3. Results3.1. Bacterial challengeF

3. Results
3.1. Bacterial challenge
Fig. 1A–D shows photographs of M. digitata branches after incubation
under the four conditions (at 27 °C and 32 °C without and with
the addition of bacteria). Branches at 27 °C did not show any signs
of bleaching, without or with the addition of bacteria (Fig. 1A, B).
The loss of pigmentation at high temperature (Fig. 1C, D) was apparent,
especially when bacteria were added (Fig. 1D). Branches exposed
to high temperature without bacteria showed moderate signs of
bleaching and loss of coloration (Fig. 1C); with the addition of bacteria
at 32 °C, bleaching was increased, and the most affected coral
branches showed signs that could be interpreted as necrosis, especially
on the coenosarc (Fig. 1D).
During challenge with individual bacterial strains, the appearance
of branches that were incubated in the presence of V. coralliilyticus,
V. harveyi, P. carotinifaciens, or Pseudoalteromonas sp. did not change
after 4 days of incubation at 32 °C and appeared to be as healthy as
the branches shown in Fig. 1A and B. The Fv/Fm ratios of these
branches were relatively stable. All five replicates maintained their
coloration and expanded their polyps. However, branches in the
presence of Sulfitobacter sp. at 32 °C exhibited signs of severe bleaching
and some tissue necrosis (Fig. 1E), and the Fv/Fm ratio was decreased
by about 24% compared with control branches.3.2. Physiological response of corals
The density of zooxanthellae in M. digitata (Fig. 2A) did not significantly
decrease at 27 °C with the addition of bacteria (ANOVA,
P>0.05; Table 1). However, M. digitata was bleached and the zooxanthellae
density was significantly decreased by high-temperature
stress (ANOVA, Pb0.001). As shown in Figs. 1 and 2A, corals were
bleached dramatically under the synergistic stresses of high temperature
and bacteria. The zooxanthellae density in M. digitata decreased
by approximately 45% (HSD, Pb0.05) under high temperature and
by approximately 70% in the combined high temperature and bacteria
conditions at day 8.
The Fv/Fm ratio (Fig. 2B) significantly changed at high temperature
with bacterial addition (HSD, Pb0.05). Two-way ANOVA showed
a significant effect of temperature on the maximum photosynthetic
yield on day 8 (P=0.003). The Fv/Fm ratio of coral at high temperature
with inoculation was significantly lower than the ratios of corals
with the other treatments, with average values of 0.57±0.02 and
0.67±0.05, 0.77±0.02 and 0.74±0.04 at 32 °C and 27 °C with and
without bacteria, respectively. Thus, bacterial inoculation decreased
photosynthetic efficiency by about 25% at 32 °C.
The primary production rates at each treatment are shown in
Fig. 2C. The primary production rate was not affected by the addition
of bacteria at 27 °C (1.03±0.06 μg C cm−2 h−1 with control treatment
vs. 1.14±0.12 μg C cm−2 h−1 with bacterial treatment). However,
temperature stress significantly decreased primary production
(ANOVA, Pb0.001). Moreover, the synergistic stress of high temperature
with bacteria significantly affected the primary production
rate (ANOVA, P=0.024). At an elevated temperature of 32 °C, primary
production was significantly decreased by about 28% (HSD,
Pb0.05), to an average value of 0.74±0.04 μg Ccm−2 h−1. At elevated
temperature with bacteria, primary production was also significantly
decreased by about 66% (HSD, Pb0.05), to an average of 0.35±
0.10 μg C cm−2 h−1.
Fig. 2D shows the respiration rates for each condition. Respiration
rates increased by approximately 30% (ANOVA, P=0.002) under high
temperature, to 0.50±0.03 and 0.49±0.01 μmol O2 cm−2 h−1 at
high temperature without and with bacteria, respectively. However,
the addition of bacteria did not affect the respiration rate at either
temperature.
The calcification rate (Fig. 2E) was not significantly decreased by the
addition of bacteria at 27 °C, with rates of 0.41±0.05 μmol cm−2 h−1
for the control treatment and 0.30±0.06 μmol cm−2 h−1 with the addition
of bacteria. However, temperature stress significantly affected
the calcification rate (ANOVA, Pb0.001), which decreased to 0.09±
0.02 μmol cm−2 h−1 at 32 °C, representing a decrease of about 77%
(HSD, Pb0.05). Moreover, the combined stresses of high temperature
and bacteria greatly decreased the calcification rate, by about 101%
(HSD, Pb0.05), with a net dissolution of calcium carbonate from
the coral occurring on day 8 at 32 °C with bacteria (−0.01±
0.01 μmol cm−2 h−1).
3.3. Nutrient dynamics
Inorganic nutrient dynamics showed important variation among
replicates. Both uptake and release occurred, as shown in Fig. 3 by
the positive fluxes (release) and negative fluxes (uptake). The averages
of the initial concentrations of nitrate, nitrite, ammonium, and
phosphate ions were 0.04, 0.01, 0.27, and 0.09 μM, respectively. The
initial concentrations of these nutrients did not change with the addition
of bacteria. Generally, fluxes of nutrients were low, with values
often near 0. On day 0 in control branches, a net uptake of inorganic
nutrients was observed, with the exception of phosphate, which
was almost always released throughout the experiment. The only significant
difference detected among treatments was that the release of
ammonium ions was slightly increased on day 8 with the addition ofbacteria (ANOVA, P=0.018), being 1.5±0.5 nmol cm−2 h−1 and
1.07±0.18 nmol cm−2 h−1 at 27 °C and 32 °C, respectively.
Organic nitrogen (Fig. 3E) was always released under high temperature
at a significantly higher rate than control on day 0. On days 4
and 8, no significant differenceswere found, as branches at lowtemperature
also released organic nitrogen. The fluxes of TONwere−3.4±2.7
and 11.0±4.1 nmol cm−2 h−1 on day 0 at 27 °C and 32 °C, respectively,
and 6.4±1.1 and 4.8±3.9 nmol cm−2 h−1 on day 8 at 27 °C and
32 °C, respectively. The dynamics of organic phosphate (Fig. 3F) and organic
nitrogen were comparable, with significantly higher release vs.
uptake rates on day 0 for branches incubated at high temperature
(0.69±0.05 and −0.20±0.16 nmol cm−2 h−1, respectively). However,
on day 8, the TOP dynamic differed from the TON dynamic, as
branches incubated at 32 °C took up TOP, whereas branches incubated
at 27 °C released TOP. No observable effects of the addition of bacteria
on organic nitrogen and phosphatewere found,with values comparable
to treatments without the addition of bacteria.
3.4. Antioxidant enzymes (SOD and CAT)
Fig. 4A and B shows the effects of high temperature and bacteria
on the SOD activity of coral tissue and in isolated zooxanthellae.
There was no significant difference in the SOD activity of coral tissue
or zooxanthellae among experimental conditions during the exposure
period. Fig. 4C and D shows the effects of high temperature
and bacteria on the CAT activity of coral tissue and isolated zooxanthellae.
CAT activity was significantly increased at high temperature
in coral tissue (ANOVA, P=0.001). CAT activities in host coral and zooxanthellae
did not significantly increase with the addition of bacteria.
There were significant differences between treatments with and
without bacteria at high temperature compared with the control
(HSD, Pb0.05). There were no significant differences in CAT activity
of zooxanthellae between conditions.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

3. ผลลัพธ์3.1. แบคทีเรียท้าทายFig. 1A – D แสดงภาพถ่ายสาขา digitata เมตรหลังจากบ่มภายใต้เงื่อนไข 4 (ที่ 27 ° C และ 32 ° C มี และไม่มีการเพิ่มของแบคทีเรีย) สาขาที่ 27 ° C ไม่แสดงสัญญาณใด ๆการฟอกสี ไม่มี หรือ มีการเพิ่มของแบคทีเรีย (Fig. 1A, B)การสูญเสียของผิวคล้ำที่อุณหภูมิสูง (Fig. 1C, D) เป็นที่แน่ชัดโดยเฉพาะอย่างยิ่งเมื่อแบคทีเรียเพิ่ม (Fig. 1D) สาขาที่เปิดเผยอุณหภูมิสูงโดยแบคทีเรียพบสัญญาณปานกลางฟอกสีและย้อมสี (Fig. 1C); สูญเสีย ด้วยการเพิ่มของแบคทีเรียที่ 32 ° C ฟอกสีเพิ่มขึ้น และปะการังได้รับผลกระทบมากที่สุดสาขาแสดงให้เห็นว่าสัญญาณที่อาจจะตีความเป็นการตายเฉพาะส่วน โดยเฉพาะอย่างยิ่งใน coenosarc (Fig. 1D)ระหว่างความท้าทายกับแต่ละสายพันธุ์แบคทีเรีย ลักษณะที่ปรากฏสาขาที่ถูก incubated หน้า V. coralliilyticusV. harveyi, P. carotinifaciens หรือ Pseudoalteromonas sp.ได้ไม่เปลี่ยนแปลงหลังจาก 4 วันของการฟักตัวที่ 32 ° C และปรากฏ ว่าเป็นสุขภาพเป็นสาขาการแสดงใน Fig. 1A และ b อัตราส่วน Fv/Fm เหล่านี้สาขาค่อนข้างมีเสถียรภาพ ทั้งหมดห้าเหมือนกับรักษาของพวกเขาย้อมสี และขยาย polyps ของพวกเขา อย่างไรก็ตาม สาขาในการของ Sulfitobacter sp.ที่ 32 ° C จัดแสดงสัญญาณการฟอกสีอย่างรุนแรงและบางเนื้อเยื่อการตายเฉพาะส่วน (Fig. 1E), และอัตราส่วน Fv/Fm ได้ลดลงประมาณ 24% เมื่อเทียบกับ branches.3.2 ตัวควบคุม สรีรวิทยาการตอบสนองของปะการังความหนาแน่นของ zooxanthellae ใน digitata M. (Fig. 2A) ได้อย่างไม่มีนัยสำคัญลดที่ 27 ° C ด้วยการเพิ่มของแบคทีเรีย (การวิเคราะห์ความแปรปรวนP > 0.05 ตาราง 1) อย่างไรก็ตาม M. digitata ถูก bleached และ zooxanthellaeความหนาแน่นได้อย่างมีนัยสำคัญลดอุณหภูมิสูงความเครียด (การวิเคราะห์ความแปรปรวน Pb0.001) ตามที่แสดงใน Figs. 1 และ 2A ปะการังได้bleached ภายใต้อุณหภูมิสูงมีเสน่ห์พลังอย่างมากและแบคทีเรีย ความหนาแน่น zooxanthellae ใน digitata เมตรลดลงประมาณ 45% (HSD, Pb0.05) ภายใต้อุณหภูมิสูง และประมาณ 70% ในอุณหภูมิสูงรวมกับแบคทีเรียเงื่อนไขวัน 8อัตรา Fv/Fm (Fig. 2B) ที่เปลี่ยนแปลงอย่างมีนัยสำคัญที่อุณหภูมิสูงด้วยการเพิ่มแบคทีเรีย (HSD, Pb0.05) แสดงให้เห็นว่าการวิเคราะห์ความแปรปรวนสองทางสำคัญผลของอุณหภูมิสูงสุด photosyntheticผลผลิตใน 8 วัน (P = 0.003) อัตราส่วน Fv/Fm ของเฮที่อุณหภูมิสูงกับ inoculation ไม่ต่ำกว่าอัตราส่วนของแนวปะการังกับการรักษาอื่น ๆ ค่าเฉลี่ยของ 0.57±0.02 และ0.67±0.05, 0.77±0.02 และ 0.74±0.04 ที่ 32 ° C และ 27 ° C ด้วย และโดยแบคทีเรีย ตามลำดับ ดังนั้น inoculation แบคทีเรียลดลงphotosynthetic ประสิทธิภาพประมาณ 25% ที่ 32 องศาเซลเซียสแสดงราคาผลิตหลักในแต่ละทรีทเม้นต์Fig. 2C. ไม่มีผลต่ออัตราการผลิตหลักด้านนอกของแบคทีเรียที่ 27 ° C (1.03±0.06 μg C cm−2 h−1 ด้วยการรักษาควบคุมเทียบกับ 1.14±0.12 μg C cm−2 h−1 กับแบคทีเรียรักษา) อย่างไรก็ตามอุณหภูมิความเครียดอย่างมีนัยสำคัญลดลงผลิตหลัก(การวิเคราะห์ความแปรปรวน Pb0.001) ยิ่งไปกว่านั้น ความเครียดพลังของอุณหภูมิสูงมีแบคทีเรียมากผลผลิตหลักอัตรา (การวิเคราะห์ความแปรปรวน P = 0.024) ที่อุณหภูมิ 32 ° C หลักสูงขึ้นผลิตได้อย่างมีนัยสำคัญลดประมาณ 28% (HSDPb0.05), ค่าเฉลี่ยของ 0.74±0.04 μg Ccm−2 h−1 ในการยกระดับอุณหภูมิกับแบคทีเรีย ผลิตหลักยังเป็นอย่างมากลดลง โดยประมาณ 66% (HSD, Pb0.05), การเฉลี่ยของ 0.35±0.10 μg C cm−2 h−1Fig. 2D แสดงอัตราการหายใจสำหรับแต่ละเงื่อนไข หายใจราคาเพิ่มขึ้นประมาณ 30% (การวิเคราะห์ความแปรปรวน P = 0.002) ภายใต้สูงอุณหภูมิ การ 0.50±0.03 และ 0.49±0.01 μmol O2 cm−2 h−1 ที่อุณหภูมิสูงที่มี และไม่ มี แบคทีเรีย ตามลำดับ อย่างไรก็ตามการเพิ่มของแบคทีเรียไม่มีผลต่ออัตราการหายใจที่ทั้งอุณหภูมิอัตรา calcification (Fig. 2E) มีไม่มากลดลงโดยการเพิ่มแบคทีเรียที่ 27 ° C ด้วยราคาที่ของ 0.41±0.05 μmol cm−2 h−1สำหรับการควบคุมบำบัดและ 0.30±0.06 μmol cm−2 h−1 ด้วยการเพิ่มของแบคทีเรีย อย่างไรก็ตาม ความเครียดอุณหภูมิอย่างมากได้รับผลกระทบcalcification อัตรา (การวิเคราะห์ความแปรปรวน Pb0.001), ซึ่งลดลงถึง 0.09±H−1 cm−2 0.02 μmol ที่ 32 ° C แสดงถึงการลดลงของประมาณ 77%(HSD, Pb0.05) ยิ่งไปกว่านั้น ความตึงเครียดรวมของอุณหภูมิสูงและแบคทีเรียลดลงอัตรา calcification มาก โดยประมาณ 101%(HSD, Pb0.05), กับยุบสุทธิของแคลเซียมคาร์บอเนตจากปะการังที่เกิดขึ้นในวันที่ 8 ที่ 32 ° C ด้วยแบคทีเรีย (−0.01±0.01 μmol cm−2 h−1)3.3. วเทDynamics ธาตุอาหารอนินทรีย์ที่แสดงให้เห็นการเปลี่ยนแปลงที่สำคัญในเหมือนกับการ ดูดซับและนำออกใช้เกิดขึ้น แสดงใน 3 Fig. โดยบวก fluxes (ปล่อย) และค่าลบ fluxes (ดูดซับ) ค่าเฉลี่ยของความเข้มข้นเริ่มต้นของไนเตรต ไนไตรต์ แอมโมเนีย และฟอสเฟตประจุได้ 0.04, 0.01, 0.27 และ 0.09 μM ตามลำดับ ที่ไม่ได้เปลี่ยนแปลงความเข้มข้นเริ่มต้นของสารอาหารเหล่านี้ได้ ด้วยการเพิ่มของแบคทีเรีย ทั่วไป fluxes ของสารอาหารต่ำ มีค่ามักจะใกล้ 0 วัน 0 สาขาควบคุม ดูดซับสุทธิของอนินทรีย์สารอาหารถูกสังเกต ยกเว้น ฟอสเฟตซึ่งถูกปล่อยออกมาทดลองเกือบตลอดเวลา สำคัญเท่านั้นความแตกต่างที่พบระหว่างการรักษาเป็นที่ปล่อยของประจุแอมโมเนียเพิ่มขึ้นเล็กน้อยในวันที่ 8 กับ ofbacteria นี้ (การวิเคราะห์ความแปรปรวน P = 0.018), การ 1.5±0.5 nmol cm−2 h−1 และ1.07±0.18 h−1 cm−2 nmol ที่ 27 ° C 32 ° C ตามลำดับอินทรีย์ไนโตรเจน (Fig. 3E) มักจะออกภายใต้อุณหภูมิสูงในอัตราสูงอย่างมีนัยสำคัญกว่าควบคุมวัน 0 ในวันที่ 4และ 8, differenceswere ไม่สำคัญพบ เป็นสาขาที่ lowtemperatureนอกจากนี้ ปล่อยไนโตรเจนอินทรีย์ Fluxes ของ TONwere−3.4±2.711.0±4.1 h−1 cm−2 nmol วัน 0 ที่ 27 ° C 32 ° C และ ตามลำดับและ 6.4±1.1 และ 4.8±3.9 nmol cm−2 h−1 ในวันที่ 8 ที่ 27 ° C และ32 ° C ตามลำดับ ของอินทรีย์ฟอสเฟต (Fig. 3F) และอินทรีย์ไนโตรเจน เปรียบเทียบกับเทียบกับรุ่นสูงกว่าอย่างมีนัยสำคัญได้อัตราการดูดซับในสาขาละ 0 วัน incubated ที่อุณหภูมิสูง(0.69±0.05 และ −0.20±0.16 nmol cm−2 h−1 ตามลำดับ) อย่างไรก็ตามในวันที่ 8 แบบไดนามิกสูงสุดแตกต่างจากไดนามิกตัน เป็นสาขาที่ 32 ° C incubated เอาขึ้นด้านบน ในขณะที่สาขา incubatedที่ 27 ° C ออกด้านบน ไม่มีผล observable การเพิ่มของแบคทีเรียอินทรีย์ไนโตรเจนและ phosphatewere พบ มีค่าเทียบเท่าการรักษาโดยการเพิ่มของแบคทีเรีย3.4 การต้านอนุมูลอิสระเอนไซม์ (สดและแมว)Fig. 4A และ B แสดงผลของอุณหภูมิสูงและแบคทีเรียกิจกรรมสด ของเนื้อเยื่อปะการัง และแยก zooxanthellaeมีไม่แตกต่างอย่างมีนัยสำคัญในกิจกรรมสดของเนื้อเยื่อปะการังหรือ zooxanthellae ระหว่างเงื่อนไขทดลองในระหว่างการเปิดรับแสงรอบระยะเวลา Fig. 4C และ D แสดงผลของอุณหภูมิสูงและแบคทีเรียในกิจกรรม CAT ของเนื้อเยื่อปะการังและแยก zooxanthellaeกิจกรรมแมวเพิ่มขึ้นอย่างมีนัยสำคัญที่อุณหภูมิสูงในเนื้อเยื่อปะการัง (การวิเคราะห์ความแปรปรวน P = 0.001) กิจกรรม CAT ในโฮสต์ปะการังและ zooxanthellaeไม่ไม่อย่างมีนัยสำคัญเพิ่มขึ้นกับการเพิ่มของแบคทีเรียมีความแตกต่างอย่างมีนัยสำคัญระหว่างมี และโดยแบคทีเรียอุณหภูมิสูงเมื่อเทียบกับตัวควบคุม(HSD, Pb0.05) มีไม่แตกต่างกันในกิจกรรม CATของ zooxanthellae ระหว่างเงื่อนไข

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

3 . ผลลัพธ์
3.1 . แบคทีเรียท้าทาย
รูปที่ 1A – D แสดงภาพถ่ายของสาขาม. digitata หลังจากบ่ม
ภายใต้เงื่อนไขทั้งสี่ ( ที่ 27 ° C และ 32 ° C มี
นอกจากแบคทีเรีย ) สาขาที่ 27 องศา C ไม่แสดงสัญญาณใด ๆของการฟอก
โดยไม่ต้องหรือด้วยการเพิ่มของแบคทีเรีย ( รูปที่ 1A , B )
การสูญเสียของการย้อมสีที่อุณหภูมิสูง ( ภาพ c , d )
แจ้งโดยเฉพาะอย่างยิ่งเมื่อแบคทีเรียเพิ่ม ( ฟิค 1D ) สาขาตาก
อุณหภูมิสูงโดยไม่มีสัญญาณของการใช้แบคทีเรีย
และการสูญเสียสี ( ภาพที่ 1c ) ; กับการเพิ่มของแบคทีเรีย
ที่ 32 ° C , ฟอกขาวเพิ่มขึ้น และส่งผลให้ปะการัง
สาขา พบสัญญาณที่อาจถูกตีความว่าเป็นเนื้อร้ายโดยเฉพาะอย่างยิ่ง
( รูปบน coenosarc 1D )
ในแต่ละความท้าทายกับแบคทีเรีย , ลักษณะ
สาขาที่บ่มในการแสดงตนของ coralliilyticus
V , V . harveyi , หน้า carotinifaciens หรือ pseudoalteromonas sp . ไม่เปลี่ยนแปลง
หลังจาก 4 วันของการบ่มที่ 32 ° C และปรากฏเป็นสุขภาพ
สาขาแสดงในรูป 1A และ 2 / 2 . FM ต่อสาขาเหล่านี้
ได้ค่อนข้างมั่นคงทั้งหมด 5 แบบรักษาสีและขยายพวกเขา
polyps ของพวกเขา อย่างไรก็ตาม สาขาใน
ตนของ sulfitobacter sp . ที่ 32 ° C แสดงสัญญาณของการฟอกขาวและตาย
ทิชชู่ ( รูปที่ 1e ) และ FV / FM มีอัตราส่วนลดลง
โดยประมาณ 24% เมื่อเทียบกับสาขาควบคุม 3.2 . การตอบสนองทางสรีรวิทยาของปะการัง
ความหนาแน่นของซูแซนเทลลา digitata ( รูปในม.2A ) ไม่ได้ลดลงอย่างมีนัยสำคัญ
ที่ 27 ° C ด้วยการเพิ่มของแบคทีเรีย ( ANOVA ,
p > 0.05 ; ตารางที่ 1 ) อย่างไรก็ตาม ม. digitata เป็นฟอกขาวและซูซานแทลลี่
ความหนาแน่นลดลงโดยความเครียดสูง -
( ANOVA pb0.001 ) ตามที่แสดงในผลมะเดื่อ . 1 และ 2A , ปะการังฟอกขาว คือ
อย่างมากภายใต้ความเค้นที่อุณหภูมิสูง
และแบคทีเรีย โดยซูซานแทลลี่ความหนาแน่นในม.digitata ลดลงประมาณ 45% ( HSD
,
pb0.05 ) ภายใต้อุณหภูมิสูงและประมาณ 70% ในอุณหภูมิสูงผสมและแบคทีเรีย
เงื่อนไขในวันที่ 8
2 / FM ( รูปที่ 2B ) มีอัตราส่วนการเปลี่ยนแปลงที่อุณหภูมิสูงด้วยแบคทีเรีย
นอกจากนี้ ( HSD pb0.05 , ) สอง Way ANOVA พบว่าผลของอุณหภูมิต่อ

ต่อการสังเคราะห์แสงสูงสุด 8 วัน ( P = 0.003 )โดย FV FM / อัตราส่วนของปะการังที่
อุณหภูมิสูงกับการลดลงของอัตราส่วนปะการัง
กับการรักษาอื่น ๆที่มีค่าเฉลี่ยของจำนวน± 0.02 และ 0.05 จำนวน±
0.67 , 0.02 และ 0.04 ± 0.74 ±ที่ 32 ° C และ 27 ° C และ
ปราศจากแบคทีเรีย ตามลำดับ ดังนั้นแบคทีเรียเชื้อลดลงประสิทธิภาพการสังเคราะห์แสงประมาณ 25 %

ที่ 32 องศาการรักษาแต่ละอัตราการผลิตที่แสดงในรูปที่ 2
. อัตราการผลิตหลักไม่ได้รับผลกระทบ โดยการเพิ่มของแบคทีเรียที่ 27 /
c ( 1.03 ± 0.06 μ G C cm − 2 H − 1 ที่มีการควบคุมการรักษา
vs 1.14 ± 0.12 μ G C cm − 2 H − 1 กับแบคทีเรีย การรักษา ) อย่างไรก็ตาม ความเครียด อุณหภูมิลดลง

การผลิตหลัก ( ANOVA pb0.001 ) นอกจากนี้ความเครียดที่
อุณหภูมิสูงด้วยแบคทีเรียที่มีผลต่ออัตราการผลิต
หลัก ( ANOVA , p = 0.024 ) ที่อุณหภูมิ 32 องศา C , การผลิตหลัก
อย่างมีนัยสำคัญลดลงประมาณ 28% ( HSD
pb0.05 , ) , ค่าเฉลี่ย 0.74 ± 0.04 กรัมμ CCM − 2 H − 1 ที่อุณหภูมิสูง
แบคทีเรีย , การผลิตหลักคืออย่างมีนัยสำคัญ
ลดลงประมาณ 66 % ( HSD ,pb0.05 ) เพื่อเฉลี่ย 0.35 ±
0.10 μ G C cm − 2 H − 1 .
ภาพ 2D แสดงอัตราการหายใจในแต่ละเงื่อนไข อัตราการหายใจ
เพิ่มขึ้นประมาณ 30% ( ANOVA , p = 0.002 ) ภายใต้อุณหภูมิสูง
, 0.50 ± 0.03 และ 0.49 ± 0.01 โมลμ O2 H − 1 cm − 2 ที่
อุณหภูมิสูงโดยไม่และแบคทีเรีย ตามลำดับ อย่างไรก็ตาม ,
นอกจากแบคทีเรียไม่มีผลต่ออัตราการหายใจที่ทั้ง
อุณหภูมิ อัตราการเสื่อม
( รูปที่ 2 ) ไม่ได้ลดลงโดย
นอกจากนี้แบคทีเรียใน 27 ° C กับอัตรา 0.41 ± 0.05 μ mol − 1 cm − 2 H
สำหรับการควบคุมการรักษาและ 0.30 ± 0.06 μ mol − 2 H − 1 ซม. ด้วยนอกจากนี้
ของแบคทีเรีย อย่างไรก็ตาม ความเครียด อุณหภูมิ มีผลต่ออัตรา
หินปูน ( ANOVA , pb0.001 ) ซึ่งลดลง 0.09 ±
0.02 μ mol cm − 2 H − 1 ใน 32 ° Cซึ่งลดลงจากประมาณ 77 %
( HSD pb0.05 , ) นอกจากนี้ความเครียดรวมของอุณหภูมิสูง
และแบคทีเรียลดลงอย่างมากโดยเรือพระที่นั่ง ซึ่งประมาณ 101 %
( HSD pb0.05 , ) กับการสลายตัวของแคลเซียมคาร์บอเนตจากสุทธิ
ปะการังเกิดขึ้นในวันที่ 8 ที่ 32 ° C กับแบคทีเรีย ( − 0.01 0.01 เซนติเมตร±
μ mol − 2 H − 1 ) .
3 . สารอาหาร
พลศาสตร์มีการเปลี่ยนแปลงที่สำคัญของสารอาหารอนินทรีย์พลวัต
ซ้ํา ทั้งการใช้และปลดปล่อยเกิดขึ้น ดังแสดงในรูปที่ 3 โดย
2 ( รุ่น 2 ) บวกและลบ ( การใช้ ) ค่าเฉลี่ย
ของความเข้มข้นเริ่มต้นของไนเตรต ไนไตรท์ แอมโมเนีย และฟอสเฟตไอออน (
0.04 , 0.01 , 0.27 และ 0.09 μเมตร ตามลำดับ
ความเข้มข้นเริ่มต้นของสารอาหารเหล่านี้ไม่ได้เปลี่ยนด้วยนอกจากนี้
ของแบคทีเรีย โดยฟลักซ์ของสารอาหารต่ำ ด้วยค่า
มักจะใกล้ 0 ในวันที่ 0 ในสาขา ควบคุมการใช้เน็ตของสารอาหารอนินทรีย์
) ด้วยข้อยกเว้นของฟอสเฟตซึ่ง
แทบจะทุกครั้งออกตลอดการทดลอง ที่สําคัญเท่านั้น
ความแตกต่างระหว่างการรักษาพบว่าปล่อย
ไอออนแอมโมเนียมเพิ่มขึ้นเล็กน้อยในวันที่ 8 ด้วยนอกจากนี้ ofbacteria ( ANOVA , p = 0.018 ) เป็น 1.5 ± 0.5 cm −− 1 ? 2 H
1.07 และ± 0.18 ? cm − 2 H − 1 ใน 27 ° C และ 32 ° C ตามลำดับ
อินทรีย์ไนโตรเจน ( รูป 3E ) มักจะปล่อยออกมาภายใต้อุณหภูมิสูง
ในอัตราสูงกว่าการควบคุมในวัน 0 และในวันที่ 4
8ไม่พบ differenceswere พบ เป็นสาขาที่อุณหภูมิต่ำ
ก็ปล่อยไนโตรเจนอินทรีย์ ต่อจาก tonwere − 11.0 และ 3.4 ± 2.7
± 4.1 ? cm − 2 H − 1 วัน 0 27 ° C และ 32 ° C )
อายุ± 1.1 และ 4.8 ± 3.9 ? cm − 2 H − 1 ใน 8 วันที่ 27 ° C
32 ° C ตามลำดับ . พลวัตของอินทรีย์ฟอสเฟต ( ภาพที่ 3 เอฟ ) และอินทรีย์ไนโตรเจน
ถูกเปรียบกับสูงกว่าอัตราการปลดปล่อยและ
0
วันกิ่ง บ่มที่อุณหภูมิสูง ( 0.69 ± 0.05 และ− 0.20 ± 0.16 ? cm − 2 H − 1 ตามลำดับ ) อย่างไรก็ตาม ในวันที่ 8
, ด้านบนแบบแตกต่างจากตันแบบไดนามิกที่อุณหภูมิ 32 องศา C
กิ่งเอาขึ้นด้านบน ส่วนสาขาที่ 27 ° C )
ออกด้านบน ไม่สังเกตผลของการเติมแบคทีเรีย
ไนโตรเจนอินทรีย์และ phosphatewere พบ ด้วยค่าเทียบเท่า
เพื่อรักษาโดยไม่ต้องเพิ่มของแบคทีเรีย .
3.4 . สารต้านอนุมูลอิสระเอนไซม์ ( สดและแมว )
4 B รูปและแสดงผลของอุณหภูมิสูงและแบคทีเรีย
บนสดกิจกรรมในเนื้อเยื่อปะการัง และแยกซูแซนเทลลา .
ไม่มีความแตกต่างสดกิจกรรม
เนื้อเยื่อปะการังหรือซูแซนเทลลาท่ามกลางสภาวะการทดลองในช่วงระยะเวลาการ

รูปที่ 4C และ D แสดงผลของอุณหภูมิสูงและแบคทีเรียบน
แมวของปะการัง และกิจกรรมการแยกซูแซนเทลลา .

กิจกรรมแมวเพิ่มขึ้นอย่างมีนัยสำคัญที่อุณหภูมิสูงในเนื้อเยื่อปะการัง ( ANOVA , p = 0.001 ) แมวในโฮสต์และซูซานแทลลี่
ปะการังต่างๆไม่เพิ่มขึ้นด้วยการเพิ่มของแบคทีเรีย .
มีความแตกต่างที่สำคัญระหว่างการรักษาและ
ไร้แบคทีเรียที่อุณหภูมิสูงเมื่อเทียบกับการควบคุม ( HSD pb0.05
, ) ไม่มีความแตกต่างระหว่างเงื่อนไขกิจกรรม
แมวของซูแซนเทลลา .