 103cfu/ml (คณะกรรมการแห่งชาติ 2002 Baran et al., 1994)ทดสอบการต้านเชื้อแบคทีเรีย และต้านเชื้อราวิธี microdilution ถูกจ้างสำหรับทดสอบกิจกรรมต้านเชื้อแบคทีเรีย และต้านเชื้อรา สื่อมีอยู่ในบ่อแต่ละ 96 ของ microplatesเพิ่มสารสกัดจากโซลูชั่นที่ 256 และ 512mg/mlเป็น ﬁrst raws ของ microplates และสองพับ dilutionsของสารประกอบ (256-0.06 mg/ml) เกิดจากมหาศาลแก้ไขบ่อที่เหลือ สิบบริการวัฒนธรรม microlitre มี inoculated เป็นบ่อทั้งหมด Microplates ปิดผนึกถูก incubated ที่ C 351 ใน 24 และ 48 h ในห้องชื้นความเข้มข้นต่ำสุดของสารสกัดจากการที่ทั้งยับยั้ง macroscopic เติบโตต่ำสุด และกำหนดความเข้มข้นลิปกลอสไขมีรายงาน (MICs) กิจกรรมจุลินทรีย์สารสกัดจากการทดสอบกับแบคทีเรียแกรมบวก สองสองแบคทีเรียแบคทีเรียแกรมลบ และแยกสายพันธุ์ของแบคทีเรียเหล่านี้และเป็นเชื้อรายีสต์เช่นใช้แอมพิซิลลิน oﬂoxacin, ketoconazole และ ﬂuconazole เป็นมาตรฐานCytotoxicity และการทดสอบยาต้านไวรัสเงื่อนไขรายการและเจริญเติบโตของเซลล์Vero เซลล์รายการ (ไตแอฟริกาลิงเขียว) ใช้ในการศึกษานี้ได้รับจากกรมวิทยาไวรัส คณะสัตว มหาวิทยาลัยอังการา(อังการา)วัฒนธรรมของเซลล์ถูกปลูกของอินทรีน้อยที่สุดสำคัญปานกลาง (ซีอาร์) อุดมไปด้วยเซรั่มลูกครรภ์ 10% (FCS) (Biochrom เยอรมนี),100 mg/ml ของ streptomycin และ 100 IU/ml ของยาเพนนิซิลลินในบรรยากาศ humidiﬁed 5% CO2 ที่ c. 371เซลล์ถูกเก็บเกี่ยวโดยใช้โซลูชั่นทริปซิน(Bipco ชีวิตเทคโนโลยี สหราชอาณาจักร)ทดสอบไวรัสเพื่อกำหนดกิจกรรมต้านไวรัสของสารสกัดจาก HSV และ PIV ถูกใช้ ทดสอบไวรัสได้รับจากแผนกชเป็นคณะของสัตวแพทย์ มหาวิทยาลัยอังการากิจกรรมต้านไวรัสสื่อ (ซีอาร์) ถูกวางลงในบ่อแต่ละ 96 ของmicroplates (GreinerRเยอรมัน) มีเพิ่มหุ้นโซลูชั่นของสารสกัดที่เป็น ﬁrst raws

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:[สำเนา]

คัดลอก!

ต้านเชื้อแบคทีเรียเชื้อราไวรัสและกิจกรรมของสารสกัด lipophylic ของ Pistacia หางจระเข้ Berrin O¨zcelikaมุสตาฟาAslanb ,?, Ilkay Orhanb, Taner Karaogluc กรมเภสัชกรรมจุลชีววิทยาคณะเภสัชศาสตร์มหาวิทยาลัย Gazi 06330 อังการาขกรมเภสัชเวทคณะเภสัชศาสตร์มหาวิทยาลัย Gazi, 06330 อังการาคกรมวิทยาคณะสัตวมหาวิทยาลัยอังการา 06100 อังการาประเทศตุรกีได้รับการยอมรับ29 พฤศจิกายน 2004 ข้อมูลอย่างในการศึกษาปัจจุบันต้านเชื้อแบคทีเรียต้านเชื้อราและคุณสมบัติต้านไวรัส 15 lipohylic สารสกัดที่ได้จากส่วนต่าง (ใบสาขาลำต้นเคอร์เนล, สกินเปลือกเมล็ด) ของหางจระเข้ Pistacia ถูกคัดกรองทั้งสองมาตรฐานและสายพันธุ์ที่แยกจากเชื้อEscherichia coli, เชื้อ Pseudomonas aeruginosa, Enterococcus faecalis, Staphylococcus aureus, Candida albicans และ C parapsilosis โดยวิธีการ microdilution ทั้งสองเริมเริม (DNA) และ Parain ชั้น uenza ไวรัส (RNA) ถูกนำมาใช้ในการกำหนดกิจกรรมต้านไวรัสของพีvera โดยใช้สารสกัดจากเซลล์เวโร Ampicilline โอชั้น oxocine, ketoconazole ชั้น uconazole, acyclovir oseltamivir และถูกนำมาใช้เป็นสารควบคุม. สารสกัดมีฤทธิ์ต้านเชื้อแบคทีเรียเล็ก ๆ น้อย ๆ ระหว่างช่วงของ 128-256mg / มิลลิลิตรความเข้มข้นในขณะที่พวกเขามีกิจกรรมต้านเชื้อราที่เห็นได้ชัดเจนในเวลาเดียวกันความเข้มข้น เคอร์เนลและสารสกัดจากเมล็ดมีฤทธิ์ต้านไวรัสสายลาดเทนัยสำคัญเมื่อเทียบกับส่วนที่เหลือของสารสกัดเช่นเดียวกับตัวควบคุม. และเอลส์ 2004 GmbH สงวนลิขสิทธิ์. บทนำยาแผนโบราณตามส่วนใหญ่ในการรักษาโรคพืชได้ถูกนำมาใช้ในการรักษาต่างๆโรคโดยมนุษย์มานานหลายศตวรรษ นอกจากนี้ยังมีพืชที่รู้จักกันดีที่จะเป็นแหล่งที่อุดมไปด้วยทางชีวภาพสาร ดังนั้นวิธีการหนึ่งที่ถูกนำมาใช้สำหรับการค้นพบยาต้านจุลชีพตัวแทนจากแหล่งน้ำธรรมชาติจะขึ้นอยู่กับการประเมินผลของสารสกัดจากพืชแบบดั้งเดิม นอกจากนี้ก็เป็นสิ่งสำคัญที่ได้มาตัวแทนทนต่อจุลินทรีย์ที่ก่อให้เกิดการติดเชื้อสามารถอย่างจริงจังโดยเฉพาะอย่างยิ่งในผู้ป่วยที่ทนต่อimmunosuppressed กับประเพณีของยาต้านจุลชีพ. Pistacia หางจระเข้ลิตรสมาชิกของครอบครัว Anacardiaceae ที่มีถิ่นกำเนิดในเอเชียเล็กน้อยและกระจายอย่างกว้างขวางในภูมิภาคเมดิเตอร์เรเนียนเช่นเดียวกับประเทศสหรัฐอเมริกา ในบรรดา 11 สายพันธุ์ของพืชและสัตว์ Pistacia พีหางจระเข้คือไกลโดยส่วนใหญ่บทความในPRESS www.elsevier.de/micres~~V KEYWORDS กิจกรรมต้านเชื้อแบคทีเรีย; กิจกรรมต้านเชื้อรา; กิจกรรมต้านไวรัส; Pistacia หางจระเข้; Anacardiaceae; สารสกัดจากพืช0944-5013 / $ - เห็น เรื่องด้านหน้าและ 2004 เอลส์ GmbH สงวนลิขสิทธิ์. ดอย: 10.1016 / j.micres.2004.11.002?. ผู้เขียนที่สอดคล้องกันที่อยู่ E-mail: marslan@gazi.edu.tr (เอ็มอัสลาน) .economically หนึ่งที่สำคัญ นอกจากนี้การที่ค่าประหยัดเมล็ดของหางจระเข้พีเป็นอย่างน่าทึ่งที่อุดมไปด้วยไลโนเลอิกและกรดไลโนเลนิ, กรดไขมันที่สำคัญต่อสุขภาพของมนุษย์ (การ์เซีย, et al, 1992;. Maskan และ Karatas, 1998; อัสลาน, et al., 2002; Satil .., et al, 2003) ในทางกลับกันชนิด Pistacia มีรายงานว่ามีฤทธิ์ทางชีวภาพต่างๆเช่นป้องกันหลอดเลือดตีบแข็ง, ลดน้ำตาลในเลือด, สารต้านอนุมูลอิสระป้องกันในชั้น ammatory, และกิจกรรมต่อต้านแมลง (Demo, et al, 1998;. PascualVillalobos และ Robledo, 1998; Giner-Larza et al, 2000;. Dedoussis et al, 2004;. มุนและ Fifi A, 2004). กิจกรรมต้านเชื้อราของน้ำมันหอมระเหยและใบสารสกัดจากสามชนิด Pistacia รวมทั้งหางจระเข้พีได้รับการศึกษา(Duru et al, 2003;.. Kordali, et al, 2003) นอกจากนี้สีเหลืองอ่อนที่ได้จากพี terebinthus ยังใช้เป็นทางเดินปัสสาวะและระบบทางเดินหายใจน้ำยาฆ่าเชื้อในการแพทย์พื้นบ้านตุรกี(Baytop, 1999). บนมืออื่น ๆ , ต้านเชื้อแบคทีเรียต้านเชื้อราและกิจกรรมต้านไวรัสของส่วนอื่นๆ ของหางจระเข้พีได้ไม่ได้รับการศึกษาไกลเหลือเกิน. ในการศึกษาครั้งนี้เรามีวัตถุประสงค์เพื่อตรวจสอบยาต้านจุลชีพและคุณสมบัติต้านไวรัสของชิ้นส่วนที่กินได้และไม่กินของพีหางจระเข้ เกี่ยวกับเรื่องนี้จุดประสงค์ 16 สารสกัด lipophylic ของพืชที่ได้รับการทดสอบกับอีโค, Pseudomonas aeruginosa, Enterococcus faecalis, Staphylococcus aureus, เชื้อ Candida albicans, C parapsilosis, ไวรัสเริม(HSV) Parain fl ไวรัส uenza (PIV) (Jawetz et al., 1991). วัสดุและวิธีพืชวัสดุวัสดุพืช(พีหางจระเข้) ที่ถูกเก็บรวบรวมจาก Nizip, กาเซียนเท็ป, ตุรกีในกันยายน 2003 และใบสาขาลำต้น, สกินเปลือกและเมล็ดถูกแยกออกเป็นรายบุคคล. ชิ้นส่วนของพืชที่ใช้ในการศึกษาครั้งนี้มีจัดประเภทดังนี้ใบสด (PV-FL) ต้นกำเนิด (PV-ST) สาขา (PV-BR) ผิวใหม่ของธรรมชาติ เปลือก -woody (ไม่ใช่การประมวลผล) (PV-FSN) ผิวแห้งของเปลือก naturalwoody (ไม่ใช่การประมวลผล) (PV-DSN) เมล็ดสด(PV-FK) และผิวของเปลือกไม้-ประมวลผล (PV-SPS) เมล็ดพันธุ์ที่ใช้อยู่ในสามประเภทเก็บสองเมืองในตุรกี (Siirt และกาเซียนเท็ป) และอิหร่านในสามขั้นตอนรวมทั้งสุกสุกและประมวลผลและถูกเข้ารหัสดังนี้Siirt ตัวอย่างสุก (PVSR) Siirt ตัวอย่างการประมวลผล (PV- SP) กาเซียนเท็ปตัวอย่างสุก(PV-GU) กาเซียนเท็ปตัวอย่างสุก(PV-GR) กาเซียนเท็ปตัวอย่างการประมวลผล (PV-GP) อิหร่านตัวอย่างสุก(PV-IU), อิหร่านตัวอย่างสุก (PV- IR), อิหร่านตัวอย่างการประมวลผล (PV-IP). การเตรียมสารสกัดส่วนของพี Vera ดังกล่าวข้างต้นถูกสับและการสกัดของกลุ่มตัวอย่างได้ดำเนินการออกมาพร้อมกับเฮกเซนในช่วง 8 ชั่วโมงอย่างต่อเนื่องสำหรับแต่ละส่วนโดยใช้เครื่องมือวิธีการสกัดแบบในการปรากฏตัวของNa2SO4 ปราศจาก หลังจากที่ไฟ ltrating, n-เฮกเซนขั้นตอนระเหยภายใต้สุญญากาศที่401C จะแห้งกร้านและสารสกัดจากlipophylic ที่ได้รับตามที่อธิบายไว้ในการศึกษาก่อนหน้านี้(อัสลาน et al., 2002). การศึกษาทางจุลชีววิทยาวัสดุทดสอบสารสกัดlipophylic ของหางจระเข้พีละลายในเอทานอล: เฮกเซน (1: 1) โดยใช้ 80 Tween 1% วิธีการแก้ปัญหาที่มีความเข้มข้น NAL สาย 1024, 512 และ256mg / ml และผ่านการฆ่าเชื้อโดยสาย ltration ใช้ 0.22mm ค (MA, USA) และใช้เป็นโซลูชั่นหุ้น. มาตรฐานผงต้านเชื้อแบคทีเรีย ของจิบูตี(แอมป์ Faco) o ชั้น oxacin (OFX, Hoechst Marion Roussel) และผงเชื้อรามาตรฐานของ ketoconazole (KET, Bilim) และชั้น uconazole (ไข้หวัดพีไฟ Zer) ที่ได้รับจากผู้ผลิตของตนและละลายในสารละลายฟอสเฟตบัฟเฟอร์ (ampicillin, พีเอช 8.0, 0.1 โมล / ลิตร) dimethylsulphoxide (ketoconazole) ในน้ำ (ชั้น uconazole โอชั้น oxacin). โซลูชั่นหุ้นของตัวแทนได้จัดทำขึ้นกลางตามคำแนะนำ NCCLS ได้เปลี่ยนชื่อ (คณะกรรมการแห่งชาติ, 1996). จุลินทรีย์มาตรฐานและแยกสายพันธุ์ต่อไปนี้เชื้อแบคทีเรีย ได้แก่ เชื้อ E. coli (ATCC 35218) พี aeroginosa (ATCC 10145) E. faecalis (ATCC 29212) และเอส aureus (ATCC 25923) ในการกำหนดกิจกรรมการต้านเชื้อแบคทีเรียและสายพันธุ์มาตรฐานของซีalbicans (ATCC 10231) และ C parapsilosis (ATCC 22019) สำหรับการกำหนดของกิจกรรมต้านเชื้อราถูกนำมาใช้ จุลินทรีย์ที่ได้รับจากภาควิชาจุลชีววิทยาและวิทยาคลินิกคณะแพทยศาสตร์ Karadeniz เทคนิคมหาวิทยาลัย(แทร็ป-ตุรกี) สายพันธุ์ที่แยกจากเชื้อ E. coli, P. aeruginosa, E. faecalis และ S. aureus ที่ได้รับจากกรมแพทย์จุลชีววิทยาคณะแพทยศาสตร์มหาวิทยาลัย Gazi (อังการาตุรกี). กล้าเชื้อเตรียมMueller-Hinton น้ำซุป (Difco) และมูลเลอร์ -Hinton วุ้น (Oxoid) ถูกนำไปใช้สำหรับการเจริญเติบโตและการเจือจางของสารแขวนลอยจุลินทรีย์. ก่อนที่จะทดสอบทุกสายพันธุ์ของเชื้อรามาเลี้ยงใน Sabouraud agar เดกซ์โทรส (SDA) (Oxoid) และบทความในPRESS 160 B. O¨zc-et Elik al.passaged อย่างน้อยสองครั้งเพื่อให้แน่ใจว่ามีความบริสุทธิ์และมีชีวิตที่351C สำหรับ 24-48 ชั่วโมง ห้าอาณานิคมถูกนำมาใช้จากแต่ละวัฒนธรรม กลางสังเคราะห์RPMI-1640 กับ L-glutamine ถูกบัฟเฟอร์ pH: 7 กับ 3 [N-morpholino] กรด -propansulfonic (MOPS) และสารแขวนลอยวัฒนธรรมได้จัดทำขึ้นตามไป NCCLS ได้เปลี่ยนชื่อ M27-A นอกจากนี้มาตรฐานและแยกสายพันธุ์ของเชื้อแบคทีเรียที่เป็นผู้ใหญ่ถึงช่วงที่ชี้แจงในระดับปานกลาง(MHB) ที่ 371C ค้างคืนกับอากาศ. ยี่สิบไมโครลิตรของวัฒนธรรมที่ถูกชุบนั้นเลด หลังจากการบ่มค้างคืนที่ 371C กับอากาศประมาณไฟได้อาณานิคมของวัฒนธรรมที่ถูกชุบMHB. แขวนลอยแบคทีเรียใช้ในการฉีดวัคซีนได้เตรียมที่ 105 cfu / ml โดยเจือจางสดวัฒนธรรมที่McFarland 0.5 ความหนาแน่น (108 cfu / ml). ระงับเชื้อราคือ จัดทำโดยวิธีสเปกของการเตรียมหัวเชื้อที่สายการระงับวัฒนธรรมNAL 2.5 103? cfu / มล. (คณะกรรมการแห่งชาติ., 2002; Baran, et al, 1994). ต้านเชื้อแบคทีเรียและการทดสอบเชื้อราวิธี microdilution ถูกจ้างสำหรับการทดสอบฤทธิ์ต้านแบคทีเรียและเชื้อรา สื่อถูกวางไว้ในแต่ละหลุม 96 ของ microplates. สารสกัดจากโซลูชั่นที่ 256 และ 512mg / ml ถูกเพิ่มเข้ามาในสายแรกของRAWs microplates เจือจางและสองเท่าของสารประกอบ(256-0.06mg / ml) ที่ถูกสร้างขึ้นโดยการจ่ายโซลูชั่นเพื่อที่เหลือหลุม สิบไมโครลิตรสนองวัฒนธรรมถูกเชื้อเข้ามาในบ่อทุกบ่อ ปิดผนึก microplates ถูกบ่มที่ 351C เป็นเวลา 24 และ 48 ชั่วโมงในห้องชื้น. ความเข้มข้นต่ำสุดของสารสกัดที่สมบูรณ์ยับยั้งการเจริญเติบโตด้วยตาเปล่าก็ตั้งใจและความเข้มข้นของการยับยั้งขั้นต่ำ(MICs) ได้รับรายงาน กิจกรรมต้านจุลชีพของสารสกัดได้มีการทดสอบกับสองแกรมบวกสองแบคทีเรียแกรมลบและแยกสายพันธุ์ของเชื้อแบคทีเรียเหล่านี้และเชื้อรายีสต์เช่นใช้ampicillin โอชั้น oxacin, ketoconazole และฟลอริด้า uconazole เป็นมาตรฐาน. Cytotoxicity และการทดสอบไวรัสสายพันธุ์ของเซลล์และการเจริญเติบโตสภาพเวโรเซลล์ (แอฟริกันไตลิงสีเขียว) ที่ใช้ในการศึกษาครั้งนี้ได้รับจากกรมวิทยาคณะสัตวแพทย์มหาวิทยาลัยอังการา(Ankara ตุรกี). วัฒนธรรมของเซลล์ที่ถูกปลูกในอินทรีน้อยที่สุดขนาดกลางที่จำเป็น (EMEM) อุดมไปด้วย 10% ซีรั่มน่องทารกในครรภ์ (FCS) (Biochrom, เยอรมนี) 100 มิลลิกรัม / มิลลิลิตร streptomycin และ 100 IU / ml ของยาปฏิชีวนะในบรรยากาศเอ็ดสาย humidi ของ CO2 5% ที่ 371C. เซลล์เก็บเกี่ยวใช้วิธี trypsin (Bipco ชีวิตเทคโนโลยี สหราชอาณาจักร). ไวรัสทดสอบเพื่อตรวจสอบกิจกรรมต้านไวรัสของสารสกัดจากHSV และ PIV ถูกนำมาใช้ ไวรัสทดสอบที่ได้รับจากกรมวิทยาคณะสัตวแพทย์มหาวิทยาลัยอังการา. กิจกรรมต้านไวรัสมีเดีย (EMEM) ถูกวางไว้ในแต่ละหลุม 96 ของ microplates นี้ (GreinerR, เยอรมนี) การแก้ปัญหาสต็อกของสารสกัดที่ถูกเพิ่มเข้าไปในสายแรก RAWs

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:[สำเนา]

คัดลอก!

แบคทีเรีย , เชื้อรา และกิจกรรมที่ทำให้สารสกัดจากว่านหางจระเข้ lipophylic
o
berrin พิสตาเซียตั้ง zcelika
, มุสตาฟา aslanb ลเคย์ orhanb

, ,

taner karaogluc เป็นภาควิชาจุลชีววิทยาทางเภสัชกรรม คณะเภสัชศาสตร์ มหาวิทยาลัย 06330 Gazi , อังการา , ตุรกี :
b
ภาควิชาเภสัชเวท คณะเภสัชศาสตร์ มหาวิทยาลัย Gazi , 06330 อังการา , ตุรกี
C
ภาควิชาไวรัสวิทยา ,คณะสัตวแพทยศาสตร์ มหาวิทยาลัย 06100 อังการา , อังการา , ตุรกี

รับ 29 พฤศจิกายน 2547 สรุปในการศึกษาปัจจุบัน แบคทีเรีย เชื้อรา ไวรัส และคุณสมบัติของ 15 lipohylic
สารสกัดได้จากส่วนต่าง ๆ ( ใบ กิ่ง ลำต้น แก่น เปลือก เปลือก เมล็ด )
ของพิสตาเซียว่านหางจระเข้มีกับทั้งมาตรฐาน และแยกสายพันธุ์ของ
Escherichia coliเอ็นเทโรค็อกคัส faecalis Pseudomonas aeruginosa , Staphylococcus aureus ,
, C . parapsilosis albicans Candida และโดยวิธี microdilution . ทั้งเริมเริม
( DNA ) และ parain ﬂ uenza ไวรัส ( RNA ) ถูกใช้เพื่อกำหนดกิจกรรมที่ทำให้หน้า
ว่านหางจระเข้สารสกัดโดยใช้เซลล์ Vero . ampicilline โอ ﬂ oxocine
ﬂ uconazole า , , ,โอเซลทามิเวียน และถูกใช้เป็นสารควบคุม สารสกัดจากแบคทีเรีย พบน้อย
กิจกรรมระหว่างช่วง 128 – 256mg / ml ความเข้มข้นในขณะที่พวกเขามีฤทธิ์ต้านรา
เห็นได้ชัดที่ความเข้มข้นเดียวกัน

สารสกัดจากเมล็ดและเมล็ด signi จึงไม่สามารถแสดงฤทธิ์
เมื่อเทียบกับส่วนที่เหลือของส่วนสกัด ตลอดจนการควบคุม .
& 2004 บริษัท GMBHสงวนลิขสิทธิ์ .

แนะนำยาแผนโบราณส่วนใหญ่บนพื้นฐานของพืชสมุนไพร
มีการใช้สำหรับการรักษาของโรคต่างๆ
โดยมนุษย์มานานหลายศตวรรษ พืชยังมี
รู้จักกันดีเป็นแหล่งอุดมของชีวภาพ
ปราดเปรียวสารประกอบ ดังนั้นวิธีการหนึ่งที่ถูกนำมาใช้สำหรับการค้นพบ

ของยาต้านจุลชีพตัวแทนจากแหล่งธรรมชาติตาม
ผลของสารสกัดจากพืชพื้นบ้าน นอกจากนี้ก็เป็นสิ่งสำคัญที่ได้รับตัวแทน
ป้องกันจุลินทรีย์ที่สามารถก่อให้เกิดการติดเชื้ออย่างรุนแรงโดยเฉพาะอย่างยิ่งใน
immunosuppressed ผู้ป่วยทนต่อการใช้ยาต้านจุลชีพด้วย
.
พิสตาเซียร่า แอล สมาชิกของครอบครัว Anacardiaceae
, พื้นเมืองเอเชียน้อยและกระจายอย่างกว้างขวางในภูมิภาคเมดิเตอร์เรเนียนรวมทั้งสหรัฐอเมริกา

ระหว่าง 11ชนิดของพิสตาเซียสกุล , หน้าว่านหางจระเข้ โดยไกลที่สุด

บทความกด www.elsevier . de / micres

กิจกรรมกิจกรรมการต้านเชื้อรา ;
; ฤทธิ์ต้านไวรัส ;

Anacardiaceae พิสตาเซียร่า ; สารสกัดจากพืช ;

0944-5013 / $ - เห็นหน้า& 2004 บริษัท Gmbh เรื่องสิทธิสงวน
ดอย : 10.1016 / j.micres . 2004.11.002

สอดคล้องกัน ผู้เขียน อีเมล : marslan@gazi.edu.tr ( ม. อัสลาน )ความสําคัญทางเศรษฐกิจ . นอกจากประหยัดค่าของมัน
, เมล็ดของหน้าว่านหางจระเข้บน
อุดมไปด้วย linoleic และกรดไลโนเลนิค , กรดไขมันสำคัญ
สำหรับสุขภาพของมนุษย์ ( การ์เซีย et al . , 1992 ; maskan และ
karatas , 1998 ; อัสลาน et al . , 2002 ; satil et al . , 2003 ) .
บนมือ อื่น ๆ , พิสตาเซียชนิดรายงาน
มีฤทธิ์ทางชีวภาพต่างๆ เช่น ป้องกันภาวะน้ำตาลในเลือดต่ำ atherogenic , ,สารต้านอนุมูลอิสระ ป้องกันในﬂ ammatory
, และกิจกรรมต่อต้านแมลง ( สาธิต et al . , 1998 ; pascualvillalobos และ robledo , 1998 ; พูล larza et al . , 2000 ;
dedoussis et al . , 2004 ; Hamdan และﬁﬁ , 2004 ) .
ฤทธิ์ต้านราของน้ำมันหอมระเหยและสารสกัดจากใบ
3 พิสตาเซียชนิดรวมทั้งหน้าว่านหางจระเข้
ปรีดี ( ดูรู et al . , 2003 ;
kordali et al . , 2003 ) นอกจากนี้ สีเหลืองอ่อนที่ได้จากหน้าterebinthus ยังใช้เป็นปัสสาวะและระบบทางเดินหายใจ
ยาฆ่าเชื้อโรคในการแพทย์พื้นบ้านตุรกี ( baytop , 1999 ) .
บนมืออื่น ๆ , แบคทีเรีย , เชื้อราและ
กิจกรรมทำให้ส่วนอื่นของหน้า ว่านหางจระเข้มี
ไม่ได้มีการศึกษามาก ในการศึกษานี้จึงมุ่งที่จะศึกษาฤทธิ์ต้านจุลชีพ

และคุณสมบัติของที่กินได้และไม่กินส่วนของหน้าว่านหางจระเข้ ในการนี้
,16 สารสกัด lipophylic ของพืช
ทดสอบต่อเชื้อ Escherichia coli , Pseudomonas aeruginosa , Staphylococcus aureus ,
faecalis เอ็นเทโรค็อกคัส , Candida albicans , C . parapsilosis เริม ( HSV ) , ไวรัส
parain ﬂ uenza ไวรัส ( piv ) ( jawetz et al . , 1991 ) วัสดุและวิธีการ

( วัสดุวัสดุปลูกพืช หน้าว่านหางจระเข้ ) เก็บรวบรวมข้อมูลจาก nizip
, กาเซียนเท็ป , ตุรกีในเดือนกันยายน 2546 และ
ใบ

การแปล กรุณารอสักครู่..

ภาษาอื่น ๆ

การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.